微生物检验的标本采集和运送原则
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则摘要：一、微生物标本采集的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.采集方法3.采集容器4.无菌操作三、微生物标本运送的基本原则1.及时送检2.保温和冷藏3.防止污染四、标本的处理和检验1.标本的处理2.标本的检验五、结论正文：临床微生物标本采集和运送基本原则是确保检验结果准确和可靠的关键。
微生物标本包括血液、尿液、呼吸道分泌物、粪便等，这些标本中含有大量的微生物，对于疾病的诊断和治疗具有重要的意义。
微生物标本采集的基本原则包括：1.采集时机：采集标本应在患者出现症状时进行，如发热、咳嗽、腹泻等，以避免抗生素的使用对检验结果的影响。
2.采集方法：采集标本应严格遵循无菌操作，避免污染。
不同类型的标本采集方法不同，如血液采集应使用无菌针头，尿液采集应使用无菌容器等。
3.采集容器：采集标本应使用专用的无菌容器，防止污染和渗漏。
4.无菌操作：采集标本时应严格执行无菌操作，避免微生物污染。
微生物标本运送的基本原则包括：1.及时送检：标本采集后应尽快送检，避免细菌繁殖和死亡。
2.保温和冷藏：对于需要冷藏的标本，应置于适当的温度环境中，以保持标本的活性。
3.防止污染：运送过程中应避免标本的污染，如避免与其他物品接触，使用专用的运送工具等。
标本的处理和检验包括标本的处理和标本的检验两个步骤。
标本处理包括标本的分类、分离、纯化等操作，以提高检验的准确性和可靠性。
标本的检验包括形态学观察、生化试验、分子生物学检测等方法，以确定微生物的种类和数量。
总之，临床微生物标本采集和运送基本原则是确保检验结果准确和可靠的关键。
微生物检验标本采集和运送原则
微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。
下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识，欢迎阅读。
采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。
采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。
送检尽快送检，一般不超过2小时。
若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。
2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。
3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。
4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。
5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。
6.采用专用无菌容器收集标本。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
7.采样后应立即送检，最好在2h内。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。
对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。
9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。
采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。
采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位，以确保标本的代表性和可靠性。
2.采集工具与消毒采集微生物标本时，应使用无菌、一次性采集器具。
采集器具在使用前应进行消毒处理，以确保不会引入外来微生物污染。
消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。
3.采集操作步骤（1）准备工作：评估患者病情，向患者及家属解释采集目的和注意事项，取得患者知情同意。
（2）佩戴个人防护装备：口罩、手套、护目镜或面罩。
（3）消毒：使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。
（4）采集：根据不同标本类型，进行相应操作，如穿刺、刮片、抽取等。
（5）封装：将采集完成的标本放入无菌容器中，密封，注明患者信息、采集部位、日期等。
二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时，应选用防漏、耐压、易保存的容器。
容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等，以便于实验室接收和处理。
2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室，一般要求在2-4小时内完成。
运送过程中，应保持标本容器密封，避免剧烈晃动，确保标本质量。
3.运送过程中的注意事项（1）夏季高温时，可采取冰袋降温措施，防止标本变质。
（2）注意标本容器不离手，避免摔碎或泄露。
（3）如需长途运输，应采取适当包装，确保标本在运输过程中不受损。
三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系，包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等，以确保检验结果的准确性和可靠性。
2.标本接收与处理实验室接收标本时，应核对标本信息，检查标本容器、运送条件等。
对标本进行登记、分类、编号，并按照标准化流程进行处理。
