实验一 植物切片的制作

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中学植物种子类切片标本制作步骤

中学植物种子类切片标本制作步骤

中学植物种子类切片标本制作步骤
制作高中植物种子类切片标本是一种实践技术,它能给我们提供精准的人工分类,可以用来研究生物进化和保护生物资源的有效途径,本文为大家介绍具体的实现步骤。

首先,用清水将植物种子洗净,再将洗净的种子放入去枝粉水中孵化1-2小时,其中用的去枝粉水的比例为水:去枝粉的比例应为1:.75。

然后,取出孵化至去
枝粉水中的种子,用70%的酒精冲洗2次,接着用2%碘化钠水进行漂洗,再用70%
酒精在25度温度下浸泡10分钟除去种子表皮,最后取出在三立硝基安息干净身上多余的水分,然后按照一定面积将种子放入显影盒中,这样便可做成切片标本供日后使用。

经过上述步骤,就可以制作出高中植物种子类的切片标本供后续的研究。

要注
意的是,在准备到去枝粉水时,要量身定做,其中用的去枝粉水的比例为水:去枝粉的比例应为1:.75。

另外,在浸泡的时间要控制,一般不超过10分钟。

最后,高中植物种子类切片标本的制作过程也是适用于中学生活动、研究植物
多样性和实验教学等活动的,根据此步骤,我们可以将研究对象事先进行精确分类,节省大量的检索时间,实现高效的教学进度,从而更好地实现我们的教学目标。

植物切片图实验报告内容

植物切片图实验报告内容

植物切片图实验报告内容引言植物切片图是植物解剖学研究中常用的技术手段之一,通过对植物的组织结构进行切片、染色和观察,可以了解植物不同部位的细胞和组织的形态特征、结构组成以及功能等方面的信息。

本实验旨在通过对一种植物的切片制备、染色和观察,掌握植物切片图的制备和解读方法。

材料与方法材料1. 鲜嫩的植物组织(例如青菜、茄子等)2. 苏木精3. 95%乙醇4. 伊红(或其他染色剂)5. 水6. 显微镜7. 切片刀8. 干燥培养皿9. 轻柔镊子10. 毛细管方法1. 取一片新鲜的植物组织,使用切片刀将其切成薄片。

2. 将切片放入干燥培养皿中,用毛细管吸取适量的苏木精液覆盖切片,浸泡10分钟。

3. 将切片捞出,放入另一个干燥培养皿中,用毛细管滴加少量95%乙醇漂洗,漂洗时间为2-3分钟,使苏木精被乙醇溶解出来。

4. 用毛细管滴加适量的伊红液覆盖切片,浸泡5-10分钟,使切片染色。

5. 将切片捞出,用毛细管滴加水漂洗,漂洗时间约为1分钟。

6. 将切片用毛细管转移到显微镜玻片上,轻轻压平并吸走多余的水。

7. 将显微镜玻片放入显微镜平台上,使用显微镜观察切片,调节放大倍率和焦距,观察并记录切片中的细胞和组织结构。

结果与分析经过染色和观察,我们成功制备了一张植物切片图,以青菜叶片为例,我们观察到了以下几个主要部分:1. 表皮细胞:位于叶片表面的一层细胞,通常为长方形或多角形,覆盖在叶片的外表面,起到保护作用。

2. 导管组织:植物体内的维管束组成,由导管细胞和同伴细胞组成,用于水分和养分的运输。

3. 叶肉细胞:叶片内部组织,通常为长方形或多角形,负责光合作用和储存养分。

4. 维管束:包括导管组织和伴随细胞,负责水分和养分的输送,使得叶片能够正常生长和供养整个植物。

5. 叶脉:位于叶片中央的部分,主要由维管束组成,可分为主脉和次脉,起到支持和运输的功能。

通过观察植物切片图,我们可以了解到不同组织的形态特征和结构组成,从而推测其功能和作用。

一款制作植物组织永久切片的简单工序

一款制作植物组织永久切片的简单工序

一款制作植物组织永久切片的简单工序制作植物组织永久切片的简单工序___________________________________________植物的永久切片是由植物学家和生物学家制作的一种技术,可以用来观察植物细胞的结构和形态,从而获得有关植物生长、发育、适应性等的重要信息。

制作植物永久切片的工序简单易行,但需要一定的技术。

下面介绍了制作植物组织永久切片的简单工序:### 一、准备材料要制作植物组织永久切片,需要准备如下材料:1. 植物样本:通常是取自健康的植物,尽量避免使用伤口或染色体变异的植物;2. 水和盐水:用于浸泡样本;3. 一把实验剪刀:用来剪取植物样本;4. 盐酸:用于脱落去除样本表面的死细胞和细胞外物质;5. 水溶性胶:用于将样本固定在显微镜片上;6. 水溶性染料:用于染色切片;7. 显微镜片:用于观察切片;8. 盐水:用于保存切片。

