蝴蝶兰组培苗快繁高效安全技术?
蝴蝶兰组织培养技术研究
蝴蝶兰组织培养技术研究蝴蝶兰组织培养技术研究一、实验目的1.能够正确选取外植体,并最其进行前处理2.能够有效防止外植体褐变的发生。
3.能够正确进行继代培养与壮苗正根培养。
4.能够利用无菌播种方式进行种子繁殖。
5.培养团队精神、责任心和科学的思维能力。
二、实验原理随着植物组织培养技术在植物快繁上的应用,近年来,对蝴蝶兰组织培养研究较多的是用胚、幼叶、茎尖和根尖、花梗腋芽等多种器官为外植体进行组织培养研究,由于所选外植体材料各异,难度也有高低,虽然有些技术已经用于大规模工厂化生产,但仍面临一些困难,有待于进一步探索和完善。
根据目前蝴蝶兰的发展状况,本文将在以花梗侧芽、茎尖、叶片为外植体材料进行组织快繁技术上作深入的探讨和研究。
三、实验仪器及试剂花梗腋芽诱导培养基为1/ 2MS +BA2. 5 mg/L + NAA0. 2 mg/L 增殖培养基为1/ 2 MS + BA3. 5 mg/L + KT1.0 mg/L + NAA0.5 mg/L + 椰乳10 %。
生根培养基为1/ 2MS + BA1. 5 mg/L +NAA0.3 mg/L + 80 g/L 香蕉泥诱导培养基为1/3MS+NAA0.5~1.0毫克/升+6-BA3.0~5.0毫克/升+椰乳15%+蔗糖30克/升+琼脂6克/升,或KC+NAA1.0毫克/升+6-BA5.0毫克/升+椰乳15%+蔗糖20克/升+琼脂6克/升柠檬酸300毫克/升以上培养基p H 均为5.6四、实验步骤与方法(一)花梗腋芽和顶芽组织培养快速繁殖技术蝴蝶兰为总状花序,通常由花梗基部算起在第4或至第7节才会分化花朵。
除最基部一节外,剥开位于该节位以上各节的苞片都可看到腋芽,近顶端的节含有未完全分化的花原始体,花轴基部的芽往往为休眠芽,常具有苞片覆盖,连同花序的顶端,都是花梗腋芽组织培养的好材料。
1.花梗腋芽的培养途径对花梗腋芽有两条培养途径,一是切取带腋芽的花梗茎段培养;二是不带花梗组织剥取茎尖生长点培养。
蝴蝶兰组培种苗生产技术
蝴蝶兰组培种苗生产技术作者:刘思余来源:《西北园艺·果树专刊》 2017年第4期刘思余蝴蝶兰为兰科蝴蝶兰属多年生附生草本植物,花形如蝶,姿态优雅,色彩鲜艳,花期长久,在热带兰中素有“兰花皇后”之美誉,观赏价值极高,深受人们的喜爱,国内外市场的需求量越来越大。
蝴蝶兰属单型茎的兰花,很少有侧芽萌发,靠自然无性繁殖,繁殖率极低,速度慢,不能满足日益增长的市场需求;有性繁殖需经人工授粉才能获得种子,又因种子细小,发育不全,不含为种子萌发提供营养的胚乳和其他组织,而且种子萌发还需要共生菌滋养,所以在自然条件下很难萌发。
因此,组织培养是快速获得大量蝴蝶兰种苗的有效途径。
本文主要介绍通过花梗作为外植体,获得蝴蝶兰无菌种苗,再进行大量繁育蝴蝶兰种苗的生产技术。
1 组织培养技术1.1 无菌苗获得蝴蝶兰花梗作为外植体,不仅易获得,而且不会损伤植株,容易诱导。
选择侧芽饱满、新鲜、无病毒的蝴蝶兰花梗,整枝取下。
在切取花梗时要注意将刀片消毒,以防微生物感染。
将取下的花梗,去掉花朵,先用自来水冲洗,再用洗涤精浸泡5~7分钟,最后用自来水反复冲洗后放在超净工作台上进行表面灭菌。
先将花梗剪成3 cm左右的带芽梗段,用75%酒精浸泡5分钟,无菌水冲洗3次,再用2%次氯酸钠消毒20~30分钟,最后用无菌水冲洗2~3次,在整个消毒过程中,要不断摇动容器,使其能够均匀全面的消毒。
将消毒后的带芽梗段接种在诱导培育基1/2 MS+6-BA 3~5 mg/L+胰蛋白胨0.5~1 g/L+椰乳150~200 ml/L+蔗糖20~25 g/L+琼脂5.5~7 g/L。
培养20天后,侧芽萌发长出2叶片后,将其切下直接继代增殖或者诱导原球茎。
1.2 原球茎诱导将无菌小苗叶片切成小段,接种在MS+6-BA 4~6 mg/L+NAA 1~2 mg/L+胰蛋白胨0.5~1 g/L+椰乳150~200 ml/L+蔗糖20~25 g/L+琼脂5.5~7 g/L的培养基上诱导原球茎。
蝴蝶兰组培快繁技术研究
蝴蝶兰组培快繁技术研究作者:许忠秋来源:《安徽农学通报》2013年第12期摘要:以蝴蝶兰的花梗为外植体,研究蝴蝶兰快繁方法。
结果表明,花梗外植体在培养基MS+BA3mg/L+NAA1mg/L上培养15d后产生幼芽;丛生芽增殖的最佳培养基为MS+BA5mg/L+NAA0.1mg/L,增殖率为2.07%;生根诱导最佳培养基为1/2MS+NAA1mg/L+IBA1mg/L,生根率可达100%。
关键词:蝴蝶兰;组织培养;快速繁殖中图分类号 Q949.71+8.43 文献标识码 A 文章编号 1007-7731(2013)12-23-02蝴蝶兰(Phalaenopsis amabilis Bl.)是兰科蝴蝶兰属多年生名贵花卉,于1750年发现,现已发现70多个原生种,原产马来西亚等热带地区,大多数产于潮湿的亚洲地区,在中国台湾和泰国、菲律宾、马来西亚、印度尼西亚等地都有分布,其中以台湾出产最多,因花形似蝶而得名。
其株型美观、枝叶繁茂,花朵硕大、花色鲜艳,而且花期特别长,一般为2~3个月,最长可达半年,适于家庭摆设或作切花用于花篮、花束等,在热带兰中素有“兰花皇后”的美誉,有较高的观赏和经济价值,深受国内外花卉市场的欢迎。
但是,由于蝴蝶兰是单茎性气生兰,植株很少发育侧枝,很难采用常规分株方式进行无性繁殖,其种子也不含胚乳或其他组织,在自然条件下萌发率极低,因此无法利用播种方式进行有性繁殖,而采用组织培养方法进行种苗繁殖是目前蝴蝶兰大规模生产的唯一途径。
