检验科细菌室微生物标本的采集方法与运送
临床微生物标本的采集与送检
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骨髓标本的微生物学检查
采集部位：骨髓穿刺法从髂骨采集标本。 采集时间：在用药前、发热初期或高热期
当骨髓炎时或长期使用抗菌药物患者，抽取骨髓培养阳性率远 高于血液培养
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二、尿液标本的采集
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尿液标本采集方法
4 、小儿收集包：对于无控制能力的小儿可应用收集 包收集尿液，这种装置由于很难避免会阴部菌群 污染产生假阳性，所以只有在检验结果为阴性时 才有意义。如果检验结果为阳性，应结合临床进 行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法 留取尿液进行复查。
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尿液标本采集方法
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粪便标本的采集容器
一次性无菌便盒
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粪便标本采集时间
1．采样原则 腹泻病人应在急性期采集 （3天以内），以提高检出率，亦最好在用 药之前。 2．沙门菌感染 肠热症在2周以后；胃肠炎 病人在急性期，早期采集新鲜粪便
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粪便标本采集方法
自然排便采集法 自然排便后，挑取其脓血、粘液部分2-3g，液 状粪便取絮状物2-3ml，盛于灭菌容器内或保存液中送检
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尿液标本的送检指征
1 有典型的尿路感染症状； 2 肉眼脓尿或血尿； 3 尿常规检查表现为白细胞和/或亚硝酸盐阳性； 4 不明原因的发热，无其他局部症状； 5 留置导尿管的病人出现发热； 6 膀胱排空功能受损； 7 泌尿系统疾病手术前。
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尿液标本采集容器
无菌试管或无菌尿液标本留取容 器
临床微生物标本的选择、采集、运送及保存
临床微生物标本的选择、采集、运送及保存要发挥实验室的有效作用，选择正确生理部位和采集合适的标本及其正确运送等环节最为重要。
标本的采集和处理应该优先考虑，否则，实验室所做的工作几乎没有什么价值。
因此，所有与标本质量的各环节有关的医务工作者必须要了解在整个实验过程中保证标本质量的重要性和必要性。
实验室有责任提供相关信息资料，使之编入各科室的护理手册中。
包括详尽的安全标准，标本的选择、收集、运送、接收和填写及粘贴标签的标准。
在此手册中为您提供了临床微生物实验室的送检标本的正确采集和处理指南。
安全指南对于实验室工作人员最先考虑到的应是实验台的安全。
其他医务人员也许没在意在送往实验室的标本中潜在有病原体。
所以要制定安全规章制度以保护实验室人员和其他可能接触到病原体的人员。
大多数的微生物实验室的手册中都有实验室安全操作章节部分，实验室操作手册中还应该包括有关标本管理的安全操作的内容。
有关生物安全的参考资料对于每个微生物实验室都适用。
适用于实验室的安全参考资料应该包括有‘微生物实验室和生物实验室的生物安全指南，第三版’,以及实验室的生物安全指南：‘谨慎操作和处理传染性材料准则’。
直接有关标本的安全管理方针：1.所有采集标本的操作要戴手套，穿工作外套、口罩、甚至护目镜。
2.所有标本容器必须防漏，运送也应装入密封防漏的塑料袋中，袋上附有一表格用于填写日期、时间、姓名之用。
3.决不能将带有针头的注射器送到实验室。
应将注射器中的标本注入无菌试管中。
或采用防护手段取掉针头，再盖上注射器并放入密封防漏的塑料袋中送检。
4.不得将装有标本的破损容器送往实验室，也不能对其进一步处理。
应该及时向医生通报容器渗漏，解释如果留用标本，会带来的潜在危害性并要求重新送检。
如果新标本送来，则将泄漏的标本高温高压处理后再废弃掉。
标本的选择与采集采集送检标本前，必须有所选择标本的种类和采集部位并要反应有效病程。
如果不选择有效部位，再好的方法采集的标本，没有有效病原体也没多大临床价值。
临床常见微生物标本的采集与运送
临床常见微生物标本的采集与运送临床常见微生物标本的采集与运送唐玉英正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。
一标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。
2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。
采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。
3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。
4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。
5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。
二标本的运送1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。
2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。
三不同标本的采集，运送（一）血液标本采集，运送1.血培养指针当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。
微生物检验标本采集和运送原则
微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。
下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识，欢迎阅读。
采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。
采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。
送检尽快送检，一般不超过2小时。
若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。
2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。
3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。
4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。
5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。
6.采用专用无菌容器收集标本。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
