疾病相关SHP2突变体的相分离是MAPK过度活化的基础

疾病相关SHP2突变体的相分离是MAPK过度活

化的基础

导读

非受体蛋白酪氨酸磷酸酶（PTP）SHP2是由PTPN11编码的，在正常发育RAS-有丝分裂原-活化的蛋白激酶（MAPK）信号通路中发挥重要的作用。令人费解的是PTPN11酶活化和失活的突变体为什么能够导致具有重叠临床表现的人类发育紊乱。在本研究中，研究者发现一种常见的、在这些疾病相关的SHP2突变体中共有的液-液相分离(LLPS)行为。SHP2 LLPS是由保守的、折叠良好的PTP结构域通过多价电子相互作用介导，并且通过构象的改变由一种内在的自体抑制机制调节。SHP2变构抑制剂能够减弱SHP2突变体的LLPS，提高SHP2 PTP的活性。此外，疾病相关SHP2突变体能够招募和激活LLPS中的WT SHP2，促进MAPK的活化。这些结果不仅暗示LLPS以一种功能获得的方式参与SHP2相关人类疾病的发病机制，也提供证据说明PTP受LLPS调节，LLPS可能作为治疗的靶向。

实验设计

结果

1 疾病相关SHP2突变体在细胞中形成离散的点

为了探究疾病相关突变体如何影响SHP2细胞内的功能，研究者在KYSE520细胞中稳定表达了6个mEGFP 标记的SHP2突变体 (1个WT, 3个NS/JMML 突变体,以及2个NS-ML 突变体)，该细胞系是一种依赖SHP2的食道癌细胞系。SHP2-mEGFP 的表达水平与内源性SHP2具有可比性。重要的是，活细胞荧光显微镜发现所有与疾病相关的SHP2突变体都形成了离散的斑点，而SHP2 WT 在整个细胞中明显散布（图1A ）。高内涵成像分析显示疾病相关SHP2突变体不仅在数量上，在斑点的平均大小上也超过了SHP2（图1B ）。在SHP2突变体中斑点的数量与平均斑点大小相关。此外，在一些其他细胞系中，包括HEK293T, A549,以及HUVEC ，利用mEGFP-

或者mScarlet-标记的SHP2进行的实验中也观察到相似的突变体特异的斑点形成。为了排除所观察到的斑点形成可能是由于外源性SHP2表达导致细胞内蛋白浓度升高，研究者进一步在SHP2敲除的HEK293T细胞中稳定表达了mEGFP-标记的SHP2突变体和WT。SHP2-mEGFP蛋白的表达水平与亲代HEK293T细胞中SHP2的表达水平相同。研究者再次观察到SHP2突变体中形成斑点，而SHP2中没有。

值得主要的是，两个癌细胞系H661和CCF-STTG1都分别含有一个内源性NS相关的SHP2

或者NS-ML相关的SHP2突变体，也出现了SHP2斑点，而含有两个WT SHP2等位基因的KYSE520经免疫荧光检测只是偶尔有SHP2斑点。研究者进一步在更多生理设置的条件下检测了SHP2斑点的存在，结果发现在Ptpn11小鼠源性的小鼠胚胎成纤维细胞（MEF）以及Ptpn11小鼠源性的间充质干细胞（MSCs）中SHP2斑点的数量具有高度的统计学意义，而在WT MEFs或者MSCs 中没有发现斑点（图1C、D、E、F）。在分别含有一个SHP2或者一个SHP2突变体的NS病人口腔黏膜细胞中发现了大量SHP2斑点，但是在两个健康的捐赠者中却没有（图1G、H）。这些结果清楚的说明在细胞内疾病相关SHP2突变体具有更高的斑点形成倾向。

图1. 细胞内疾病相关SHP2突变体形成斑点。(A) KYSE520细胞中SHP2以及SHP2-mEGFP的活细胞成像，标尺为10 mm；(B) SHP2以及SHP2-mEGFP斑点高内涵数据定量，***p < 0.001；(C) Ptpn11以及对照小鼠源系MEF细胞中SHP2免疫荧光成像，标尺10 mm；(D)对图C结果进行定量分析，***p < 0.001；(E) Ptpn11