### 二、准备样本1. 将样本浸泡在水中或盐水中10-15分钟,以便其表皮和内部的细胞均匀地膨胀;2. 使用剪刀剪取样本的一小部分,然后放入盐酸中浸泡5-10分钟,以去除表皮死细胞和外部物质;3. 用凉水冲洗样本,直至表皮无法剥离。

### 三、固定样本并制作切片1. 将样本放入水溶性胶中浸泡10-15分钟,以将样本固定在显微镜片上;2. 使用一把实验剪刀将样本剪成3-4微米厚的切片;3. 将制作出的切片放入盐水中浸泡5-10分钟,以保证细胞不被剪断。

### 四、染色并观察切片1. 将样本切片浸泡在水溶性染料中10-15分钟,以使其形成彩色染色效果;2. 将彩色的样本切片放入显微镜下观察,以获得关于植物生长、发育、适应性等信息。

### 五、保存切片1. 将彩色的样本切片取出后用凉水冲洗干净;2. 将冲洗后的样本切片放入盐水中保存。

通过以上步骤就可以完成一份优秀的植物永久切片。

在制作过程中要尽量避免使用伤口或变异的样本,以便得到真实而准确的信息。

徒手制作叶片横切的临时切片

徒手制作叶片横切的临时切片

徒手制作叶片横切的临时切片步骤一:准备工作1.需要的材料包括:新鲜的叶片、刀片、毛细管、显微镜片、盖玻片、甘油或蒸馏水、显微镜。

2.将所有实验器材清洗干净,尤其是显微镜片和盖玻片,以确保无尘和污染。

步骤二:取样1.选择一个新鲜、健康的叶片,尽可能避免受伤或变色的叶片。

2.使用剪刀或手指轻轻取下一片叶片。

小心不要太用力,以免造成叶片组织损伤。

步骤三:固定样品1.将取下的叶片放入甘油或蒸馏水中,以保持叶片的湿润并避免组织干燥或变形。

2.如果使用甘油,将叶片放入甘油中浸泡2-3分钟,以提高透明度。

如果使用蒸馏水,则直接将叶片放入蒸馏水中。

步骤四:切片1.将刀片用火烤热,然后用镊子夹住刀片,用酒精擦拭刀片,以确保刀片的清洁和无菌。

2.将叶片取出,用镊子夹住叶片的边缘,将叶片在刀片上水平切割约1-2毫米的厚度。

要保持手稳定,尽量用均匀的力度进行切割。

3.将切下的叶片放入显微镜片上,轻轻按压叶片,使其展平并在显微镜片上固定。

步骤五:加盖玻片1.用镊子夹住盖玻片,将玻片垂直放在显微镜片上,轻轻地从一侧放下,以避免形成气泡和切片变形。

2.缓慢而均匀地按压盖玻片,使其与显微镜片上的切片充分接触,同时确保没有空气被困在切片下。

步骤六:观察和分析1.将装有切片的显微镜片放到显微镜的载物台上。

2.将显微镜调整到适当的倍数,并使用聚焦轮来调整切片的清晰度。

3.通过目镜观察并记录切片中的形态、结构和细胞组织特征。

最后,完成实验后,要小心处理显微镜片和盖玻片,清洗并保存好实验器材,以便下次使用。

总结:徒手制作叶片横切的临时切片是一种简便快速的实验技术,既可以用于学术研究,也可以用于教学实验。

通过这种方法,可以观察到叶片的细胞结构、细胞器和组织特征,有助于对植物的生理功能和结构的理解。

但需要注意的是,这种制作方法适用于较为便捷和简单的实验,对于一些复杂和特殊的研究,可能需要更加专业的切片设备和技术。

中学草药植物皮类切片标本制作方法

中学草药植物皮类切片标本制作方法

中学草药植物皮类切片标本制作方法中草药植物的制作切片标本是一种制作学习素材的重要方式,也能把学习的内容深入掌握,提高学习效果。

在制作药用植物切片标本时,除了要注意克制药力,安全性等,还要学习掌握正确的制作方法,以保证标本制作的完整性、质量和准确性。

那么,中学草药植物皮类切片标本制作方法是怎样的呢?一、准备工作1、从草药师对草药植物皮类进行采集,或者从市场购买原料,将原料放入玻璃容器中,放在明火中进行蒸煮浸泡,时间为30-60分钟。

2、将药材洗净,将洗净的药材在水中分割,将要进行切片的部位放入盆中,用清水浸泡,保持其干燥。

3、准备切片设备,比如麻醉剂、刀片、切片水、拍片泡沫盒、拍片片架、明胶膜及其他配件等。

二、制作步骤1、将调配好的药剂倒入一个带塞子的小瓶,将要切片的带皮植物放入小瓶中,把塞子放回瓶口,然后把小瓶放入蒸锅中,蒸锅中加入足量的水,把蒸锅放入火上,用中大火蒸煮30分钟左右。

2、完成蒸煮,用筷子取出,放在玻璃板上,取一条刃好的小刀片,用小刀片将植物切片,切片厚度要均匀,可以适当调整切片厚度,以保证标本制作的一致性。

3、将切好的末片放入切片水中浸泡,在浸泡过程中,可以采取一定措施,比如添加某种抗菌剂,以防止片子腐烂、发霉。

4、取出浸泡完毕的切片,用水洗净,用擦拭布挤干水分,将切片放入拍片泡沫盒,放入拍片片架,调整切片间的距离,防止切片之间的粘结,最后将拍片片架放入拍片机中,拍摄拍片,切片标本完成。

