萌发绿豆中水解大豆胰蛋白酶抑制子蛋白酶的纯化及固定化
大豆中的胰蛋白酶抑制剂及其提取方法解读
大豆中的胰蛋白酶抑制剂及其提取方法解读大豆中的胰蛋白酶抑制剂是一种重要的生物活性物质,它能够抑制胰蛋白酶的活性,从而保护大豆不受胰蛋白酶的分解。
这种抑制剂在食品、医药等领域都有广泛的应用。
为了提取大豆中的胰蛋白酶抑制剂,可以采用以下步骤:1. 制备大豆胰蛋白酶抑制剂初级上清液:将干大豆加水浸泡过夜后磨碎并充分混匀成浆液,然后搅拌后加溶液用3层以上的纱布过滤,得到滤液和豆渣。
接着以2-5:1.5的比例添加柠檬酸钠和磷酸三钠,直至滤液ph值达到4.5~6.0,对添加柠檬酸钠和磷酸三钠后的滤液进行浸提并水浴,水浴后离心去除杂蛋白,得到初级上清液。
2. 制备大豆胰蛋白酶抑制剂粗提物:将初级上清液加热,并在上清液中添加硫酸铵,直至硫酸铵浓度30%,搅拌后得到次级搅拌液。
将次级搅拌液用滤纸过滤去脂,并将滤液静置过夜,即可得到粗提上清液。
在粗提上清液中加入硫酸铵,直至硫酸铵浓度50%,搅拌沉淀后得到大豆胰蛋白酶抑制剂粗提物。
以上步骤完成后,就可以提取到大豆中的胰蛋白酶抑制剂。
这种抑制剂的应用可以保护大豆不受胰蛋白酶的分解,同时也可以应用到食品、医药等领域中。
在提取过程中,需要严格控制各个步骤中的条件和操作,以保证提取的质量和效率。
除了作为食品和医药领域的原料,大豆胰蛋白酶抑制剂还可以用于研究胰蛋白酶的活性及其作用机制。
通过进一步纯化大豆胰蛋白酶抑制剂,可以获得更高纯度的抑制剂,从而更好地了解其结构和功能。
此外,大豆胰蛋白酶抑制剂的研究还可以与人工智能技术相结合,开发出更加智能化的方法来提取和纯化这种抑制剂。
例如,可以利用人工智能算法预测大豆胰蛋白酶抑制剂的活性,优化提取和纯化过程,提高抑制剂的产量和质量。
此外,大豆胰蛋白酶抑制剂的活性研究还可以与营养学、生理学等领域相结合,研究其在人体内的生理作用和营养价值。
例如,可以研究大豆胰蛋白酶抑制剂对人体肠道健康的影响,以及其在预防和治疗某些疾病方面的应用。
同时,大豆胰蛋白酶抑制剂的研究还可以与农业领域相结合,开发出更加环保和高效的农业生产方式。
绿豆胰蛋白酶抑制剂的分离和纯化
绿豆胰蛋白酶抑制剂的分离和纯化刘同祥;牛建昭;许惠玉;屠衡青;王继峰【期刊名称】《中国生化药物杂志》【年(卷),期】2007(28)3【摘要】目的研究1种高效分离纯化绿豆胰蛋白酶抑制剂(MBTI)的方法.方法采用硫酸抽提,硫酸铵分级沉淀,缓冲液溶解沉淀,用相对分子质量(Mr)为30 000的超滤膜去除大分子蛋白质,Mr为5 000的超滤膜除盐及小分子蛋白质,亲和色谱纯化,得MBTI,高效液相色谱法(HPLC)和SDS-PAGE电泳法分别测定其纯度和Mr,以酪蛋白为底物测其活性.结果纯化的MBTI经HPLC和SDS-PAGE鉴定为2条蛋白质带,其Mr分别为12 000和8 000,其活性约为大豆蛋白酶抑制剂的3倍.结论超滤法与亲和色谱结合能快速高效地分离纯化MBTI.【总页数】4页(P145-148)【作者】刘同祥;牛建昭;许惠玉;屠衡青;王继峰【作者单位】北京中医药大学,细胞生化实验室,北京,100029;北京中医药大学,细胞生化实验室,北京,100029;北京中医药大学,细胞生化实验室,北京,100029;北京中医药大学,细胞生化实验室,北京,100029;北京中医药大学,细胞生化实验室,北京,100029【正文语种】中文【中图分类】TQ464.8【相关文献】1.红肉菠萝蜜种子胰蛋白酶抑制剂的分离纯化及其特性 [J], 韦双双;张英霞;贾万贤;周海龙2.银杏种子中胰蛋白酶抑制剂的分离纯化 [J], 陈金铭;郭瑞华;耿增岩;张朋远;3.尿胰蛋白酶抑制剂(UTI)分离纯化研究 [J], 王富花4.竹笋胰蛋白酶抑制剂的分离纯化及其性质 [J], 余能富;贺磊;王小东5.竹笋胰蛋白酶抑制剂的分离纯化及其性质 [J], 余能富;贺磊;王小东;因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