近年来,国内外学者对蝴蝶兰的组织培养技术进行了大量研究,蝴蝶兰组织培养诱导原球茎的外植体有茎尖、叶片、花梗腋芽、花梗节间切段等诱导类原球茎,进而诱导分生苗实现快繁。
蝴蝶兰的繁育方法有2种:丛生芽和原球茎增殖。
原球茎增殖容易出现变异,采用丛生芽增殖能够很好地保持原有品种的特性,还可利用花梗腋芽、叶片等作为外植体接种在不同培养基上进行离体培养,再利用诱导产生的不定芽的茎尖进行茎尖培养,可得到大量的原球茎状体。
蝴蝶兰的栽培技术
蝴蝶兰的组织培养与快繁技术
目标:
1、会蝴蝶兰的组织培养和快速繁殖 的技术方法和流程。 2、能熟练进行蝴蝶兰花梗侧芽的消 毒和培养 3、能进行原球茎诱导、继代、生根 与炼苗
蝴蝶兰:兰科,蝴蝶兰属;别 名:蝶兰,拉丁名: Phalaenopsis amabilis
蝴蝶兰是单茎性附生兰,茎
↓
75%酒精 浸泡30s左右,0.1%升汞消毒10~20min,无 菌水冲洗3次
培养基:MS+BA 3-5mg/l+胰蛋白胨2g+椰乳30g+糖 35g+琼脂12g/L,pH=5.0-5.4
温度:25~28℃;光照10~12h;光强1500~2000lx。
培养
1、选材与消毒:75%酒精30S,0.1%升汞5min
生单株小苗。再进行试管苗茎尖培养,诱
导为原球茎体。经原球茎培养,继代扩大
增殖,可培养成蝴蝶兰小植株。
实践操作
材料选择和消毒
生根培养
花梗消毒和接种
花梗侧芽培养
壮苗培养
初代培养
诱导原球茎
继代增殖
㈠花梗侧芽的消毒与培养
自来水冲洗,洗衣粉液浸泡5~7min,自来水反 复洗
外植体的选择→预处理→灭菌→接种
将原球茎切成数块转移到新鲜的初代培养基上,
附加15%椰乳、 0.5㎎/L +LAA6.0㎎/L腺嘌呤。
4、试管苗的移栽与管理技术
试管苗的出瓶移栽技术与大花蕙兰相同。
MS+BA3.0mg/L+NAA0.5mg/L+苹果汁 80g/L+蔗糖30g/L+琼脂10g/L+活性炭1g/L为好。 培养条件:25℃,600lx,pH5.4~5.6 以基部0.5~1.0cm,上表面朝上平放为好
蝴蝶兰组培快繁技术的研究进展
主要是利用各种类型的外植体诱导类原球茎,进而诱 导分生苗实现快繁,不用通过诱导愈伤组织而直接分
化丛生芽。近年来也有通过诱导愈伤组织途径进行蝴
蝶兰植株再生IH以及花葶培养、试管苗分株等方法进 行繁殖。本文概述了近年来蝴蝶兰的组织培养与快繁 技术的研究进展。包括外植体、基本培养基、激素及其 他添加物的选择.外植体褐变的防治措施以及生根壮 苗培养方法等,以期为蝴蝶兰的生产发展提供参考。
2外植体褐变的防治措施
蝴蝶兰外植体在组织培养过程中容易褐变死亡, 褐化问题是影响其成活率的关键因素。褐化是由于植 物组织中含有的PPO作用于酚类物质形成醌而引起 的。培养基的pH值、矿质元素含量以及培养期间的光 照、温度等都能影响植物组织的PPO活性,从而对植 物组织的褐变产生重要影响。印芳等[231研究了蝴蝶兰 外植体初代培养过程中不同浓度Fe、K、ca、zn、cu等 矿质元素对其褐变的影响.结果表明,培养基中Fe、Cu 浓度越高.褐变情况越严重;培养基中K、Ca、Zn浓度 越高.褐化越轻。赵伶俐等[2a-20研究表明,对外植体进 行遮光处理町减缓植物组织中酚类物质的合成,从而 抑制褐变的发生,且不同光照强度对褐化的影响不同, 其中1 000lx和3 000lx光强培养可降低褐化率;培 养前的黑暗预处理能减轻外植体的褐化,其中以黑暗 预处理10 d的褐化程度最轻:此外.当培养基pH值为 6.5或培养温度为20℃时外植体的褐化率最低。 有关研究表明,活性炭对蝴蝶兰原球茎和幼苗的 生长均具有积极作用,在每升基本培养基中添加活性 炭1—2 g.适时切除培养物的褐化部分并及时更换新 鲜培养基,能有效抑制外植体的褐变死亡嘞。
万方数据
蝶兰小苗的生根有明显抑制作用。低浓度的6一BA能 促进生根;NAA对生根有促进作用;添加苹果汁、香蕉 汁、椰子汁和活性炭等也可明显促进壮苗的培养和生 根,提高移栽成活率。鲁雪华等”研究认为.GA,0.1
蝴蝶兰组织培养关键技术探讨
2020年第1期现代园艺蝴蝶兰组织培养关键技术探讨张雯(杨凌职业技术学院,陕西杨凌712100)蝴蝶兰大多是通过组织培养技术繁殖培育的。
组培苗能够保持母本性状,减少组培苗变异和具有植株整齐等特点。
通过对蝴蝶兰组织培养关键技术中外植体选择、培养基成分以及培养条件等进行探讨,以期提高蝴蝶兰组培苗的生产效益。
褐变;蝴蝶兰;外植体;组织培养了至关重要的作用。
在蝴蝶兰的工厂化生产中,植物激素6-BA 、NAA 浓度决定了原球茎发生的诱导速度,而椰子汁、香蕉泥和土豆泥等对蝴蝶兰组培苗一致性有显著的影响。
生根壮苗培养是提高植株成活率的一项重要内容,壮苗生根阶段为试管苗的移栽和成活奠定基础,直接影响到工厂化生产的种苗质量。
在组培苗壮苗生根阶段,通常提高培养基的生长素浓度,下调细胞分裂素浓度,从而促进植物发根。
此外,培养基中添加了椰子汁、香蕉汁、苹果汁等天然添加物,对蝴蝶兰组培苗的生根壮苗有明显的促进作用,移栽成活率也较高。
3培养条件在花梗诱导丛生芽过程中,适宜的温度十分重要。
较低温度有利于腋芽转化为花芽,而较高温度则有利于腋芽转化为营养芽。
此外,光照强度对蝴蝶兰试管苗的生长也有较大影响,但光照强度合适范围还需要进一步的探究。
蝴蝶兰幼苗对温度的要求比较高。
温度过低,蝴蝶兰根部会停止吸收水分,从而造成生理干旱,进而叶片变黄、脱落,甚至死亡。
光照过强会灼伤叶片,使叶片老化,甚至枯死。
夏季在中午前后要做好遮荫处理。
4植物组织培养褐变在蝴蝶兰组织培养过程中,材料非常容易出现褐变的情况。