三、注意事项1、药材的准确性要认真把握,要用合适的药剂尽可能的把整个标本的皮类保留下来。

2、切片厚度要均匀,以保证标本美观性更好,不容易腐烂。

3、拍片过程中,要注意拍片时间,切片之间的距离及片子拍完后的环保等,以确保拍片的质量。

4、在拍片完成后,要注意标本及片子的存放,以保持标本整性、质量和准确性。

以上就是中学草药植物皮类切片标本制作方法的详细介绍,只要把握好上述具体制作步骤,便可以轻松完成切片标本的制作,掌握学习的全部内容,让学习效率更加高效。

一款制作植物组织永久切片的简单工序

一款制作植物组织永久切片的简单工序

一款制作植物组织永久切片的简单工序
植物组织永久切片,是一种实验室常用的技术,它能够精确地显示出细胞结构和组织关系,为进一步的生物学研究提供重要的实物参考。

本文将介绍一种简易的制作植物组织永久切片的工序。

1. 收集静态干燥的植物组织样品,若有生长的植物组织,可使用锋利的剪刀将其剪成稍细的片段,然后将其放入焦磷酸盐纸中,处理到它们在纸中能够保持它们的原形;
2. 将其从焦磷酸盐纸中取出,放入70%甲醇中浸泡5分钟,然后将甲醇沥干;
3. 将该块片段放入离心瓶中,倒入脱水甲醇,再加入2-3滴甲醇衍生物,然后像正常甲醇操作一样在37℃处理一小时;
4. 将片段放入脱模剂中浸泡5分钟,然后抽出片段,放入彻底的脱水甲醇中,处理2-3分钟;
5. 用混合85%醇,5%玻璃胶和10%蓝指甲油的溶液将片段放入,加热至60-65℃,处理五分钟;
6. 将处理过的植物片段放入原位置,放入含石蜡的贴片切片机中,切片,厚度约为4-5微米;
7. 将切好的片段放入石蜡胶片中,再放入至少5%氢氧化钾溶液中浸泡;
8. 胶片冷却到室温后,用正常的洗涤法洗涤,再用100%乙醇洗涤;
9. 用染料渗透染色,准备放大装配的抛光膜,细腻制作,就可以得到完美的植物组织永久切片了。

本方法均为视个体样品的不同而定,步骤或配方可调整。

作出完美切片不仅需要操作工具与药剂的加减,还需要有足够的经验和技能,只有经过细致的操作,才能将植物组织永久切片做得完美。

植物包埋切片实验报告

植物包埋切片实验报告

一、实验目的1. 学习植物包埋切片的基本原理和方法。

2. 掌握植物组织切片的制作过程,包括固定、脱水、透明、包埋、切片和染色等步骤。

3. 通过观察植物切片,了解植物组织的结构特征。

二、实验原理植物包埋切片是一种常用的植物组织学技术,通过将植物组织固定、脱水、透明、包埋、切片和染色等步骤,将植物组织制成切片,以便于在显微镜下观察其结构特征。

三、实验材料与仪器材料:1. 新鲜植物材料(如叶片、茎、根等)2. 70%酒精、95%酒精、无水酒精、氯仿、丙酮3. 甲醛溶液、苯酚品红染液、苏木精染液4. 硅胶、石蜡、切片刀、载玻片、盖玻片、显微镜仪器:1. 显微镜2. 烘箱3. 恒温箱4. 蒸馏水5. 滤纸四、实验步骤1. 固定:将新鲜植物材料剪成小块,放入装有甲醛溶液的瓶中浸泡24小时。

2. 脱水:将固定后的植物材料依次放入70%酒精、95%酒精、无水酒精中浸泡,每次浸泡时间为30分钟。

3. 透明:将植物材料放入氯仿中浸泡,使其透明。

4. 包埋:将透明的植物材料放入熔化的石蜡中,使其包埋。

5. 切片:将包埋好的植物材料切成薄片,厚度约为5-10微米。

6. 染色:将切片放入苏木精染液中染色5分钟,然后用蒸馏水冲洗,最后放入苯酚品红染液中染色1分钟。

7. 封片:将染色的切片用中性树胶封片。

五、实验结果与分析1. 观察切片:在显微镜下观察切片,可以看到植物组织的细胞壁、细胞核、叶绿体等结构。

2. 结果分析:通过观察切片,可以了解到植物组织的结构特征,如细胞的大小、形状、排列方式等。

六、实验讨论1. 在实验过程中,脱水、透明和包埋等步骤对切片的质量有很大影响,需要严格控制时间。

2. 染色是观察切片的关键步骤,不同的染色剂对不同的组织结构有较好的染色效果。

3. 切片的厚度对观察结果也有一定影响,过厚或过薄都会影响观察效果。

七、实验总结通过本次实验,我们掌握了植物包埋切片的基本原理和方法,学会了如何制作植物切片,并观察到了植物组织的结构特征。

中学草药植物叶类切片标本制作方法

中学草药植物叶类切片标本制作方法

中学草药植物叶类切片标本制作方法
的技术要点
1、准备材料:一般采用草药植物叶标本,如木棉、芦荟、马钱子、菊花、茶叶、山药、桑叶、蒲公英等;
2、叶片制作:取叶片,将叶片放入清水中浸泡1-2分钟,然后用纸巾把水擦干,将叶片放入2%乙醚(乙醇)悬浮液中浸泡5-10分钟,再放入硝酸铵10%悬浮液中浸泡10-15分钟;
3、叶片预处理:将叶片放入70%酒精中浸泡1-2分钟,用纸巾把多余的酒精擦干,然后将叶片放入溶解的凝胶中浸泡10-15分钟;
4、叶片切片:将预处理好的叶片放入放射状切片机,经过一定的调整,将叶片均匀地切成不同厚度的薄片;
5、水洗切片:将切好的叶片薄片放入清水中浸泡1-2分钟,然后用纸巾把水擦干;
6、干燥切片:将叶片薄片放入55℃烘干箱中烘干,直至重量不变,或者将叶片薄片放入溶解的凝胶中浸泡1-2分钟,然后用纸巾把多余的凝胶擦干;
7、染色切片:将干燥的叶片薄片放入染色液中浸泡2-3分钟,然后用纸巾把多余的染色液擦干;
8、收藏:将染色好的叶片薄片放入收藏盒中,收藏完成。