以及对照小鼠源系MSCs细胞中SHP2免疫荧光成像，标尺10 mm；(F)对图E结果进行定量分析，***p < 0.001；

(G)两个努南综合征患者和两个健康个体源系口腔黏膜上皮细胞中SHP2免疫荧光成像，标尺10 mm；(H)对图G

结果进行定量分析，***p < 0.001。

2 细胞内疾病相关SHP2突变体的斑点表现出液滴样的特征

LLPS已经成为许多生物学过程中一种基础的调节机制。研究者评估了SHP2突变体斑点是否具有任意液滴样特征。结果发现NS/JMML和NS-ML SHP2突变体的确形成斑点，斑点能够移动并且一旦相遇就自发融合（图2A）。光漂白(FRAP)后的荧光恢复实验说明一旦光漂白， SHP2- mEGFP突变体斑点的免疫荧光在几分钟内就恢复（图2B、2C）。为了证实内源性SHP2突变体形成的斑点在活细胞中是否具有液滴样的特征，研究者利用CRISPR-Cpf1对H661细胞中带有mEGFP的内源性SHP2突变体等位基因进行标记，随后进行单克隆扩增并且通过测序进行验证。在加工H661细胞的SHP2-mEGFP中观察到与亲代H661细胞内源性SHP2一样的浓缩形成。在加工H661细胞中内源标记SHP2-mEGFP的斑点通过FRAP实验也证实具有浓缩的流动性（图2D）。这些结果提示促进斑点形成的NS/JMML和NS-ML SHP2突变体也表现出动态的液滴样行为。

图2. 细胞中疾病相关SHP2突变体的斑点表现出液滴样特征。（A）两个SHP2-mEGFP斑点的融合，标尺5 mm；（B）KYSE520细胞中对SHP2E76K -mEGFP进行FRAP实验的代表性图像，标尺5 mm；（C）SHP2-mEGFP斑点的FRAP数据定量分析；（D）H661(SHP2N58S)细胞中对内源性标记SHP2-mEGFP进行FRAP实验的代表性图像，

标尺10 mm。

3 疾病相关SHP2突变体能够促进体外SHP2的LLPS

研究者进一步探究了体外SHP2是否具有相分离的能力。研究者准备了重组WT和多个疾病相关的SHP2突变体蛋白，结果发现相较于SHP2 WT，NS/JMML和NS-ML突变体形成液滴的能力更强（图3A、B）。显著的是，SHP2突变体在体外形成液滴的潜能与细胞内形成斑点的能力相关（图3C）。SHP2突变体的液滴在一段时间内倾向于结合（图3D）。此外，FRAP实验说明当进行光漂白实验时，SHP2-mEGFP突变体液滴中的荧光能够有效的恢复（图3E），进一步证实SHP2突变体在体外进行典型的LLPS。

研究者通过进行不同浓度SHP2突变体和氯化钠的液滴形成实验建立了SHP2 WT和两个疾病相关突变体SHP2和SHP2的相图。研究者观察到在接近细胞内生理盐水浓度125 mM NaCl 存在时，SHP2和SHP2能够从0.25–0.5 mM开始进行LLPS，而SHP2 WT的LLPS从2–4 mM 时开始出现（图3F）。研究者随后在多个细胞系中检测了内源性SHP2的蛋白浓度，结果发现细胞内SHP2蛋白的浓度大约在0.3-0.4 mM。假设SHP2突变发生在PTPN11的一个等位基因上，内源性SHP2突变体的浓度(0.15–0.2 mM)接近体外SHP2突变体 LLPS所需要的临界浓度（图3F）。然而细胞内SHP2 WT的蛋白浓度低于体外SHP2 WT LLPS所需要的临界浓度。这一发现