建议在大豆制品的理化指标中增加脲酶定性试验

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大豆制品脲酶活性测定

（2）仪器与器皿
酸度计（pH计）：具有玻璃电极、甘汞电极
恒温水浴：须能保持温度30±0.5℃ 试管：20×150mm并配有橡皮塞
（50mL）
（3）试剂
磷酸缓冲液0.05mol/L：称取 3.403gKH2PO4溶于100mL蒸馏水中。再称取4.355gK2HPO4溶于100mL蒸馏水中，合并两者并配成1000mL，用强酸或强碱调节pH=7.0。
此时溶液应具有明亮的琥珀色；（过段时间溶液会变为深橘红色，
可滴入稀硫酸溶液搅拌之，直至溶液再次变为琥珀色）
（3）方法：
将一满匙样品放入表面皿中，摊平，将以调好的尿素-酚红试剂滴入表面皿中的样品上，直至完全浸湿，停留5min，观察样品的颜色反应。
如果红斑面积多于20%，则认为该样品脲酶活性超标，为不合格产品。
三、测定原理：脲酶活性测定实际上是在一定条件
下(pH=7.0，T=30℃)，测定每克试样、每分钟分解尿素所产生的氨的量。
脲酶 NH2CONH2→→2NH3↑+CO2
•
四、测定方法：（一）定性法： 1、酚红法（1）原理：
酚红指示剂在pH 6.4-8.2时由黄变红，大豆制品中所含的脲酶pH=7.0， T=30℃时可将尿素水解产生氨，释放的氨可使酚红指示剂变红，根据变红的时间长短来判断脲酶活性的大小。
空白试验：不加尿素，其他同上。
品质判定：如果溶液为明显的粉红色，则认为该大豆制品脲酶活性超标，为不合格产品。
•0-1min变红，活性非常强（＞ 1.0）；
•1-2min变红，活性大概0.5-1.0； • 2-5min变红，活性大概0.3-0.5。
（4）注意事项： • 1.粉碎样品时，不应产生大量热，

脲酶活性的测定

大豆制品中脲酶活性的测定定性法：酚红法一、原理：酚红指示剂在pH 6.4-8.2时由黄变红，大豆制品中所含的尿素酶在pH=7.0，T=30℃时可将尿素水解产生氨，释放的氨可使酚红指示剂变红，根据变红的时间长短来判断脲酶活性的大小。

二、仪器和试剂：粉碎机：粉碎时不产生强烈发热；分析天平；25ml纳式比色管；恒温水浴锅；0.1%酚红指示剂：0.1g苯酚红溶于100ml 95%乙醇溶液；结晶尿素；三、方法：将试样粉碎，准确称取0.05±0.001g试样于25ml纳式比色管，加入0.2g结晶尿素及5滴酚红指示剂，加入25ml蒸馏水，摇动10s，立即置于30±0.5℃水浴锅中，开始计时，观察溶液颜色变化， 5min 后，取出比色管，摇匀，观察溶液颜色。

空白试验：不加尿素，其他同上。

品质判定：如果溶液为明显的粉红色，则认为该大豆制品脲酶活性超标，为不合格产品。

•0-1min变红，活性非常强（＞1.0）；•1-2min变红，活性大概0.5-1.0；•2-5min变红，活性大概0.3-0.5。

四、注意事项：1.粉碎样品时，不应产生大量热，否则会影响结果判定；2.称量样品时，一定要将样品混合均匀，否则会造成试验误差；3.试样和空白试验同时操作，过程要迅速，防止时间影响。

尿素-酚红法一、原理：酚红指示剂在pH 6.4-8.2时由黄变红，大豆制品中所含的尿素酶可将尿素水解产生氨，释放的氨可使酚红指示剂变红，根据变红样品占所有样品的比例来判断脲酶活性的大小。

二、仪器和试剂：表面皿；0.2N氢氧化钠溶液：称取0.8g氢氧化钠溶于100ml蒸馏水；1.0N硫酸溶液：移取7.0ml浓硫酸溶于500ml蒸馏水；尿素-酚红试剂：用500ml烧杯将0.8g酚红溶于20ml 0.2N氢氧化钠溶液，用蒸馏水稀释至约300ml，加入60g尿素，并溶解之，转移至2L容量瓶，冲洗烧杯数次,加蒸馏水至约1.5L，加入9.4ml 1.0N 硫酸溶液，用蒸馏水定容至2L；此时溶液应具有明亮的琥珀色；（过段时间溶液会变为深橘红色，可滴入稀硫酸溶液搅拌之，直至溶液再次变为琥珀色）三、方法：将一满匙样品放入表面皿中，摊平，将以调好的尿素-酚红试剂滴入表面皿中的样品上，直至完全浸湿，停留5min，观察样品的颜色反应。

大豆制品中尿素酶活性测定方法

大豆制品中尿素酶活性测定方法1 适用范围本标准适用于由大豆制得的产品和副产品中尿素酶活性的测定。

本法可确认大豆制品的湿热处理程度。

2 定义本标准所指尿素酶活性定义如下：在30±0.5℃和pH7的条件下, 每分钟每克大豆制品分解尿素所释放的氨态氮的毫克数。

3 原理将粉碎的大豆制品与中性尿素缓冲溶液混合，在30℃保持30min, 尿素酶催化尿素水解产生氨的反应。

用过量盐酸中和所产生的氨，再用氢氧化钠标准溶液回滴。

4 仪器设备4.1 样品筛: 孔径200μm;4.2 酸度计: 精度0.02pH, 附有磁力搅拌器和滴定装置;4.3 恒温水浴: 可控温30±0.5℃;4.4 试管: 直径18mm, 长150mm, 有磨口塞子;4.5 精密计时器;4.6 粉碎机: 粉碎时应不生强热(例如球磨机)4.7 分析天平: 感量0.1mg;4.8 移液管: 10ml。

5 试剂和溶液5.1 尿素(GB 696-77): 分析纯;5.2 磷酸氢二钠(GB 1263-77): 分析纯;5.3 磷酸二氢钾(GB 1274-77): 分析纯;5.4 尿素缓冲溶液(pH6.9至7.0): 4.45g磷酸氢二钠(5.2)和3.40g磷酸二氢钾(5.3)溶于水并稀释至1000ml, 再将30g尿素(5.1)溶于此缓冲溶液中, 可保存1个月。

5.5 盐酸(GB 622-77): 分析纯, 0.1M溶液;5.6 氢氧化钠(GB 629-77): 分析纯, 0.1M标准溶液, 按GB 601标准溶液制备方法的规定配制。