安徽高等院校植物细胞及组织切片标本制作步骤

安徽高等院校植物细胞及组织切片标本制作步骤

安徽高等院校植物细胞及组织切片标本制作步骤制作植物细胞和组织切片是植物学和生物学研究中常用的实验方法之一、下面是一般的植物细胞和组织切片制作步骤。

1.实验材料准备-植物标本:选择具有代表性的植物标本,新鲜度较高的嫩叶、茎和根部适合制作细胞和组织切片。

-植物细胞和组织固定剂:常用的固定剂有乙醇、乙酸、福尔马林等。

选择适当浓度的固定剂根据样本的特性来确定。

-切片工具:显微刀片、玻璃切片、切片夹和切片盒等。

-切片染色剂:苏木素、伊红等。

2.样本处理-选择适当大小的植物标本,将其放置在固定剂中固定一段时间,常规处理时间为1-24小时,具体时间根据固定剂浓度和标本的特性来确定。

较硬的组织可选择用150-200mL的固定液浸泡2-12小时,较脆弱的组织可缩短固定时间。

-固定后,将样本从固定剂中取出,用纸巾轻轻擦干外表水分。

3.组织松解-对于较厚的植物组织,需要进行松解以使细胞方便切片观察。

通常,可用腐解溶液进行松解。

常用的腐解溶液有酶解液、盐酸和氯化铁等。

将样本浸泡在腐解溶液中,温度和处理时间根据样本的特性而定,通常需要温和的温度(如37°C)并持续一段时间(如30分钟-4小时),直到细胞组织松解。

4.切片制备-用镊子将处理好的样本取出,用切片钳将样本固定在切片夹上。

夹住样本的位置要仔细选择,以尽量保留较好的细胞和组织结构。

-使用显微刀片沿着横切面或纵切面将样本切割成较薄的切片。

刀片的角度和力度要适中,避免切片过厚或者过薄。

厚度通常为10-20微米。

-将切好的样本放在预先准备好的玻璃切片上。

用切片钳将切片夹住,并用切片盒盖上,防止灰尘和水分进入。

5.切片染色-拿起玻璃切片,将其放在染色剂(如苏木素溶液)中浸泡。

染色时间根据样本和染色剂而定,通常需要15-30分钟。

-取出染色剂,用去离子水或蒸馏水冲洗切片,直到水洗液透明。

-将切片用纸巾轻轻吸干水分,然后放在显微镜玻片上。

6.保存和观察-将切片放在带盖玻片上,用透明胶带黏贴边缘以防止切片移动。

植物组织(枝条、叶片、木材)切片处理和图像分析-YYM - 修改1

植物组织(枝条、叶片、木材)切片处理和图像分析-YYM - 修改1

植物组织切片实验步骤一、野外采样枝条采样:选取冠层阳生枝条,一般长度约50cm,直径约1-2cm。

用高枝剪采集,做好采样记录和样品标记,装入黑色塑料袋内,带回实验室。

叶片采样:选取健康叶片进行采样。

根据试验需要,一般采集冠层阳生叶片。

做好采样记录和编号后,装入黑色塑料袋或自封袋,带回实验室。

二、植物叶片生理性状测定:叶片面积(Aleaf)测定:对于野外采回来的叶片,在叶面积仪(LI-3000A,LI-COR,Nebraska)上测定叶面积;叶片干重(Wleaf):将干净,新鲜的叶片,放在70°C的烘箱中48小时,然后用电子天平测量叶片干重;比叶面积SLA(比叶重 LMA):SLA=LA(叶面积)/DW(叶片干重);叶片饱和重(Wleaf_saturated):将叶片放在纯净水中,浸泡24h,从水中取出后,擦干叶片表面水分后立刻测定其饱和重;叶片相对含水量(SWCleaf):=(叶片鲜重-叶片干重)/(叶片饱和重-叶片干重);叶片元素含量测定(Lean Nutrients):全碳、全氮:碳氮分析仪测定;全磷、全钾:HNO3-HClO4消解,HCl溶解,ICP-AES测定(LY/T 1270-1999);叶片稳定性碳同位素(δ13C):样品经研磨后过100目筛,准确称量4.000- 5.000mg样品用锡舟包裹放入EA自动进样盘,进行高温燃烧裂解生成CO2,生成的气体经二氧化碳吸附柱最终分离,并由载气He带入离子源离子化后进行检测,设置580秒时通入CO2气体(>99.999%)作为参考气体,持续30秒,通过参考气体与样品气体的检测对比,最终得到13C/12C 的比值。

反应温度:920℃和600℃;叶片长期内禀水分利用效率(iWUE)计算:叶片δ13C值是负的并且与细胞间与环境的时间比呈线性关系,与叶片内的长期水分利用效率(iWUE)正相关。

