临床微生物学检验标本的采集.ppt
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标本采集PPT课件
非越多越好，超过一定的采血量会稀释培养瓶内 的肉汤，影响检测结果。
温即可，温度过低会导致对温度敏感的细菌死亡。
培
血培养对无菌操作的要求比注射、采集生化、
凝血等其它标本要高，所以要最先采集血培养
标本
1、成人一份标本2个培养瓶（需氧＋厌氧），每
养
血培养瓶（厌氧优先） 凝血试管（蓝色） 其 它有抗凝剂管（黑-绿-紫） 无添加剂管（红色，
处理程序
1、护士发现采集标本错误，立即停 止送检，重新采集标本，并做好解释。 2、发现标本有误或检验结果有质疑， 立即核查，通知医生，做好解释，重 新采集标本。 各类标本在采集、暂存与运送过程中 发生标本撒漏、标本容器破损等紧急 意外事件时，立即按医疗垃圾处理标 本，重新采集标本。
谢谢
苏朦朦 2017/11/26
22
2024/5/22
要看懂胸水的报告，首先要分清是漏出液还是渗出液
成功项胸目水展示
漏出液可见于：充血性心力衰竭、上腔静脉阻塞、缩窄性 心包炎、肝硬化、肾病综合征、急性肾小球肾炎、腹膜透 析、粘液性水肿、药物过敏和放射反应等。
渗出液又可分： 1.浆液性：①感染性疾病：结核性胸膜炎，肺炎、病毒、真菌和寄生 虫感染；②恶性肿瘤；③肺栓塞；④结缔组织疾病；⑤Meigs综合征 等。 2.脓胸：①结核性脓胸；②肺部感染引起脓胸；③外伤、食管穿孔、 气胸、胸腔穿刺或术后继发化脓性感染等。 3.血胸：①恶性肿瘤；②外伤；③血气胸；④胸主动脉瘤破裂；⑤肺 栓塞等。 4.乳糜胸：①外伤致胸导管破裂；②丝虫病；③肿瘤致胸导管阻塞等。
血培养，30分钟内完成3套血培养的采集，采集
后立即进行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报
告阴性，则继续采集2套血培养。
年度工血作液概述
温即可，温度过低会导致对温度敏感的细菌死亡。
培
血培养对无菌操作的要求比注射、采集生化、
凝血等其它标本要高，所以要最先采集血培养
标本
1、成人一份标本2个培养瓶（需氧＋厌氧），每
养
血培养瓶（厌氧优先） 凝血试管（蓝色） 其 它有抗凝剂管（黑-绿-紫） 无添加剂管（红色，
处理程序
1、护士发现采集标本错误，立即停 止送检，重新采集标本，并做好解释。 2、发现标本有误或检验结果有质疑， 立即核查，通知医生，做好解释，重 新采集标本。 各类标本在采集、暂存与运送过程中 发生标本撒漏、标本容器破损等紧急 意外事件时，立即按医疗垃圾处理标 本，重新采集标本。
谢谢
苏朦朦 2017/11/26
22
2024/5/22
要看懂胸水的报告，首先要分清是漏出液还是渗出液
成功项胸目水展示
漏出液可见于：充血性心力衰竭、上腔静脉阻塞、缩窄性 心包炎、肝硬化、肾病综合征、急性肾小球肾炎、腹膜透 析、粘液性水肿、药物过敏和放射反应等。
渗出液又可分： 1.浆液性：①感染性疾病：结核性胸膜炎，肺炎、病毒、真菌和寄生 虫感染；②恶性肿瘤；③肺栓塞；④结缔组织疾病；⑤Meigs综合征 等。 2.脓胸：①结核性脓胸；②肺部感染引起脓胸；③外伤、食管穿孔、 气胸、胸腔穿刺或术后继发化脓性感染等。 3.血胸：①恶性肿瘤；②外伤；③血气胸；④胸主动脉瘤破裂；⑤肺 栓塞等。 4.乳糜胸：①外伤致胸导管破裂；②丝虫病；③肿瘤致胸导管阻塞等。
血培养，30分钟内完成3套血培养的采集，采集
后立即进行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报
告阴性，则继续采集2套血培养。
年度工血作液概述
临床微生物标本采集及运送PPT课件
已接种的培养基放co培养箱35培养1824h55培养基的选择痰标本血巧伤口分泌物脓汁血mac淋球菌gc真菌培养血念显大便血macss院感普通营养琼脂霍乱培养血macssvib或tcbs56已经检测完的标本盖回塞子每天的标本统一放入注明当天日期的袋子里血液标本48冰库保存对亍超过保存期微生物所有的标本由生物安全员或指定人员对其进行高压灭菌后放入医用垃圾桶中再由环卫部门定期上门接收统一处理
，避免碰到其它
组织
1. 用一压舌板压 住舌
2. 用无菌拭子在 后咽部、扁桃体 及发炎部位采集 标本
1.将一藻酸钙拭子经 鼻腔轻轻插入鼻咽 喉部
2. 缓慢转动拭子5秒 钟吸收分泌物
3. 取出拭子并床边 接种或将拭子放入 运送培养基
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前，以晨起进食前为宜，取样前数小时内不 得用消毒药物漱口或涂抹病灶部位。