6 试样的制备用粉碎机(4.6)将10g试样粉碎, 使之全部通过样品筛(4.1)。

对特殊试样（水分或挥发物含量较高而无法粉碎的产品）应先在实验室温度下进行预干燥，再进行粉碎，当计算结果时应将干燥失重计算在内。

7 测定步骤称取约0.2g已粉碎的试样, 称准至0.1mg, 转入试管(4.4)中(如活性很高只称0.05g试样)移入10ml尿素缓冲溶液(5.4), 立即盖好试管并剧烈摇动, 马上置于30±0.5℃恒温水浴(4.3)中, 准确计时保持30min。

大豆制品中脲酶活性的测定

大豆制品中脲酶活性的测定
制作人：刘力、李亚杰
背景
大豆制品中含有大量抗营养因子，影响到动物的正常生长发育。其中最主要的是胰蛋白酶抑制因子，不耐热，但在点击添加标题生产加工过程中，过度的加热在灭活抗营养因子的同时，导致蛋白质变性，特别是赖氨酸、精氨酸和胱氨酸等严重点击添加标题变性，大大降低了大豆制品的消化率和生物学价值。抗胰蛋白酶活性是直接反映大豆制品中抗营养因子水平及加热程度的可靠指标，但由于该法费时、所用试剂昂贵，在生点击添加标题产上不适用。而脲酶活性与抗胰蛋白酶活性呈高度正相关，方法较简便、快速、经济，国内外常用脲酶活性作为检验点击添加标题大豆制品加热程度和抗营养因子水平的判断指标。
注意事项
若样品粗脂肪含量高于点击添加标题 10%，则应先进行不加热的脱脂处理后，在测定脲酶活性；点击添加标题称量样品时，一定要将样品混合均匀，否则会造成试验误差；点击添加标题试样和空白试验同时操作，过程要迅速，防止时间影响。点击添加标题
问题
反应时间（30min ）对脲酶活性是否有影响？点击添加标题
仪器设备
粉碎机：粉碎时应不生强热，如球点击添加标题磨机。
点击添加标题点击添加标题
点击添加标题
测定步骤
样品中脲酶活性的测定：称取0.2 g（准确至0.0001 g）样品（如果活性很
高，可称取0.05 g试样）玻璃试管中，加10 mL尿素缓冲液，立即盖好试管盖剧烈振摇后，马上置于30±0.5 ℃水浴锅内，准确计30 min±10 s。取下点击添加标题后立即加入10 mL盐酸（0.1 mol/L），振摇后迅速冷却至20℃，将试管内容物全部转入50 mL烧杯中，用20 mL蒸馏水冲洗数次，以0.1 mL的氢氧化钠标准滴定溶液用酸度计滴定至 pH 4.70。记录氢氧化钠标准滴定溶液消耗量。点击添加标题如果选用指示剂，试管中内容物全部移入250 mL锥形瓶中，滴加8~10滴混合指示剂，以0.1 mol/L氢氧化钠标准滴定溶液滴定至蓝绿色，记录氢氧化点击添加标题钠滴定溶液消耗量。空白测定：称取样品后立即加入10 mL盐酸溶液，之后不加。

不同方法测定大豆脲酶活性的比较研究

不同方法测定大豆脲酶活性的比较研究杨奇慧舒璐钟剑锋摘要：用滴定法和增值法测定大豆粉在85℃和140℃下分别热处理0、45、90、135、180min的脲酶活性，并用0.2%KOH溶解法测定大豆粉在不同热处理下的蛋白质溶解度。

结果表明：在85℃条件下，处理0～180min 大豆粉的脲酶活性和蛋白质溶解度随着时间延长无明显变化；而在140℃条件下，大豆粉的脲酶活性和蛋白质溶解度随着处理时间的延长显著降低。

通过测定结果可见，同一样品用滴定法和增值法测得的脲酶活性在数值上不相等，不能互用，但蛋白质溶解度更能反映大豆粉受热过度的程度。

关键词：大豆粉；脲酶活性；蛋白质溶解度；pH增值法；滴定法众所周知，大豆含有较丰富的蛋白质、脂肪、碳水化合物等，是饲料生产中主要的植物蛋白质源之一，具有较高营养价值。

但是，大豆中含有多种抗营养因子，如蛋白酶抑制因子、植物凝集素、胃肠胀气因子、抗维生素因子、抗原蛋白等，这些抗营养因子阻碍营养物质在动物体内的利用，尤其是胰蛋白酶抑制因子的存在不仅会降低饲料营养成分的消化率和适口性，而且也会影响动物对蛋白质的消化吸收，对动物生长发育也产生不良的影响。

但是，胰蛋白酶抑制因子的测定较困难，而豆粕中脲酶活性与胰蛋白酶抑制因子活性呈正相关，所以通常通过测定脲酶活性来反映蛋白酶抑制因子的活性。

目前，脲酶活性的测定方法有滴定法（国标法）、pH增值法等，目前，对脲酶活性不同测定方法差异性的研究较少，本文拟对两种方法进行研究，以比较不同方法对测定结果的影响，为实际生产和理论研究提供依据和参考。

1 材料和方法1.1 实验材料大豆粉：将生大豆粉碎，过60目标准筛。

在85℃和140℃下分别处理0、45、90、135和180min冷却后装入封口袋保存备用。

1.2 化学试剂本实验所用试剂均为分析纯（AR），实验用水为蒸馏水。

1.3 测定方法1.3.1 pH增值法实验原理：将研细的试样与尿素缓冲液混合，尿素在尿素酶作用下水解产生氨，使溶液pH 值改变，改变的程度与脲酶活性大小相关，因此可以用其与空白溶液的差值表示脲酶活性高低，单位为△pH值。

脲酶活性

随着膨化技术在饲料工业中推广普及，越来越多的饲料生产商在配方中使用膨化大豆粉，与其它蛋白资源一样，大豆的适度熟化非常重要，熟化程度低会含抗胰蛋白酶等营养抑制因子，熟化度过高又会导致氨基酸利用率低。

判断膨化大豆粉是否合格的主要指标是脲酶活性。

脲酶活性是指：在30±5℃和PH值等于7的条件下，每分钟每克膨化大豆分解尿素所释放的氨态氮的毫克数。

脲酶本身无营养意义，但它与抗胰蛋白酶的含量接近，并且遇热变性失活的程度与抗胰蛋白酶相似，因此，尿酶活性用来作为膨化大豆加热是否合适的间接估测指标。

脲酶活性没有负值，最低为0。

在我国现行的国标推荐值为0.3，在美国一般认为以不超过0.2为宜，并且针对日粮中有尿素的反刍动物而言不得超过0.12，当然对于家禽和猪0.3或稍高都可以接受。

国内很多大企业一般均采用0.2。

实验室定量测定脲酶活性的方法较复杂，有滴定法和pH增值法两种，已有研究表明两者对同一样品测得的数值也不相等。

目前国内绝大部分企业都采用快速而简单的简易判定方法定性地估测脲酶活性，一般来说，主要有如下两种方法。

一.液态法1.原理：大豆制品中的脲酶可使尿素分解成氨，会使酚红指示剂改变颜色。

2.试剂2.1尿素:GB696，分析纯。

2.2酚红指示剂2.2.1称取0.1g酚红，加1.43mL0.1mol/L氢氧化钠溶液，在研钵中研磨以促溶解；2.2.2转移至250mL定量瓶中，加蒸馏水至刻度，摇匀备用。