三、枝条生理性状测定:木材体积(Vwood):用排水法测量木材体积;木材干重(Wdry):将干净的剥皮的木材放在烘箱中70°C72h,称取其重量;木材鲜重(Wwet):将采集回来的材料,在电子天平上称量其鲜重;木材饱和重(Wsaturated):将剥皮的干净的木材放在纯净水中浸泡48h,后用纸将表面的水擦干净后在电子天平中称量饱和重;木材相对含水量(SWCwood):=木材饱和重-木材鲜重/木材饱和重-木材干重木材密度(Wood density):=木材干重/木材体积皮厚度:用游标卡尺测量皮的厚度;髓芯大小(面积):用游标卡尺测量髓芯的直径并计算其髓芯面积植物叶片解剖特征的测定:1.叶片组织石蜡切片制作(见附件一);2.叶片组织厚度测定(附件二):叶片厚度,栅栏组织,海绵组织,上下表皮,角质层3.叶片气孔特征:叶片气孔制片(印迹法-指甲油,徒手切片法);气孔密度,气孔保卫细胞大小,气孔指数(气孔数量与表皮细胞个数的比值);4.叶脉密度测定:透明叶制作方法;徒手切片法;叶脉密度计算。

辽宁中学草药植物全草类切片标本制作方法

辽宁中学草药植物全草类切片标本制作方法

辽宁中学草药植物全草类切片标本制作方法
辽宁中学草药植物全草类切片标本制作方法
工具、材料:剪刀、切片仪、点斑麻醉液(多拉西酚美安酯)、甲醛、85%酒精、12%甲醛溶液、冰箱、冰水瓶、塑料袋、抗衡磁玻璃板、水、卡片、胶带
一、将植物放入冰箱冰冻,冰冻时间约为24小时;
二、将冰冻的植物放入冰水瓶中,加入点斑麻醉液,使植物昏睡;
三、将植物取出,使用剪刀剪去植物的叶片,留下叶茎和根部;
四、将叶茎放入85%酒精、12%甲醛溶液中浸泡30分钟,以防止菌落;
五、将叶茎及根部放入冰水瓶中,用塑料袋将叶茎捆扎;
六、将捆扎的叶茎放入切片仪,小心操作,以防叶茎损坏;
七、可根据需要,叠加胶带或使用抗衡磁玻璃板固定植物;
八、调节切片仪,将植物叶茎切片;
九、将切片置于混有水和甲醛的放入冰箱冷冻保存;
十、按照一定宽度,将冷冻的叶片切片,置于卡片上,完成制作。

植物切片实验报告

植物切片实验报告

一、实验目的1. 掌握植物切片的制作技术,了解植物组织结构。

2. 通过显微镜观察植物组织的细胞结构,学习植物细胞的基本形态和特征。

3. 熟悉植物组织的分类和功能,加深对植物生理学知识的理解。

二、实验原理植物切片实验是通过将植物组织切成薄片,在显微镜下观察其细胞结构,从而了解植物组织的形态、结构和功能。

实验过程中,需使用切片机将植物组织切成薄片,然后通过染色、封片等步骤,使细胞结构清晰可见。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:植物叶片、茎、根等新鲜或干燥的组织。

2. 实验仪器:切片机、显微镜、染色液、封片剂、载玻片、盖玻片等。

四、实验步骤1. 切片制作a. 将植物组织洗净,切成适宜大小的块状。

b. 将组织块放入切片机中,调整切片厚度(一般为10-20微米)。

c. 将切片取出,用毛刷轻轻扫入盛有清水的培养皿中。

2. 染色a. 将切片用吸水纸吸干水分。

b. 将切片放入染色液中,根据不同组织选择合适的染色液(如苏木精-伊红染色液)。

c. 染色时间根据组织类型和染色液浓度进行调整,一般为5-15分钟。

3. 封片a. 将染色后的切片用吸水纸吸干水分。

b. 将切片放置在载玻片上,用封片剂覆盖,使其与载玻片牢固粘合。

4. 显微镜观察a. 将封片后的载玻片放置在显微镜载物台上,调整焦距,观察植物组织的细胞结构。

b. 观察不同植物组织的细胞结构,如叶片的表皮、叶肉、叶脉;茎的韧皮部、木质部;根的皮层、维管束等。

五、实验结果与分析1. 叶片切片a. 表皮细胞:多为长方形,排列紧密,细胞壁较厚,具有气孔器。

b. 叶肉细胞:分为栅栏组织和海绵组织,栅栏组织细胞排列紧密,海绵组织细胞排列疏松。

c. 叶脉:由维管束构成,包括木质部和韧皮部。

2. 茎切片a. 韧皮部:细胞排列紧密,细胞壁较厚,具有韧性和保护作用。

b. 木质部:细胞排列紧密,细胞壁较厚,具有输送水分和养分的功能。

3. 根切片a. 皮层:细胞排列疏松,具有吸收水分和养分的功能。

植物病理临时切片制作流程

植物病理临时切片制作流程

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油菜花切片实验报告

油菜花切片实验报告

一、实验目的1. 通过切片实验,了解油菜花的解剖结构。

2. 掌握植物切片技术和显微镜观察方法。

3. 分析油菜花的组织结构,为后续研究提供基础资料。

二、实验原理油菜花作为我国重要的油料作物,其花部结构对于了解植物生殖器官的发育具有重要意义。

通过切片实验,可以观察油菜花的内部组织结构,了解其生长发育规律。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:新鲜油菜花、蒸馏水、酒精、盐酸、石蜡、切片机、显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、剪刀、滴管等。