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量，降低医疗 成本。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
1. 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，二、三级医院微生物标本 送 检率不应低于70%。
2. 尽量在抗菌药物使用前采集标本。
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检，实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内，半小时送检是可接受的，如 果送检时间超过 1 小时，则会影响结果。
注：某些细菌具有自溶酶，放置时间过长易自溶死亡，因此， 标本应立即送检，并且保温（禁止放冰箱，因脑膜炎双球 菌遇冷死亡）
标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的，而尿道口有正常菌群寄生，标本的采集 必须无菌操作。
，避免碰到其它
组织
1. 用一压舌板压 住舌
2. 用无菌拭子在 后咽部、扁桃体 及发炎部位采集 标本
1.将一藻酸钙拭子经 鼻腔轻轻插入鼻咽 喉部
2. 缓慢转动拭子5秒 钟吸收分泌物
3. 取出拭子并床边 接种或将拭子放入 运送培养基
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前，以晨起进食前为宜，取样前数小时内不 得用消毒药物漱口或涂抹病灶部位。
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量，降低医疗 成本。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
1. 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，二、三级医院微生物标本 送 检率不应低于70%。
2. 尽量在抗菌药物使用前采集标本。
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检，实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内，半小时送检是可接受的，如 果送检时间超过 1 小时，则会影响结果。
注：某些细菌具有自溶酶，放置时间过长易自溶死亡，因此， 标本应立即送检，并且保温（禁止放冰箱，因脑膜炎双球 菌遇冷死亡）
标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的，而尿道口有正常菌群寄生，标本的采集 必须无菌操作。
临床微生物学检验标本的采集
如何选择合适的保存温度？
答：不同类型的微生物对保存温度的要求不同。一般来说，细菌、真菌等可在4℃或-20℃冰箱中保存数天至数周；病毒等则需要 使用-80℃超低温冰箱进行长期保存。在选择保存温度时，应根据具体微生物类型和实验要求进行选择。
问题解答与经验分享
如何确保标本运输安全？
答：在运输前应仔细检查容器是否密封良好，并使用足够的吸收材料包裹容器以防意外泄漏。同时，在运 输过程中应确保标本处于适当的低温环境中，并标识清晰以便实验室准确接收和处理。
结果分析
考虑患者为败血症，革兰氏阴性杆菌为致病菌。结合患者临床表现和 实验室检查结果，制定相应的治疗方案。
案例二：尿路感染诊断思路探讨
1 2
病例介绍 患者女性，60岁，因尿频、尿急、尿痛就诊。查 体显示尿道口红肿，有脓性分泌物。
实验室检查 尿常规结果显示白细胞增多，细菌培养阳性。
3
诊断思路
根据患者临床表现和实验室检查结果，初步诊断 为尿路感染。进一步进行细菌鉴定和药敏试验， 以指导临床治疗。
保存时间 不同类型的微生物标本保存时间不同，应根据具体要求进 行保存。一般来说，细菌、真菌等可保存数天至数周，病 毒等则需要长期保存。
标本运输注意事项
保持低温
在运输过程中，应确保标本处于适当的低温环境中，以防止微生 物死亡或变异。
防止泄漏
运输前应检查容器是否密封良好，防止标本泄漏。同时，应使用 足够的吸收材料包裹容器，以防意外泄漏。
为临床诊断和治疗提供准确、可靠 的微生物学依据，指导合理用药。
微生物学检验目的
01
02
03
确定病原体种类
通过检验标本中的微生物， 明确病原体种类，为针对 性治疗提供依据。
评估病情严重程度
答：不同类型的微生物对保存温度的要求不同。一般来说，细菌、真菌等可在4℃或-20℃冰箱中保存数天至数周；病毒等则需要 使用-80℃超低温冰箱进行长期保存。在选择保存温度时，应根据具体微生物类型和实验要求进行选择。
