层析柱说明书
DEAE-sepharose FF说明书准确翻译版
离子交换柱说明书翻译目录1.简介2.所需材料3.处理填料4.组装柱子5.填料装柱6.平衡7.样品处理8.操作流速9.吸附10.洗脱11.再生12.在位清洗（CIP）13.清洁14.保存附录A附录B附录C15.订货须知1.简介CM Sepharose Fast Flow, DEAE Sepharose Fast Flow, Q Sepharose Fast Flow和SP Sepharose Fast Flow这些都是离子交换色谱的填料，高效且具有优良的流动性能。
以下说明以在推荐柱子XK 16/20中填充填料为例，不同尺寸的柱子请参考“附录A”修改填柱方案。
Sepharose FF填料也可以装在Tricorn 高性能层析柱中。
请阅读并遵循装柱指示手册。
技巧详情请翻阅"Ion Exchange Chromatography and Chromatofocusing: Principles and Methods"2.所需材料填料、柱子、泵、梯度混合器、进样阀、量筒、烧杯、真空瓶、注射器、玻璃棒、缓冲液填料缓冲液应与初始缓冲液相同，缓冲液推荐见附录C中的表2和表3。
装柱时应避免使用高粘度的缓冲液，若使用，则需降低流速。
3.处理填料1)所有材料至室温2)倾倒填料，洗掉存储液，替换为缓冲液，配成的匀浆总体积为32.5ml（75%的填料，25%的缓冲液）注意：Sepharose Fast Flow离交柱CM, DEAE 和Q存储在20%的酒精中，SP Sepharose Fast Flow存储在20%的乙醇和0.2M的醋酸钠中3)给匀浆脱气4.组装柱子1)装柱前确保每个组件完好无损，特别是网2)柱底连接注射器或者泵3)柱底浸没在缓冲液，用泵或注射器将缓冲液润洗整柱体，确保装柱无气泡4)塞上出口，装上柱底5)用缓冲液冲洗柱子，使柱底保持一小段液位，并保持柱垂直5.填料装柱以下说明以XK 16/20柱为例，不同尺寸的柱子请参考“附录A”。
xdb色谱柱说明书
xdb色谱柱说明书摘要：1.色谱柱概述2.色谱柱的性能指标3.色谱柱的应用领域4.色谱柱的维护与保养正文：色谱柱是液相色谱、气相色谱等分析仪器中的核心部件，用于实现样品的分离、检测和分析。
本文将介绍xdb色谱柱的性能指标、应用领域以及维护保养方法，帮助用户更好地了解和运用这款优秀的色谱柱。
一、色谱柱概述xdb色谱柱是一款高性能的色谱柱，采用先进的固定相制备技术，具有良好的分离效果和稳定性。
它适用于多种分析领域，如有机化学、生物化学、环境监测等。
二、色谱柱的性能指标1.分离效果：xdb色谱柱具有较高的分离效率，能够快速、准确地实现样品的分离。
2.稳定性：xdb色谱柱在长时间的使用过程中，固定相不易流失，保证了色谱柱的稳定性。
3.耐压性：xdb色谱柱具有较好的耐压性能，适用于高压液相色谱等分析条件。
4.重现性：xdb色谱柱具有较好的重现性，保证了分析结果的准确性。
5.柱寿命：xdb色谱柱的固定相具有较长的使用寿命，降低了用户的运行成本。
三、色谱柱的应用领域1.有机化学：xdb色谱柱可用于分析有机化合物，如芳香烃、醇、酮、酸等。
2.生物化学：xdb色谱柱可用于分析生物样品，如蛋白质、核酸、氨基酸等。
3.环境监测：xdb色谱柱可用于监测环境中的有害物质，如挥发性有机物、重金属离子等。
4.食品分析：xdb色谱柱可用于分析食品中的添加剂、农药、兽药等。
5.医药分析：xdb色谱柱可用于分析药物成分、杂质和代谢物等。
四、色谱柱的维护与保养1.色谱柱在安装和使用过程中，应轻拿轻放，避免强烈震动和撞击。
2.遵循仪器操作规程，确保色谱柱在合适的分析条件下使用。
3.定期检查色谱柱的性能，如分离效果、柱压等，发现异常应及时处理。
4.更换色谱柱时，应使用相同品牌、相同规格的色谱柱，以保证分析结果的稳定性。
5.色谱柱在使用过程中，应定期清洗，以去除残留的样品和杂质。
通过以上对xdb色谱柱的介绍，相信大家对这款色谱柱有了更深入的了解。
Ni柱层析说明书
Ni-IDA Sefinose TM ResinIntroduces:Ni-IDA sefinose Resin is an agarose resin (6% cross-linked) covalently coupled to a tridentate chelating agent ((iminodiacetic acid or IDA) that binds Ni2+ions by four coordination sites for high-affinity purification of His-tagged recombinant proteins without leacking of Ni2+,His-tagged proteins may be purified under either native or denaturing conditions from any of the common recombinant expression systems, such as bacteria, yeast, insect, and mammalian. Proteins bound to the resin are then eluted with either low pH buffer or imidazole solution or even with histidine solution.Features:Average bead size 90 µmProtein binding capacity* Approx. 6 mg histidine-tagged protein/1ml resinCompatibility during use Stable in all commonly used buffers, denaturants and detergents.Avoid in buffers Chelating agents, e.g. EDTA, EGTA, citrate, histidine ,and so on.pH stability, short-term (2 h) 2–14Storage 20% ethanolStorage temperature +4 to +30ºCRecommended buffers:Native conditions:Binding/wash buffer: BSP030-3(BBI)Elution buffer: BSP030-4(BBI)Denaturing conditions:Binding/wash buffer: 20 mM Tris-HCl, 8 M urea, 500 mM NaCl, 5 mM imidazole, pH 8.0,Elution buffer: 20 mM Tris-HCl, 8 M urea, 500 mM NaCl, 500 mM imidazole, pH 8.0,Notice:The optimal concentration of imidazole needed in the sample and buffer to obtain the best purity and yield differs from protein to protein. Under native conditions, 20–40 mM imidazole in the binding buffer is suitable for many proteins. 