3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制，包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。
微生物标本采集和运送的基本原则
微生物标本采集和运送的基本原则
微生物标本采集和运送的基本原则包括以下几点：
1. 采集时遵守无菌操作原则：采集人员应佩戴无菌手套，使用经消毒处理的工具和容器，确保采集过程不会引入外来微生物污染。
2. 标本采集要及时：一般来说，微生物标本应在病情出现或患者就诊后尽快采集，以确保标本中的微生物不会失活或过度增殖。
3. 采集要选择适当的采样部位和方法：不同类型的微生物感染，需要针对不同的组织、液体或体表进行采集。
采样时应遵循临床指南，选择适当的采样部位和方法。
4. 采集要足够数量：为了保证对病原体的准确鉴定和敏感性测试，采集的标本应足够数量。
采集过程中，避免采样物与采集容器外部环境的交叉污染。
5. 保证采样物的完整性和稳定性：采集的标本应保持完整，避免在采集、运输和处理过程中造成微生物失活或污染。
对于需保存在冷藏或冷冻条件下的标本，应采取相应的措施确保稳定性。
6. 标本运送要符合规定：标本应尽快送至实验室，运送过程中应避免温度变化、震荡和倒置等可能影响标本稳定性的因素。
运送时应采取相应的隔离措施，避免交叉感染。
7. 运送要有标志和单据：标本运送时应进行明确标识，并附上相应的单据，包括采样日期和时间、采样部位、采样者姓名、患者姓名和病历号等信息，以确保标本能够被正确识别和追踪。
总的来说，微生物标本采集和运送的基本原则是确保标本的无菌、完整和稳定性，遵循正确的采集方法和运送规定，以保证标本的质量和可靠性。
临床微生物标本的采集,储存和转运
临床微生物标本的采集，储存和转运微生物检验的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂6.送检标本应注明来源和检验目的标本采集1.尽早采集2.无菌操作3.合适部位4.适量标本5.适当方法6.安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗生素使用之前采集1.3对已用抗生素又不能停药者，可在下次用药前采集2-合适部位“背景干扰”2.1无菌标本:注意局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作与外界相通的腔道:避开腔道口区标本，以免皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊。
2.2正常菌群寄生部位：采集时应特别小心；应明确检查的目的菌在进行分离培养时，采用特殊选择性培养基2.3血标本采集:应避免输液的影响。
3-无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或粘膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本。
3.1.在采集血液、脑脊液、胸腔积液、关节液等无菌标本时，应注意对局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作；3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，而非从窦道口取标本，以免受皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊；3.3.采集的标本均应盛于无菌容器内送检。
盛装标本的容器须先经高压灭菌、煮沸、干热等物理方法灭菌，或使用一次性无菌容器，不能用消毒剂或酸类处理。
标本中也不得添加防腐剂，一面降低病原菌的分离率。
4-适量标本4.1标本采集应足量。
标本量过少，可能会导致假阴性结果。
4.1.1血液标本:通常成人采血量每瓶8-10ml,儿童每瓶1-5ml;脑脊液、骨髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本：三1ml尿液标本：＞3ml4.1.3粪标本：1-3g 或 1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊：4.2.1痰、肺泡灌洗液或支气管冲洗液：>5ml;4.2.2清晨中段尿：5-10ml;4.2.3粪标本：>1g;4.2.4穿刺液(胸水、腹水、关节液等)：5- 10ml。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则【最新版】目录一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.无菌操作3.采集量4.标本保存5.标本运输三、微生物标本运送的基本原则1.运送条件2.运送时间3.运送包装四、微生物标本采集和运送的意义正文微生物标本采集和运送是临床微生物学检验的基础环节，对于保证检验结果的准确性和可靠性具有重要意义。
本文将详细介绍微生物标本采集和运送的基本原则。
一、微生物标本采集的基本原则1.采集时机：微生物标本的采集应在抗生素使用前，以避免抗生素对病原微生物的杀灭作用。
在感染初期或病情加重时采集标本，可提高病原体的检出率。
2.无菌操作：在微生物标本采集过程中，应严格执行无菌操作，避免正常菌群和其他杂菌的污染。
采集非无菌部位的标本时，应尽量减少污染。
3.采集量：微生物标本的采集量要充足，以便进行后续的培养和检测。
不同类型的标本有不同的采集量要求，一般要求采集足够量的标本。
4.标本保存：微生物标本在采集后应及时保存，室温下保存时间不得超过 2 小时（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存），冷藏保存时间不得超过 8 小时。
5.标本运输：微生物标本在运输过程中应保持无菌状态，避免温度过高或过低，以及剧烈震动。
运输包装应具有良好的保护性能，防止标本破损或泄漏。