3.操作方法3.1取0.2g粉末样品，置于25mL比色管中。

3.2加0.02g尿素，加酚红指示剂2滴，再加水20mL，充分摇匀15s。

3.3记录粉红色出现时间，并根据时间判断尿酶活性，颜色出现时间应少于15min。

颜色出现时间脲酶活性1min 极强1～5min 强5～15min 稍有15min 无同时作空白对照试验。

样品空白(不加尿素)及试剂空白(不加样品)，只有上述空白正常时，即酚红指示剂不改变颜色，试验结果才是可靠的。

大豆中脲酶活性的测定

5.计算
溶液PH值与试剂空白PH值之差即为脲酶活性，公式如下:
UA=B-A B——B管的PH值 A——A管的PH值
滴定法
a.原理: 将粉碎的大豆制品与中性的尿酸缓冲液混合，在30℃保持30min，尿酸酶催化尿素产生氨，用过量的盐酸中和氨，再用氢氧化钠溶液回滴。酶的活性用1克分析材料在30℃下1min 产生氨态氮的毫克数表示。（mgN/g）
e.结果计算
UA＝14×C(V0-V)/(30×m) C——氢氧化钾标准溶液浓度, mol/L； V0——空白试验消耗氢氧化钾的体积, ml； V——测定试验消耗的氢氧化钾的体积, ml； m——试验质量, g。
比色法
原理: 向含有EDTA二钠盐的PH=7的缓冲液的分析悬浮液中加入尿素溶液，在30℃ 下保温5min，加入磷钨酸终止酶作用并沉淀蛋白质。产生的氨在次溴酸钠和麝香草酚作用下形成蓝色的靛麝香草酚，借以比色。
快速测定方法2
在培养皿上放入少量的豆饼粕, 在样品上滴入少量指示剂并搅拌, 将其平铺于培养皿中, 放置5min后观察结果。无任何红点出现, 再放置25min仍然无红点出现, 说明豆粕过熟；有少量红点出现, 说明脲酶活性较低, 豆粕可用；样品表面有25％被红点覆盖, 豆粕可用；样品表面有50％被红点覆盖, 应慎用；样品表面有75％－100％被红点覆盖, 脲酶活性过高, 豆粕过生, 不可用；
2.实验仪器与器皿
PH计，带玻璃的电极，甘汞电极，恒温水浴，50ml试管
3.试剂
磷酸缓冲液: 称取3.403克磷酸二氢钾，溶于100ml的水中。再称取4.335克的磷酸氢二钾，溶于100ml的水中，合并两者并配制成1000ml，用酸或者碱调节PH=7。

大豆制品中尿素酶活性测定方法

大豆制品中尿素酶活性测定方法1 适用范围本标准适用于由大豆制得的产品和副产品中尿素酶活性的测定。

本法可确认大豆制品的湿热处理程度。

2 定义本标准所指尿素酶活性定义如下：在30±0.5℃和pH7的条件下, 每分钟每克大豆制品分解尿素所释放的氨态氮的毫克数。

3 原理将粉碎的大豆制品与中性尿素缓冲溶液混合，在30℃保持30min, 尿素酶催化尿素水解产生氨的反应。

用过量盐酸中和所产生的氨，再用氢氧化钠标准溶液回滴。

5.5 盐酸(GB 622-77): 分析纯, 0.1M溶液;5.6 氢氧化钠(GB 629-77): 分析纯, 0.1M标准溶液, 按GB 601标准溶液制备方法的规定配制。

6 试样的制备用粉碎机(4.6)将10g试样粉碎, 使之全部通过样品筛(4.1)。

对特殊试样（水分或挥发物含量较高而无法粉碎的产品）应先在实验室温度下进行预干燥，再进行粉碎，当计算结果时应将干燥失重计算在内。

大豆制品脲酶活性测定解读

样品粉碎：至少60%通过400微米试验筛。（4）操作步骤准确称取0.400±0.00lg样品2份，分别置于2支试管中。一支试管加入 20mL磷酸缓冲液，作为空白试验（A 管），另一支加入20mL尿素缓冲液（B管）。
盖塞混匀，在30℃恒温水浴中准确保持30min。在此期间，每隔5min 摇匀一次。取出立即在流水中冷却， 5min内测定溶液pH值。
（4）注意事项： • 1.对于样品较粗、具有大块状的样品，最好将其稍微粉碎，亦不可太细，否则不容易观察； • 2.样品一定要铺平，容易观察； • 3.溶液保质期为3个月，最好1个月内用完； • 4.此方法容易受颗粒度影响。
（二）定量法 1、 pH增值法（1）原理：脲酶水解尿素产生氨，使溶液的 pH值升高，通过测定样品溶液的pH 值和空白的pH值之差来计算脲酶的活性。脲酶活性定义为：在30℃和 pH=7的条件下，每分钟每克大豆制品分解尿素后所释放的氨态氮的毫升数。
高温、高湿、高压，粒度小，时间长脲酶活性低。但是，加工过度，一些氨基酸会被豆制品质量较差。
三、测定原理：脲酶活性测定实际上是在一定条件下(pH=7.0，T=30℃)，测定每克试样、每分钟分解尿素所产生的氨的量。
脲酶 NH2CONH2→→2NH3↑+CO2
（5）计算 UA=pH(B管)-pH(A管)
2、滴定法（1）原理：将粉碎的大豆制品与中性尿素缓冲溶液混合，在30℃保持30min后，尿素酶催化尿素水解产生氨，用过量的盐酸溶液中和氨，再用氢氧化钠标准溶液回滴。
（2）脲酶活性定义在30℃和pH＝7的条件下，每分钟每克大豆制品分解尿素后，所释放的氨态氮的毫克数。
（3）方法：粉碎→称取0.05±0.001g→放入试管→加入尿素0.2g、指示剂5滴→加蒸馏水25mL→摇动10s→立即置于 30±0.5℃水浴锅→计时观察溶液变红时间→5 min后取出试管，摇匀继续观察