2. 实验试剂:酒精、盐酸、石蜡、苏丹Ⅲ染液等。

四、实验步骤1. 准备材料:将新鲜油菜花洗净,用剪刀剪去花柄,放入装有蒸馏水的烧杯中浸泡30分钟。

2. 固定:将浸泡好的油菜花取出,用镊子夹住花药,放入装有酒精的烧杯中浸泡30分钟。

3. 切片:将固定好的油菜花取出,用剪刀剪去花柄,将花药放入装有酒精的烧杯中,用切片机将花药切成薄片。

4. 染色:将切好的薄片放入装有苏丹Ⅲ染液的烧杯中,染色5分钟。

5. 洗片:将染色的薄片取出,用蒸馏水冲洗干净。

6. 复习:将洗好的薄片放入装有石蜡的烧杯中,加热熔化,用镊子将薄片夹入石蜡中。

7. 制片:将石蜡中的薄片取出,用剪刀剪成合适大小,放入载玻片上,用盖玻片覆盖。

8. 观察:将制片放入显微镜下观察,记录油菜花的组织结构。

五、实验结果与分析1. 油菜花的花药切片观察到:花药壁由外层表皮、中层和中层纤维、内层表皮和花粉囊组成。

花粉囊内含有大量的花粉粒。

2. 油菜花的雌蕊切片观察到:柱头、花柱和子房。

柱头表面有毛,有利于接受花粉;花柱连接柱头和子房,有利于花粉的传输;子房内含有胚珠,是油菜花的生殖器官。

3. 油菜花的雄蕊切片观察到:花丝、花药和花药柄。

花丝连接花药,负责输送花粉;花药内含有花粉粒,是油菜花的生殖器官。

4. 通过实验观察,发现油菜花的组织结构较为复杂,各部分功能明确,为油菜花的生长发育和繁殖提供了物质基础。

六、实验结论通过本次实验,我们成功掌握了油菜花切片技术,观察到了油菜花的组织结构,了解了其生长发育规律。

安徽高等院校植物细胞及组织切片标本制作步骤

安徽高等院校植物细胞及组织切片标本制作步骤

安徽高等院校植物细胞及组织切片标本制作
步骤
安徽高等院校植物细胞及组织切片标本制作步骤如下:
1. 材料准备:准备需要制作切片的植物样品,可以是根、茎、叶等组织,将其放入无菌蒸馏水中洗净,并使用无菌器具将样品切成适当大小的块状。

2. 固定样品:将植物样品放入固定液中,常用的固定液有缓冲福尔马林液、乙酸铅等。

固定液的选择应根据实验目的和样品的性质来确定。

固定时间根据样品的厚度和性质有所不同,一般为数小时至数天。

3. 组织脱水:将固定的样品从固定液中取出,用一系列的醇溶液逐步脱水,例如50%、70%、85%、95%和100%的乙醇浓度。

每个浓度的乙醇浸泡时间一般为几分钟至数小时,直到样品完全脱水。

4. 渗透剂处理:将脱水后的样品放入透明剂中,常用的透明剂有二甲苯、苯酚等。

透明剂的选择也要考虑样品的性质,渗透剂的浸泡时间一般为数小时至数天。

5. 浸渍和切片:将样品从透明剂中取出,放入浸蜡剂中,浸泡时间一般为数小时至数天,直到样品浸渍均匀。

然后,将浸渍后的样品放入专门的石蜡模具中,倒入石蜡进行固化,待石蜡固化后,用切片机将石蜡块切成薄片。

6. 制片染色:将切得的薄片放入脱脂苯中进行溶剂脱蜡,然后使用一系列的醇浓度逐步脱水。

最后,将薄片放入适当的染色剂中,如苏木精和伊红染剂进行染色。

7. 封片:将染色后的薄片放在载玻片上,涂上适当的封片剂,然后将另一片玻片压在上面,使其充分粘合。

8. 标本保存:将制作好的植物细胞及组织切片标本放入干燥、通风、阴凉的地方,避免阳光直射,可长时间保存。

这些步骤仅为大致参考,实际操作应根据具体情况和实验要求进行调整。

植物切片制作

植物切片制作

植物组织制片技术是随着显微镜的出现而发展起来的技术,是人们认识植物体结构的有效手段,已成为植物生物学的重要组成部分.植物制片技术已建立了许多方法,现简要介绍如下几种最常见的制片技术:徒手切片法、滑走切片法、离析法、压片法、石蜡制片法和冰冻切片法。

徒手切片法徒手切片法是指手拿刀片把植物新鲜材料切成薄片,所作的切片通常不经染色或经简单染色后,制成临时的水装片用于观察,亦可以通过脱水与染色制成永久制片。

优点:简单、方便,不需要复杂的设备,不经过化学药物的处理,基本上保留了植物活体的状态。

用品与材料显微镜、载(盖)玻片、刀片、毛笔、培养皿、吸水滤纸、滴管、ddH2O或清水、1%番红水溶液、菜叶、胡萝卜、马铃薯实验材料对于软硬适中,便于手持的材料,可将实验材料截成适当小块,一般以长2~3cm,切片断面不超过3~5mm2为宜。