二、微生物标本运送的基本原则1.运送条件：微生物标本在运送过程中应保持适宜的温度和湿度，避免高温、低温和干燥。
不同类型的标本有不同的运送条件要求，一般要求在 2-8℃的条件下运送。
2.运送时间：微生物标本的运送时间应尽量缩短，以减少病原体的死亡或活性降低。
一般要求在采集后 24 小时内送检。
3.运送包装：微生物标本的运送包装应具有良好的保护性能，防止标本在运输过程中破损或泄漏。
包装材料应无毒、无菌、防渗漏。
三、微生物标本采集和运送的意义微生物标本采集和运送的质量直接关系到临床微生物学检验的结果。
正确采集和运送微生物标本，可以提高病原体的检出率，为临床诊断、治疗和预防感染提供可靠的依据。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则有：
第一，要及时采集微生物标本，做病原学检查。
第二，严格执行无菌操作，减少和避免污染。
第三，标本采集之后，要立即送到实验室，床旁接种可以提高病原菌的检出率。
第四，尽量的在使用抗菌药物之前采集标本，这样对于结果的影响比较小一些。
第五，以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子要立刻送检。
第六，盛标本容器须经灭菌处理，不要使用消毒剂。
第七，送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
第八，对于混有正常菌群的污染标本，要做定量或半定量培养，然后判断是感染菌和定植菌。
第九，对分离到的病菌，要做药敏实验，提倡分级报告和现实报告。
微生物标本的采集和运送基本原则
一、我院微生物标本的采集和运送基本原则1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于70％。
2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。
3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。
4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。
5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子等，应标明标本种类，并立即送检。
6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。
中段尿培养的标本应用专用的无菌尿标留取（在仓库领取）。
静脉导管、胸腹水，脑脊液等到细菌室取无菌试管留取。
7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
二、常见医院微生物标本采集送检方法1．血液与骨髓①通常采血部位为肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。
切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。
②采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。
血培养瓶应在避光室温中保存，不必置冰箱保存。
③每次采血量成人5一10ml，婴幼儿l一5ml，培养基与血液之比以10：1-5：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
④怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。
对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下次用药前采血。
⑤每例病人至少采血两次，间隔0.5-lh，以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。
多次多部位采血可提高阳性率。
⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml 作增菌培养。
2．尿液①中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0．1％高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用0.1％新洁尔灭消毒尿道口．灭菌纱布擦干后收集标本10ml，0.5小时内送检。
②导尿管导尿采样可减少污染。
对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。
病原微生物标本的采集运送标准操作程序
SOP_15-5 病原微生物标本的采集运送标准操作程序一、病原微生物标本采集和运送基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查。
2.采样时严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。
3.在感染的急性期、使用抗生素前或伤口局部治疗前收集样本。
4.收集真正感染的病灶处的样本，且避免邻近区域常居菌群的污染。
5.采用专用无菌容器收集标本。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
6.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的样本，尽量不要以棉花拭子收集样本。
7.采样后立即送检，最好在2h内。
为保持微生物活性，棉拭子等标本宜放入恰当的运送培养基送检。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放一般不能超过24h。
8.混有正常菌群的标本，不可置肉汤培养。
9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