7.采样后应立即送检，最好在2h内。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。
对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。
9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则摘要：一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.采集方法3.采集容器4.无菌操作三、微生物标本运送的基本原则1.快速送检2.妥善保存3.避免污染四、标本采集和运送的注意事项正文：临床微生物标本采集和运送基本原则是确保微生物检验结果准确、可靠的关键环节。
正确的采集和运送方法可以有效地捕捉与感染相关的病原菌，并保持其活性，同时减少其他与感染无关细菌的干扰。
一、微生物标本采集和运送的重要性微生物标本采集和运送在临床微生物学检验中具有重要意义。
它直接影响到病原菌的检出率和检验结果的准确性，为临床治疗提供重要依据。
二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机：为避免漏检，确保病原体的检出，应尽量在抗菌药剂使用前采集标本。
2.采集方法：采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。
3.采集容器：标本采集时应使用专用的无菌容器，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂等添加剂。
4.无菌操作：采集过程中应严格执行无菌操作，避免微生物污染。
三、微生物标本运送的基本原则1.快速送检：标本采集后应尽快送检，避免细菌在室温下长时间保存导致活性降低。
2.妥善保存：标本在运输过程中应妥善保存，避免高温、湿度、振动等影响标本的质量。
3.避免污染：运输过程中应防止标本受到污染，避免与其他物品混放。
四、标本采集和运送的注意事项1.标本的唯一性：送检申请单必须惟一标识，以便实验室能针对该标本选用相应培养基和适宜培养环境。
2.信息完整：送检申请单应注明样品名称、型号、年月、性状、标本来源、采集时间、检验目的及添加物使用情况等。
3.特殊标本的处理：对于特殊类型的标本，如血液、脑脊液等，应严格按照相关操作规程进行采集和运送。
总之，临床微生物标本采集和运送基本原则对于确保微生物检验结果的准确性和可靠性至关重要。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。
采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。
采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位，以确保标本的代表性和可靠性。
2.采集工具与消毒采集微生物标本时，应使用无菌、一次性采集器具。
采集器具在使用前应进行消毒处理，以确保不会引入外来微生物污染。
消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。
3.采集操作步骤（1）准备工作：评估患者病情，向患者及家属解释采集目的和注意事项，取得患者知情同意。
（2）佩戴个人防护装备：口罩、手套、护目镜或面罩。
（3）消毒：使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。
（4）采集：根据不同标本类型，进行相应操作，如穿刺、刮片、抽取等。
（5）封装：将采集完成的标本放入无菌容器中，密封，注明患者信息、采集部位、日期等。
二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时，应选用防漏、耐压、易保存的容器。
容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等，以便于实验室接收和处理。
2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室，一般要求在2-4小时内完成。
运送过程中，应保持标本容器密封，避免剧烈晃动，确保标本质量。
3.运送过程中的注意事项（1）夏季高温时，可采取冰袋降温措施，防止标本变质。
（2）注意标本容器不离手，避免摔碎或泄露。
（3）如需长途运输，应采取适当包装，确保标本在运输过程中不受损。
三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系，包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等，以确保检验结果的准确性和可靠性。
2.标本接收与处理实验室接收标本时，应核对标本信息，检查标本容器、运送条件等。
对标本进行登记、分类、编号，并按照标准化流程进行处理。
3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制，包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。
临床细菌检验标本的采集、运送、保存和处理
临床细菌检验标本的采集、运送、保存和处理正确的标本采集、运送、保存和处理对于保证临床细菌室的工作质量非常重要，应予高度重视。
实验室有责任将标本选择（包括时间和解剖部位）、收集、保管、运送、接受和安全等关键性信息，用户里手册的形式提供给各临床部门参考。
一、标本管理的安全警示1．所有标本的采集、运送和处理应在无菌操作，防止污染的原则下认真进行。
2．已采集原始标本都应置于防漏、密封的无菌容器中运送。
3．带针头的注射器运送标本时用无菌试管或防护装置套住注射针，再置于防漏塑料袋中运送至检验科。
4．采集足够量标本，材料不足可能导致假阴性。
5．每份标本都应标记患者姓名、送检号码、标本来源、具体部位、日期、时间及相关临床信息。
6．常规性细菌学检验的标本，采集后不能超过１小时送至检验科，4℃保存也不能超过24小时，怀疑厌氧菌感染的标本应在半小时内送至检验科（不能及时运送组织标本必须在厌氧环境中25℃不超过24小时）。
7．脑脊髓液、生殖道、眼睛、内耳标本应立即送检，绝不可冷藏。
二、标本的处理和要求1．血液和骨髓：1）急性脑膜炎、骨髓炎、关节炎、细菌性肺炎、肾盂肾炎发热患者，应在抗生素治疗或更换前，从不同部位采集血液标本，做2次血液培养，分别接种于各种培养瓶中立即送检置于孵箱内培养2）疑似心内膜炎患者：急性病例在抗生素治疗或更换前1—2小时，从不同部位采集血液标本，做3次血液培养3）亚急性病例：第一天24小时内，相隔1小时连续采集3次血液做培养，若24—48小时全部阴性，再采集2—3次血液做培养4）若已经抗生素治疗患者，连续3天，每天取2次血液做培养5）严格无菌技术采集血液血培养瓶后立即送检，切不可放冰箱暂存。
2．脑脊液：脑脊液采集后，置于无菌试管中，15分钟内送检，绝不可冷藏。
每种检验最小需要量：细菌培养≥1ml,真菌≥2ml,抗酸杆菌≥2ml.3．尿液：1）中段尿采集：清洁外阴及尿道口周围，自然排尿，让尿流不间断，截留中段尿，，置于无菌尿杯中立即送检。
微生物标本的采集和运送基本原则
一、我院微生物标本的采集和运送基本原则1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于70％。