500 mM imidazole in the elution buffer is most often sufficient to completely elute the target protein:Sample preparation:The protocol below has been used successfully in our laboratories, but other established procedures may also work.1. For protein expressed in E. coli or yeast cytoplasm. Dilute the cell paste: Add 5–10 ml of binding buffer foreach gram of cell paste. It is essential that the sample and binding buffers contain the same concenctration of imidazole to prevent binding of host cell proteins with exposed histidines.at the same time , remove large particles and high concentration of reagents such as EDTA, amino acids and reducing agents, which can destroy Ni-IDA resins.2. Enzymatic lysis: 0.2 mg/ml lysozyme, 20 µg/ml DNAse, 1 mM MgCl2, 1 mM PMSF (final concentrations)or other protease inhibitors. The inhibitors must have no effect on the ability of the Ni resin.then Stir for 30 160 Torbay Road Markham Ontario L3R 1G6 Canadaminutes at +4°C3. Mechanical lysis: Sonication, homogenization, repeated freeze/thaw or similar techniques.4. Adjust the pH of the lysate to pH 7.4: Do not use strong bases or acids for pH-adjustment (precipitation risk).5. Centrifuge the lysate: Transfer to tubes and centrifuge at 12000rmp for 20 minutes at room temperature or+4°C depending on the sensitivity of the protein.6. Collect supernatants and perform the purification.7. For proteins secreted into culture medium by yeast, insect, or mammalian expression systems,if have a lot oflarge volume of supernatant, concentrate the proteins by ammonium sulphate precipitation Dialyze with 1× PBS,then apply to the column, If bit culture supernatant does not contain EDTA, histidine, or any other reducing agents that might affect the Ni column, it can be applied directly to the column.Note: You can also apply unclarified sample to the column (i.e. omitting step 5 above). If so, extend the mechanical lysis somewhat, e.g. sonicate for 10 minutes. Total purification time will increase due to the higher viscosity of the unclarified sample.Purification Procedures:1). Column preparation.(a) Mix the slurry by gently inverting the bottle several times to completely suspend the resin.(b) Use a pipette to transfer an appropriate volume of Ni resin slurry to the column. Allow the resin to settle andthe storage buffer to drain from the column.(c) Equilibrate the column with four bed volumes of binding/wash buffer or until A280 is stable.2). Purification protein(a)Binding the protein to the resin.Apply the above soluble cleared sample containing His-tagged protein to the column with a flow-rate of 0.5-1 ml per minute. Collect and save the flow-through for analysis.(b) Washing.Wash the column with eight bed volumes of binding/wash buffer or until A280 is stable at the flow-rate of 1 ml per minute.(c). Elution of the target protein.Elute the polyhistidine-tagged protein with five to ten bed volumes of Elution buffer. Collect the elute and dialyze it against 20 mM Tris-HCl pH 8.0 or 1×PBS, pH 7.4, according to the specific application of the target protein.3).Purification of polyhistidine-tagged proteins ( expressed mainly in inclusion bodies)from E. coli underdenaturing conditions:(1). Resuspend the cell pellet in 1× PBS (about 5 ml per ml of pellet), and disrupt cells by sonication as describedabove.(2). Collect inclusion bodies by centrifuging the lysate at 12,000 rpm for 10 minutes. Wash inclusion bodies with1× PBS several times if necessary.