尤其是切取茎尖进行脱除病毒的步骤,由于茎尖太小,更容易因褐化而导致死亡。
因此蝴蝶兰组织培养过程需要重视褐化问题。
褐变是因植物组织多酚氧化酶与其酚类底物结合,在氧的作用下,二者发生化学反应形成醌类物质。
醌类物质是褐色物质,当该类物质扩散到培养基时,会对植物材料造成毒害,进而影响植物体内酶的活性,阻碍植物正常代谢,严重时甚至导致材料死亡。
目前,常用的褐化抑制剂分为2大类:一类是吸附剂,另一类是抗氧化剂。
蝴蝶兰组培快繁技术研究
L 上培养 l 5 d 后产 生幼 芽; 丛 生芽增殖的最佳培 养基为 M S + B A 5 m g / L + N A A 0 . 1 m g / L , 增 殖率为 2 . 0 7 %; 生根诱 导最佳
培养基 为 1 / 2 MS + N A A1 m g / L + I B Al m g / L , 生根率可达 1 0 0 %。
然诱导率稍低 , 但大 大降低 了污染率 。
大量研 究表 明 , 在蝴 蝶兰进行组 织培养过 程 中, 选取 的
外植 体不 同 , 原球茎 的诱 导率也 有很 大差异 , 其 中幼叶 、 茎 根
尖进行茎尖培养 , 可得到大量 的原球茎状体 。由于茎 尖作外
植体诱 导原球茎诱 导率高 , 但损 伤母株 , 而且还 会有不 同程 度 的污染率 , 故利用 腋芽萌发 的不定芽 的幼叶为外植 体 , 虽
台湾和泰 国 、 菲律宾 、 马来 西亚 、 印度尼西 亚等地都 有分布 ,
其 中以台湾 出产最 多 , 因花形似 蝶而得名 。其株 型美观 、 枝 叶繁茂 , 花 朵硕 大 、 花色鲜 艳 , 而且 花期 特别长 , 一 般为 2 ~ 3 个月 , 最长可达半 年 , 适 于家庭摆设 或作切花用于花篮 、 花束 等, 在热 带兰 中素有 “ 兰花皇后 ” 的美 誉 , 有较 高的观赏和 经 济价 值 , 深受 国内外花卉 市场的欢迎 。但是 , 由于蝴蝶兰 是 单茎 性气 生兰 , 植 株很少 发育侧枝 , 很难 采用常 规分株方 式
安徽农学通报 , A n h u i Ag r i . S c i . B u l 1 . 2 0 1 3 , 1 9 ( 1 2 )
蝴蝶 兰组培快 繁技术 研究
许 忠秋
蝴蝶兰的组织培养与快繁研究
玻璃瓶中, 然后放置于黑暗处 5 、0 、5 。每瓶 2 d 1d 1d 个
外植 体 , 个处理 1 每 0瓶 , 重复 3次 。 由表 1 以看 出 , 可
随 着时 间的推移 , 同处 理均 有褐化 现象 , 不 褐化 发生 的 时 间 明显 晚于对 照 。试 验说 明 暗处 理对 褐化现 象有 抑
冲洗 2 。在 超净工 作 台上 , 花 梗 剪成 0 5 1 0的 h 将 .~ . 小段 , 每段 上 留一个 腋芽 。先 将 花梗 用 7 乙醇 消毒 5
1 s无 菌 水 冲 洗 3 4次 后 ,再 用 0 1 H C。浸 泡 5, ~ . 1 7 i 无菌水 冲洗 5 a r n, ~6次 。
2O
25
33 .3
41 .7
2 1 2 不 同无机 盐 浓 度 对花 梗 腋 芽 萌发 的影 响 。基 . -
6 4
本 培养 基 分 别 设 置 为 MS 1 2 、 / MS ( : 机 、 / MS 1 4 , 注 无
《 西藏科技)02 4 ( ) 1 年 期 总第 29 ) 2 2期
大量 蝴蝶 兰幼小 植 株 , 具有 增 殖 快 、 不受 季节 限制 、 可
1 2 3 培 养 基 : 代 培 养 基 为 MS 1 2 、 / MS . . 初 、 / MS 1 4 , 蔗糖 3 0 。生 根 时 培 养 基 为 1 4 、 / MS 蔗 糖 . / MS 1 2 , 1 5 。以上培养基 加入 琼脂 粉 0 7 , . . 活性 碳 0 3 / .g L。调 p 值 为 5 5 5 6 H . ~ . 。培 养基 用 lO 的广 口 O mI 瓶分装 , 瓶 2 mL 每 5 。 12 培 养 条 件 : 养 温 度 2 . .4 培 6± 1 , 照 度 ℃ 光
蝴蝶兰组培快繁技术研究(1)
方法 诱导培养 本项研究在本所组培室进行。
切下,转入增殖培养基中。从表1可以看出,随着
从母株上切下花梗,剪下其带芽茎段,长约2—3
cm,用自来水清洗干净,在饱和漂白粉上清液中 浸泡15 min,浸泡时不断搅动,浸泡后的茎段用
BA浓度的增大,蝴蝶兰花梗腋芽诱导率逐渐升高, 说明在相同时间内,细胞分裂素的增大,芽诱导率 也随之增高。蝴蝶兰花梗腋芽最佳诱导培养基为
1/2MS+BA2.5 mg/l+NAA0.2 mg/1。
流水冲洗干净,置于超净工作台上,先用75%的 酒精消毒30 s,无菌水清洗1次,再用0.1%的升
汞浸泡10 min,经无菌水洗干净,将带芽茎段接
2.2不同激素及浓度的培养基对蝴蝶兰增殖的
影响
种到不同激素组合的诱导培养基上,生长40 d调 查诱导率,重复3次,取平均值。 1.2.2继代培养
1/2MS十BA3.5 mg/1+KTI.0 mg/1+NAA0.5
2.3不同激素及浓度的培养基对蝴蝶兰生根的
影响
mg/1十10%椰汁,增殖倍数可达3.26,且叶片健
壮;最佳生根培养基为l/2MS+BAl.5 rag/1十
NAA0.3
将高约2.0 cm的蝴蝶兰试管苗接种到附加
80
mg/l+80∥l香蕉泥,生根率可达i00%,
[5]刘荣维,等.丛生芽一蝴蝶兰无性快速繁殖的新途 径[J].热带作物学报,1993.14(2):105.107. [6] 潘学峰.等.利用丛生芽途径快速繁殖蝴堞兰的研 究[J].海南大学学报(自然科学版),2005.23(I):
47.52.