2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。
3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。
4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。
5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子等，应标明标本种类，并立即送检。
6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。
中段尿培养的标本应用专用的无菌尿标留取（在仓库领取）。
静脉导管、胸腹水，脑脊液等到细菌室取无菌试管留取。
7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
二、常见医院微生物标本采集送检方法1．血液与骨髓①通常采血部位为肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。
切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。
②采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。
血培养瓶应在避光室温中保存，不必置冰箱保存。
③每次采血量成人5一10ml，婴幼儿l一5ml，培养基与血液之比以10：1-5：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
④怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。
对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下次用药前采血。
⑤每例病人至少采血两次，间隔0.5-lh，以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。
多次多部位采血可提高阳性率。
⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml 作增菌培养。
2．尿液①中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0．1％高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用0.1％新洁尔灭消毒尿道口．灭菌纱布擦干后收集标本10ml，0.5小时内送检。
②导尿管导尿采样可减少污染。
对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。
临床微生物标本的采集,储存和转运
临床微生物标本的采集，储存和转运微生物检验的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂6.送检标本应注明来源和检验目的标本采集1.尽早采集2.无菌操作3.合适部位4.适量标本5.适当方法6.安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗生素使用之前采集1.3对已用抗生素又不能停药者，可在下次用药前采集2-合适部位“背景干扰”2.1无菌标本:注意局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作与外界相通的腔道:避开腔道口区标本，以免皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊。
2.2正常菌群寄生部位：采集时应特别小心；应明确检查的目的菌在进行分离培养时，采用特殊选择性培养基2.3血标本采集:应避免输液的影响。
3-无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或粘膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本。
3.1.在采集血液、脑脊液、胸腔积液、关节液等无菌标本时，应注意对局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作；3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，而非从窦道口取标本，以免受皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊；3.3.采集的标本均应盛于无菌容器内送检。
盛装标本的容器须先经高压灭菌、煮沸、干热等物理方法灭菌，或使用一次性无菌容器，不能用消毒剂或酸类处理。
标本中也不得添加防腐剂，一面降低病原菌的分离率。
4-适量标本4.1标本采集应足量。
标本量过少，可能会导致假阴性结果。
4.1.1血液标本:通常成人采血量每瓶8-10ml,儿童每瓶1-5ml;脑脊液、骨髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本：三1ml尿液标本：＞3ml4.1.3粪标本：1-3g 或 1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊：4.2.1痰、肺泡灌洗液或支气管冲洗液：>5ml;4.2.2清晨中段尿：5-10ml;4.2.3粪标本：>1g;4.2.4穿刺液(胸水、腹水、关节液等)：5- 10ml。
微生物标本的采集与运送
• （三）标本量：≥ 1ml，尽量不使用引流 液
六、脑脊液标本的采胸水集腹水脑脊液， 放入血瓶阳性多， 条件限制无血瓶，
（一）采集时间：使用抗生素前 接种平皿亦认可。
（二）采集方法：采用腰椎穿刺术无菌采集
（三）采集量与容器：1～2ml，直接注入血 培养
取后不能及时送， 常温放置忌冰冻。
二、尿液标本的采集
（一）尿标本种类：
1、中段尿 2、导管尿（不能取尿袋内的尿液） 3、膀胱穿刺尿 常用：中段尿（晨尿或在膀胱内停留4h以 上的尿液）
（二）中段尿的留取： 尿液培养要计算， 清洗外阴留中段； 培养长出多种菌， 辨清污染重新送。
1、采集：采样前，应先清洁外阴及尿道 口周围，自然排尿，不间停，截留中段尿， 置于无菌尿杯中，一般留取10ml左右
（三）采集血量：
1、需氧瓶+厌氧瓶 为 一套 注意：每一套血培养应当从身体的不同部 位采集
2、成人： 8～10ml/瓶 儿童： 3～5ml/瓶 婴幼儿： 1～2ml/瓶 注意：采集静脉血
（四）采集频率 通常 情况
1、急性感染：分别从两臂采血，每臂采 1套。
2、急性心内膜炎：在抗生素治疗前1-2h 内，于3个不同部位采集3套
3、亚急性心内膜炎，第1天24h内，相 隔1h分3个不同部位，连续采集3套血培养 标本，若24-48h全部阴性，再采集2-3套血 培养标本
4、对于已进行抗生素治疗的心内膜炎 患者，每日采集2套血液标本，连续3天
5、不明原因发热，于发热期内多次采 血，如果24h培养为阴性结果，应继续采集 2-3套或更多套血培养标本。
为何要多次采血
• 血循环中的细菌有“暂时性”、“持续性”
细菌培养标本的_采集、运送与处理
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血液和无菌体液的处理
血液或无菌体液抽取后应立即放入血培养瓶,立即送检 或室温保存,不能放冰箱!