问题解答与经验分享
如何确保标本运输安全？
答：在运输前应仔细检查容器是否密封良好，并使用足够的吸收材料包裹容器以防意外泄漏。同时，在运 输过程中应确保标本处于适当的低温环境中，并标识清晰以便实验室准确接收和处理。
结果分析
考虑患者为败血症，革兰氏阴性杆菌为致病菌。结合患者临床表现和 实验室检查结果，制定相应的治疗方案。
案例二：尿路感染诊断思路探讨
1 2
病例介绍 患者女性，60岁，因尿频、尿急、尿痛就诊。查 体显示尿道口红肿，有脓性分泌物。
实验室检查 尿常规结果显示白细胞增多，细菌培养阳性。
3
诊断思路
根据患者临床表现和实验室检查结果，初步诊断 为尿路感染。进一步进行细菌鉴定和药敏试验， 以指导临床治疗。
保存时间 不同类型的微生物标本保存时间不同，应根据具体要求进 行保存。一般来说，细菌、真菌等可保存数天至数周，病 毒等则需要长期保存。
标本运输注意事项
保持低温
在运输过程中，应确保标本处于适当的低温环境中，以防止微生 物死亡或变异。
防止泄漏
运输前应检查容器是否密封良好，防止标本泄漏。同时，应使用 足够的吸收材料包裹容器，以防意外泄漏。
为临床诊断和治疗提供准确、可靠 的微生物学依据，指导合理用药。
微生物学检验目的
01
02
03
确定病原体种类
通过检验标本中的微生物， 明确病原体种类，为针对 性治疗提供依据。
评估病情严重程度
临床微生物标本的采集与送检培训课件
临床微生物标本的采集与送检
41
采集方法
自然排便采集法 自然排便后，挑取其脓 血、粘液部分2-3g，液状粪便取絮状物23ml，盛于灭菌容器内或保存液中送检
直肠拭子方法 如不易获得粪便时，或排 泄困难的患者及婴儿，可用直肠拭子采取， 即以无菌棉拭子用生理盐水湿润后，插入 肛门内4-5cm（幼儿2-3cm）轻轻转动取出， 插入无菌试管内送检。
19
静脉血采集操作步骤及要点
携用物至床边，核对床号、姓名、解释 戴手套，选择静脉，常规系止血带、 消毒皮肤，嘱患者握拳 行静脉穿刺、取血、松止血带、 嘱患者松拳、按压针眼、迅速拔针 穿刺点按压2～3min
临床微生物标本的采集与送检
20
血液注入标本瓶内方法 血清标本：
取下针头，将血液顺试管 壁缓慢注入干燥试管（最常 用）内。
11
标本的运送原则
①所有的标本都必须立即送往实验室，最 好在2h内,保存时间不应超过24h.
②最佳的临床标本送检首先取决于所获取 标本的量.量少的标本应在采集后15-30min 内送检.
③对环境敏感的微生物如志贺菌、奈瑟氏 菌和流感嗜血杆菌（对低温敏感）应立即 处理，禁止冷藏脊髓液和生殖道、眼部、 内耳道标本。
临床微生物标本的采集与送检
24
血标本的微生物学检查
1.采血时间及次数：一般应在抗生素治疗前， 发热初期或高峰时抽血。
a. 伤寒患者应在发热1-2周内抽血 b. 化脓性脑膜炎、鼠疫或野兔热患者应在发热
1-2d内抽血 c. 急性败血症应在24小时内抽血3次或更多次，
并可在不同部位，如左、右手臂或颈部
临床微生物标本的采集与送检
44
痰及上呼吸道标本
采集时间: 痰：一般以晨痰为好；支气管扩张症患者，
临床常见微生物标本的采集和运送 PPT
咽拭子
其他
无菌体液
血液
脑脊液 关节腔积液
胸腹水 其他
微 （D生i物rty实、验D室um常p被、称D为an3gDe实ro验us室）
血液培养标本的采集
采血次数：对于成年患者，应该同时分别不同部位采集 2-3套血标本（一套为一瓶需氧一瓶厌氧），在不同部位 分离到同样菌种才能确定是病原菌。儿童由厌氧菌引起的 血流感染非常罕见，一般无需常规做厌氧培养。
引器至适宜负压(成人：40.0—53.3kPa；小儿：<40.0kPa)。
⑤将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，
检查管道是否通畅。
⑥折叠一次性吸痰管末端，插人口腔或鼻腔或人工气道至适宜深
度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管
注：除婴儿和活动性腹泻患者外不推荐用拭子做常规病原 检查
微生物标本存在问题
感谢您的聆听！
临床常见微生物标本的采集和运送
微生物培养标本采集送检的基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检 5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 6.送检标本应注明来源和检验目的
临床微生物标本的种类
带菌体液 痰
尿液 粪便
与吸引器分离(使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前 后需吸入高浓度氧气1—2min)。