(3). Solubilize the inclusion bodies in binding/wash buffer (about 5 ml per ml of pellet), and incubate for 30-60minutes at room temperature. Homogenization or sonication may be necessary to fully solubilize the pellet. (4). Centrifuge at 12,000 rpm for 30 minutes to remove any remaining insoluble material. Carefully transfersupernatant to a clean tube without disturbing the pellet and load it on the Ni column pre-equilibrated with binding/wash buffer.160 Torbay Road Markham Ontario L3R 1G6 Canada(5). Wash the column with binding/wash buffer for 3-4 times until the absorption at 280 nm is close to zero.(6). Elute with minimal volume of elution buffer.Note: The process recommended here is the purification of protein from inclusion body, the eluted protein from this process may need to be refolded to obtain the active and soluble protein.The concentrations of reagents compatible with the NI-NTA columnare given as the followings:Denaturing agents 8 M urea6 M guanidine-HClDetergents 2% TritonX-100 (nonionic)2% Tween 20 (nonionic)2% NP-40 (nonionic)2% cholate (anionic)1% CHAPS (zwitterionic)Other additives 20% ethanol50% glycerol100 mM Na2SO41.5 M NaCl1 mM EDTA60 mM citrateBuffers 50 mM sodium phosphate, pH 7.4100 mM Tris-HCl, pH 7.4100 mM Tris-acetate, pH 7.4100 mM HEPES, pH 7.4100 mM MOPS, pH 7.4100 mM sodium acetate, pH 4Notice: 1. For optimal performance, remove any weakly bound Ni2+ ions by performing a pre-wash as described under the above purification procedures. Do not leave the columns with buffers containing reducing agents when not in use.2. Use at room temperature due to the higher viscosity.3. Generally, chelating agents should be used with caution (and only in the sample, not in the buffers). Anymetal-ion stripping may be counteracted by adding a small excess of MgCl2before centrifugation/filtration of the sampleTroubleshootings:Trouble Because SuggestionsFlow rate is too slow The sample istoo viscousIf the purification has been performed at +4ºC change to room temperatureif possible.Increase dilution of the cell paste before sonication or dilute after sonication.Continue sonication until the viscosity is reduced, and/or add an additionaldose of DNAse and Mg2+Filter the sample (or centrifuge if unclarified sample has been used).If very viscous solutions are used, connect the column to a vacuum manifold160 Torbay Road Markham Ontario L3R 1G6 Canadato speed up the flow rate.Target protein is difficult to dissolve or precipitates during purification Add detergents, or other additives and mix gently for 30 minutes to aid solubilization of the tagged protein. Note that Triton X-100 and NP-40 (but not Tween) have a high absorbance at 280 nm,Furthermore, detergents cannot be easily removed by buffer exchange.Inclusion bodies: the protein can usually be solubilized (and unfolded) from inclusion bodies using common denaturants such as 4–6 M guanidine-HCl, 4–8 M urea, or strong detergents. Mix gently for 30 minutes or more to aid solubilization of the tagged protein.Histidine-taggedprotein is notcompletelyeluted.Elute with an additional several ml of elution buffer.Histidine- tagged protein found in the flow-through during sample application and wash Imidazole concentration in the sample and binding buffer is too high. Use a lower concentration.Ensure that the concentration of chelating or strong reducing agents in the sample is not too high.The