实验室接到标本应立即放入血培养仪。中夜班收到标 本放置室温,不用放置35℃温箱 。
对急诊室送来或室温久置的标本，应先检查瓶底有无 变化，如变黄，应先涂片并盲传，以防漏检。
导尿管导尿
无菌操作进行导尿可减少尿道污染。 对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用联空针筒的
细针斜穿管壁抽吸尿液；或拔去闭式引流的集尿袋，弃去导尿管前 段尿液，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。 不可从集尿袋的下端管口留取标本。 长期留置导尿管者，应在更换新导尿管后留取尿标本 。
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隔不少于60分钟。
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采血方法
采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血 液注入血培养瓶前，应更换针头或过火消毒针 头。
血培养瓶口也要消毒，并待酒精挥发后（建议 用酒精灯烧灼瓶口）再注入血样, 。
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采血量
每次采血量成人5～10ml，婴幼儿1～2ml， 培养基与血液之比以10：1为宜，以稀释血液 中的抗生素。
在安全性问题的容器内。
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标本转运的原则
所有标本必须立即送交实验室，最好不要超过 2小时，如标本处理不得不延迟，应在合适的 条件下储存，但不超过24小时。
对环境敏感的微生物包括志贺氏菌（应立即处 理）、淋球菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌 （对低温敏感）。脑脊液、生殖器、眼或内耳 标本不要冷冻。
及时、准确地从患者血液中分离出病原菌，才 能正确实施有效地抗菌治疗，从而有助于提高 治愈率和降低医疗费用。
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采血时机
微生物检验标本采集运送程序
标本的采集和运送具有重要意义，其质量直接影响到微生物实验室检测结果的可靠性。标本的采集和处理方式不当将导致病原体分离失败，或无法确定真正致病的微生物，给医院感染的病原学诊断造成困难，因此必须规范微生物检验标本的采集、运送，保证实验检测前标本质量。
标本
类型
采集
时间
温度
转运
报告时间
2、液体粪便取1～3ml
无菌
容器
常温
≤2h
住院超过3d或入院诊断不是胃肠炎的病人，不做常规粪便培养
直肠拭子
1、小心插入拭子超越肛门括约肌，轻轻旋转拭子，在肛门隐窝取样
2、用于检测病原的拭子应能见到粪便
无菌
试管
褥疮溃疡
1、一般不选择拭子标本
2、无菌盐水清洗表面
3、如得不到活检标本或抽吸物，则用拭子用力采集损伤底部
由于褥疮溃疡拭子提供不了什么临床信息，一般选择组织活检或针头抽吸标本
1/d#表示一天中仅需送检1次，无需多次重复送检相同标本
涂
片
抗
酸
染
色
痰
量多为宜
无菌容器
无
1h出报告
至少连续送3d，每日1次
尿（24h尿沉淀或12h全夜尿沉淀）
10ml
无菌管
留取24h尿或12h全夜尿于洁净容器中，必须静止2h后，弃上清液，收集沉渣约10ml于无菌容器送检
血培养瓶有两种规格，采血量不一样。
成人瓶：
8～10ml/瓶
小儿瓶：
1～3ml/瓶
≤2h
常温
禁止冷藏
阴性：5d
阳性：随时报告危急值，最终报告及时发出
建议从不同部位各采1瓶，共2瓶同时送检。
1、采集部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉为宜。
临床微生物标本采集和运送规范
➢ 可疑细菌性心内膜炎,在1～2h内采集3份血标本,如 果24h后阴性,再采集3份以上的血标本。
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脑脊液标本采集送检规范
❖ 采集时间：最好在抗菌药物使用前采集。 ❖ 采集方法：通常用腰穿的方法采集脑脊液，
➢ 采集数量：对于细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连 续2～3天。不建议24h内多次采集，除非痰液外观性状 出现改变。
➢ 标本运送：标本应尽快送检（1-2h内），如不能及时
送检，室温保存≤2h，4℃冰箱保存≤24h。
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生殖道标本采集送检规范
❖ 应由临床医师采集，用无菌棉拭子采集。淋球菌 检查时，不论男女尿道及子宫颈均需用拭子插入 尿道及子宫颈3cm深取样送检，要避免受阴道分 泌物污染。
离体后回迅速自溶。肺炎链球菌和流感嗜血杆菌 离体后极易死亡。）。延迟送检时一定不能放冰 箱，肺炎链球菌和流感嗜血杆菌等对温度敏感的 细菌在冰箱会很快死亡。 ❖ 各种无菌体液标本，如胸腹水、浆膜腔积液及各 种穿刺液等亦可注入血培养瓶以提高培养的阳性 率。
14
尿液标本采集运送规范
❖ 采集时间：尽量在抗菌药物使用前（多数药物从尿道 排泄）。
15
痰标本采集运送规范
❖ 采集时间：尽量在使用抗菌药物之前 ❖ 采集方法： ➢ 自然咳痰：以晨痰为佳。咳痰前应清洁口腔如刷牙和