⑦将痰液注入无菌容器(试管)内，如痰液黏稠可用一次性针筒向
吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲人无菌容器(试管)内。
而无色透明、有灰白片状物或黑色小点，有明显食物渣滓、 纸屑灰尘的为不合格标本。
其他
无菌体液
血液
脑脊液 关节腔积液
胸腹水 其他
微 （D生i物rty实、验D室um常p被、称D为an3gDe实ro验us室）
血液培养标本的采集
采血次数：对于成年患者，应该同时分别不同部位采集 2-3套血标本（一套为一瓶需氧一瓶厌氧），在不同部位 分离到同样菌种才能确定是病原菌。儿童由厌氧菌引起的 血流感染非常罕见，一般无需常规做厌氧培养。
引器至适宜负压(成人：40.0—53.3kPa；小儿：<40.0kPa)。
⑤将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，
检查管道是否通畅。
⑥折叠一次性吸痰管末端，插人口腔或鼻腔或人工气道至适宜深
度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管
注：除婴儿和活动性腹泻患者外不推荐用拭子做常规病原 检查
微生物标本存在问题
感谢您的聆听！
临床常见微生物标本的采集和运送
微生物培养标本采集送检的基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检 5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 6.送检标本应注明来源和检验目的
临床微生物标本的种类
带菌体液 痰
尿液 粪便
与吸引器分离(使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前 后需吸入高浓度氧气1—2min)。
⑦将痰液注入无菌容器(试管)内，如痰液黏稠可用一次性针筒向
吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲人无菌容器(试管)内。
而无色透明、有灰白片状物或黑色小点，有明显食物渣滓、 纸屑灰尘的为不合格标本。
微生物标本检验的采集(共77张PPT)
【标本采集注意事项】
• ①采血培养应尽量在抗菌药物使用之前，在24h内采集2～3份血培养（一次静脉采血注 入到多个培养瓶中应视为单份血培养），每次2瓶。因为研究已证实，2～3份血培养足以 检测所有的菌血症和真菌血症。
• ②入院前2周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3天，每天采集2份。
• ③对间歇性寒战或发热的患者，应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1h采集血液，或于寒 战或发热后1h采集。因为发热时血液中可能没有细菌。
•
皮肤消毒程序
• 严格按以下三步法进行：
• ①75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。
•
②用一根碘酊或聚维酮碘（碘伏）棉签消毒皮肤，1～2%碘酊作用30s或碘伏作用
60s，从穿刺点向外以1.5～3cm直径画圈进行消毒
• ③75％酒精脱碘。
•
对碘过敏的病人只能用75%酒精消毒，消毒60s，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺
支气管刷直接取得标本。 • 3.胃内采痰法：无自觉症状的肺结核病人尤其婴幼儿不会咳嗽，
有时将痰误咽入胃中，可采集胃内容物做结核分支杆菌培养。
• 4.管穿刺法：主要用于厌氧菌培养 • * 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，用棉拭子深入咽部，小儿受到
刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上。
【标本采集注意事项】
【标本的送检地点】 • 检验科微生物室，非正常上班时间送检验
科急诊化验室。
* 标本运送过程中必须保证其安全，防止溢 出，避免细菌污染。
上呼吸道标本的微生物检验
一、检验项目 • 上呼吸道标本的细菌培养、真菌培养、真
菌涂片、结核菌涂片。 二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
• 应在抗生素应用前或停药一周后采集标本 ，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应 用前采集。