（要标明病区、病人姓名、住院号、标本来源、采集部位、采集时间等）二、血培养标本采集和运送1.采集指征：临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血流感染的患者,需做血液细菌培养以明确病原。
及时、准确地从患者血液中分离出病原菌,才能正确实施有效地抗菌治疗,从而有助于治愈率的提高和医疗费用的降低。
2.采集方法：1.采血时机:在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前,以正在发冷发热时或发冷发热前半小时为宜。
2.采血次数及间隔:在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎,需马上做抗菌治疗;或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本。
对感染性心内膜炎患者,在24h内取血3次,每次间隔不少于30min;必要时次日再做血培养2次。
对发热原因不明者两次抽血间隔60min;必要时于24～48h后再抽血2次。
因为1次血培养不足以说明问题,且会遗漏阳性结果。
国外有人统计1次血培养可检出菌血症的80%,2次检出90%,3次检出99%。
国内统计17家医院1次血培养阳性率10.8%,18家医院2次以上血培养阳性率14.8%。
病原微生物标本采集、运送
病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确地标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本地选择，采集，运送，保存及处理地一般原则.一、标本采集地一般原则.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌地检出..无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群地污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊.采集地标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌地检出..适量地标本标本量过少可能导致假阴性结果..适当地采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌地采集方法是不同地，用于厌氧菌培养地标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻..盛放标本地容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖地容器内.二、标本地运送.标本采集后立即送检，若有延迟也应在小时内送到实验室，否则会影响病原菌地检出，一般性地细菌培养标本若需延迟送检时，应置于度冰箱保存，且不能超过小时..临床标本最佳运送时间取决于标本地量，少量液体（小于）或组织（小于）应在分钟内送到实验室，较多量地标本置于运送培养基中可放小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过小时.三、不同标本地采集，运送（一）血液标本采集，运送.血培养指针征当患者出现：发热（大于度）或低温（小于度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养..对怀疑菌血症、真菌血症地患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本.必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本.成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于.（少于病人总血容量地）.在采取血培养后地—天内，无需重复采取血培养.两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症..血标本采集地量是影响检出率地最重要地因素.检出率与采血量成比例增长，每增加地血液，病原菌地检出率就会相应增加.儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人.采用一对（需氧瓶厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶地组合可检出更多地葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌.采血量不能满足推荐地量时，应首先满足需氧瓶地需要.推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率.如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果地判读..血标本采集地注意事项在采血之前，血培养瓶地橡皮塞需使用酒精消毒并干燥.然后再进行穿刺部位地皮肤消毒.严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”地消毒步骤操作，并等待足够地消毒时间.严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手接触静脉，除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后地血培养瓶应在小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻.(二)痰培养标本采集，运送.痰培养指征上呼吸道感染包括咽炎，喉炎，会咽炎等都可采集鼻，鼻咽，口咽拭子标本培养.下呼吸道感染：凡是咳嗽，咳痰，痰呈脓性，粘稠或血性等都可采集痰标本..标本地采集采集前嘱咐病人先用清水漱口，摘去牙托，因唾液中口咽部定植菌地浓度可达，去除表面地菌群.