万方数据
方法。
均根长,取平均值。
1.2.4培养基基本培养基1/2 MS,增殖附加 10%的椰乳和生根培养基附加80 g/1的香蕉泥。
蝴蝶兰的组织培养技术
01
技术要求高
组织培养技术需要专业的知识和 技能,操作过程复杂,成本较高 。
变异风险
02
03
培养条件严格
长期进行组织培养可能导致基因 突变和变异,影响植物的遗传稳 定性。
组织培养需要在特定的温度、湿 度、光照等条件下进行,对设施 要求较高。
对未来研究的展望
优化培养条件
进一步研究蝴蝶兰组织培养的最优条件,提高培 养效率和成功率。
定期观察记录培养情况,及 时调整培养条件,促进蝴蝶 兰的生长和发育。
03
蝴蝶兰组织培养的关键技术
外植体的选择与处理
外植体的选择
选择健康、无病虫害的蝴蝶兰植株作 为外植体来源,通常使用花梗、叶片 、根等部位。
外植ห้องสมุดไป่ตู้的处理
对外植体进行消毒处理,去除表面微 生物,保证无菌条件,为后续培养打 下基础。
培养条件与环境控制
温度控制
适宜的温度是蝴蝶兰组织培养的重要条件,通常控制在25℃左右 ,以促进细胞分裂与增殖。
光照调节
适当的光照强度和时间对蝴蝶兰组织培养至关重要,通常使用散射 光或弱光,避免阳光直射。
湿度控制
保持培养环境相对湿度在70%-80%之间,以防止培养基过度干燥 或湿度过高。
细胞分裂与增殖
细胞分裂
在外植体上诱导细胞分裂,形成愈伤组织,进而分化出新的 植株。
组织培养技术在植物繁殖、种质资源 保存、基因工程和细胞工程等领域具 有广泛的应用价值。
02
蝴蝶兰组织培养的基本步骤
材料的选取与处理
选取健康、无病虫害的蝴蝶兰 植株作为材料来源。
对选取的材料进行清洗,去除 泥土和残叶。
将材料切割成适当大小的小块 ,一般以2-3厘米长的茎段为宜 。
蝴蝶兰组织培养快繁技术研究
1 材 料与方 法
11 试 验 材 料 .
供试材料为红 花系蝴 蝶兰 , 用 2种花 梗 , 选 已开 花
重复 ,0d后统计各处理的萌芽率 。 3 124 继代增殖 .. 选取长 为 lc m左右 , 生长状 况一致
花梗 ( 下端带有休 眠芽 ) 和花蕊 尚未 长 出但 已完全抽 出
NAA . / 0 5mL L生根 效 果 最好 。
关键词 : 蝴蝶兰 ; 花梗 I 夕 源激素 ; 组织培养
中 图分 类 号 : 8.0. 6 文 献 标 识码 : 文 章 编 号 :01 0 0 {00 0 -02 -0 S623 13 A 10 - 0 921 )8 12 3 蝴 蝶 兰 ( h leo s y r . 为 兰科 ( r i ca) P aanpih bi ) s d O c d ee h a
流水中冲洗 3 n并不断搅动 。将冲洗后 的花梗用滤 0mi,
第一 作者 简介 : 颖( 9 0) 女 , 张 1 8 - , 黑龙 江人 , 究 方 向为 植 物 组 织 研 培养 。E ma : n 8 7 1 @ 13 c m。 - i y g082 6.o li
的花梗 。
1 2 试 验 方 法 .
的单芽作为接种材料进行继代培 养。每处理 1 , 次 o株 3
重 复 。生 长 素 选用 N A , 度 分 别 设 为 : 、. 、. 、. A 浓 O0 5 10 15
121 外植体 的选择 ..