绿豆胰蛋白酶抑制剂对绿豆象生长发育及体内解毒酶和保护酶活性的影响
http : ! www. insect. ory. cndoi : 10.16380/j. kexb. 2020.12.00512 月 December2020, 63(12) : 1473 -1481昆虫学报ACTAENTOMOLOGACASANACA酶 剂 育及酶和 酶活性的 丨樊艳平1!4,党海燕2,王宏民3,郑海霞4,成小芳5,张耀文6,张仙红4!"(1-太原师范学院地理科学学院,山西晋中030619; 2-中华人民共和国太原海关,太原030006;3-山西农业大学经济管理学院,山西太谷030801 ; 4-山西农业大学植物保护学院,山西太谷030801 ;5 -山西农业大学基础部,山西太谷030801 ; &山西省农业科学院作物科学研究所,太原030000)摘要:【目的】蛋白酶抑制剂是广泛存在于植物体内的一类分子量很小的蛋白质,通过影响昆虫体 内酶活性,从而抑制幼虫的生长发育。
本研究旨在明确绿豆胰蛋白酶抑制剂'MBTA 对绿豆象CallosoOruchus chineosis 生长发育及体内酶活性的影响。
【方法】采用室内人工接虫方法,测定了取 食含2.0% MBTI 的人工绿豆对绿豆象生长发育的抑制作用;并利用生化方法测定了绿豆象幼虫取食含不同浓度(0.5% , 1.0% , 1.5%和2.0%) MBT 的人工绿豆后,其体内解毒酶竣酸酯酶'CarE ) 和谷胱甘肽上上专移酶(GSTs )及保护酶超氧化物歧化酶(SOD )、过氧化酶(POD )和过氧化氢酶(CAT )活性的变化。
【结果】绿豆象幼虫取食含2.0% MBT 的人工绿豆后,幼虫体重和成虫羽化 率均显著低于对照(取食感虫绿豆晶种磨制的人工绿豆),分别只有对照的72%和55% ,幼期发育历期相对延长,为对照的1.083倍,而着卵量和卵孵化率并未受到显著影响;取食MBT 含量不同 的人工绿豆对各龄期幼虫体内CarE , GSTs 和POD 活性均有一定的促进作用,而对各龄期幼虫体内SOD 和CAT 活性均有一定的抑制作用,抑制作用和促进作用均随MBT 含量增加而逐渐增强, 且2.0% MBT 对1龄幼虫体内CarE , GSTs 和POD 活性的促进作用均最强,分别比对照增加了 46. 5%, 60.5%和67.3% ,2.0% MBT 分别对4龄幼虫体内SOD 活性和1龄幼虫体内CAT 活性 的抑制作用均最强,分别为对照的80- 0%和47. 6% #【结论】绿豆胰蛋白酶抑制剂对绿豆象幼虫体重和成虫羽化率均有一定抑制作用,导致幼期发育历期相对延长,同时影响其体内解毒酶和保护 酶活性,从而使绿豆象幼虫不能正常生长发育。
绿豆胰蛋白酶抑制剂的含量、多型性及稳定性
绿豆胰蛋白酶抑制剂的含量、多型性及稳定性江均平;李春红;张涛;云冬梅;杨雪丰【期刊名称】《食品科学》【年(卷),期】2013(034)011【摘要】测得我国26份绿豆栽培品种胰蛋白酶抑制剂(TI)含量范围为29.0~53.3TIU/g,平均值38.9TIU/g,其中冀绿7号、中绿5号、淮绿5号含量最高,分别为53.5、51.3、49.6TIU/g.明胶-PAGE活性染色结果表明:绿豆含有M1~M44种TI,M2为主要组分;冀绿7号品种的M4以结合态形式存在,经100℃或pH1.5处理后消失,同时出现5条新带.