histidine tag may be insufficiently exposed; perform purification of unfolded protein in urea or guanidine-HCl as for inclusion bodies. To minimize dilution of the sample, add solid urea or guanidine-HCl.The histidine tag has been lost. Check the sequence of the construct.Low yield of histidine- tagged proteinHistidine- tagged protein is not eluted during purification Histidine-tagged protein still bound. Elute with a higher concentration of imidazole in the elution buffer.The target protein has precipitated in the column. Decrease the amount of sample.Decrease imidazole concentration during elution. Try detergents or change NaCl concentration, or elute under denaturing (unfolding) conditions. Non-specific hydrophobic or other interaction.Add a non-ionic detergent to the elution bufferor increase NaCl concentration.Too low imidazole concentration in sample and binding buffer Use a higher imidazole concentration in sample and binding buffer to prevent binding of unwanted host cell proteins. 20–40 mM is recommended, but higher concentrations may also be appropriateWashing ofunboundmaterial isinsufficientRepeat the wash step after sample application to obtain optimal purity.Partial degradation of tagged protein by proteases Add protease inhibitors (avoid contains EDTA ).Perform lysis and purification at +4ºC.Eluted histidine tagged proteinis not pureContaminants are associated with tagged proteins Before sonicating the cells. Increase detergent levels (e.g. up to 2% Triton X-100 or 2% Tween), or add glycerol (up to 50%) to the wash buffer to disrupt non-specific interactions.160 Torbay Road Markham Ontario L3R 1G6 Canada。
cytivagst亲和层析柱中文说明书
cytivagst亲和层析柱中文说明书CyTiva GST亲和层析柱是一种常用的色谱柱，用于蛋白质的纯化和分离。
亲和层析是一种基于蛋白质与特定配体之间的非共价相互作用而进行的纯化方法。
本文将详细介绍CyTiva GST亲和层析柱的原理、优点、使用方法和注意事项。
一、原理CyTiva GST亲和层析柱采用谷氨酸-S-转移酶(Glutathione-S-Transferase，GST)作为亲和配体。
GST是从谷胱甘肽(glutathione)中分离得到的一种蛋白质。
该配体与GST融合的蛋白质有很高的亲和力，可被其特异性地捕获。
在层析过程中，样品与柱填料表面的GST结合形成复合物。
通过洗脱缓冲液中pH、盐浓度或添加特定配体等的调节，使复合物分离并得到目标蛋白质。
二、优点1.高选择性：CyTiva GST亲和层析柱具有很高的选择性，可以高效地分离和纯化GST融合的目标蛋白质。
2.高纯度：层析过程中，非特异性结合蛋白质可被洗脱掉，从而得到高纯度的目标蛋白质。
三、使用方法1.准备工作：柱前洗脱，根据柱填料要求进行预处理。
2.样品处理：目标蛋白质表达并纯化后，与GST融合的载体进行融合。
此后，将样品溶液等体积注入已平衡的柱中。
3.洗脱条件的选择：根据样品的属性，选择适宜的洗脱缓冲液，进行洗脱。
可以按照pH、盐浓度、添加特定配体等来调节洗脱条件。
4.目标蛋白质洗脱：将目标蛋白质从柱中洗脱出来，收集洗脱液。
四、注意事项1.样品的处理：目标蛋白质应表达和纯化得到GST融合蛋白质。
2.柱前处理：根据柱填料的要求，进行柱前洗脱处理。
3.洗脱缓冲液的调节：根据样品的特性和所需的洗脱条件进行调节。
常用的洗脱条件包括调节pH、盐浓度、添加特定配体等。
4.洗脱收集：在洗脱过程中，及时收集洗脱液。
总结：CyTiva GST亲和层析柱是一种常用的蛋白质纯化和分离工具，基于GST与目标蛋白质的非共价相互作用。
它具有高选择性和高纯度的优点，可广泛应用于生物医药研究领域。
离子交换层析柱和填料选择指南
平衡 1M
样品 上样体积
梯度洗脱
不结合的分子在 梯度开始前被洗脱
[NaCl]
10–20 CV
5–10 CV 0
柱体积（CV）
图1.使用梯度洗脱的典型IEX分离。
洗涤 高盐洗涤
5 CV
再平衡
紧密结合 的分子在 高盐洗涤 中被洗脱
5–10 CV
蛋白质由含有可以被测定的弱酸和弱碱基团（即电离 基团）。因此，蛋白质的净表面电荷是高度依赖的p H，并将随着环境pH变化而逐渐改变。每种蛋白质都 有其针对pH的独特静电荷关系，这可以被视为滴定 曲线（图2）。这条曲线反映了蛋白质整体净电荷如 何根据环境的pH变化。可以在不同的pH值下利用IEX 以分离具有截然不同电荷性质的多种蛋白。图2显示 如何选择正确的pH（实现令人满意的分最重要参数 之一）。
清洗程序，方案1
用4 CV达到70%的乙醇或30%的异丙醇洗涤。 用至少2 CV的蒸馏水冲洗，直到紫外基线和洗 脱pH稳定。 立即用3 CV的起始缓冲液洗涤（流速与步骤2相 同）。
清洗程序，方案2
用2 CV含有去垢剂的碱或酸溶液洗涤（例如含有 0.1–0.5%非离子型去垢剂的0.1 M乙酸）。 用5 CV 70%乙醇冲洗以去除残留的去垢剂。 用至少2 CV的蒸馏水冲洗（流速与步骤1相同）， 直到紫外基线和洗脱pH稳定。 用3 CV的起始缓冲液洗涤（流速与步骤1相同）。
用于阳离子交换层析的缓冲液
pH间隔
物质
1.4-2.4 2.6-3.6 2.6-3.6 3.3-4.3 3.3-4.3 3.7-4.7 5.1-6.1 4.3-5.3 5.2-6.2 5.6-6.5 6.7-7.7 7.0-8.0 7.8-8.8
马来酸 甲基马来酸 柠檬酸 乳酸 甲酸 琥珀酸 琥珀酸 乙酸 甲基马来酸 MES 磷酸盐 HEPES BICINE
JNC Corporation Cellufine Sulfate V7_C微型柱操作说明说明书