选用 2 花梗 , 种 已开花花梗 ( 下
mg I 细胞 分 裂 素 选 用 6B 浓 度设 为 :、、、 / 。 / ; - A, 0 579mg L
外植体按照花 梗 自然 生长方 向插入 下面 配方 的培 养基 中, 配方为 MS 基本培养基 , 蔗糖 3 / , 0g L 琼脂 6g L 附 / , 加 3个 浓 度 的 6B 3 5 7 m / , A 的 浓 度 为 - A: 、 、 g L N A
蝴蝶兰的组织培养技术
蝴蝶兰的组织培养技术蝴蝶兰的组织培养技术蝴蝶兰为兰科多年生附--生草本,又名蝶兰,是兰科植物中栽培最为广泛的种类之一,主要分布在热带及亚热带地区。
其花形奇特,色彩艳丽,花期持久,素有“兰中皇后”的美誉,具有极高的观赏和经济价值,在国内外花卉市场上极受欢迎。
蝴蝶兰是单茎气生兰,植株上极少发育侧枝,比其他种类的兰花更难于进行常规无性养殖。
组织培养是建立蝴蝶兰快速养殖无性系的重要手段。
1 外植体的选择蝴蝶兰的茎尖、茎段、叶片、花梗侧芽、花梗节间、根尖等部位都已有培养成功的报道,方法各异,难度各有高低。
蝴蝶兰不同外植体的成活率有差异,其中花梗侧芽的成活率最高,达75%;其次为花梗,成活率为 62.5%;叶片和根尖最差,分别为12.5%和 7.5%。
针对不同外植体,取材方法也不同,通常取花梗节之间1~2cm长的幼嫩部分,切取长 2~3mm 的切段作为外植体。
2 基本培养基的选择蝴蝶兰组织培养所采用的基本培养基包括 MS、1/2MS、VW、B5、KC、花宝及其改良型等,其中1/2MS对蝴蝶兰原球茎增殖效果最好。
3 外源激素的选择目前常使用的外源激素主要是生长素类(如IAA、2,4-D和NAA)和细胞分裂素类(如BA、ZT、KT)。
蝴蝶兰组织培养中常用的细胞分裂素为 6-BA,较高浓度(1~8mg/L)的 6-BA 能促进蝴蝶兰原球茎增殖,较低浓度(0.1~0.5mg/L)的 6-BA 则能促进原球茎分化。
适宜浓度的 6-BA 配合较低浓度的 NAA,更有利于原球茎的增殖,2.0mg/L 6-BA 和 0.3mg/L NAA配合使用是蝴蝶兰原球茎增殖的最佳组合。
4 培养基添加物对蝴蝶兰增殖和分化的影响蝴蝶兰组织培养中常加入一些天然物质如椰乳、香蕉泥、番茄汁、苹果汁等,这些物质能提供一些必要的微量营养成分、生理活性物质和生长激素等,如加入100~200mg/L香蕉泥,具有较大的 pH 缓冲作用,有利于兰科植物的壮苗和生根。
蝴蝶兰的繁殖方法和栽培技术
蝴蝶兰的繁殖方法和栽培技术很多人家里都会养殖蝴蝶兰,蝴蝶兰不仅观赏价值高,还能增加室内空气湿度,净化空气,花语是我爱你,幸福向你飞来。
下面一起学习一篇蝴蝶兰的繁殖方法和栽培技术。
很多人家里都会养殖蝴蝶兰,蝴蝶兰不仅观赏价值高,还能增加室内空气湿度,净化空气,花语是我爱你,幸福向你飞来。
下面一起学习一篇蝴蝶兰的繁殖方法和栽培技术。
一、蝴蝶兰的繁殖方法1、播种繁殖将种子种在新本植株的花盆里,这样可诱发种子发芽。
等发芽后要及时将花盆移到架子上,促使气生根顺利生长。
注意不可过早移栽,等小苗长出三五片叶子的时候再移栽,此时可保证成活率。
2、花梗催芽蝴蝶兰花开败之后花梗上会长出小苗,将小苗剪下来栽种就可长成新的植株。
3、切茎繁殖生长期间茎部自然是不断往上长的,长到一定程度后用消毒后的刀具将有根的茎节剪掉来,栽种到新的盆土中。
下半部分适当管理,还可长出新芽。
4、掐顶繁殖将顶部等嫩芽嫩枝直接剪掉,蝴蝶兰就没有办法重新向上生长,它就会在根茎底部部长出更多的芽眼。
二、蝴蝶兰的栽培技术1、温度要求蝴蝶兰的生长温度在25-35℃,一旦夜间温度低于10℃,蝴蝶兰的花茎和叶子就会发软,叶片上还会出现褐色的冻斑,所以冬天必须要保证养护温度在10℃以上。
2、盆土选择养殖蝴蝶兰的盆最好选大一些,大概直径要在30厘米左右,底部排水系统要强,不然很容易就会积水。
土壤也要选择疏松透气的,在种植的时候可以在土壤里面添加一些腐叶土,泥炭土等,在种植前也可以在底部添加一些小石头,另外还可以在土壤表面铺一层苔藓,起到保湿效果。
3、科学浇水蝴蝶兰在生长期一星期需要浇两次水,保持土壤潮湿就可以了,平时也要在植株周围喷水保湿,注意室内通风。
天气暖和时需要把蝴蝶兰移到室外养殖,多晒晒太阳,如果温度在25度以上就必须要把蝴蝶兰移到室内。
春天浇水尽量不要在晚上浇水,因为晚上的气温会有所下降,所以最好在中午吃饭的时候浇水,气温太低会影响蝴蝶兰开花,就算长了花苞也难以开花。
蝴蝶兰‘红箭’组织培养快繁技术
处理
A(6BA)/ (mg·L-1)
因素
B(Ad)/ (mg·L-1)
平均诱导率 /
C(NAA)/
%
(mg·L-1)
1 2 3 4 5 6 7 8 9 K1 K2 K3 R 因子主次 较优因子
300 300 300 500 500 500 700 700 700 3726 4590 5077 3440 A→ A2
·64·
福建林业科技
第 48卷
1 材料与方法
11 试验材料 ‘红箭’是漳州森晖兰花产业有限公司和福建省林业科技试验中心共同培育的蝴蝶兰新品种。2019
年 3月从温室大棚中选取花朵无畸形、无病虫害的花梗作为外植体。 12 试验方法 121 外植体的消毒 用剪刀将花梗上的花朵剪掉,将外植体用稀释过的洗衣粉溶液浸泡 10min,再用 自来水冲洗 30min,放置于超净工作台上备用。具体消毒方法(表 1):将 75%酒精倒入外植体的烧杯中 轻轻震荡消毒 30、45、60s,之后用无菌水清洗外植体 3~5遍;然后用 01% 升汞消毒,消毒时间设置为 15、20、25、30min,最后以无菌水震荡冲洗 5~6遍。将消毒后的外植体切成 2cm左右且带芽点的小段,接 种到诱导培养基中,每个消毒处理接 30个外植体,3次重复。培养 20d后观察、统计并计算污染率、死亡 率、存活率。污染率 /% = 污染外植体数 /接种总外植体数 ×100;死亡率 /% =死亡的外植体数 /接种总 外植体数 ×100;存活率 /% =100-污染率 -死亡率。 122 不定芽的诱导培养 不定芽诱导的基础培养基为 MS+蔗糖 30g·L-1,应用 L9(34)正交试验设 计方法,6BA质量浓度为:30、50、70mg·L-1;Ad(腺嘌呤)质量浓度为:0、50、100mg·L-1,NAA质 量浓度为:0、03、06mg·L-1,各处理因子水平见表 2。