漱口，然后用力咳出呼吸道深部痰，直接吐入于无菌 容器中。痰少或无痰者可用3-5%NaCl水溶液5ml雾化吸 入5min导痰（气道高反应如哮喘病人不宜采用此法）。 对于难于自然咳痰者可用微生物室提供的一次性无菌 吸痰杯抽取气管深部分泌物。 ➢ 小儿取痰法 最好用微生物实验室提供的一次性无菌 吸痰杯抽取气管深部分泌物。
细菌培养标本的采集、转运储存方法
细菌培养标本的采集、转运和储存方法一、痰标本1、采集时间：最好于应用抗菌药前，采集清晨第一口新鲜痰液。
2、采集方法：（1）自然咳痰：用清水漱口（包括咽喉部）3次后用力咳痰，从呼吸道深部咳出第一口新鲜痰液于无菌容器内或输送培养基中。
（2）帮助咳痰：不易获得痰的患者可雾化吸入加温的氯化钠（45℃10％氯化钠水溶液）。
（3）支气管镜或支气管毛刷：由医生采集，建议直接种入输送培养基。
（4）胃内采集痰标本：婴幼儿不会咳痰而且常把痰误咽入胃中。
可在清晨，用胃管插入胃内，用注射器抽出胃液。
（5）小儿采集痰标本：用压舌板刺激咳嗽使肺部和器官的分泌物喷出，用拭子采取标本送检，如不能立即送检应种入输送培养基。
3、转运和储存：如在2小时内送检，可常温下放置；如不能立即送检，可放置4℃冰箱，但最好不要超过24小时。
二、血液标本1、采集时间：尽可能在用抗菌药前，心内膜炎除外；对已应用抗菌药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。
2、采集方法：依次使用75%酒精、碘伏、75%酒精清洁采集部位皮肤；一般选取肘静脉，疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉为宜。
注意：不要与血气和血沉标本一起采集；不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜在静脉导管或静脉留置口采血。
3、采血量：两套4瓶，分需氧和厌氧，从两个部位抽血。
成人每套血量不少于16-20ml，先将10ml注入需氧瓶，再将剩余血注入厌氧瓶。
儿童每套血1-10ml，采血量是总血量的1％(儿童败血症含菌量是成人的10-100倍)。
4、采血间隔：如第一次采集2套（4瓶）血培养标本，在以后的2-5天不必采血，但除外心内膜炎和导管相关性败血症。
5、转运和储存：血培养瓶务必立即送至细菌室，因故不能立即送检时，应将已接种的瓶放在室温，切勿放在冰箱存放。
三、粪便标本1、采集时间：腹泻患者应在用抗菌药前、急性期采集；沙门菌感染、肠热症应在2周内采集；厌氧菌感染出现症状即可采集。
2、采集方法：自然排便者可用小木棒挑取有脓血和黏液部位的粪便2-3克，如液状粪便取絮状物盛于无菌的、密封的、不吸水的、容器内或直接盛于增菌液或保存液中；对不易获得粪便患者及幼儿，可用直肠拭子采集后置保存液或输送培养基中送检。
临床微生物标本的采集与送检
①一般要求常温下15-30分钟内接种培养皿，尤其是脑脊液和心包液；除了做结核杆菌、真菌培养的标本应在4℃下保存外，做其他项目的应常温保存。
②严格无菌穿刺。
③为了防止穿刺液的凝固，最好在无菌试管中预先加入灭菌肝素，再注入穿刺液
考虑到方便操作，建议常规血培养应尽量在使用抗菌药物前，于病人寒战或发热开始时30-60分钟内同时于不同部位采集2-3份血培养。
3.采血次数
①.留置深静脉导管且怀疑导管相关血流感染：
至少同时采集2套血培养，其中至少一套来自外周静脉，另一套从导管采集。（1套血培养定义：
从一个部位如静脉穿刺或静脉导管所获血液的培养，不论被接种在1个还是多个血培养瓶内都只能算是1套）
先以无菌生理盐水清洗外阴部或外生殖器，将无菌试管对准尿道口，待尿排出后送检注意事项严格进行无菌操作，因为尿液标本的采集和培养中最大的问题是污染杂菌通常应取晨起第一次尿液送检多数药物均通过尿液排泄，因此采集尿液应在用药前进行长期留置导尿管的患者应在更换新管时留取尿标本。导尿留取尿液时，集尿袋内的尿液和导尿管末端的尿液不能用于培养。
发热(≥38℃)或低温(≤36℃),寒战,白细胞增多,皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭,血压降低,C反应蛋白升高及呼吸加快,血液病患者出现粒细胞减少,血小板减少等,或同时具备上述几种体征时而临床可疑菌血症应采集血液培养。新生儿可疑菌血症,应该同时做尿液和脑脊液培养。
2.采血时机：
据研究表明：
细菌通常在病人寒战和发烧前1小时进入血流，因此规范规定在病人发热高峰前1小时抽血。
（二）、微生物检查的标本采集、运送原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查。
微生物标本的采集与运送
3、怀疑霍乱时立即采集粪便送检。
4、粪便涂片镜检WBC ≥5个/HP
1、自然排便法：自然排便后，挑取脓血、黏液 便2-3g作常规性病原菌培养；液状粪便取絮状物23ml，直接放入无菌杯内送检。
2、直肠拭子法 难以获得粪便、排便困难者及幼儿用此法
大便要取脓血处， 志贺沙门需关注。
以上标本由专科医师采集，2小时内送检，室温保 存不超过24小时。
（一）标本采集
1、开放性伤口：先以无菌生理盐水或75%乙醇冲 洗擦去表面渗出物，用拭子采集深部伤口或溃疡基底 部分泌物，或剪取深部病损边缘组织。
烧伤创面，多部位取样。
2、封闭性脓肿：消毒脓肿局部皮肤或黏膜表 面后，用注射器穿刺抽取脓液3-10ml注入无菌试管 内送检。
尿液培养要计算， 清洗外阴留中段； 培养长出多种菌， 辨清污染重新送。
1、采集：采样前，应先清洁外阴及尿道口周围， 自然排尿，不间停，截留中段尿，置于无菌尿杯中， 一般留取10ml左右
2、运送：常温下2小时内送达微生物室，4℃保 存不超过24h
三、粪便标本的采集
1、腹泄、大便≥3次，粪便性状异常，如稀便、 水样便、脓血便、血便，可伴恶心、呕吐、食欲不 振、发热、腹痛及全身不适等。尽量在用药前采集