临床微生物学检验标本的采集
快速运输
03
在运输过程中应尽量缩短时间，选择适当的交通工具，保持容
器密封、避光、防震，以确保标本质量不受影响。
05
临床微生物学检验标本采集的常见问
题及解决方案
采集方法不当
总结词
采集方法不正确可能导致微生物污染或样本质量下降，影响检验结果的准确性。
详细描述
采集过程中应遵循无菌操作原则，正确使用采集工具，避免交叉感染。对于不同种类的标本，应采用不同的采集 方法和注意事项。
尿液标本
尿常规检查
检测尿液中的蛋白质、糖、酮体等成分，辅助诊断肾脏疾病和糖尿病等。
尿培养
用于检测尿液中的病原菌，如尿路感染等。
粪便标本
粪便常规检查
检测粪便中的红细胞、白细胞、寄生 虫等，辅助诊断消化道疾病。
粪便培养
用于检测粪便中的病原菌，如细菌性 痢疾等。
呼吸道标本
痰液检查
通过痰液中的细胞和病原菌，辅助诊断呼吸道感染。
THANKS
感谢观看
采集时机不当
总结词
采集时机不合适可能影响微生物的存活和繁殖，进而影响检验结果。
详细描述
应根据检验目的和要求选择合适的采集时机，如空腹采集血液、尿液等。同时，应注意采集过程中的 时间控制，避免长时间暴露在空气中。
采集容器选择不当
总结词
采集容器选择不当可能导致微生物死亡或繁殖受限，影响检验结果。
详细描述
量。
减少外界干扰
在采集过程中应尽量减少外界因 素的干扰，如避免过度挤压、避 免接触非采集部位等，以降低外
界微生物的混入。
采集后的保存和运
及时处理
01
采集后的标本应及时进行处理，避免长时间放置，以免影响微
微生物标本采集PPT
四、标本运输 ① 标本采集后需尽快送到实验室； ② 不要冷藏标本。
四、标本采集—气道吸取标本
一、临床采样指征 有气管插管或气管切开等人工气道患者，无法自行咳
痰，可通过吸痰管从气道吸取标本。
二、标本采集 通过气管内插管将一次性无菌吸痰管推进呼吸道直至
遇到阻力后开始抽吸，留取标本在吸痰杯内。
四、标本采集—气道吸取标本
二、生物标本运送的基本原则
三、微生物实验室对标本的拒收标准
1. 标本采集至实验室接收过程间隔过长，或无标本采集时 间，或保存的温度不当。
2. 标本运送条件不正确：如厌氧培养标本却在有氧条件下 送检。
3. 容器不规范：如容器有裂缝或被打破导致标本泄露、容 器非无菌等。
4. 未贴标签或贴错标签：标本与检验目的不符合，如痰培 养送检尿标本；患者信息与标本不符，如女性患者送检 前列腺标本。
四、标本采集—血培养
二、标本采集： 1.菌血症： ① 采血时机：寒战开始时，发热高峰前30-60min内；使用抗菌药物治疗前
采集，如已用药，则在下一次用药之前采集最佳。 ② 采血部位：通常为肘静脉，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀
疑有导管相关的血流感染，应避免从留置静脉或动脉导管取血，因为导 管常伴有定植菌存在。 ③ 采血工具：真空血培养瓶，如培养瓶的储存温度为2-8℃，应先复温 30min左右，平衡至室温再采血。同一部位双瓶采集时不建议更换针头。 ④ 采血次数、血培养瓶选择：对于成人患者，应同时分别在两个部位采集 血标本；每个部位应需氧和厌氧培养各一瓶。 ⑤ 采血量：影响阳性率的重要因素，过少明显降低阳性率，5-10ml/瓶。 ⑥ 皮肤、血培养瓶消毒：穿刺前皮肤和培养瓶口进行消毒并充分干燥。 ⑦ 避免采血管内空气注入厌氧血培养瓶。
四、标本采集—气道吸取标本
一、临床采样指征 有气管插管或气管切开等人工气道患者，无法自行咳
痰，可通过吸痰管从气道吸取标本。
二、标本采集 通过气管内插管将一次性无菌吸痰管推进呼吸道直至
遇到阻力后开始抽吸，留取标本在吸痰杯内。
四、标本采集—气道吸取标本
二、生物标本运送的基本原则
三、微生物实验室对标本的拒收标准
1. 标本采集至实验室接收过程间隔过长，或无标本采集时 间，或保存的温度不当。
2. 标本运送条件不正确：如厌氧培养标本却在有氧条件下 送检。
3. 容器不规范：如容器有裂缝或被打破导致标本泄露、容 器非无菌等。
4. 未贴标签或贴错标签：标本与检验目的不符合，如痰培 养送检尿标本；患者信息与标本不符，如女性患者送检 前列腺标本。
四、标本采集—血培养
二、标本采集： 1.菌血症： ① 采血时机：寒战开始时，发热高峰前30-60min内；使用抗菌药物治疗前
采集，如已用药，则在下一次用药之前采集最佳。 ② 采血部位：通常为肘静脉，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀
疑有导管相关的血流感染，应避免从留置静脉或动脉导管取血，因为导 管常伴有定植菌存在。 ③ 采血工具：真空血培养瓶，如培养瓶的储存温度为2-8℃，应先复温 30min左右，平衡至室温再采血。同一部位双瓶采集时不建议更换针头。 ④ 采血次数、血培养瓶选择：对于成人患者，应同时分别在两个部位采集 血标本；每个部位应需氧和厌氧培养各一瓶。 ⑤ 采血量：影响阳性率的重要因素，过少明显降低阳性率，5-10ml/瓶。 ⑥ 皮肤、血培养瓶消毒：穿刺前皮肤和培养瓶口进行消毒并充分干燥。 ⑦ 避免采血管内空气注入厌氧血培养瓶。
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采血后应立即送检，或室温保存，切勿冷藏！
采血次数和采血时间
◈ 只要怀疑血液感染，即刻采集 ◈ 尽量在使用抗菌药物之前采集 ◈ 24h内采集2～3次血培养 ◈ 使用抗菌药物的患者选用能中和或吸附抗菌药
物的培养基 ◈ 间歇性寒战或发热：寒战或发热高峰到来之前
0.5～1h、寒战或发热后1h采血
特殊的全身性和局部感染患者采血培养建议
血样采集和培养瓶接种
采血指征
①发热（≥38℃）或低温（≤36℃） ②寒战 ③白细胞增多（＞10×109/L，特别有“核左移”未 成熟的或带状的白细胞增多） ④粒细胞减少（成熟的多核白细胞＜1×109/L） ⑤血小板减少
⑥皮肤、粘膜出血 ⑦昏迷 ⑧多器官衰竭 ⑨血压降低 ⑩呼吸加快
同时具备上述几种临床 表现时应采集血培养
散性感染(化脓性关节炎、腹膜炎、蜂窝组织炎)， 断断续续将细菌释放到血液之中。 ◈ 持续性菌血症：通常为感染源直接感染血液系统。
多数菌血症发生原因不明
脓毒症（sepsis）
◈ 概念：血液或其他组织因致病菌或其毒素而产生 全身性炎症反应的表现。
◈ 血液培养是诊断菌血症的基本而重要的方法，若 从患者血液中检出细菌，一般视为病原菌感染， 提示有菌血症。
血液感染特点
◈危重的全身感染 ◈耐药菌、条件致病菌、非致病菌感染显著增多 ◈死亡率高
正常人血液无菌
常见的菌血症或脓毒症
◈葡萄球菌菌血症
病原体：MRSA及凝固酶阴性葡萄球菌 特点：
☆临床表现明显、发病急、中毒症状重 ☆常由原发感染灶继发为菌血症和脓毒症，
也可由呼吸道感染引起 ☆常可引起迁徙性损害，并发心内膜炎等
皮肤消毒程序
严格执行以下三步法： ☻70%乙醇擦拭静脉穿刺部位30s以上 ☻1%～2%碘酊作用30s或10%碘伏60s，从穿刺点向
外圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上 ☻70%乙醇脱碘：对碘过敏的患者，用70%乙醇消
毒60s，待乙醇挥发干燥后采血
采血部位
• 肘静脉 • 肘动脉或股动脉 • 骼前（后）上棘
临床意义
菌血症（bacteremia ）
◈ 概念：少量细菌侵入血液循环，为一过性， 不繁殖或很少繁殖，不引起或仅引起轻微的 炎症反应。
◈ 有菌血症的患者，不一定会出现临床症状， 也不一定需要抗生素治疗。
根据细菌进入血液的机制不同，可分为 ◈ 暂时性菌血症：通常为人体正常菌群进入到血液中。 ◈ 间歇性菌血症：细菌来自血管外的脏器、组织或扩
静脉穿刺和培养瓶接种程序
➢ 在静脉穿刺前或穿刺期间，为防止静脉滑动，可 戴乳胶手套固定静脉，但不可接触穿刺点
➢ 用注射器无菌穿刺取血后，勿换针头直接注入血 培养瓶
➢ 血标本接种血培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防血液 凝固。
立即送检，切勿冷藏！
采血量
• 成人：8～10ml/瓶 • 儿童：1～5ml/瓶
标本运送
♦ 可疑急性原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨 髓炎、关节炎或肺炎，应在不同部位采集2～3份血 标本。
♦ 不明原因发热，先采集2～3份血标本，24～36h后 估计体温升高之前再采集2份以上。
♦ 可疑菌血症或真菌菌血症，但血培养持续阴性，应 改变血培养方法，以获得罕见的或苛养的微生物。
♦ 可疑细菌性心内膜炎，在1～2h内采集3份血标本， 如果24h后阴性，再采集2份血标本。
◈肠球菌菌血症
病原体：肠球菌 特点：
☆常见于泌尿生殖道、消化道和腹腔感染的病人 ☆易并发心内膜炎 ☆常对多种抗菌药物耐药，病情较重
◈革兰阴性杆菌菌血症
病原体：革兰氏阴性杆菌 特点：
☆主要侵犯危及机体免疫功能低下的病人 ☆常引起泌尿生殖道、胃肠道、胆道及呼吸道感染 ☆大面积烧伤及严重创伤病人可发生铜绿假单胞菌
脑脊液
采集方法
◈ 腰椎穿刺术 ◈ 小脑延髓池穿刺术 ◈ 脑室穿刺术
采集量：1～3ml 送检要求
☆置无菌管内立即送检，不超过1h。 ☆特殊培养保温送检或床旁接种。 储存条件 ☆立即接种，勿置冰箱 ☆病毒检查标本应放置冰块，可在4℃保存72h。