每个处理接种 30瓶,每瓶接种 1个外植体,3次 重复。30d后,观察并分析不定芽的萌发及生长状况,进行正交试验方差分析,筛选‘红箭’的最佳诱导培 养基。诱导率 =萌发的外植体数 /接入的总外植体数。 123 不定芽的增殖培养 增殖培养基础培养基为 MS+香蕉 80g·L-1+土豆 80g·L-1+蔗糖 30g· L-1,附加不同质量浓度的 6BA(分别为 40、50、60、70mg·L-1)和 NAA(分别为 02、04、06mg· L-1)(表 4)。每个处理接 30个不定芽,3次重复。培养 50d后,分析不定芽的增殖系数并观察其生长情 况。增殖系数 =总不定芽数 /接种的不定芽数。 124 生根诱导培养 不定芽生长至 2~3cm且有 3个叶片以上时,接种到生根壮苗培养基中。生根基 础培养基为 1/2MS+香蕉 80g·L-1+土豆 80g·L-1+活性炭 15g·L-1+蔗糖 20g·L-1,附加不同质 量浓度 NAA(02、04、06mg·L-1)和 IBA(02、04、06mg·L-1),具体组合见表 5。每种培养基接种 30瓶,每瓶接种 10个不定芽,3次重复。45d时,统计平均根数、平均根长、平均生根率。平均生根率 /% =培养 45d时的生根苗数 /接种的芽数 ×100。 125 炼苗及移栽 ‘红箭’的组培苗根长至 3cm以上且长出 3片叶子时即可炼苗及出瓶移栽[7-8]。炼 苗 7d后,可将组培苗移栽到不同的基质中进行栽培,基质分别为水苔、树皮、水苔∶树皮 =2∶1、水苔∶树皮 =1∶1,共 4个处理(表 6),每个处理移栽 30株组培生根苗,3次重复。组培苗移栽后应浇透水,并注意保 持一定湿度,放置在温室大棚中栽培 40d时,统计成活率,并观察植株的生长情况。 13 培养及栽培条件
蝴蝶兰繁殖方法和注意事项
蝴蝶兰繁殖方法和注意事项摘要:一、蝴蝶兰的繁殖方法1.播种繁殖2.组织培养3.茎插繁殖4.叶插繁殖5.嫁接繁殖二、蝴蝶兰繁殖的注意事项1.选择合适的繁殖时期2.培养基和容器选择3.保持适宜的环境条件4.光照和湿度管理5.施肥与病虫害防治正文:蝴蝶兰作为兰花中的佼佼者,其优美的花姿和浓厚的文化底蕴深受人们喜爱。
要想让蝴蝶兰茁壮成长,掌握正确的繁殖方法至关重要。
本文将对蝴蝶兰的繁殖方法进行详细介绍,并提醒大家在繁殖过程中应注意的事项。
一、蝴蝶兰的繁殖方法1.播种繁殖:蝴蝶兰种子微小,通常采用室内播种的方法进行繁殖。
将种子均匀撒在湿润的腐殖土表面,覆盖一层薄薄的细沙,保持温度在25-30摄氏度,大约一个月左右即可发芽。
2.组织培养:从蝴蝶兰母株上切下部分组织,如茎尖、叶片等,放入含有生长激素的培养基中,进行无菌培养。
在适当的温度和光照条件下,约一个月左右可长出新的植株。
3.茎插繁殖:选取健康的蝴蝶兰茎段,剪去下半部分叶片,插入湿润的腐殖土中。
保持温度在25-30摄氏度,适当遮阴,约一个月左右可长出新的根系。
4.叶插繁殖:选取健康且生长旺盛的蝴蝶兰叶片,剪去叶柄,将叶片插入湿润的腐殖土中。
保持温度在25-30摄氏度,适当遮阴,大约一个月左右可长出新的植株。
5.嫁接繁殖:将蝴蝶兰母株上的茎段与砧木相接,用绑带固定,保持接口湿润。
在适当的温度和光照条件下,约一个月左右可长出新的植株。
二、蝴蝶兰繁殖的注意事项1.选择合适的繁殖时期:蝴蝶兰繁殖的最佳时期为春季和秋季,此时气温适中,有利于新植株的生长。
2.培养基和容器选择:选用适合蝴蝶兰生长的腐殖土或专用兰花培养基,容器最好选用透气性好的陶瓷或塑料盆。
3.保持适宜的环境条件:繁殖期间,要保持适宜的温度、湿度和光照。
温度控制在25-30摄氏度,湿度保持在60%-80%。
4.光照和湿度管理:蝴蝶兰繁殖期间需适当遮阴,避免阳光直射。
同时,要保持空气流通,避免过度湿润。
蝴蝶兰的新型育苗技术
蝴蝶兰的新型育苗技术发表时间:2018-11-26T16:47:10.303Z 来源:《知识-力量》2019年1月上作者:陈依桃[导读] 蝴蝶兰单株性比较强,在栽培过程中很少会产生分株。
目前国际上常用的养殖方法是组织培养无性养殖法,即所谓克隆养殖。
利用蝴蝶兰花梗侧芽、叶片、茎尖等外植体(浙江省弟兄农业开发有限公司)摘要:蝴蝶兰单株性比较强,在栽培过程中很少会产生分株。
目前国际上常用的养殖方法是组织培养无性养殖法,即所谓克隆养殖。
利用蝴蝶兰花梗侧芽、叶片、茎尖等外植体,经消毒处理后接种到培养基上,可诱导出营养芽或原球茎,进行大量增殖。
当原球茎养殖至一定数量后,进行分化培养,这样就可培养出大量的植株。
本文就是对蝴蝶兰花梗侧芽组培快繁技术进行了研究,希望对相关人员有所启示。
关键词:蝴蝶兰;外植体;诱导;分化培养蝴蝶兰是世界上栽培最广泛、最普及的洋兰品种之一,素有“洋兰皇后”之美称。
因为蝴蝶兰有性繁殖困难,所以一般是以组织培养的方式快繁并温室花生产。
在蝴蝶兰培养的过程中,材料选择、外植体消毒、侧芽诱导分化、丛生芽增殖、壮苗生根、组培苗出瓶种植、小、中、大苗盆花温室生产栽培以及病虫害防治都是保证其景观效果极其重要的环节。
1.蝴蝶兰的育苗技术1. 1芽繁芽克隆苗繁育技术其基本原理是利用蝴蝶兰的花梗作外植体,诱导花梗腋芽萌动,然后用所获得的无菌营养芽作为继代增殖材料,不经过原球茎而直接获得不定芽,再诱导生根成苗的试管繁殖育苗技术。
该技术因为不经过脱分化、愈伤组织再分化过程,因此可以很好地保持母本的优良特性,变异率低,另外还具有周期短,繁殖系数较大,芽生长一致等特性。
1.2外植体消毒处理技术将花梗剪成2-3cm带芽切段,选取下端3-4节,每节距侧芽上部1cm下部2cm。
将取好的材料用洗洁精和自来水清洗30min。
放进超净工作台在无菌条件下倒入无菌三角瓶,75%酒精浸泡30min后用无菌水冲洗2-3次,然后用0.1%的升汞加2-3滴吐温浸泡8min,用无菌水冲洗5-6次,将侧芽苞叶剥去,再用0.2%升汞浸泡10min,最后用无菌水冲洗5-6次。
蝴蝶兰高效培养
组织培养的条件在进行植物组织培养工作之前,首先应对工作中需要哪些最基本的设备条件有个全面的了解,以便因地制宜地利用现有房屋,或新建、改建实验室。
实验室的大小取决于工作的目的和规模。
以工厂化生产为目的,实验室规模太小,则会限制生产,影响效率。