对于过于柔嫩的器官(如叶片等),一般可选用胡萝卜根、土豆块茎等作为支撑物,包被住材料后再进行切片。

有时也可将叶片卷成圆筒后再进行切片. 实验步骤1、在小培养皿中放入ddH2O或清水。

2、用左手拇指、食指和中指拿住材料,拇指略低于食指与中指,并使材料略为突出在指尖上面。

3、右手持刀,将刀片平稳地放在左手食指之上,与材料切面平行,然后以均匀的动作,自左前方向右后方,斜着向后拉切,切时用臂力而不用腕力。

4、切下许多薄片后,用湿毛笔将这些薄片放人培养皿中.用毛笔挑选透明的薄片,放在载玻片上,用吸管滴一滴水在载玻片上,盖上盖玻片,制成临时装片进行观察。

注意事项1、在切片前,要不断地用水湿润材料和刀片。

2、切片时,两只手应该保持活动状态,不要使它们紧靠身体或实验台,且用力不要过猛,不能用刀片挤压材料或来回切割材料。

3、动作要敏捷,材料要一次切下,不要追求切片形状的完整。

简单的组织化学染色经徒手切片法切下的薄片,可以进行简单的组织化学染色,这样更容易分辨细胞的结构,同时可以观察到细胞各部分的化学成分。

实验植物细胞切片的制作

实验植物细胞切片的制作

3)下降至70%酒精(水):分别经400 ml纯酒精、95%、85%、70%酒精割 400 ml(50%及30%酒精下降至蒸馏 水),并回收各液。 4)番红复染色:400 ml 1%番红酒精(水 液)再染色2h。回收染液, 并用自来水 洗去多余的染液。 5)继续脱水:用30%、50%和70%酒精 400 ml各处理30s~1 min,并回收各液。 6)固绿复染:用0.1%固绿的95%酒精 400 ml复染10~30s,回收染液。
二、实验用品和材料
1、显微镜、尖嘴镊子、刀片、载玻片、 盖玻片、吸水纸、解剖针、纱布、碘 液。 2、蚕豆(芹菜)茎和叶 3、洋葱或玉米根尖纵切永久制片 4、南瓜或向日葵茎横、纵切永久制片 .
三、内容与方法
(一)临时切片制作
1、徒手切片法(重点)
2、整体装片 适合于植物体形小而扁
平的材料。如菌丝、孢子束、藓类。
2、蜡块制取
1)逐级脱水
将上述经软化的材料转入 250ml已洗净的输液瓶中加入40ml,70%酒 精脱水24h。分别加入各级酒精40ml,70% 酒精脱水24h,85%酒精脱水12h,95%酒 精脱水2h,无水酒精脱水1h。同时回收各 级酒精。 番红酒精染液染色(1g番红溶于 100ml 50%酒精中,纱布过滤)染色24h。
;
2)放在载玻片上作临时水装片,然 后置于显微镜下观察;
3)如果结构能被清晰地显示出来,
石 蜡 切 片 机
(二)永久装片的制作
1、材料预处理
将材料装在25ml规格的小指管, 加入甘油—酒精软化剂(甘油1份, 70%酒精1份)8ml封盖后在电热恒 温水浴锅50℃18h,第二天升成的光滑的硬纸(10.0×1.0×1.0㎝)制成 的纸盒中制取蜡块,在恒温箱门的低坎处 摆好纸盒,并写上名称,使其一面紧贴恒 温箱的受热金属板,纸盒底面紧贴恒温箱 底面金属板,倒入溶化石蜡0.2~0.3㎝厚的 薄层,2min后待薄层稍有凝固时将材料依 次排列于其上,再倒入溶化石蜡,并用烧 热的解剖针刺破其中的气泡,提着纸盒两 端预留的盒耳将纸盒浸入盛有冷水的盆中 冷却制成石蜡块。

植物细胞切片实验报告

植物细胞切片实验报告

一、实验目的1. 学习制作植物细胞切片的基本方法。

2. 观察植物细胞的结构特点。

3. 认识植物细胞的主要组成部分。

二、实验原理植物细胞切片实验是利用切片技术将植物细胞切割成薄片,然后在显微镜下观察细胞的结构。

通过观察细胞的结构,可以了解植物细胞的基本组成和功能。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:洋葱鳞片叶、菠菜叶片、显微镜、切片机、载玻片、盖玻片、染色液(如伊红、苏木精等)、酒精、蒸馏水、盐酸、剪刀、镊子、解剖针、擦镜纸等。

2. 实验仪器:切片机、显微镜、显微镜载物台、显微镜光源、显微镜物镜、显微镜目镜、显微镜调焦旋钮等。

四、实验步骤1. 制备切片材料:取洋葱鳞片叶和菠菜叶片,用剪刀将叶片剪成适当大小的块状,用解剖针挑出叶片中的叶脉和主脉,以便观察细胞结构。

2. 涂片:将剪好的叶片块状物放在载玻片上,用解剖针轻轻涂抹,使叶片均匀分布在载玻片上。

3. 固定:将涂抹好的载玻片放入固定液(如盐酸)中浸泡5-10分钟,以固定细胞结构。

4. 切片:将固定好的载玻片放入切片机中,调整切片厚度(约10-20微米),进行切片。

5. 染色:将切片放入染色液中,染色时间为30-60秒,根据不同染色剂进行调整。

6. 清洗:将染色后的切片用蒸馏水冲洗,去除多余的染色剂。

7. 复盖:将清洗后的切片用盖玻片覆盖,确保切片与盖玻片紧密贴合。

8. 观察与记录:将载玻片放在显微镜下,调节物镜和目镜,观察细胞结构并记录。

五、实验结果与分析1. 洋葱鳞片叶切片:观察洋葱鳞片叶切片,可见细胞壁、细胞核、细胞质、液泡、叶绿体等结构。

细胞壁位于细胞的最外层,呈厚薄不均的环状;细胞核位于细胞中央,呈圆形或椭圆形;细胞质位于细胞核周围,含有大量细胞器;液泡位于细胞质内,呈球形或椭圆形;叶绿体位于细胞质内,呈扁平的椭球形。