脲酶定性的实验

脲酶定性的实验随着膨化技术在饲料工业中推广普及,越来越多的饲料生产商在配方中使用膨化大豆粉,与其它蛋白资源一样,大豆的适度熟化非常重要,熟化程度低会含抗胰蛋白酶等营养抑制因子,熟化度过高又会导致氨基酸利用率低.判断膨化大豆粉是否合格的主要指标是脲酶活性.脲酶活性是指：在30±5℃和PH值等于7的条件下,每分钟每克膨化大豆分解尿素所释放的氨态氮的毫克数.脲酶本身无营养意义,但它与抗胰蛋白酶的含量接近,并且遇热变性失活的程度与抗胰蛋白酶相似,因此,尿酶活性用来作为膨化大豆加热是否合适的间接估测指标.脲酶活性没有负值,最低为0.在我国现行的国标推荐值为0.3,在美国一般认为以不超过0.2为宜,并且针对日粮中有尿素的反刍动物而言不得超过0.12,当然对于家禽和猪0.3或稍高都可以接受.国内很多大企业一般均采用0.2.实验室定量测定脲酶活性的方法较复杂,有滴定法和pH增值法两种,已有研究表明两者对同一样品测得的数值也不相等.目前国内绝大部分企业都采用快速而简单的简易判定方法定性地估测脲酶活性,一般来说,主要有如下两种方法.一.液态法1.原理：大豆制品中的脲酶可使尿素分解成氨,会使酚红指示剂改变颜色.2.试剂2.1尿素:GB696,分析纯.2.2酚红指示剂2.2.1称取0.1g酚红,加1.43mL0.1mol/L氢氧化钠溶液,在研钵中研磨以促溶解；2.2.2转移至250mL定量瓶中,加蒸馏水至刻度,摇匀备用.3.操作方法3.1取0.2g粉末样品,置于25mL比色管中.3.2加0.02g尿素,加酚红指示剂2滴,再加水20mL,充分摇匀15s.3.3记录粉红色出现时间,并根据时间判断尿酶活性,颜色出现时间应少于15min. 颜色出现时间脲酶活性1min 极强1～5min 强5～15min 稍有15min 无同时作空白对照试验.样品空白(不加尿素)及试剂空白(不加样品),只有上述空白正常时,即酚红指示剂不改变颜色,试验结果才是可靠的.一般企业认为7、8分钟变色较为合适.二、半固态法1.原理：大豆制品中的脲酶可使尿素分解成氨,会使酚红指示剂改变颜色.2.试剂2.1稀硫酸（H2SO4）0.2N.2.2尿素一酚红试剂2.2.1将1.2克酚红溶解于30ml0.2N的NaOH中；2.2.2用蒸馏水将之稀释至约300mL；2.2.3加入90g尿素（分析纯）并溶解之；2.2.4用蒸馏水稀释至2L；2.2.5加入14mL 1.0N的H2SO4或70mL o.2N的H2SO4；2.2.6用蒸馏水稀释至最后体积3L；2.2.7溶液应具明亮的琥珀色.3.操作方法3.1在一个150ml的烧杯中倒入少量试剂,注意溶液必须呈明亮的琥珀色.若溶液已转变为深桔红色,滴人稀硫酸溶液并搅拌之,直至溶液再度呈琥珀色.3.2量一匙粉末样品,放置于培养皿中.3.在样品上加入两匙试剂,轻轻搅拌,将样品平铺于培养皿中.若仍有干样品斑点,则再加入试剂,直至将样品浸湿.4.放置5分钟后观察：a. 没有任何红点出现：再任其放置25分钟,若仍无红点出现,说明大豆粉过熟.b. 有少量红点：少量尿素酶活性,可用.c. 样品表面约有25％为红点覆盖：少量尿素酶活性,可用.d. 豆饼表面约有50％为红点覆盖：尿素酶活性较高,不可以使用.e. 豆饼表面的75％－100％为红点覆盖：尿素酶活性很高,样品过生,不能使用. 以上两种简易脲酶活性估测方法在国内各饲料厂被广泛采用,尤其是后者在膨化大豆粉生产的在线检测上很普遍.尽管这两种方法原理一样,但是,因其操作过程差异,所以对膨化大豆粉品质的反映内容也不尽相同.三、液态法和半固态法之比较首先需要说明的是,这两种脲酶活性快速检测方法没有行业约定俗成的名称,笔者接触过的企业均只采用其中的一种方法,对前者可以称之为“试管法”,后者称之为“表面皿法”,根据其实施的过程及样品的状态,笔者将其区分为“液态法”和“半固态法”.从实施方法来看,液态法是过程检测,从开始一直到规定时间段结束,而半固态法属于断点检测,是5分钟后看结果；液态法通过控制各个体合格,总体自然合格,而半固态法要求的是总体符合统计学上的合格,即允许部分个体不合格.简单地说,液态法要求每一个微粒的熟化程度均要满足5分钟以内不变色,如果一个不合格,整个批次为不合格；而半固态法允许部分微粒在5分钟内变色,部分不合格,总体可以是合格的.从这点上来说,液态法对膨化大豆粉的品质要求更高,控制更严格,不仅要求熟化,而且要均匀熟化.举例说明,如果在熟化完全的大豆粉样品中掺入微量（可以是一粒）生大豆粉,液态法会立即变色从而判定为不合格,而半固态法只是增加了一个变色点,总体上仍是合格的.从上可以看出,这两种检测方法对膨化大豆粉品质的反映内容是不一样的.半固态法反映的是产品符合统计学上的合格,而液态法反映的是完全合格.这两种不同检测方法对膨化设备的要求也是有差别的,液态法要求设备能均匀熟化,而半固态法允许产品出现部分不合格,只要总体上符合就可以,对膨化设备的要求自然要低. 可能会有人疑问,膨化大豆粉出来的不都应该是均匀一致的吗?其实不然,物料在膨化机内受到湿、热、机械剪切的共同作用从而熟化,机械剪切对膨化大豆粉所起的作用大约能占三成多,如果结构设计上缺陷或部件磨损,就会导致熟化不均匀.目前湿法膨化大豆粉的出料温度大都在135度左右（对家禽和猪要求可能低点）,六年前,笔者曾遇到过膨化大豆粉出料温度在170度,用液态法检测仍不合格,出来的料有熟的,有褐变的,还有少许夹生的,如果用半固态法检测,估计就合格了.次年,一膨化厂使用某企业膨化机生产膨化大豆粉,因不熟被退货六十吨,根据大部分企业采用半固态法检测的情况,将其以一定比例掺入熟化料中,最终符合统计学上的合格.上述事件,大概就是这两种不同测定方法的实践意义吧.脲酶urease（水解酶）：脲酶试验原理：存在于大多数细菌、真菌和高等植物里.它是一种酰胺酶、能酶促有机物质分子中酶键的水解.脲酶的作用是极为专性的,它仅能水解尿素,水解的最终产物是氨和碳酸.土壤脲酶活性,与土壤的微生物数量、有机物质含量、全氮和速效磷含量呈正相关.根际土壤脲酶活性较高,中性土壤脲酶活性大于碱性土壤.人们常用土壤脲酶活性表征土壤的氮素状况.土壤中脲酶活性的测定是以脲素为基质经酶促反应后测定生成的氨量,也可以通过测定未水解的尿素量来求得.本方法是测定生成的氨量.试剂：1）甲苯2）10%尿素：称取10g尿素,用水溶至100ml.3）柠檬酸盐缓冲液（PH6.7）：184克柠檬酸和147.5克氢氧化钾溶于蒸馏水.将两溶液合并,用1mol/LNaOH将PH调至6.7,用水稀释至1000毫升.4）苯酚钠溶液（1.35mol/L）：62.5克苯酚溶于少量乙醇,加2毫升甲醇和18.5毫升丙酮,用乙醇稀释至100毫升（A）,存于冰箱中；27克NaOH溶于100毫升水（B）.将AB溶液保存在冰箱中.使用前将2溶液各20毫升混合,用蒸馏水稀释至100毫升.5）次氯酸钠溶液：用水稀释试剂,至活性氯的浓度为0.9%,溶液稳定.6）氮的标准溶液：a 精确称取0.4717克硫酸铵溶于水并稀释至1000ml,得到1ml 含有0.1mg氮的标准液标准曲线绘制：吸取配置好的氮溶液10ml,定容至100ml,即稀释了10倍,吸取1,3,5,7,9,11,13ml移至50ml容量瓶,加水至20ml,再加入4ml苯酚钠,仔细混合,加入3ml次氯酸钠,充分摇荡,放置20分钟,用水稀释至刻度.将着色液在紫外分光光度计上于578nm处进行比色测定,以标准溶液浓度为横坐标,以光密度值为纵坐标绘制曲线图.取新鲜土壤7份,每份30g,装于棕色广口瓶中,先将1,3－二氯丙烯溶于丙酮（定量）,6份分别加入不同浓度均为1.5ml的1,3－二氯丙烯,使之在土壤中的浓度分别为1、10、50、100、200、500µg/g,另1份相应加入1.5ml的丙酮作为对照,然后调节土壤的含水量至最大田间持水量的60%（记录此时重量,以便补充水分）.放置于25℃恒温培养箱,培养后第0d、1d,5d,10d（前10d密封,后来测定的敞口）、20d,30d,40d,50d分别取土样检测脲酶的活性.取样前,反复旋转广口瓶,混匀土样,一个处理随机取3个重复.1) 称取5g过1mm筛的风干土样于100ml容量瓶中.2) 向容量瓶中加入1ml甲苯（以能全部使土样湿润为度）并放置15分钟3) 之后加入10ml 10％尿素溶液和20ml柠檬酸缓冲液（PH6.7）,并仔细混合4) 将容量瓶放入37摄氏度恒温箱中,培养24h5) 培养结束后,用热至38摄氏度水稀释至刻度,仔细摇荡,并将悬液用致密滤纸过滤于三角瓶中.6) 显色：吸取3ml滤液于50ml容量瓶中,加入10ml蒸馏水,充分震荡,然后加入4ml苯酚钠,仔细混合,再加入3ml次氯酸钠,充分摇荡,放置20分钟,用水稀释至刻度,溶液呈现（青定）酚的蓝色.7) 1h内在（（青定）酚的蓝色在1h内保持稳定）在分光光度计上用1cm液槽,于578nm处将显色液进行比色测定.8) 无土对照：不加土样,其他操作与样品实验相同.以检验试剂纯度,整个实验设置一个对照9)无基质对照：以等体积的水代替基质,其他操作与样品实验相同.每个土样都设此对照.结果计算：土壤脲酶活性以24小时后100g土壤中NH3－N的毫克数表示.M＝（X样品－X无土－X无基质）*100*10式中：M－土壤脲酶活性值X样品――样品实验的光密度值在标准曲线上对应的NH3－N毫克数X无土――无土对照实验中的光密度值在标准曲线上对应的NH3－N毫克数X无基质――无基质对照实验中的光密度值在标准曲线上对应的NH3－N毫克数100 ――样品定容的体积与测定时吸取量的比值10 ――酶活性单位的土重与样品土重之比值注意事项：当脲酶活性为3-80微克NH3-N时,本法能获得可靠结果.当脲酶活性小于3微克NH3-N,培养时间需增至24小时（已经24h了）（计算时应考虑这一点）计算：脲酶活性以24h后1g土壤中NH3-N的mg数表示.NH3-N（mg）＝a*2A：从标准曲线查得NH3-N毫克数2 ：换算成1k土的系数.。