在设计组织培养实验室时,应按组织培养程序来没计,避免某些环节倒排,引起日后工作混乱。
植物组织培养是在严格无菌的条件下进行的。
要做到无菌的条件,需要一定的设备、器材和用具,同时还需要人工控制温度、光照、湿度等培养条件。
(1)实验室设计原则:保证无菌操作,达到工作方便,防止污染。
(2)实验室组成:化学实验室、洗涤菌室、无菌操作室(接种室)、培养室、细胞学实验室。
化学实验室(准备室):完成所使用的各种药品的贮备、称量、溶解、配制、培养基分装等。
主要设备:药品柜、防尘橱(放置培养容器)、冰箱、天平、蒸馏水器、酸度计及常用的培养基配制用玻璃仪器.洗涤、灭菌室:完成各种器具的洗涤、干燥、保存、培养基的灭菌等。
主要设备:水池、操作台、高压灭菌锅、干燥灭菌器(如烘箱)等。
无菌操作室(接种室):主要用于植物材料的消毒、接种、培养物的转移、试管苗的继代、原生质体的制备以及一切需要进行无菌操作的技术程序。
无菌室的建造要求严格,接种室宜小不宜大,一般7~8平米,要求接种室干爽安静,清洁明亮,除出入口和通气口外,应当密闭,配置拉动门,以减少开关门时的空气扰动,用紫外光灯灭菌后,能较长时间保持无菌状态。
为避免消毒药品的腐蚀,地板、内墙和作业台应采用耐水、耐药的材料,如经过油漆,铺上瓷砖或玻璃,或采用磨光水泥等,通气口要安装排风扇,定期开机更换空气。
无菌室设内外二间,外间小些,为缓冲室,供工作人员换衣、帽、鞋、口罩之用。
备有衣帽钩和拖鞋架。
内间较大,接种用,备有工作台,放物台,小型离心机,真空抽气机等。
内外间分别安装紫外灯,操作前至少开灯20分钟。
室内定期用甲醛和高锰酸钾熏蒸。
主要设备:紫外光源、超净工作台、消毒器、酒精灯、接种器械(接种镊子、剪刀、解剖刀、接种针)等。
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蝴蝶兰组培苗快繁高效安全技术作者:束冰张金云谢光坤杨大庆来源:《安徽农业科学》2014年第19期(1. 安徽省农业科学院园艺研究所,安徽合肥 230031;2. 安徽省兰君园艺有限公司,安徽合肥 230031;3.安徽省桐城市农业行政执法大队,安徽桐城 231400)摘要[目的]建立蝴蝶兰组培苗的快繁工厂化生产体系。
[方法]以蝴蝶兰的花梗为外植体进行组织培养,并进行继代培养、壮苗培养、生根培养、炼苗、出瓶培养,最后分别包装、标识、运输。
[结果]试验获得了无菌的蝴蝶兰芽苗,经8代继代培养后,进行壮苗培养和生根培养,而后进行炼苗与出瓶培养,最后按照大、中、小3个规格的苗龄分级出圃,对出圃的组培苗按级分别包装、标识、运输,形成了一套完整的详细的蝴蝶兰苗快繁工厂化生产体系。
[结论]该方法建立了蝴蝶兰组培苗的快繁工厂化生产体系,为蝴蝶兰的进一步开发利用提供了依据。
关键词蝴蝶兰 (Phalaenopsis amabilis); 组培;快繁;外植体中图分类号 S 188文献标识码A文章编号 0517-6611(2014)19-06170-02Rapid Propagation and High Efficient Safety Technology of Phalaenopsis amabilis Tissue Culture PlantletSHU Bing, ZHANG Jin yun et al (Horticulture Institute, Anhui Academy of Agricultural Sciences, Hefei, Anhui 230031)Abstract [Objective] To establish rapid propagation production system of Phalaenopsis amabilis tissue culture plantlet. [Method] With stalk of P. amabilis as explant, tissue culture, subculture, strong seedling culture, rooting culture, exercising seedling, flask culture, packaging, identifying and transportation were conducted. [Result] Sterile butterfly orchid bud seedling was obtained, after 8 generation propagation, strong seedling culture, rooting culture, exercising seedling, flask culture were conducted. At last, outplanting was carried out according to three grade of large, medium and small. The tissue culture seedlings were packaged, identified and transported, a complete rapid propagation production system for P. amabilis was formed. [Conclusion] The rapid propagation production system of P. amabilis tissue culture plantlet was established, which will provide basis for further development and utilization of P. amabilis.Key words Phalaenopsis amabilis; Tissue culture; Rapid propagation; Explant基金项目安徽省盆栽花卉工程技术研究中心(201206G01005)。
作者简介束冰(1982- ),男,安徽六安人,实习研究员,硕士,从事园艺作物育种及栽培研究。
*通讯作者,副研究员,从事园艺作物育种及栽培研究。