JNC CORPORATION操作说明微型柱Cellufine Sulfate1. 简介微型柱Cellufine Sulfate 是一种用于Cellufine Sulfate 亲和层析的易用预装柱，Cellufine Sulfate 是一种亲和介质，用于病毒、病毒外壳、微生物抗原及特异性蛋白的浓缩、净化和除热原。
Cellufine Sulfate 微型柱以Cellufine Sulfate 凝胶填充。
这种凝胶基于球状纤维素珠体，使用低浓度硫酸酯进行处理。
低浓度 Sulfate 基团为凝胶提供了独特的色谱选择性，在某些情况下，这种色谱选择性类似于固定肝素。
由于Cellufine Sulfate 的排阻限较低（3 kD ），大分子主要通过填料外层吸收，缩短了吸收和解吸时间。
其优异的硬度表现提高了流速，进而缩短了处理时间。
由于热原对Cellufine Sulfate 没有亲和性，通常可以用几个柱体积的已除热纯净水对凝胶除热原。
层析柱Cellufine 微型柱由聚丙烯管和超高分子量聚乙烯筛板制成。
该类柱采用10-32UNF 螺纹连接1/16英寸外径管，可以与色谱系统连接。
表1. 微型柱Cellufine Sulfate 特征柱体积1毫升与5毫升柱规格（内径×长） 6.7 毫米×30毫米(1毫升) 14.6毫米×30毫米(5毫升) 配基 Sulfate饱和度 700微克/干 凝胶 结合载量 3毫克/毫升 粒径 约40-130微米 珠体基质 球形纤维素 压力范围0.4 MPa (4巴)建议流速 0.1 - 1.0毫升/分钟(1毫升) 0.1 - 5.0毫升/分钟(5毫升) pH 稳性 3-12存储20%乙醇，置于阴凉处2. 操作指南 常规操作（1）用吸附缓冲液平衡色谱柱（2）上样（样品应调整到吸附缓冲液的组成）（3）用数个床体积的吸附缓冲液洗涤，除去未结合物质。
（4）用解吸缓冲液洗脱结合物。
Blue层析柱说明书
Blue预装柱(FF)Blue Sepharose 6 Fast Flow原理Cibacron TM Blue F3G-A是一种合成的多环染料，其作用类似于芳香族的阴离子配基，通过静电力和/或疏水性相互作用结合白蛋白。
相似的互相作用也发生在凝血因子，脂蛋白和干扰素上。
促皮质素Blue F3G-A连接到Sepharose上制备成Blue Sepharose亲和介质。
*图为Blue Sepharose 6 Fast Flow部分结构分离操作结合缓冲液：50mM KH2PO4, pH 7.0或者20mM 磷酸钠, pH7.0洗脱缓冲液：50mM KH2PO4, 1.5M KCl, pH 7.0或者20mM 磷酸钠,2M NaCl, pH7.01，用5倍柱体积的结合缓冲液平衡柱子。
2，上样。
3，用10倍柱体积的结合缓冲液平衡分离柱，直到基线，即所有未结合物质都被冲洗出柱子。
紫外吸光A280nm处监测。
4，用5倍柱体积的洗脱缓冲液进行洗脱。
使用连续的或者阶梯式的梯度洗脱，洗脱缓冲液的浓度从0%-100%。
净化1，用5倍柱体积冲洗，使用高pH（0.1M Tris-HCl,0.5M NaCl,pH8.5）溶液冲洗，然后再使用低pH（0.1M 醋酸钠,0.5M NaCl,pH4.5）冲洗。
重复4~5次，立即再用结合缓冲液再平衡。
2，用4倍柱体积的0.1M NaOH溶液在较低的流速下去除沉淀的蛋白质，接下来用3~4倍柱体积的70%的乙醇或者2M的硫氰酸钾冲洗。
也可以选择用2倍柱体积的6M的盐酸胍冲洗柱子。
立即用结合缓冲液在此平衡柱子。
3，通过用3~4倍柱体积的70%的乙醇或者30%异丙醇冲洗柱子，去除结合很强的疏水性蛋白质，脂蛋白和脂质等物质。
另外可以选择用2倍柱体积的碱性或者酸性去污剂溶液，例如0.1%的非离子去污剂在1M乙酸溶液中，以较低的流速流过柱子，接下来用5倍柱体积的70%的乙醇除去残留的去污剂。
立即用结合缓冲液在此平衡柱子。
UniGel
UniGel®离子交换层析介质产品使用说明书文件编号：NM-W-DF-0102版本号：A0UniGel®层析介质使用说明产品简介离子交换层析（Ion Exchange Chromatography）是根据生物分子表面电荷（种类、数目和分布）差异实现对不同生物分子的分离的方法，纳微科技提供基于单分散均一粒径和多分散聚合物微球的离子交换层析介质，经过亲水表面改性后再键合离子交换基团，根据应用需求的不同提供多系列产品，可以满足捕获、中度纯化、精细纯化以及分析纯化各环节的应用，具有卓越的生物分子相容性和柱床稳定性，为客户提供生物样品从实验室纯化到工业化生产的整体解决方案。
表1. 离子交换功能团分类及用途注：1.流动相pH介于pI和pKa之间;2.流动相p H与待分离样品等电点差1.0 pH;3.pH<3.0宜选用强阳交换介质，pH>10.0宜选用强阴交换介质。
图1. UniGel®系列离子交换层析介质实物图UniGel®离子交换层析介质的优势1) 超高动态载量，一般每毫升结合>105 mg 溶菌酶（阳离子交换）和>90 mg BSA（阴离子交换）；2) 可提供粒径30/50/65/80 μm 等多种不同粒径的离子交换介质以满足中纯到精纯的需求；3) 填料装柱压缩系数和溶胀系数小（远低于琼脂糖和葡聚糖凝胶），柱床稳定性高；4) 高强度的基质可以使用更快的流速和更高的柱床，提高纯化效率；5) 优越的耐碱性，可以有效延长使用寿命，提高生产效率，降低成产成本，提升企业效益。
表2. UniGel® 离子交换层析介质参数总览表3. UniGel ®离子交换层析介质其他技术参数总览注：1、动态吸附载量：阳离子用溶菌酶（Lysozyme ），阴离子用牛血清白蛋白（BSA ）/2、pH 值稳定范围是指使用、再生和在位清洗的pH 区间表4. UniGel ®系列离子交换层析预装柱参数信息注：对于特殊规格需求，提供专业化客户定制服务。
rProtein A预装柱01说明书
使用说明书产品编号：rPA-C-01产品规格：1 mL稳定性：层析填料于20 %乙醇中保存：4~8℃◆产品简介本制品可直接用于从血清、腹水中纯化IgG 抗体，或是用于纯化含Fc片段的重组蛋白。
1 mL 填料从人血清中单次纯化可获得大于55 mg的IgG抗体，纯度达95 %以上，且操作简便、稳定、重复性好。
本制品使用的rProtein A是通过基因工程重组蛋白的方法表达获得，由于重组表达的rProtein A极大程度上地去除了除Fc端以外的其他非特异性结合位点，因而特异性更好，亲和性更强。
◆rProtein A预装柱纯化IgG抗体步骤以下实验方法适用于从兔血清或鼠腹水中纯化IgG抗体，不同来源的IgG与Protein A的结合能力不同，具体情况请参考表1。
1. 将兔血清或鼠腹水样品（推荐上样量2 mL样品/mL柱，具体上样量根据样品不同估算）装入截留分子量3.5 KDa透析带中，于4 ℃冰箱中对1× PBS（pH 7.4）透析过夜；2. 将rProtein A预装柱固定好，用10倍柱体积1×PBS（pH 7.4）平衡层析柱，建议流速为 1 mL/min；3. 将透析好的样品从层析柱上端加入，建议流速为1 mL/min，为了获得更好的抗体结合效果可将流穿液再上样，重复2遍（或者是将样品1次性加入层析柱后置于摇床上，轻轻摇动，结合30 min）；4. 样品结合后，用20倍柱体积1×PBS(pH 7.4)洗涤层析柱，建议流速为1 mL/min，切勿让层析柱滴干；5. 洗脱IgG，向层析柱上端加入洗脱液（100 mM甘氨酸，pH 2.7），用预先加有100 μL中和缓冲液（1M Tris，pH 9.0）的4 mL Ep接收，2 mL /管，共收集10倍柱体积，进行10 % SDS-PAGE 电泳，确定IgG样品所在管，回收样品（图1）。
6. 向层析柱加入5倍柱体积再生缓冲液（100 mM甘氨酸，pH 2.0），再加入10倍柱体积ddH2O清洗层析柱。
柱效测定
柱效测定是一项经常使用的操作，对于定量表征层析柱的工作状态是否良好，工艺的验证具有重要的意义。