2. 菠菜叶片切片:观察菠菜叶片切片,可见细胞壁、细胞核、细胞质、液泡、叶绿体等结构。

与洋葱鳞片叶切片相比,菠菜叶片切片中的叶绿体更为明显,且叶绿体呈盘状。

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初生木质部

髓射线
维 管


(三)临时装片制作方法:
①用纱布擦净载玻片和盖玻片 ②滴清水、取材 ③用镊子盖上盖玻片:没有气泡、多余水迹
木栓层
维管形成 层
维管形成层的产生和活动
初生木质部与初生韧皮部之间的薄壁细胞 初生木质部脊正对的中柱鞘细胞
维管形成层环(波浪状→圆环)
平周分裂 外 垂周分裂
一、实验目的
1.熟练掌握徒手切片的方法。 2.初步掌握生物绘图法。 3.掌握单、双子叶植物根(初生、次生)和双子叶植物茎初生结
构的基本特点。
二、实验器具
显微镜、刀片、小培养皿、镊子、毛笔、吸水纸、纱布、载 玻片、盖玻片等。
三、实验材料
单、双子叶植物的初生根和次生根(新鲜材料、永久装片) 双子叶植物的初生茎。
次生维管组织
木栓层 木栓形成层 栓内层
次生韧皮

次 生
次生韧皮部

管 次生木质部


木射线
初生木质部
棉次生根的永久装片
棉次生根横切
双子叶植物茎的初生结构
表皮 皮层
初生韧皮部 束中形成层
初生木质部
髓射线
维 管 束
维 管 柱

表皮 皮层 维管束
齐,大小均匀,根据需要灵活掌握疏密变化; 5.细胞图和轮廓图; 6.最后将画好的图与实物对照,检查确认无遗漏或错误后,注明各部
分的名称和图题。(用平行线引出,最好在图右侧排列整齐)
细胞壁
细胞核 液泡
洋葱鳞叶表皮内细胞示意图(10×40)
表皮
皮层
双 子



初生韧皮部
茎 初
束中形成层 维管束
生 结
3.选片
挑选出薄而完整的切片(薄的切片一般沉在水底),制作临时水装片,置 于显微镜下观察。
4.切片的方向
2)径向切面:是通过中心而切的纵 切面
1)横切面:是垂直于茎或根的长轴而 切的切面
3)切向切面:是垂直于半径而切的纵切面
香樟幼茎横切面
(二)生物绘图法
1.仔细观察; 2.正确构图; 3.用HB铅笔正确勾画轮廓图,然后用2H铅笔正确描画; 4.线条要均匀平滑;用圆点衬阴表示明暗和颜色的深浅;点要圆而整
无限维管束:木质部和韧皮部间保留一层分生 组织(束中形成层),其周期性 活动结果可产生新的维管组织。
有限维管束:单子叶植物的维管束不具束中 形成层,不能产生新的维管 组织。
韧皮纤维

韧皮部

维 管
束中形成层

后生木质部
原生木质部
内始式发育:
茎的初生木质部由内向外渐次发育成熟。 即原生木质部在内方,后生木质部在外方。
平周分裂 内
维管形成层片段
维管形成层片段 次生韧皮部 维管形成层环 次生木质部
初生木质部与初生韧皮部之间的薄壁细胞
维管形成层片段
初生木质部脊正对的中柱鞘细胞
维管形成层片段
次生韧皮部 维管形成层环 次生木质部
平周分裂 外 垂周分裂
平周分裂 内
维管形成层环(波浪状→圆环)
根次生结构小结:
根次生结构
次生保护组织 (周皮)
连续切下数片后,用镊子将切片从刀片上轻轻移入盛水的培养皿中。切到一定 数量后,进行选片。
在切片过程中要注意刀片与材料始终要带水。这样一则增加刀的润滑;二则可 以保持材料湿润,不至因失水而使细胞变形及产生气泡。
徒手切片步骤
1.在培养皿中盛上蒸馏水(或清水)。
2.切片
①如果所切的材料大小、硬度适中,像一般草本植物的根、茎、叶柄等,可直 接用手拿着材料切。 ②如果材料太小,太软或太薄,象叶片、小根之类,就要用支持物夹着材料去 切。萝卜、胡萝卜的根,马铃薯的块茎等均可用作支持物。切片时,先把支持 物切成小块或小段,并从中间劈开一小段,再把材料切成适当的长度或大小, 夹入支持物内进行切片。
双子叶植物茎的一个维管束
韧皮纤维
筛管 伴胞 束中形成层 后生木质部
原生木质部

维 管 形 成 层 的 组 成
五、实验报告
将自己作的切片(根、茎均可)选择一片最好的请老师检查, 然后绘部分详图,并引注、标题。

髓射线
表皮
厚角组织 初生韧皮部 初生木质部 髓
髓射线
束中形成层
维管束:初生木质部和初生韧皮部共同组成的束状结构。
维管束类型:
外韧维管束 双韧维管束 周韧维管束
周木维管束
维管束类型(根据束中形成层的有无): 无限维管束
有限维管束
束中形成层:原形成层分化成维管束过程遗留下来的分生组织(属于 初生分生组织)
四、实验内容与方法
(一)徒手切片法
徒手切片是植物形态解剖学实验中最简便的一种切片方法。其 优点是工具简单,方法简单易学,即切即可观察;可看到自然状态 下的形态与颜色。
徒手切片姿势
徒手切片的过程
切片时,如切草本植物的幼茎,先将材料切成长约3cm小段。用左手三个指 头夹住材料,并使其高于其手指之上,拿正。右手持刀片,平放在左手的食指之 上,刀口向内,且与材料断面平行,然后右手用臂力(不要用腕力),自左前方向 右后方拉刀滑行切片,即切又拉,充分利用刀锋,把材料切成正而平的薄片。
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