收稿日期 2014 06 05蝴蝶兰 (Phalaenopsis amabilis) 为兰科蝴蝶兰属,原产于泰国、缅甸、菲律宾、马来西亚、印度尼西亚,及中国台湾亚热带雨林地区,为附生性兰花。
其株型美观、色彩艳丽、花期持久,蝴蝶兰植株从叶腋中抽出长的花梗,并且开出形如蝴蝶飞舞般的花朵,深受爱花者的青睐,素有“洋兰王后”之称,是兰科植物中栽培最广泛、最普及的种类之一。
但由于蝴蝶兰是单茎性气生兰,很难进行分株繁殖,常规情况下种子发育不完全,极难萌发,因此世界上多采用组织培养来繁殖种苗。
台湾及东南亚一些国家利用组织培养技术对蝴蝶兰进行了工厂化生产,并出口欧美获得了较大的经济效益 [1] 。
近年来随着我国经济快速发展,生产和科学技术的进步、精神文明程度的提高、生活质量不断改善,人们对花卉消费需求逐年增加,而多样化、高档次、优质化的花卉品种则给消费者提供了较大选择余地,满足了不同消费者的需要。
笔者以蝴蝶兰的花梗作外植体进行蝴蝶兰的组培快繁,以期为我国蝴蝶兰的组培苗快繁生产者提供参考。
1 材料选择1.1 外植体选择蝴蝶兰组培快繁中以花梗做外植体,在与胚培养相同的基本培养基上进行离体培养,花梗在MS培养基上的效果最好 [2] 。
所选花梗需健壮生长旺盛开花或开花后带腋芽,通常带3~6 朵花;花梗花朵无畸形、无病虫害、无严重机械损伤、严重脱水等现象;花型花色完全符合本品种特性,花色均一、花朵排序整齐。
花梗在采切前需适当控水控肥和增强光照。
采集时用利刀从基部切下,将花梗切成3~5 cm长的小段,每段外植体要带1~2个腋芽 [3] 。
1.2 外植体建档对采集好用于作外植体的花梗首先进行生产编号、病毒检测等,建立建全接种外植体的档案,如品种正式登录名(别名)、父母本登录名、品种来源、照片资料,育种者全名、植株规格、植株生长状况、株型、花色(排序、花朵大小、朵间距、花型描述、花色描述、花梗高度、花梗数量、叶幅大小、养护难易及注意要点、催花难易及注意要点)、组培各阶段表现(诱导、增殖1-N代表现、壮苗生根、定植)。
1.3 外植体消毒将采集的花梗保湿迅速带回实验室,切成1~2 cm长的单芽茎段,用肥皂水洗2遍。
在超净工作台上将洗好的单芽茎段放在消毒的广口瓶内,加入2倍花梗体积的5%双氧水进行表面消毒,消毒时间为20 min左右,然后用无菌水冲洗2~3 遍后,用无菌滤纸吸干材料表面水分,然后用枪形镊剥除苞叶。
剥掉苞叶的花梗再放入一个无菌广口瓶中,加入花梗2倍体积的0.1%升汞进行消毒,消毒过程中不断摇晃瓶子,使消毒液充分接触花梗,消毒时间为10 min左右。
然后再用无菌水冲洗3~4 次,以彻底冲洗掉外植体上残留的消毒液。
最后将消完毒的花梗放在无菌滤纸上吸干多余的水分,备用。
2 培养基2.1 初代培养基配制 MS +3~5 mg/L 6 BA +0.3~0.5 mg/L NAA + 20 g/L 蔗糖+ 7~8 g/L 琼脂,pH为5.2~5.8。
2.2 继代培养基 MS +3~5 mg/L 6 BA +0.3~0.5 mg/L NAA + 20 g/L 蔗糖+ 7~8 g/L 琼脂,pH为5.2~5.8。
6 BA少数品种需继续加大浓度。
2.3 壮苗培养基 MS +20 g/L 蔗糖 + 7~8 g/L 琼脂 +1 g/L 活性炭,pH为5.2~5.8。
2.4 生根培养基MS + 0.2 mg/L IBA +0.1~0.2 mg/L NAA +15 g/L蔗糖 + 7~8 g/L 琼脂+1 g/L 活性炭,pH 为5.2~5.8。
3 培养基灭菌将配好的培养基趁热分装于100 ml组培瓶中,每瓶约30 ml。
待培养基冷却凝固后,盖上组培盖,或盖上封口膜并用棉线扎牢,然后在高压灭菌锅中121 ℃下灭菌20 min。
取出组培瓶放在台子上,冷却后备用。
接种操作所需的一切用具如长镊子、解剖刀、剪刀及灭菌水等需同时灭菌。
4 外植体的接种与转代4.1 外植体的接种在超净工作台上,用手术刀在芽上端0.5 cm处平切,芽下端1.0 cm处斜切以使芽体与培养基充分接触,然后接入初代培养的培养基中,接种时需注意芽的方向。
初代培养时每瓶不宜接种太多,以防污染造成巨大损失,通常每瓶宜接种2~3 个外植体。
接种后,在瓶子的下角用记号笔标记接种材料、培养基、操作人员的编号以及接种时间等信息。
4.2 初代培养条件培养温度为(22±2)℃。
所使用的温度计都必须经过校正,每个温度计上都要标明校正值及温度范围。
培养前期7~10 d需暗培养,待有芽萌发后转入光下培养,光照强度为1 000 lx,光照时间8~10 h/d。
4.3 转代4.3.1 继代培养。
以初代培养的无菌芽苗上的幼叶或茎尖、腋芽长到2.0~3.0 cm,营养芽的2个叶片开始展开时,即可进行增殖培养。
增殖培养接种的密度不宜过大或过小,密度过大,芽苗扩增的空间和营养受限,继代时间短,密度过小,使生产成本增加。
对于500 ml的培养甁,一般每瓶以接种30个左右的芽为宜。
每次接种完后需在瓶子下方标记好接种材料编号、继代次数、操作人员编号以及接种日期等信息。
增殖培养一般进行8代继代培养。
4.3.1.1 继代培养条件。
培养温度为(25±2)℃,光照强度 1 500 lx,光照时间10 ~12 h/d。
4.3.1.2 壮苗培养。
切去芽丛基部褐化组织以及老叶和黄化叶,剔除变异苗包括玻璃花苗﹑莲座体﹑双叶脉﹑叶片畸形等,将1.0 cm以上的芽苗分成单株进行壮苗培养。
4.3.1.3 壮苗培养条件。
培养温度(25±2)℃,光照强度 1 500 lx,光照时间12~14h/d。
4.3.2 生根。
4.3.2.1 生根培养。
进一步剔除变异苗包括玻璃花苗﹑莲座体﹑双叶脉﹑叶片畸形等以及细弱苗。
筛选生长健壮、长势一致的无根苗进行生根培养。
用于生根培养的芽苗一般茎段长度为1.5 cm左右,叶长2.5 cm左右。
具体方法为:去除褐化组织及老化、黄化的叶片,以及褐化组织,叶基部如有与茎段脱离的苞叶,则将该苞叶去除干净。
操作过程中严禁伤到需保留的叶片。
4.3.2.2 生根培养条件。
培养温度为(25±2)℃,光照强度1 500 lx,光照时间8 h/d。
5 组培苗分级根据叶片颜色深绿、浅绿、叶片张开幅度等,结合苗高,生产中可将蝴蝶兰组培种苗分为小苗、中苗、大苗和等外级即不合格苗,通常小苗苗高2.5~3.0 cm,中苗苗高3~4 cm,大苗苗高4 cm以上,2.5 cm以下的为等外级苗。