但是实际工作中很多朋友都遇到不会测柱效或者测出来注销过低的状况，不知道如何解决。
所以今天我就给大家详细介绍一下柱效的正确测定方法，以及经常遇到的问题如何解决。
本方法适用于所有GE公司中低压液相色谱的预装柱及自己填装的层析柱。
介绍分为5个部分，测前准备、试剂选择、测柱效操作、测试结果积分、经常发生的问题。
1. 测前准备：⑴ÄKTA层析设备。
要求设备的型号与层析柱大小匹配，从上样阀门到紫外和电导检测器之间的体积要做到最小（管路内径尽量细，管路尽量短），这对于准确测量实验室小层析柱的柱效非常重要。
⑵测试平衡溶液及样品。
这个部分在试剂选择中单独细说。
⑶装填好的层析柱。
使用平衡缓冲液在测柱效的流速下至少平衡1.5 CV（柱体积），平衡方向与测柱效方向必须一致⑷样品环。
容积大于1%柱体积。
2. 试剂选择测柱效主要有两种测试系统：1 NaCl 测试系统；2 丙酮测试系统。
只要操作正确，两个系统测出来的结果是基本一致的。
但是要注意：各试剂的浓度不能随意改变，否则影响测试结果。
⑴NaCl测试系统对于所有种类的柱子和填料，都可以使用氯化钠系统测柱效平衡液：0.4 MNaCl水溶液样品：0.8 M NaCl水溶液⑵丙酮测试系统对于亲和、离子交换和凝胶过滤技术的层析柱和填料平衡液：水样品：1%丙酮的水溶液对于反相和疏水层析柱和填料平衡液：20%乙醇样品：1%丙酮溶于20%乙醇3. 测柱效操作测柱效全程使用30 cm/h线性流速。
平衡层析柱至少1.5 CV，将1% CV的样品（NaCl或丙酮）注射进入层析柱，使用平衡液冲洗直至电导或紫外280nm出现响应峰。
4. 测试结果积分以UNICORN6版本为例演示给大家看如何操作（各UNICORN版本操作基本一致）。
以NaCl系统测柱效的所有操作针对电导曲线，以丙酮系统测柱效的所有操作针对UV 280曲线（手头没有测柱效结果，所以随便找了一个图，里面有两个峰。
离子交换层析说明书
离子交换层析说明书CM Bestarose Fast FlowDEAE Bestarose Fast FlowQ Bestarose Fast FlowSP Bestarose Fast FlowCM, DEAE, Q and SP Bestarose 快速离子交换剂属于分离介质的一部分,主要为色谱工作服务，所有的介质都经过严格的控制生产从而保证其能够满足工业生产的需求。
为了正确操作以便得到最好的分离效果，请在使用前阅读该手册。
目录1. Bestarose 快速离子交换剂的特性 32. 装柱指南123. 装柱评价144. 保养175. 疑难解答17-19 1.Bestarose Fast Flow离子交换剂的特性Bestarose Fast Flow离子交换剂是以高度交联的琼脂糖为基质，它的化学、物理性质稳定，即离子载量、洗脱情况、反压及流量等特性不受层析和清洗过程中溶液的影响，详见下表。
高物理稳定性使它能在低背压下提供快速液流，在柱高15cm，1 bar压力下，它的流速可达300-700cm/h，见图1。
另外，刚性介质体积基本不因pH和离子强度的变化而变化。
线性流速图1. Bestarose 快速离子交换剂典型的压力/流速曲线。
CM Bestarose Fast Flow离子交换剂的特性CM Bestarose Fast Flow是一种弱阳离子交换剂，离子交换基团是羧甲基，如下：-O-CH2COO-表一. CM Bestarose Fast Flow 特性。
项目指标离子交换剂类型弱阳离子总离子载量0.09-0.13mmol/ml排阻限4×106（球形蛋白）骨架6%交联琼脂糖颗粒类型球形，45-165μm流速300–600 cm/h*工作温度4–40°C工作pH 见图2pH稳定性2-14(短期，CIP)4-13（长期）化学稳定性适合所有的缓冲体系1M NaOH8M Urea6M GuHCl70%乙醇避免事项氧化剂长期暴露（1星期，20°C）pH<4*15cm柱高，1 bar压强，25℃，XK 50/30 柱。
蛋白质纯化柱-ni
网址：
合蛋白； 4) 用缓冲液B和缓冲液C配制的不同浓度缓冲液D
洗脱； 9 最高纯度洗脱方案：用含0、60、100、150、
200、250mM 咪唑的缓冲液D分步洗脱，每 个梯度2~3倍介质体积洗脱； 9 最高收率洗脱方案：先用5~10倍介质体积 含20mM咪唑的缓冲液D洗脱，再用5~10倍 介质体积含250mM咪唑的缓冲液D洗脱。 注：纯化过程流速不宜过快，对于1ml介质，流速 保持在0.5ml/min为宜。 5. 介质清洗与再生： 如果使用一段时间以后，介质上有杂质沉积导 致介质颜色改变和蛋白结合能力下降，需对介质进 行清洗或再生。 z 介质清洗： 1) 用10倍介质体积0.5M NaOH过柱，适当调整流 速，或洗脱至10倍介质体积时停30min后继续洗 脱，保证介质与NaOH溶液接触时间达到30min 以上。 2) 用10倍介质体积去离子水洗去层析柱中的碱 液。 3) 用10倍介质体积缓冲液A平衡层析柱。 z 介质再生： 1) 用2~5倍介质体积脱镍缓冲液（50mM Na3PO4， 300mM NaCl，100mM EDTA，pH 8.0）过柱； 2) 用5-10倍介质体积0.5M NaOH过柱，适当调整 流速，如流速较快，则洗脱至10倍介质体积时 停30min后继续洗脱，保证介质与NaOH溶液接 触时间达到30min以上； 3) 用10倍介质体积去离子水洗柱； 4) 用3倍介质体积10mM Na3PO4，1M NaCl，pH 7.4 缓冲液平衡层析柱； 5) 用3倍介质体积20mM NiCl2或NiSO4 (溶于去离 子水)过柱； 6) 用3倍介质体积10mM Na3PO4，1M NaCl，pH 7.4 缓冲液洗柱； 7) 用5倍介质体积缓冲液A平衡层析柱。
网址：
分离His融合蛋白及能被金属离子吸附的多肽、 蛋白、核苷酸、磷酸化蛋白。
AKTAbasic层析系统操作入门
AKTAbasic层析系统操作入门为使用户在较短时间内尽快了解AKTA系列层析系统的功能和基本操作，特编写此操作入门。
若需进一步了解详细内容，可参阅相应的组件、系统和软件说明书。
一系统组件及系统功能介绍1 系统组件(1) 泵 Pump系统泵：(system pump)双泵（A、B泵），缓冲液及大体积样品输送。
上样泵：(sample pump)样品输送。
(2) 阀 Valve七通阀：(INV-907)两个。
1. 上样阀(sample valve)，用于上样环切换 (load/inject) 和系统泵清洗时废液管 (waste) 切换；2. 流向切换阀(flow direction valve)，用于层析柱流向切换(downflow/upflow)。
(4) 其它组件梯度混合器(mixer)、紫外检测仪(UV-900) 。
2 系统功能系统功能由上述各组件相互配合，协同工作。
(1) 缓冲液pH及梯度配制(a)梯度制备 (Gradient)A、B泵分别放置A、B液，由A、B泵的流速变化产生梯度。
(2) 层析柱柱顶连接进样（七通）阀1号口，柱后连接紫外流通池。
(3) 上样上样阀上样：将样品储存在样品环(Sample loop)，再由阀门切换将样品带入层析柱；系统泵上样：由系统泵将样品泵入层析柱。
(4) 收集 (选购)收集器收集：设置收集体积(Frac size)，可自动按条件收集。
二开机程序1 开启电脑；2打开AKTAbasic电源；3启动UNICORN软件，输入用户名( User name) 和密码(Password)，默认用户(default) 密码为 default，待AKTA自检结束后，在system control窗口中显示系统准备就绪（Instruments are ready) 。