检验科 2017.9.5
在临床微生物检验工作中，标本的正确选择、 采集和运送是保证检验质量的重要环节，是实验室 工作准确和有效的基本前提。
早期、无菌、合格
标本
规范化采集 不符合要求 污染的标本
提供重要临床 感染信息 结果无意义
误导临床
无菌标本 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
有菌标本 痰液 咽拭子 尿液 粪便
临床微生物标本采集和运送规范
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
18
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
微生物标本采集操作规程
微生物标本采集操作规程基本原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，三级医院微生物标本送检率不应低于60%。
2.尽量在抗菌药物使用之前采集标本。
3.标本采集时应严格无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染。
4.标本采集后应立即送至细菌室。
床旁接种可提高病原菌检出率。
5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭或伤口拭子，宜插入运送培养基送检。
6.送检标本应注明姓名、床号、标本来源、检验目的和标本采集具体时间，使细菌室能准确及时接种相应的培养基和适宜的培养环境，提高阳性检出率。
一、血液与骨髓的送检方法1.一般原则:在出现临床症状后应尽快抽血样作培养，最好在发热初期、高热或寒战时，原则上应选择在抗菌药物应用之前，对已应用药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。
2.采血部位：肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本。
3.采血最佳时间与频率：急性败血症应在治疗前24小时内抽血3次或者更多次，并在不同部位，如左右手臂或颈部，分别做厌氧、需氧培养以及内毒素、降钙素原检测；急性心内膜炎在治疗前1-2小时内分别在3个不同部位抽血样；怀疑伤寒病人，在病程第1-2周内采静脉血液；肺炎链球菌在寒战、高热或者休克时；布鲁杆菌感染除在发热期采血，还要多次采血，一般是24小时抽3-4次；分枝杆菌感染早期采血样阳性率高。
怀疑菌血症因尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机，对已用抗菌药物而不能停药者，可在下次用药前采血。
对疑为伤寒病人，在第1-3周内采集骨髓是最佳时间，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓1ml 作细菌培养。
4.采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养瓶前，认真识别相应颜色的瓶，并仔细检查培养瓶有无变色或混浊。
过火消毒针头，血培养瓶撕掉塑料盖后，瓶口不是无菌部位必须消毒。
消毒不能用碘酒消毒而是75%酒精消毒。
【VIP专享】临床微生物标本的采集与送检
【VIP专享】临床微生物标本的采集与送检临床微生物标本的采集与送检主要内容：标本采集、运送意义与原则血液标本采集尿标本采集粪便标本采集痰标本采集咽拭子标本采集标本拒收的标准与处理方法一、（一）标本采集、运送规范化的意义正确的标本采集、运送、保存和处理对于提高培养结果的阳性率以及保证细菌室的工作质量至关重要正确的标本采集和运送是准确的病原学诊断的前提不规范的标本采集、保存和运送是导致细菌培养阳性率低、临床符合率差的重要原因。
规范的标本采集和运送是细菌培养成功的关键！（二）、微生物检查的标本采集、运送原则1.及时采集微生物标本作病原学检查。
2.尽量在抗菌药物使用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。
3.选择正确的部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。
4.采样时严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。
5.收集真正感染病灶处的标本，且避免邻近区域微生物的污染。
6.采用无菌器材收集标本，并装于坚固且密合性佳的无菌容器中。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
7.采样后立即送检，最好在2h内。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放一般不能超过24h。
8.尽量不要以棉花拭子收集标本。
以棉拭子采集的标本如咽拭子、伤口拭子等宜插入恰当的运送培养基送检。
淋球菌培养等标本应使用专用的纤维拭子，不得使用一般棉拭子。
9.混有正常菌群的标本如痰、尿液等，不可置肉汤培养基内送检。
10.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
包括病人情况（病区、病人姓名、住院号）和标本情况（标本类型、检验目的、采集部位、采集方法、采集时间等）11.同一天同一检测目的的标本（血液标本除外）一般只需检测一次（份）。