06[1].8大豆制品中脲酶活性的测定

1适用范围本标准适用于由大豆制得的产品和副产品中尿素酶活性的测定。

本法可确认大豆制品的湿热处理程度。

2参考标准GB8622 -883定义本标准所指尿素酶活性定义如下：在30±0.5℃和pH7的条件下，每分钟每克大豆制品分解尿素所释放的氨态氮的毫克数。

4原理将粉碎的大豆制品与中性尿素缓冲溶液混合，在30℃保持30 min，尿素酶催化尿素水解产生氨的反应。

用过量盐酸中和所产生的氨，再用氢氧化钠标准溶液回滴。

5仪器设备5.1样品筛：孔径200 μm；5.2酸度计：精度0.02 pH，附有磁力搅拌器和滴定装置；5.3恒温水浴：可控温30±0.5℃；5.4试管：直径18 mm，长150 mm，有磨口塞子；5.5精密计时器；5.6粉碎机：粉碎时应不生强热（例如球磨机）；5.7分析天平：感量0.1 mg；5.8移液管：10 mL。

6试剂和溶液6.1尿素（GB 696—77）：分析纯；6.2磷酸氢二钠（GB 1263—77）：分析纯；6.3磷酸二氢钾（GB 1274—77）：分析纯；6.4尿素缓冲溶液（pH6.9至7.0）：4.45 g磷酸氢二钠（5.2）和3.40 g磷酸二氢钾（5.3）溶于水并稀释至1000 mL，再将30 g尿素（5.1）溶在此缓冲溶液中，可保存1个月。