教育病人深咳，收集从下呼吸道咳出地痰液.在抗生素应用前采集痰标本;标本采集后～内送往实验室进行处理，采集标本过程中要有专业地医务人员指导;无痰可用％～％雾吸约导痰；也可用物理疗法、体位引流、鼻导管抽吸等方法取痰..正常地痰标本低倍视野下鳞状上皮细胞小于个，白细胞大于个.如果低倍视野下鳞状上皮细胞大于个，白细胞小于个应不做或仅在特殊要求时做培养，如做培养，报告中注明“镜检结果表明标本口咽分泌物污染明显”.痰培养方法地局限性多数引起肺炎地病原菌不能培养出，如病毒，军团菌，衣原体等.影响因素很多：如黏液包裹、定植菌污染.建议痰培养同时做血培养和痰涂片镜检..注意事项常规地痰培养需在小时内送检，若怀疑嗜血杆菌，肺炎链球菌感染时必需随留随送;标本中不能混入唾液与鼻咽分泌物等.（三）尿培养标本采集，运送.尿培养指征尿路感染，肾结核，泌尿系结石，膀胱排空功能受损或前列腺增生等患者，出现尿频，尿急，尿痛等膀胱刺激症状，肉眼脓尿或血尿，尿常规检查有白细胞或亚硝酸盐阳性，，不明原因地发热，尿道口有脓性分泌物等症状，需采集尿培养标本送检..标本地采集清洁中段尿液，嘱咐患者用肥皂水清洗，弃去开始流出地尿液，以冲刷尿道口地细菌，取能代表膀胱部位病原菌地中段尿；导尿管尿液，留置导管尿液标本常通过专门地采样端口采集，不能把导尿管与尿袋拔开后收集尿液，采样端口用酒精消毒；必要时，可先夹住导尿管但不能超过分钟；将注射器针头插入采样端口，抽吸出尿液；注入无菌杯或试管中.膀胱穿刺尿，无菌操作，用无菌注射器刺入膀胱抽取—尿液送检，主要用于厌氧菌地培养或留取标本困难地婴幼儿标本地采集，此法可避免尿液标本地污染..标本地采集量一般成人采集,婴幼儿不得少于.诊断症状明显地病人（如尿急、尿频、尿痛），一份标本就已足够，治疗小时后再采集第二份标本.对于症状不明显地病人，需采集份标本.怀疑肾结核时，应连续天采集晨尿..室温都有利于病原菌和污染菌生长繁殖，标本采集后立即送检和接种，室温下存放不能超过小时，（夏季保存时间应适当缩短或冷藏），度冷藏保存时间也不能超过小时，冷藏地尿液不能用于淋球菌地培养.．注意事项必须无菌操作，采用带盖防渗漏地无菌杯收集，多次收集或小时尿不能用作培养.集尿袋内地尿液不能用作培养.导尿管末端地尿液也不能用于培养，很难避免没有尿道菌群污染.在使用抗菌药物前留取标本，尿液中不能加任何防腐剂或消毒剂，抑制细菌地生长.（四）粪便标本采集，运送.送检指征当患者出现腹泻，大便每天大于或等于次，粪便地性状异常，可为稀便，水样便，粘液便，脓血便或血便，伴有恶心，呕吐，食欲不振，发热，腹痛及全身不适等，大便镜检白细胞大于等于个每高倍视野，抗菌药物治疗后地腹泻等..标本地采集方法，时间与量尽可能在发病早期（急性期）或应用抗菌药物治疗之前，采集新鲜地粪便，怀疑沙门菌感染时，应在发病周以后采集.自然排便法，排便后，挑取有脓血或粘液部位地大便，液状粪便取絮状物盛于无菌地容器内；直肠拭子采集法，用于排便困难地患者或婴幼儿.一般用拭子采集大于地标本送检，若标本为水样，采集大于地标本于无菌容器中送检.．标本地运送与保存标本采集后应尽快送检，室温条件下不能超过小时，如不能及时送检可加入磷酸盐甘油缓冲保存液中或专门地大便运送培养基中置度冰箱保存，但不能超过小时.高度怀疑霍乱弧菌感染地标本必须符合特殊标本地安全要求..注意事项最好在用药前，采集新鲜地标本盛装在无菌容器内，立即送检，提高阳性检测结果.厌氧菌地培养尽量避免与空气接触和正常地菌群污染.(五)脓液及创伤感染分泌物标本地采集及运送.送检指征凡是当患者有外伤感染，术后切口感染，导管感染，脐带残端感染，有脓液和分泌物时，应采集标本培养..标本地采集时间和方法在使用抗生素前或停用药—天以后，或使用下一次抗生素前采集，对脓肿性分泌物应先用生理盐水或地酒精冲洗溃疡表面渗出物，尽可能抽取脓液于无菌杯内送检.对于封闭性脓肿时，应无菌操作抽取脓液—于无菌试管内或血培养瓶内送检，怀疑厌氧菌感染时，应做床旁接种或注入厌氧瓶内（—）送检，最佳方法是采集组织送检..标本地运送标本采集后应于小时内送微生物实验室进行处理，若不能及时送检，需氧培养地标本除对环境敏感地淋病奈瑟菌，脑膜炎奈瑟菌和流感嗜血杆菌外，可保存在度冰箱中，但保存时间不能超过小时;厌氧培养时，需用厌氧瓶或厌氧袋在室温下保存，但不能超过小时..注意事项尽可能在用抗生素前采集，若患者也用药，应在检验单上注明抗菌药名，并在下次用药前采集；对于开放性地伤口，采集前应先除去表面污染菌，以防带入与感染无关地皮肤定值菌.干燥结痂地标本一般不做培养，除非有渗出物.采集标本时应无菌操作.（六）穿刺液标本地采集与运送穿刺液主要包括脑脊液，胸腹水，心包液，胆汁，关节液及鞘膜液，在正常标本中，上述液体是无菌地，在排除污染地情况下，一旦检出细菌均视为病原菌.在相关地部位有相应地临床症状时，应无菌操作采集相应地标本于无菌容器内送检，标本采集后应立即送往实验室处理.脑脊液采集后应在分钟内送到实验室，若不能，应室温保存，不得超过小时，不能冷冻或冷藏注意事项：标本地采集严格执行无菌操作，最好在用抗菌药物前采集.防止标本凝固，可事先在容器内加入抗凝剂，（脑脊液标本时不需加抗凝剂），也可直接加入血培养瓶内.。
微生物检验标本采集和运送原则
微生物检验标本采集和运送原则一、标本采集原则1.选择合适的采集时间：根据不同的微生物检验要求，合理选择合适的采集时间，避免检测结果的误差。
2.手部卫生：在采集标本前，进行手部卫生，包括彻底清洁双手并戴上无菌手套，以防止交叉感染。
3.选择合适的采集器具和培养基：根据标本类型和检测要求，选择相应的采集器具和培养基。
常见的采集器具有吸管、棉签、刷子等，培养基有血平板、巴氏平板、育苗平板等。
4.标本容器选择：选择合适的标本容器，不同类型的标本选择不同的容器，并正确标注标本信息。
标本容器应保持清洁和无菌。
5.采集部位消毒：采集标本前，需要对采集部位进行消毒处理，以减少细菌污染。
消毒可以用酒精棉球或碘酒进行。
6.采集标本量要足够：采集标本时，应确保采集的标本量足够，以保证检验结果的准确性。