涂片检查最好和细菌培养同时做！（三）、如何提高细菌阳性检出率？1、标本采集时机；2、标本采集方法；3、标本的质与量；4、标本的运送与保存；5、筛选合格标本（退检制度）；6、高质量、多种分离培养基；7、培养环境；8、合理的收费制度（四）、临床常见标本血液（生化、免疫及微生物检验）尿液粪便痰及上呼吸道标本穿刺液标本（脑脊液、胆汁、胸腹水等）脓液及创伤感染分泌物标本生殖道标本组织标本（五）、血标本检验的意义血液是临床最常见的检验项目它可以反映血液系统本身的病变还可判断病人病情进展程度为治疗疾病提供参考。
微生物标本正确采集及运送
微生物标本正确采集及运送
第11页
卫生部医政司《全国临床检验操作规程》
白细胞吞噬革兰阴性杆菌 / 革兰阳性球菌 未见白细胞吞噬
微生物标本正确采集及运送
第12页
微生物标本正确采集及运送
女性
肥皂清洗尿道外围 以无菌纱布擦拭 用手分开大阴唇 先排出前段尿液，再以无 菌宽口容器搜集中段尿液
男性
肥皂清洗尿道外围 以无菌纱布擦拭 扶起茎阴翻上包皮 先排出前段尿液，再以无 宽口容器搜集中段尿液
微生物标本正确采集及运送
第28页
尿标本采集注意事项
留取尿培养标本时需以无菌操作 注明是否使用抗生素 女患者月经期不宜留取尿标本 会阴部分泌物过多，应先清洁冲洗再搜集 4-8℃保留不可超出24小时 标本如不能马上送检，应存放于冰箱
微生物标本正确采集及运送
第18页
血培养采集
双侧双瓶
微生物标本正确采集及运送
第19页
影响血培养阳性率原因
微生物标本正确采集及运送
第20页
血培养组合与检出率
微生物标本正确采集及运送
J Clin Microbiol. ; 45:3546-354第821页
致病菌和污染菌判别
真正菌血症：
➢ 分离有毒力菌株
检验前误差： 病人准备、标本采集、标本储存及运输不规范
微生物标本正确采集及运送
Clin Chem. Jul;53(7):1338-42. Epub May 24 Clin Chem Lab Med. ;44(6第)3:页750-9
细菌诊疗标本采集标准
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血培养采血时机
细菌浓度
体温
0
30 时间 (分钟)
60
答 案：采集血培养样本的最佳时间
尽可能在患者寒战或开始发热时
采血
在患者接受抗生素治疗前采血 如患者已经应用抗菌药物进行治
疗，应在下一次用药之前采血培 养
———关于采血套数及部位
“为减轻患者痛苦，只从一个 穿刺部位采一份血液标本即可。”
而来自于检验中期和检验后期的误差率分别为
13.3%和18.5%。
2007年，这位检验专家又进行了类似统计， 结果显示，检验前期的误差发生率仍高达 61.9%。
摘自：
获得准确结果的重要环节
分析前质量控制
基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作
——— 关于采血量
“每瓶采集多少血液无特殊要求。”
采血量(ml)与检出率的关系
100 90 80 70 60
% Relative Yield
50 40 30 20 10 0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60
血培养物每增加一毫升，真性菌血症 Overall 成年人微生物的检出率增加3％
3套血培养，因为体内巨噬细胞吞噬系统会在
15～30min内清除掉进入人体内的细菌。
可疑急性心内膜炎患者要立即取血作血培养，
30分钟内完成3套血培养的采集，采集后立即进 行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报告阴性， 则继续采集2套血培养。 可疑的亚急性心内膜炎患者每间隔30分钟至1h 采集1套，连续采集3套标本。如果24小时内报 告阴性，则继续采集2套血培养。
医师或护士直视下采集标本 病人先漱口，去除表面的菌群 教育病人深咳，收集从下呼吸道咳出
的痰液
临床上约半数咳痰标本不合格！
关于咳痰标本
在抗生素应用前采集痰标本;
标本采集后1～2h内必须立即进行实验室处理
咳痰标本应用最早且广泛，但也是最受争议的标 本 取标本前应摘去牙托，清洁口腔如刷牙和漱口
凝集。
———关于培养瓶的储存 温度
“培养瓶未使用时，需要冷藏或冷 冻。”
答案：关于未用培养瓶的储 存温度
不需冷藏，更不能冷冻。保 存在15－25℃的室温即可，温
度过低会导致对温度敏感的耐
瑟氏菌等死亡。
———关于夜班血培养的 送检
“加入标本后的培养瓶夜班未能及时送到 检验科，可以冷藏或放入35℃的温箱。”
答案：关于从静脉留置装置直接采血
不可以，常规血培养不宜从 静脉导管或静脉留置装置中采集
，检出污染或定植菌的可能性较
大。除非怀疑导管相关性血流感
染，请参照导管相关性血流感染
的采血方法。
血培养标本的拒收
瓶子上帖的标签错误或未帖标签。 血培养瓶打破的、损坏的或渗漏。
血液凝固。
培养基的选择
4.采样后立即送检
5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂
6.送检标本应注明来源和检验目的
如何提高细菌阳性检出率？
标本采集时机 标本采集方法 标本的质与量 标本的运送与保存 镜检筛选合格标本（退检制度） 高质量、多种分离培养基 培养环境
常见不合格标本主要有以下问题：
标本采集时间错误
表皮葡萄球菌的临床意义
阳性套数 采集套数 临床意义
％ 污染可能 无法确认 ％ ％
采集1套无法判 断是病原菌还 是污染菌。
1 1 2 1 2 3
1 2 2 3 3 3
0 2 60 0 75 100
97 95 3 100 0 0
3 3 37 0 25 0
2－3套血培养，有助于污染的判断。
Tokars, JI. Clin Infect Dis 2004; 39:333
可能与严重疾病百日咳、流行性感冒、麻 疹和传染性单核细胞增多症并存。
不同的采样拭子 对标本的检测结果有影响吗?
?