6.5盐酸（GB 622—77）：分析纯，c（HCl）＝0.1 mol/L溶液；6.6氢氧化钠（GB 629—77）：分析纯，c（NaOH）＝0.1 mol/L标准溶液，按GB 601标准溶液制备方法的规定配制。

7试样的制备用粉碎机（4.6）将10 g试样粉碎，使之全部通过样品筛（4.1）。

对特殊试样（水分或挥发物含量较高而无法粉碎的产品）应先在实验室温度下进行预干燥，再进行粉碎，当计算结果时应将干燥失重计算在内。

8测定步骤称取约0.2 g已粉碎的试样，称准至0.1 mg，转入试管（4.4）中（如活性很高只称0.05 g试样），移入 10 mL尿素缓冲溶液（5.4），立即盖好试管并剧烈摇动，马上置于30±0.5℃恒温水浴（4.3）中，准确计时保持30 min。

大豆制品脲酶活性测定 PPT

磷酸氢二钠和3.40g磷酸二氢钾溶于水并稀释至1000mL，再将30g尿素溶于此缓冲溶液中，
（4）注意事项： • 1.粉碎样品时，不应产生大量热，
否则会影响结果判定； • 2.称量样品时，一定要将样品混合
均匀，否则会造成试验误差； • 3.试样和空白试验同时操作，过程
要迅速，防止时间影响。
2、尿素酚红法（1）原理：酚红指示剂在pH 6.4-8.2
时由黄变红，大豆制品中所含的尿素酶可将尿素水解产生氨，释放的氨可使酚红指示剂变红，根据变红样品占所有样品的比例来判断脲酶活性的大小。
（2）仪器和试剂： • 粉碎机：粉碎时不产生强烈发热 • 分析天平：感量0.01g • 25ml纳式比色管 • 恒温水浴锅 • 0.1%酚红指示剂：0.1g苯酚红溶于
100ml 95%乙醇溶液 • 结晶尿素：分析纯
（3）方法：
粉碎→称取0.05±0.001g→放入试管→加入尿素0.2g、指示剂5滴→加蒸馏水25mL→摇动10s→立即置于 30±0.5℃水浴锅→计时观察溶液变红时间→5 min后取出试管，摇匀继续观察
大家有疑问的，可以询问和交流
可以互相讨论下，但要小声点
空白试验：不加尿素，其他同上。
品质判定：如果溶液为明显的粉红色，则认为该大豆制品脲酶活性超标，为不合格产品。
•0-1min变红，活性非常强（＞ 1.0）；
•1-2min变红，活性大概0.5-1.0； • 2-5min变红，活性大概0.3-0.5。
（4）注意事项： • 1.对于样品较粗、具有大块状的样品，
最好将其稍微粉碎，亦不可太细，否则不容易观察； • 2.样品一定要铺平，容易观察； • 3.溶液保质期为3个月，最好1个月内用完； • 4.此方法容易受颗粒度影响。

《食品安全地方标准现制饮料》解读

《食品安全地方标准现制饮料》解读作者：暂无来源：《食品与生活》 2013年第1期现在的消费者热衷于新鲜和健康的食品，街边的饮料铺常常排着长队，餐厅里的鲜榨果蔬汁由于营养丰富、口感好而受到欢迎。

不过，这些美味的现制饮料安全吗？为保护消费者健康，上海市食品药品监督管理局于2012年10月26日发布了《食品安全地方标准现制饮料》，对现制饮料的卫生条件和加工过程提出要求，将于2013年2月1日起正式实施。

现制饮料的分类现制饮料指现场制作现场销售，供消费者直接饮用的饮料。

按加工工艺，可分为现榨饮料和现场调制饮料。

现榨饮料是以新鲜水果、蔬菜、谷类、豆类等为主要原料，通过压榨、粉碎等方法制作而成；采用浓缩液（汁）、果蔬粉、糖浆调配而成的饮料不属于现榨饮料。

现场调制饮料则是用浓缩液（汁）、果蔬粉、糖浆、现榨饮料等原料稀释调配而成。

按使用原料，可分为现榨果蔬饮料和现榨五谷杂粮饮料。

现榨果蔬饮料是以新鲜水果、蔬菜等为原料，经挑选、清洗、消毒、整理、压榨等加工成的饮料。

现榨五谷杂粮饮料是以谷类、豆类等为原料，经烘炒、加水、蒸煮、压榨、粉碎等加工工艺制成的饮料。

按照加工工艺，可分为热加工饮料和冷加工饮料。

热加工饮料是加工过程中经蒸、煮等热加工工艺制作的现制饮料，包括现榨五谷杂粮饮料和热加工现调饮料。

冷加工饮料是加工过程中未经蒸、煮等热加工工艺制作的现制饮料，包括冷加工现榨饮料和冷加工现调饮料。

五大指标控安全亚硝酸盐亚硝酸盐是强氧化剂，进入人体后，短期内可致使组织缺氧，出现青紫而导致急性中毒；此外，它还有较强致癌作用。

现制饮料制作前，如果原料筛选、储存、加工不当，将导致原料中亚硝酸盐含量升高。

因此，国家标准中规定，亚硝酸盐在各类食品中的污染限量为≤4毫克／千克。

脲酶大豆中的脲酶毒苷类物质会妨碍碘的代谢，抑制甲状腺素的合成，引起甲状腺肿大等。

脲酶毒苷类物质在充分加热情况下会变性失活，因此国家标准中规定，以大豆为原料的饮料中脲酶试验应呈阴性。

膨化大豆的掺假鉴别法及脲酶活性的专业控制

膨化大豆掺假鉴别方法感官特征：鲜黄亮泽，粉细蓬松，豆香浓郁。

询问法：①询问膨化大豆的原料：是进口大豆还是国产大豆膨化大豆的蛋白和脂肪含量因产地不同而异，但两者一般呈负相关；国产大豆膨化大豆，蛋白36-38%、脂肪17-19%，色泽金黄色；进口大豆膨化大豆，蛋白34-36%、脂肪19-21%，色泽较暗；色泽除因大豆品种、产地区别外，还与杂质含量有关，杂质多则颜色偏暗。

理化指标：要求膨化大豆供应商提供蛋白、脂肪含量和尿酶活性等指标。

水分 % 粗蛋白 %粗脂粉 % 粗纤维% 粗灰分 % 脲酶活性 Mg/g.m in 蛋白质溶解度 % 猪消化能兆卡/千克鸡代谢能兆卡/千克 ≤12 ≥35 ≥16 ≤7.0 ≤6.0 0.02-0.272-85 4.22 3.75价格比较法：膨化大豆价格比大豆原粮一般会高出350-500元，如低于大豆原料肯定是有问题的膨化大豆。