常见病原体
革兰阳性菌
革兰阴性菌
ห้องสมุดไป่ตู้
病毒
真菌及其他
肺炎链球菌 B群链球菌 A群链球菌 消化链球菌 结核分枝杆菌 产单核李斯特菌 炭疽芽胞杆菌 葡萄球菌
⑤采样时应严格执行无菌操作，将污染情形降至最 低。
⑥收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域 常居菌群的污染。
⑦采用专用无菌容器收集标本。标本中不可添加防 腐剂。
⑧采样后应立即送检，最好在2h内。如不能及时送 检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放 一般不能超过24h。
血液
血培养是把静脉穿刺获得的血液接种到一个 或多个培养瓶或培养管中，用来发现、识别 细菌或其它可培养分离的微生物（如大肠杆 菌、念珠菌属、霉菌属等），这些微生物存 在于血液中形成菌血症或真菌菌血症。
常见病原体
G+球菌：葡萄球菌、链球菌、肠球菌 G+杆菌：结合分枝杆菌、产单核李斯特菌、阴道加特
纳菌 G-球菌：脑膜炎奈瑟菌、淋病奈瑟菌、卡他布兰汉菌 G-杆菌：大肠埃希菌、铜绿假单胞菌、克雷伯菌、肠
杆菌、变形杆菌、沙雷菌、沙门菌、不动杆 菌、嗜肺军团菌、嗜血杆菌 真 菌：念珠菌、曲霉菌、隐球菌、球孢子菌 厌氧菌：拟杆菌、产气荚膜梭菌
脑膜炎奈瑟氏菌 大肠埃希氏菌 铜绿假单胞菌 卡他布兰汉菌 拟杆菌 不动杆菌 肺炎克雷伯菌 流感嗜血杆菌
乙型脑炎病毒
新型隐球菌
柯萨奇病毒A
白色假丝酵母菌
菌血症 ☆感染严重者可引起感染性休克和DIC，甚至出现
多脏器功能衰竭
◈厌氧菌菌血症
病原体：厌氧菌（常见脆弱拟杆菌） 特点
☆常合并需氧菌感染，临床症状较重而复杂 ☆常引起口腔、肠道、泌尿生殖道感染 ☆肝硬化、糖尿病、尿毒症、恶性肿瘤和新生
儿易发生厌氧菌败血症
◈真菌血症
病原体：真菌 特点：
☆多数伴有细菌感染 ☆主要发生于菌群失调患者 ☆常可播散累及肝、肺、和心内膜等
第三十八章
临床微生物学检验 标本的采集
标本采集原则
①发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。 ②尽量在抗菌药物使用前，或停药一周后采集标本，
如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前 采集。 ③应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。 ④选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与 容器收集足量的标本。
采血次数和采血时间
◈ 只要怀疑血液感染，即刻采集 ◈ 尽量在使用抗菌药物之前采集 ◈ 24h内采集2～3次血培养 ◈ 使用抗菌药物的患者选用能中和或吸附抗菌药
物的培养基 ◈ 间歇性寒战或发热：寒战或发热高峰到来之前
0.5～1h、寒战或发热后1h采血
特殊的全身性和局部感染患者采血培养建议
血样采集和培养瓶接种
采血指征
①发热（≥38℃）或低温（≤36℃） ②寒战 ③白细胞增多（＞10×109/L，特别有“核左移”未 成熟的或带状的白细胞增多） ④粒细胞减少（成熟的多核白细胞＜1×109/L） ⑤血小板减少
⑥皮肤、粘膜出血 ⑦昏迷 ⑧多器官衰竭 ⑨血压降低 ⑩呼吸加快
同时具备上述几种临床 表现时应采集血培养
散性感染(化脓性关节炎、腹膜炎、蜂窝组织炎)， 断断续续将细菌释放到血液之中。 ◈ 持续性菌血症：通常为感染源直接感染血液系统。
多数菌血症发生原因不明
脓毒症（sepsis）
◈ 概念：血液或其他组织因致病菌或其毒素而产生 全身性炎症反应的表现。
◈ 血液培养是诊断菌血症的基本而重要的方法，若 从患者血液中检出细菌，一般视为病原菌感染， 提示有菌血症。
血液感染特点
◈危重的全身感染 ◈耐药菌、条件致病菌、非致病菌感染显著增多 ◈死亡率高
正常人血液无菌
常见的菌血症或脓毒症
◈葡萄球菌菌血症
病原体：MRSA及凝固酶阴性葡萄球菌 特点：
☆临床表现明显、发病急、中毒症状重 ☆常由原发感染灶继发为菌血症和脓毒症，
也可由呼吸道感染引起 ☆常可引起迁徙性损害，并发心内膜炎等
皮肤消毒程序
严格执行以下三步法： ☻70%乙醇擦拭静脉穿刺部位30s以上 ☻1%～2%碘酊作用30s或10%碘伏60s，从穿刺点向
外圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上 ☻70%乙醇脱碘：对碘过敏的患者，用70%乙醇消
毒60s，待乙醇挥发干燥后采血
采血部位
• 肘静脉 • 肘动脉或股动脉 • 骼前（后）上棘
临床意义
菌血症（bacteremia ）