棉+木棍
抑菌区域的产生 由于棉中所含的 脂肪酸以及从木 棒中渗出的树脂 和甲醛。
咽拭子运送培养基
可以运送需氧、厌氧、苛养菌
4℃或RT 24或48小时
建议用于病原菌培养而不是涂片的标本送检。
答案：关于夜班血培养的送检
培养瓶夜班未能及时送到检验科， 存在室温即可，不能冷藏也不能放入35 ℃的温箱 。过夜不会对检测造成影响， 但仍需尽快送检。冷藏可能导致对温度 敏感的耐瑟氏菌等死亡。温箱会导致细 菌进入生长对数期，从而错过检测的最 佳时期。
———关于采血部位
“患者静脉中插有导管，可直接 从导管采血。”
“消毒的重点是足够量的消毒剂。”
皮肤消毒程序：
• 推荐使用碘町、洗必泰或碘 伏作为皮肤消毒剂。
• 碘町作用1min
• 碘伏作用1.5-2min
• 洗必泰作用时间与碘町一样
（但不能用于少于2个月婴儿 皮肤消毒）
培养瓶的消毒程序：
1.去掉培养瓶口的塑料瓶盖。 2.75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞子60秒。 3.自然待干。 4.将标本注入培养瓶内。 5. 颠倒混匀标本与肉汤，以避免血液
检测原本无菌的血液及体液中是否有细菌存 在. 如有细菌,则极有可能为致病的细菌.
进一步进行鉴定/药敏试验.
完整的血培养过程
医师开出医嘱 护理人员收集送检样本 实验室检测、分离并鉴定导致血流感
染的微生物
三级报告：为临床医生提供抗菌药物
敏感性试验结果
目前血培养的问题：
答 案 ：关于血培养套数与采血部位
每位患者每次采血最少2套，3套更好 初发患者，绝不能只采1套标本
多个穿刺部位采血。因多部位同时发 生污染的几率较小，便于对结果进判断
——— 关于采血间隔
“两套血培养采集间隔无特殊要求。”
答案：关于标本采集间隔时间
对于非持续性菌血症，同时或短时间内采集2－
以条件致病菌为主：很多低致病、弱毒 的细菌，在外环境、人体体表以及与外 界相通的腔道中广泛存在的细菌，引起 感染甚至造成严重后果的现象日益增多。 病原菌的种类更为广泛：包括需氧菌、 厌氧菌、苛氧菌、分枝杆菌和真菌等。
现代感染性疾病的新特点
细菌的耐药性不断增强：同一种细菌对 抗生素的耐药性可以完全不同，甚至出 现同时耐多种抗生素的“多重耐药”细 菌，往往使临床医师的“经验性”治疗 或所谓的常规治疗根本无效。
痰培养标本
采集与运送
病原体种类繁多而复杂
使下呼吸道感染病原诊断成为难题
细菌（包括放线菌与奴卡菌，厌氧菌与 分枝杆菌） 真菌（包括肺孢子菌） 病毒 支原体、衣原体与立克次体 原虫
寄生虫
咳痰途经口咽部
不可避免地受到污染
唾液中口咽部定植菌的浓度可达
108-109/ml。
研究显示，国内常规痰标本中约半 数存在唾液严重污染现象。
基本概念
成人“一套”
血培养应该包括需氧瓶 和厌氧瓶各一个，也叫“一份”
注意：一次穿刺采血，算“一套”，
采集第二套应从另一个穿刺点获得。
儿童一般只做需氧培养，但仍需从多
个部位采集多次。特殊患者才考虑厌 氧培养。
采血套数
Weinstein et al. Detection of Bloodstream Infections in Adults: How Many BloodCultures Are Needed J Clin Microbiol. 2007; 45:3546-3548
采血时机不合适
采血套数不够 采血量不足
只做需氧培养，不同时做厌氧培养 采血前或采血时正在使用抗生素治疗
血流感染与血培养 的规范实践
————关于血培养指征
“只有在发热时，才需要进行血培养。”
想 采 就 采
答 案：血培养的指征
当怀疑血流感染或脓毒症时，应常规行血培养
怀疑患者有血流感染的症状有：
现代感染性疾病的新特点
出现一些新的感染性病原：有人统计， 20世纪后期，全世界一共出现种31种新 的传染病，其中病毒14种，细菌11种， 寄生物6种，由于人们的认识不足，缺乏 有效的预防、治疗办法，人群又无免疫 力，这些新出现的病菌在不同的地区和 范围内流行，来势猛，传播快，造成巨 大的损失和社会恐慌。例如：疯牛病、 埃博拉出血热、新型肝炎病毒、大肠杆 菌O157、出血性肠炎、O139霍乱、艾 滋病、莱姆病等。
———关于各种血液标本的 采集顺序
先采生化、凝血标本，再采血培养标本。”
答案：采各种血液标本的先后顺序
血培养对无菌操作的要求比注射、采集
生化、凝血等其它标本要高。
所以要最先采集血培养标本。 污染率的指标是
< 3%
（100份标本里只能有不到3个标本出现 污染。）
———关于皮肤及培养瓶 消毒
临床微生物标本的采集与运送
特克斯县人民医院检验 科微生物实验室 2013.1.3
微生物检验的重要性
在医学高度发展，新的抗菌药物不断涌 现的今天，感染性疾病的发病率和病死 率仍然居高不下。主要原因之一是当代 的感染性疾病，在病原上发生了较大的 变化，形成了现代感染性疾病在病原学 上的新特点
现代感染性疾病的新特点
标准4
标5
9115
6378
深咳，采集标本过程中要有专业的医务人员指导
无痰可用3％～5％NaCl 5ml雾吸约5min导痰 也可用物理疗法、体位引流、鼻导管抽吸等法取 痰
5种筛选标准判断14001份痰标本 合格率比较