膨化大豆参考价位阈值自行估算法：Waldroup (1982)A = (0.874 X B) + C (1.256 x D)B = 1吨 44% CP 豆粕价C = 全脂大豆含油量D = 1吨植物油价格后端加油的辨别方法：油厂不合格低蛋白豆粕+油厂大豆油精炼过程中的下脚油，感观上呈，粗蛋白粗脂肪化验合格。

眼观法：如多次处理过的油条鼻嗅法：没有豆香浓郁的感觉吸油纸法：膨化大豆外边油份大镜检法：显微镜下油脂分子分布不均匀筛下豆、豆瓣、劣质豆加工膨化大豆：毒素检测法：毒素超标灰分检测法：灰分值偏高价格测算法：与膨化大豆使用价值公式偏离较大第二页膨化大豆的脲酶的专业控制（已设计好）。

黄豆豆渣中脲酶的提取精制及其影响因素研究

黄豆豆渣中脲酶的提取精制及其影响因素研究张铁军;施圆圆;孔令漪;曹蓝霄;周嘉青【摘要】为拓展脲酶的国产化途径,对黄豆豆渣中脲酶的提取进行了研究.建立了从黄豆豆渣中提取脲酶的全套流程,利用盐析法和有机溶剂沉淀法,通过浸提及离心等试验操作手段,将黄豆豆渣中的脲酶进行提取精制,产率为0.1％.同时确定了脲酶的最佳提取条件:其最佳浸提温度为50℃,最佳丙酮浓度为50％,最适pH为7.0.利用纳氏试剂比色法的原理,测得该脲酶在最佳实验条件下的米氏常数Km值为4.11×10-2 mol/L,1 mL脲酶溶液中的酶活力为18.63 U.从黄豆豆渣中提取脲酶,既可解决脲酶的国产化问题,又可提高黄豆豆渣的附加值,研究结果具有良好的工业价值和经济效益.【期刊名称】《生物技术进展》【年(卷),期】2017(007)003【总页数】5页(P253-257)【关键词】黄豆豆渣;脲酶;酶活力;Km;酶活影响因素【作者】张铁军;施圆圆;孔令漪;曹蓝霄;周嘉青【作者单位】广州医科大学生命科学学院,广州511436;广州医科大学生命科学学院,广州511436;广州医科大学第三临床学院,广州511436;广州医科大学第三临床学院,广州511436;广州医科大学南山学院,广州511436【正文语种】中文脲酶(urease)亦称尿素酶，是一种寡聚酶，分子量约为293 500 Da，等电点为3.9，具有绝对专一性[1]，特异性地催化尿素水解释放出氨和二氧化碳[2]。

脲酶是一种在各行业应用广泛的重要生物制剂。

广泛分布于豆类植物中，尤其是在黄豆、刀豆中含量丰富，约1%～1.5%。

在医药方面，脲酶是幽门螺旋菌感染诊断试验RUT中的一种重要的酶[3]；在农业方面，适当条件下应用种子封装与脲酶可显著增强植物早期阶段氮营养的吸收利用[4]，另外，脲酶还可用于尿素废水的处理[5]。

国外对脲酶的制备研究早已成熟，生产方法主要是从洋刀豆中提取脲酶，并于近年来开始致力于研究脲酶的其他作用，如利用重组酸性脲酶消除致癌因素氨基甲酸乙酯(ethyl carbamate，EC)前体物质尿素等[6]。

大豆制品中尿素酶活性测定方法_1

大豆制品中尿素酶活性测定方法中华人民共和国专业标准蛋白酶活力测定法ZBX66030-87Measurementofproteinaseactivity本方法适用于酿造酱油时在制品菌种、成曲的蛋白酶活力测定。

1福林法试剂及溶液:以下试剂都为分析纯福林试剂(Folin试剂):于2000mL磨口回流装置内,加入钨酸钠(Na2WO4·2H2O)100g,钼酸钠(Na2MoO4·2H2O)25g,蒸馏水700mL,85%磷酸50mL,浓盐酸100mL,文火回流10h。

取去冷凝器,加入硫酸锂(Li2SO4)50g,蒸馏水50mL,混匀,加入几滴液体溴,再煮沸15min,以驱逐残溴及除去颜色,溶液应呈黄色而非绿色。

若溶液仍有绿色,需要再加几滴溴液,再煮沸除去之。

冷却后,定容至1000mL,用细菌漏斗(No4～5)过滤,置于棕色瓶中保存。

此溶液使用时加2倍蒸馏水稀释。

即成已稀释的福林试剂。

碳酸钠溶液:称取无水碳酸钠(Na2CO3),定容至1000mL。

三氯乙酸(TCA)溶液:称取三氯乙酸(CCL3COOH),定容至1000mL。

磷酸盐缓冲液:称取磷酸二氢钠(NaH2PO4·2H2O),定容至1000mL,即成溶液(A液)。

称取磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O),定容至1000mL,即成溶液(B液)。

取A液28mL和B液72mL,再用蒸馏水稀释1倍,即成的磷酸盐缓冲液。

2%酪蛋白溶液:准确称取干酪素2g,称准至,加入氢氧化钠10mL,在水浴中加热使溶解(必要时用小火加热煮沸),然后用磷酸盐缓冲液定容至100mL即成。

配制后应及时使用或放入冰箱内保存,否则极易繁殖细菌,引起变质。

100μg/mL酪氨酸溶液:精确称取在105℃烘箱中烘至恒重的酪氨酸,逐步加入6mL1N盐酸使溶解,用盐酸定容至100mL,其浓度为1000μg/mL,再吸取此液10mL,以盐酸定容至100mL,即配成100μg/mL的酪氨酸溶液。

解决豆粉、豆奶粉尿素酶活性呈阳性使其变为阴性的实验研究

解决豆粉、豆奶粉尿素酶活性呈阳性使其变为阴性的实验研究解决豆粉、豆奶粉尿素酶活性呈阳性使其变为阴性的实验研究摘要：目的解决豆奶粉及干法生产低变性大豆蛋白粉，其脲酶活性指标呈阳性的问题。