◈ 概念：少量细菌侵入血液循环，为一过性， 不繁殖或很少繁殖，不引起或仅引起轻微的 炎症反应。
◈ 有菌血症的患者，不一定会出现临床症状， 也不一定需要抗生素治疗。
根据细菌进入血液的机制不同，可分为 ◈ 暂时性菌血症：通常为人体正常菌群进入到血液中。 ◈ 间歇性菌血症：细菌来自血管外的脏器、组织或扩
静脉穿刺和培养瓶接种程序
➢ 在静脉穿刺前或穿刺期间，为防止静脉滑动，可 戴乳胶手套固定静脉，但不可接触穿刺点
➢ 用注射器无菌穿刺取血后，勿换针头直接注入血 培养瓶
➢ 血标本接种血培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防血液 凝固。
立即送检，切勿冷藏！
采血量
• 成人：8～10ml/瓶 • 儿童：1～5ml/瓶
标本运送
♦ 可疑急性原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨 髓炎、关节炎或肺炎，应在不同部位采集2～3份血 标本。
♦ 不明原因发热，先采集2～3份血标本，24～36h后 估计体温升高之前再采集2份以上。
♦ 可疑菌血症或真菌菌血症，但血培养持续阴性，应 改变血培养方法，以获得罕见的或苛养的微生物。
♦ 可疑细菌性心内膜炎，在1～2h内采集3份血标本， 如果24h后阴性，再采集2份血标本。
◈肠球菌菌血症
病原体：肠球菌 特点：
☆常见于泌尿生殖道、消化道和腹腔感染的病人 ☆易并发心内膜炎 ☆常对多种抗菌药物耐药，病情较重
◈革兰阴性杆菌菌血症
病原体：革兰氏阴性杆菌 特点：
☆主要侵犯危及机体免疫功能低下的病人 ☆常引起泌尿生殖道、胃肠道、胆道及呼吸道感染 ☆大面积烧伤及严重创伤病人可发生铜绿假单胞菌
脑脊液
采集方法
◈ 腰椎穿刺术 ◈ 小脑延髓池穿刺术 ◈ 脑室穿刺术
采集量：1～3ml 送检要求
☆置无菌管内立即送检，不超过1h。 ☆特殊培养保温送检或床旁接种。 储存条件 ☆立即接种，勿置冰箱 ☆病毒检查标本应放置冰块，可在4℃保存72h。
常见病原体
革兰阳性菌
革兰阴性菌
ห้องสมุดไป่ตู้
病毒
真菌及其他
肺炎链球菌 B群链球菌 A群链球菌 消化链球菌 结核分枝杆菌 产单核李斯特菌 炭疽芽胞杆菌 葡萄球菌
⑤采样时应严格执行无菌操作，将污染情形降至最 低。
⑥收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域 常居菌群的污染。
⑦采用专用无菌容器收集标本。标本中不可添加防 腐剂。
⑧采样后应立即送检，最好在2h内。如不能及时送 检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放 一般不能超过24h。
血液
血培养是把静脉穿刺获得的血液接种到一个 或多个培养瓶或培养管中，用来发现、识别 细菌或其它可培养分离的微生物（如大肠杆 菌、念珠菌属、霉菌属等），这些微生物存 在于血液中形成菌血症或真菌菌血症。
常见病原体
G+球菌：葡萄球菌、链球菌、肠球菌 G+杆菌：结合分枝杆菌、产单核李斯特菌、阴道加特
纳菌 G-球菌：脑膜炎奈瑟菌、淋病奈瑟菌、卡他布兰汉菌 G-杆菌：大肠埃希菌、铜绿假单胞菌、克雷伯菌、肠
杆菌、变形杆菌、沙雷菌、沙门菌、不动杆 菌、嗜肺军团菌、嗜血杆菌 真 菌：念珠菌、曲霉菌、隐球菌、球孢子菌 厌氧菌：拟杆菌、产气荚膜梭菌
脑膜炎奈瑟氏菌 大肠埃希氏菌 铜绿假单胞菌 卡他布兰汉菌 拟杆菌 不动杆菌 肺炎克雷伯菌 流感嗜血杆菌
乙型脑炎病毒
新型隐球菌
柯萨奇病毒A
白色假丝酵母菌
菌血症 ☆感染严重者可引起感染性休克和DIC，甚至出现
多脏器功能衰竭
◈厌氧菌菌血症
病原体：厌氧菌（常见脆弱拟杆菌） 特点
☆常合并需氧菌感染，临床症状较重而复杂 ☆常引起口腔、肠道、泌尿生殖道感染 ☆肝硬化、糖尿病、尿毒症、恶性肿瘤和新生
儿易发生厌氧菌败血症
◈真菌血症
病原体：真菌 特点：
☆多数伴有细菌感染 ☆主要发生于菌群失调患者 ☆常可播散累及肝、肺、和心内膜等
第三十八章
临床微生物学检验 标本的采集
标本采集原则
①发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。 ②尽量在抗菌药物使用前，或停药一周后采集标本，
如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前 采集。 ③应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。 ④选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与 容器收集足量的标本。