三 UUNICORN 软件简介Unicorn软件启动后共有四个窗口，其主要功能分别如下：Main: 1. 系统关闭(Quit Program)和退出、登陆(Log on/off)；2. 系统管理的设定，如用户名、密码、文件和使用权限等设定，系统日志等；3. 文件管理，如文件拷贝、移动、删除及压缩拷贝到磁盘等；4. 方法组编辑(MethodQueues)，将几个方法组合在一起，依次运行。
FPLC使用操作细节
FPLC AKTA pure-使用方法及注意事项使用说明：1.提前预约2.计划好实验，准备样品、材料①实验中用到的所有buffer（包括ddH2O和乙醇）都要过滤、超声；②上柱前，蛋白一定要14,000rpm离心至少20min，取上清上柱；③一定要提前明确所要使用的柱子的使用方法，尤其是推荐的流速和柱压；④确定收集管干净、已经放好位置。
3.使用方法：1.装柱子:红色朝上,黑色朝下,将连接在UL9紫外上上面的接头拧下,拧下的接头连接在柱子的红色即上端接口,不拧紧,要保持水流,即水溢出后将红色的线往里放,固定红色的线然后拧黑色的螺丝,不拧紧.2找一根额外的线,取下柱子下端黑色的缓冲模块,接口处有水滴出时接上找出的线,拧紧,然后将红色那端拧紧,将另一根线的另一头接在取下的UL9接口处,拧紧.整个柱子安装过程完成.整个过程都要给系统一个流速. 通常设置的是0.5ml/min,系统压为1.4MPa.3.H2O平衡柱子（之前保存在20%乙醇中）两个柱体积4. 流速调0ml/min，换所用buffer洗泵头5. buffer平衡柱子一个柱体积6.将系统停掉7.安装合适的Loop环，loop环选择与样品体积相当的，安装好，用大于loop环五倍体积的buffer将loop环冲洗干净8．用合适的带针的注射器吸取样品，摘掉针头，将注射器中的气泡推出（最好前后各吸取一定的buffer以减少样本损失），将注射器中的样品注入loop环中，设置程序，开始实验。
注：程序设置：a.流速：0.5ml/min, 选择pre-colune presureb. Alarms:选择pre-colune pressure,压力大小根据柱子不同设置，superdex200 10/300GL 柱子压力为5MPa,填写的是4.5MPac.选择InjectD.Fractions设置next tube ,0.5ml/tube,96-well platee. Others:选择timer,设置具体的体积。
博格隆层析柱说明书
博格隆层析柱说明书层析柱是凝胶层析技术中的主体，一般用玻璃管或有机玻璃管。
根据样品混合物中各组分在固定相和流动相中分配系数不同，从而分离的一种层析法。
柱层析技术(chromatography) 又称柱色谱技术，主要原理是根据样品混合物中各组分在固定相和流动相中分配系数不同，经多次反复分配将组分分离开来。
使用方法如下：1、吸附剂的处理及柱子装填：将一定量薄层层析硅胶装入搪瓷盘置于烘箱中，于105。
C活化2H后，取出放置室温即可装柱。
柱子采用干法填充，填满整个柱体，不留死体积，密封后用柱塞式计量溶剂泵按丙酮一石油醚(5：95)比例泵入溶剂，至溶剂流出止。
2、上样：将冬凌草的乙醇提取物400G用适量丙酮溶解，泵入中压柱柱头，然后泵入石油醚1000RID。
3、洗脱：以一定比例的石油醚一丙酮为洗脱液，60ML/MIN的流速进行梯度洗脱，柱的使用压力为2～3KG/C 。
按每份500ML收集，TLC检识展开剂丙酮一氯仿(2：8)，显色剂5%香草醛浓硫酸乙醇液至洗脱完全，相同流份合并，回收溶剂。
将冬凌草甲素流份合并蒸干。
加入适量甲醇热溶后自然放置，析出结晶，为冬凌草甲素。
4、层析柱再生、平衡：有效成分经TLC检识全部流出后，用纯丙酮5000ML再生，丙酮一石油醚(5：95)平衡后，可再次上样，反复使用(使用次数随原料不同而异，一般可连续使用2—6个月以上)。
5、重结晶：冬凌草甲素结晶析出完全后，减压过滤，然后用少量甲醇洗涤(洗涤液保留，作下次热溶冬凌草甲素用)。
将冬凌草甲素再用适量甲醇热溶后放置，结晶再次析出，待结晶完全后，抽滤，用少量乙醚洗涤，将结晶室温下晾干后置真空干燥箱中，35度真空干燥至恒重。
密封于瓶中，置干燥器中保存。
6、薄层层析分析：取适量冬凌草甲素对照品及由上述方法得到的冬凌草甲素样品甲醇溶解后点于同一硅胶G薄层板上，以氯仿一丙酮(8：2)为展开剂进行展开，5% 香草醛浓硫酸乙醇液显色，于105。
东曹-TSKgel H 系列有机相分子尺寸排阻色谱柱使用说明书
有机相分子尺寸排阻色谱柱TSKgel H系列使用说明书东曹株式会社安全注意事项［注意标签］■远离火源使用易燃溶剂时，请务必小心。
否则可能会导致火灾、爆炸或中毒。
■使用环境必须通风良好如果通风不良，易燃或有毒溶剂可能会导致火灾、爆炸或中毒。
■请勿喷洒溶剂溶剂发生喷洒或泄露可能会导致火灾、触电、中毒、受伤以及腐蚀。
清除漏出的溶剂时，请佩戴合适的护具。
■请佩戴护目镜和防护手套有机溶剂和酸属于有害物质，切勿直接接触皮肤。
■请在适当的温度下操作操作不当，会降低色谱柱的性能。
■请勿将本产品用于其他目的本产品仅可用于分离和提纯，请勿用于其他用途。
■请用适当的压力装填层析柱压力过大可能会导致层析柱破裂或填料飞溅。
■请按正确的方式废弃使用过或未使用的溶剂请按照地方、国家的规定废弃溶剂。
注■如果产品上的柱标牌受到污染或无法阅读，请联系当地服务代理商。
■请妥善保管本说明书，以便日后参阅。
目录1. 简介 (1)2. 打开包装 (1)3. 色谱柱部件 (1)4. 安装 (2)5. 维护 (4)6. 溶剂 (5)7. 流速 (8)8. 温度 (8)9. 准备样品 (11)10. 理论塔板数和不对称因子的计算方法 (12)11. 保护柱 (13)12. 故障排除 (15)13. 质量标准和质量保证 (16)1. 简介TSKgel H系列聚苯乙烯填料柱是东曹株式会社开发用于有机溶剂高效GPC系统分析用专用色谱柱。
适合测定大分子聚合物和分离小分子复合物。
H系列色谱柱（分析型和制备型）拥有多种尺寸，可以满足不同用户的不同需求。
使用前，请仔细阅读本使用说明书，确保正确使用色谱柱，以便充分发挥产品的性能。
2. 打开包装请先确认包装外观及色谱柱是否完整。
图1 包装外观然后确认色谱柱配有以下文件：使用说明书1份检测报告（Inspection Data）1份3. 色谱柱部件图2 色谱柱部件（H、H XL和H HR系列）进口图3 色谱柱部件（SuperH系列）4. 安装4-1连接所有的连接方式都是内锁型，且采用英寸为单位进行测定。
AKTA层析仪使用操作规程(GE版)
ÄKTApurifier层析仪使用操作规程1、开机打开仪器的主电源，打开电脑电源。
待仪器自检完毕（CU950上面的3个指示灯完全点亮并不闪烁）。
双击桌面上UNICORN图标，进入操作界面。
2、准备工作溶液和样品所有的工作溶液和样品必须经过0.45µm的滤膜过滤，样品也可高速离心后取上清备用。
当缓冲液中含有有机溶剂（如乙腈、甲醇），需在使用前用低频超声脱气10min。
3、清洗及管道准备首先将A1管道放入缓冲液或平衡液，binding buffer中，将B1管道放入高盐溶液中或elution buffer，在system control窗口点击工具栏内的manual，选择 pump→pump wash basic，选中A1,B1管道为ON， execute。
泵清洗将自动结束。
4、安装层析柱在manual里选择pump→flow rate，输入流速1ml/ml，insert；选择Alarm&mon→alarm pressure，设置high alarm（输入填料的耐受压力，可在填料说明书中查到），insert，execute。
待InjectionValve的1号位管道流出水后接入柱子的柱头，稍微拧紧后将柱下端的堵头卸掉接入管道连上紫外流动池。
5、开始纯化：1）等待柱子平衡好了（观察电导COND，pH的数值和变化趋势）就准备上样了。
此时将紫外调零，选择Alarm&mon→autozero，exectue。