方法利用大豆自身的水分，通过加大压力，降低速度，增加循环次数，使尿素酶活性变为阴性。

结果工艺改进后，脲酶活性指标的监测值比改进前降低了一百多倍。

结论豆粉只要以水为介质，煮开瞬间，尿素酶活性就能变为阴性。

关键词：解决、豆粉、豆奶粉、尿酶活性呈阳性豆奶粉尿素酶活性必须呈阴性,是国家强制执行的卫生指标。

而豆粉是制做豆奶粉的主要原料。

要想使豆奶粉尿素酶活性呈阴性。

就必须要求豆粉尿素酶活性必须呈阴性。

大豆尿素酶活性强，就容易对大豆蛋白的有益成分造成太大的破坏，影响人们的营养摄入。

脲酶检测阳性的话，进入人体后，自然导致人体血液中氨浓度过高，对人体胰蛋白酶的活性有部分抑制作用，妨碍蛋白质的消化吸收，会抑制我们的生长。

可能一开始并不明显，但长时间服用会中毒，出现呕吐、腹泻。

给我们的健康带来不利。

对人体造成伤害。

干法生产的低变性大豆蛋白粉，质量要求：加工温度不能超过80℃（蛋白质含量50%，脂肪含量10%左右，水分≤4%）具有炒豆的香味。

由于特定的口感，各项指标的要求，必须的特定工艺所限，改变尿素酶活性指标呈阳性的问题存在一定的难度。

1.材料和方法（两种方法：定性、定量）1.1尿素酶活性的定性检测方法：1.1.1试剂均为分析纯尿素溶液：10g/L。

（天津化学试剂一厂）钨酸钠溶液：100g/L。

（天津化学试剂一厂）酒石酸钾钠溶液：20g/L。

（天津化学试剂一厂）硫酸：体积分数5%。

（天津化学试剂一厂）磷酸氢二钠（天津化学试剂一厂）磷酸二氢钾（天津化学试剂一厂）红色碘化汞（天津化学试剂一厂）。

脲酶测定法判定豆浆抗营养因子热失活情况研究

脲酶测定法判定豆浆抗营养因子热失活情况研究林菁菁;伊娟娟;王振宇【摘要】大豆抗营养因子的主要成分是胰蛋白酶抑制剂,在大豆制品加工过程中,通常采用高温加热钝化的方法使胰蛋白酶抑制剂失去活性.豆浆是人们日常生活中喜欢的饮品之一,因为脲酶测定方法比较简单,目前多以加热钝化后豆浆脲酶活性来表示抗营养因子的去除情况.本研究通过测定豆浆中胰蛋白酶抑制剂和脲酶的活性研究豆浆加热过程中二者失活是否具有一致性,判定以脲酶活性来体现豆浆安全的科学性,同时通过豆浆加热程度与胰蛋白酶抑制剂失活情况的关系,对家庭豆浆制作提供一种安全的加热模式.【期刊名称】《中国林副特产》【年(卷),期】2014(000)001【总页数】3页(P8-10)【关键词】脲酶;胰蛋白酶抑制剂;抗营养因子;失活;豆浆【作者】林菁菁;伊娟娟;王振宇【作者单位】圣元国际食品营养有限公司;哈尔滨工业大学食品科学与工程学院,哈尔滨150090;哈尔滨工业大学食品科学与工程学院,哈尔滨150090;东北林业大学林学院,哈尔滨150040【正文语种】中文人们把对营养物质的消化、吸收和利用产生不利影响以及使人和动物产生不良生理反应的物质，统称为抗营养因子（ANF）。

大豆及其制品中含有多种抗营养因子，包括蛋白酶抑制因子、脲酶、凝集素、植酸、脂肪氧化酶等，这些抗营养因子严重阻碍了蛋白质和其它营养物质的有效利用，对食用和饲用价值均产生不利影响。

生大豆中胰蛋白酶抑制因子的含量约30mg／g，它对植物本身具有保护作用，可防止大豆籽粒自身发生分解代谢，使种子处于休眠状态，能调节大豆蛋白质的合成和分解。

但同时，胰蛋白酶抑制剂因子与肠内胰蛋白酶结合后随粪便排出体外，使肠内胰蛋白酶数量减少，引起胰腺反射性亢进，分泌量加大，增加内源氮损失，导致机体内含硫氨基酸的耗散性缺乏，造成体内氨基酸代谢失调或不平衡。

生大豆食入后，在胃肠内适宜的水分、温度、pH条件下被激活，激活的脲酶将大豆中部分含氮化合物分解成氨，大量氨的存在会引起机体氨代谢障碍或中毒。

大豆中尿酶活性的测定原理

大豆中尿酶活性的测定原理
大豆中尿酶活性的测定原理基于尿酶催化尿素分解产生氨和二氧化碳的反应。

其测定步骤如下：
1.取适量大豆样品，加入磷酸盐缓冲液中，使其均匀混合。

2.分别加入尿素和尿酰酸，使其与大豆中的尿酶反应。

3.等待一定时间后，加入酚和氯化铁，使其产生褐色化合物，然后用紫外光谱仪测量其吸光度。

4.根据标准曲线计算大豆中尿酶的活性。

其中，尿酸的浓度会随着尿酶的活性增加而降低，而产生的氨和二氧化碳则随同反应中的尿酶一同释放出来。

通过相应的化学反应，可以将其转化为吸光度可测量的化合物，最终得到尿酶的活性值。

脲酶活性的测定

3、样品试验与空白试验的制备应相隔5分钟，并且每隔5分钟搅拌内容物一次。
4、30分钟后，相隔5分钟将样品与空白试验的称量瓶从水浴中取出，将上层液体移入5ml烧杯中，在从水浴中取出刚达5分钟时，分别测定此种上层液体的PH值。
六、结果的计算
1、计算公式：
样品试验的PH值与空白试验的PH值两者之间的差异，则为脲酶活性的指数，即：
脲酶活性 = 试样的PH测定值-空白的PH测定值
2、重复性：
每个样品应取两个平行样测定，以其算术平均值为结果。
七、注意事项
1、关于酸度计的使用
2、称量瓶应塞紧 3、关于固定质量称量法 4、通常： 0.02<△PH≤0.3 加工适度 △PH<0.02 加工过度 △PH>0.3 加工不够 BACK
1、样品试验：准确称取0.200±0.001g样品于称量瓶中，加入10ml尿素缓冲溶液，加塞混合，然后置于30℃ 水浴中，在混合操作时称量瓶切勿倒置。
2、空白试验：准确称取0.200±0.001g样品于称量瓶中，加入10ml0.05mol/L磷酸盐缓冲溶液，加塞混合，置于 30℃水浴中。
三、仪器及试剂
1、仪器
分析天平、样品粉碎机、样品分析筛、恒温水浴、酸度计、称量瓶、移液管、角匙等
2、试剂
0.05mol/L磷酸盐缓冲液、尿素缓冲溶液等
四、试样的选取和制备
选取具有代表性的试样，粉碎至40 目，用“四分法”缩减至200～300g，密闭保存，以防试样组分变化或变质。
五、测定步骤
实验三大豆制品中脲酶活性的测定20来自0.10.30一、实验目的
1、掌握大豆制品中脲酶活性的测定原理 2、熟悉掌握用PH增值法测定大豆制品中脲酶活性