对于液体标本，应采集适量的标本，避免过多或过少，对于固体标本，应采集充足的组织样本。
7.采集方式：根据标本类型和采集要求，选择合适的采集方式。
例如，对于尿液标本采集，应根据不同的检测项目选择早晨采集或随机采集。
8.标本保存：采集完标本后，应及时进行保存。
不同的标本有不同的保存条件，如尿液标本应保存在无菌容器中，放置在冷藏室中。
此外，应避免降低标本的质量，如尽量避免标本被太阳直射等。
二、标本运送原则1.运送时间：将采集的标本尽快送往检验室，以确保标本的新鲜度。
不同的微生物标本有不同的时间要求，如直肠拭子标本应在2小时内送达，尿液标本应在4小时内送达。
2.运送方式：标本的运送要采取合适的方式，以避免标本内的微生物因震荡或温度变化而受到影响。
常见的运送方式有冷藏运送、冷冻运送和常温运送等。
需要密封标本容器，防止泄漏。
3.标本的标识：在运送过程中，应在标本容器上正确标注标本的信息，包括患者的姓名、性别、年龄、住院号、就诊科室等，并附上标本的项目名称和送检医生的姓名。
4.运送温度控制：不同的标本有不同的温度要求。
应注意控制运送温度，避免过高或过低，以保持标本的稳定性。
临床微生物标本的正确采集及运送
主要内容
一、临床微生物标本正确采集的重要意义 二、各种类型标本的正确采集和送捡
临床微生物标本正确采集和运送的重要意义
标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误，不当标 本可导致假阴性、假阳性结果的出现。因此正确采 集和运送微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定 结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为 临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确 、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药 物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一 步。为此应正确采集各种细菌学标本。
血液标本的采集与运送
⑵ 血培养瓶消毒程序：用75%酒精擦拭血培养瓶橡 皮塞，作用60s；用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮 塞子表面残余酒精，然后注入血液。注入血液后 ，应轻轻颠倒混匀防止血液凝固。
血液标本的采集与运送
4、血培养采血量 由于每毫升血量中含菌量很小，血培养的阳性率直接 与血样本容量有关，据报道每增加1ml血样本可使血 培养阳性率上升3%，所以采血量要足够。 通常采血量与培养基之比以1:5~1:10为宜，成人一次采 血10~20ml平均注入两个血培养（需氧、厌氧瓶）中 ，婴幼儿采血量为全血量的1%（1~2ml），儿童采血 量3~5ml。 当发生菌血症时，通常成人血液中含有的菌量小于 1CFU/ml,而儿童血液中含有的菌量常超过100CFU/ml ，所以婴幼儿、儿童Байду номын сангаас血量少于5ml时，不会影响培 养的阳性率。
血液标本的采集与运送
有研究表明，只做1套血培养，病原菌的检出率仅 为65%；2套血培养为80%；3套血培养为96%。对于 成年患者的血培养，只采集单瓶是不允许的，因为 单瓶的培养结果很难解释是致病菌还是污染菌。
血液标本的采集与运送
微生物检验标本处理
微生物检验标本处理
标本的处理
1.标本的运送和储存：一些对环境敏感的细菌应保温，并立即送检，而其他所有的标本采集后最好在2h之内送检。
若不能及时送检，
标本应置于一定环境中保存，如尸检组织、支气管洗液、心包液、痰、尿等标本应保存在4℃环境中。
脑脊液、滑膜液等则要在25℃保存。
一
般情况下，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24小时。
2.运送标本的防护：标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。
切勿污染环境。
对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按
规定包装。
3.厌氧性标本的运送：标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，
有时可直接用抽取标本的注射器运送。
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微生物检验的标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。
下面是yjbys 小编为大家带来的关于微生物检验的标本采集和运送原则的知识，欢迎阅读。
采样时机
抗生素使用前(停用抗生素3 至5 天或下次用药前)采样
采样方法
采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。
采样容器
专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。
送检
尽快送检，一般不超过2 小时。
若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml 时应于15～30 分钟内送检，防止挥发和干燥。
微生物检查的标本采集和运送原则
1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。
2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3 至5 天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。
3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量。