2）用样品环上：将样品吸进注射器，推掉气泡，从injectionValve的3号位推入（进样量不得低于样品环的体积的2倍）推好后不要取下注射器。
在manual里选择flowpath→injectionValve→inject，execute。
3）用泵上样：点击pause，将A1放入样品中，点击countine，待样品上完后，再将A1放入到平衡液中继续清洗柱子。
2),3)选择一种方式4）洗脱：上样后用缓冲液尽量将穿透峰洗回基线。
层析柱使用说明书
DN400
使
用
说
明
书
制作单位：***************有限公司
生产基地：****************路7号
公司电话：**************
公司传真：************
邮编：1000000
编制日期：二○一一年十二月
目录
一产品介绍……………………………………………….2
二产品特点……………………………………………….2
再生
0.5-3BV/h
3-4BV
酸碱再生，用乙醇、丙酮等溶剂淋洗
水洗
2-3BV/h
3-4BV
用大量水淋洗干净
注：以上参数供参考
五操作注意事项：
1．运输及贮存过程中应保持5-40℃环境中，避免过热过冷。注意不使树脂变干，以免孔结构发生变化。
2．树脂装填在吸附柱中使用，装填前应对设备管道进行清洗，以防有害物对树脂产生污染（如铁污染）。
二产品特点:
①合理的高径比，精密的进出口流体分布装置，保证层析柱装填效果和填料再生效果，为高效分离提供了保障。
②产品采用不锈钢材料，并进行内外抛光，耐腐蚀、使用寿命长、硬度高、运输安全，质量有保障。
③本设备确保无污染、效率高、操作方便等。
三技术参数
容积
450L
材质
SUS316L
设计压力
-0.1
设计温度
步骤流速流量备注填充装柱逆流洗柱水洗除去小粒子及破碎树脂前处理15bvh3bv用乙醇等进行预处理吸附14bvh根据吸附量应在吸附容量以下ph58温度低于50水洗23bvh051bv将吸附在树脂上的杂质洗出解吸053bvh23bv乙醇丙酮等的含水溶液溶出有效成分温度高有利于解吸再生053bvh34bv酸碱再生用乙醇丙酮等溶剂淋洗水洗23bvh34bv用大量水淋洗干净注
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锐意进取、和谐创新
550层析柱
说
明
书
浙江中能轻工机械有限公司
一产品介绍:
层析过程是采用特殊的吸附剂，从植物提取液中选择性地吸附其中的有效部分，去除无效成分的一种分离纯化新工艺。
可以解决植提生产中所面临的剂量大、产品吸潮和重金属残留等实际问题。
经层析技术处理后所得到的精制物，可使有效成分高度富集，杂质少，提取得率仅为原生物的2～5%，而一般水煮法为30%左右，醇沉法为15%左右；可有效地去除吸潮成分，并增强产品的稳定性；可有效地去除重金属。
层析分离工艺所得提取物体积小，不吸潮，容易制成外型美观的各种剂型，尤其适用于颗粒剂、胶囊剂、片剂等的生产。
该技术将是对中药提取工艺影响最大、带动面最广的技术进步之一。
用于生物工程、制药工业、精细化工领域的分离纯化设计制造的工业制备，具有分辨高、选择性好、流动连续、效率高、处理稳定、样品可多可少、易于操作的特点，适用于含量少的复杂高分子物质的分离纯化，是中草药、化学合成药及生物活性物质有效成分分离提纯的核心设备。
二产品特点:
①合理的高径比，精密的进出口流体分布装置，保证层析柱装填效
果和填料再生效果，为高效分离提供了保障。
②产品采用不锈钢材料，并进行内外抛光，耐腐蚀、使用寿命长、
硬度高、运输安全，质量有保障。
③本设备确保无污染、效率高、操作方便等。
三技术参数
四操作说明
层析操作流程一般为：预处理，逆流洗柱，水洗，吸附，解吸、再生等工艺。
1、预处理：在吸附树脂的生产过程中，一般均采用工业级原料，产品没有经过进一步纯化处理，因此树脂内部往往残留少量单体，致孔剂和其他有机杂质，所以在使用之前必须进行预处理。
吸附树脂预处理方法如下：
（1）将准备装柱使用的新树脂，用2倍左右体积的甲醇或其他水溶性溶剂（如乙醇、丙酮）浸泡2小时，并不时搅动，使树脂充分溶胀。
（2）、将已充分溶胀的吸附树脂装柱，以每小时3至4倍床体积的流速，将5至8倍的甲醇或其他水溶性的溶剂（如乙醇、丙酮）通过树脂层，至流出液加水稀释不变混。
（3）、甲醇处理后，以每小时6至8倍床体积的流速将去离子水通过树脂层，置换出甲醇即可投入使用。
2、逆流洗柱：逆流洗柱是用水洗除去水离子及破碎填料，树脂装入交换柱后，用蒸留水反洗树脂层，展开率为50-70%，直至出水清晰、无气味、无细碎树脂为止，再用50%-100%乙醇10-15倍体积慢速淋
洗。
2、用约2倍体积的4-5%HCl溶液，以2m/h流速通过树脂层。
全部通入后，浸泡4-8小时，排去酸液，用洁净水冲洗至出水呈中性。
冲洗流速为10-20m/h。
3、用约2倍树脂体积的2-5%NaOH溶液，按上面进HCl的方法通入和浸泡。
排去碱液，用洁净水冲洗至出水呈中性。
流速同上。
酸碱溶液若能重复进行2-3次，则效果更佳。
经预处理后的树脂，在第一次投入运行时应适当增加再生剂用量，以保证树脂获得充分的再生。
3、水洗：水洗目的主要是除去层析柱上所附着的渣滓。
4、吸附：吸附操作自上而下(或自下而上)通液，可采用不同流速，以选取最佳条件，一般流速sV 2—8。
流出液每间隔一段时间取样检测，达泄漏点停止吸附，或多柱串联达饱和后解吸。
是最关键的一个过程，吸附主要是吸取料液中的渣滓或要回收物，该过程应控制料液的速度及吸附量，大孔树脂应完全浸泡在料液里，这样吸附效果最好，整个过程应稳定运行。
5 、解吸：解吸(再生)：解吸剂选择：吸附饱和后的树脂应选用最能溶解吸附质的溶剂进行解吸或洗脱再生。
解吸剂沸点要低以便回收处理。
典型的解吸剂有甲醇、乙醇、丙酮、二氧六环、苯、甲苯或稀酸、稀碱及有机溶剂与水、酸、碱的混合物、还有混合溶剂。
解吸操作自上而下(或自下而上)通解吸剂，单柱吸附时，解吸效果与吸附操作对流为佳。
一般流速可控制在0.5～2SV，解吸剂用量约为树脂体积的2～3倍。
操作流程参数表：
注：以上参数供参考
五操作注意事项：
1．运输及贮存过程中应保持5-40℃环境中，避免过热过冷。
注意不使树脂变干，以免孔结构发生变化。
2．树脂装填在吸附柱中使用，装填前应对设备管道进行清洗，以防有害物对树脂产生污染（如铁污染）。
3．料液通入树脂床前应除杂、澄清、过滤，以免污染树脂。
4．树脂停运时间过长，停运前要充分解吸，洗净，并以大于10%食盐溶液浸泡，以避免细菌在树脂中繁殖。
六售后服务承诺：
1)及时向需方提供按合同规定的全部技术资料各图纸，有义务在必要时邀
请需方参与供方的技术设计审查。
2)按需方要求的时间到现场进行技术服务，指导需方按供方的技术资料各
图纸要求进行安装、分部与整套试运及试生产。
3)对于需方选购的与合同设备有关的配套设备，供方应主动提供满足设备
接口要求的技术条件各资料。
4)严格执行供需双方就有关问题如开会议的纪要或签订的协议。
5)根据需方的要求为需方举办有关设备安装、调试、使用、维护技术的业
务培训，保证需方运行、维修人员熟练掌握运行各维修技能。
中能机械，为您服务：
中药提取浓缩系统成套设备
溶媒回收成套设备
大输液、水针剂成套设备
生物发酵系统全自动成套设备
原料、合成药设备
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兽药、疫苗、基因系统设备
精细化工、乳化系统设备
各类系统管道工程设计安装
……
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邮编:325025
电话：+86-577-28817777 28865567
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E-mail：**************************。