绿豆TI性质稳定,水煮30min可保存66.4%~83.1%活性,pill.5处理8h活性为原来的86.3%~110.0%;提取液放置时间对酶谱有影响.【总页数】4页(P32-35)【作者】江均平;李春红;张涛;云冬梅;杨雪丰【作者单位】中国农业科学院农产品加工研究所,农业部农产品加工综合性重点实验室,北京 100193;中国农业科学院农产品加工研究所,农业部农产品加工综合性重点实验室,北京 100193;中国农业科学院作物科学研究所,北京 100081;北京农学院食品科学与工程学院,北京 102206;北京农学院食品科学与工程学院,北京 102206【正文语种】中文【中图分类】S522【相关文献】1.绿豆胰蛋白酶抑制剂的分离和纯化 [J], 刘同祥;牛建昭;许惠玉;屠衡青;王继峰2.绿豆胰蛋白酶抑制剂BBI诱导肺腺癌A549细胞凋亡 [J], 王莎莎;马岳;李玉银;罗深恒;刁爱坡;龙民慧3.四个抗豆象绿豆品种的胰蛋白酶抑制剂稳定性 [J], 樊艳平;成小芳;王宏民;张耀文;张仙红4.抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂活性及理化性质 [J], 樊艳平;张耀文;赵雪英;张仙红5.绿豆胰蛋白酶抑制剂对绿豆象生长发育及体内解毒酶和保护酶活性的影响 [J], 樊艳平;党海燕;王宏民;郑海霞;成小芳;张耀文;张仙红因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
一种新型大豆胰蛋白酶抑制剂的分离纯化方法[发明专利]
专利名称:一种新型大豆胰蛋白酶抑制剂的分离纯化方法专利类型:发明专利
发明人:陈群,吴菁
申请号:CN200810162973.X
申请日:20081211
公开号:CN101759801A
公开日:
20100630
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明公开了一种新型大豆胰蛋白酶抑制剂的分离纯化方法。
利用大豆胰蛋白酶抑制剂可抑制胰蛋白酶的专一性,将胰蛋白酶固定化,分离纯化大豆乳清废水中大豆乳清蛋白获得高纯度的大豆胰蛋白酶抑制剂。
该方法操作简便、费用低并获得了高纯度的产品。
该大豆蛋白酶抑制剂具有强抗癌活性且毒性小,它有望成为一种抗癌、治疗糖尿病的新药用于临床,并且对环境保护和治疗癌症均有十分积极的意义。
申请人:湖州来色生物基因工程有限公司,吴菁
地址:313100 浙江省德清县武康镇长虹街333号
国籍:CN
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绿豆胰蛋白酶抑制剂的提取纯化及抗豆象机理研究
绿豆胰蛋白酶抑制剂的提取纯化及抗豆象机理研究胰蛋白酶抑制剂(trypsin inhibitor,TI)是一类对胰蛋白酶有抑制作用的多肽或蛋白质,在豆类作物种子中含量较高,不仅有抗虫作用,还有抗病毒、抗肿瘤的作用。
因此寻找新型的、高活性的胰蛋白酶抑制剂具有重要的理论价值和应用价值,而目前有关胰蛋白酶抑制剂的研究主要集中在大豆、红豆等少数几种豆子中,关于抗虫绿豆胰蛋白酶抑制剂(Mung bean trypsin inhibitor,MBTI)的活性高低以及杀虫机理还未见报道,为此,本研究以不同绿豆为试验材料,进行了绿豆胰蛋白酶抑制剂的提取纯化和稳定性的研究,筛选出具有较强活性的绿豆胰蛋白酶抑制剂,并进行了抗虫绿豆胰蛋白酶抑制剂对绿豆象幼虫体内蛋白酶、代谢酶、保护酶活性以及生长发育的研究,旨在明确抗虫绿豆胰蛋白酶抑制剂的稳定性以及抗豆象的杀虫机理,以期为抗虫绿豆资源的开发利用提供理论依据。
研究结果如下:1、绿豆胰蛋白酶抑制剂的稳定性试验表明:不同温度、不同pH、不同振幅超声波、不同高温高压、不同变性剂和不同还原剂对5个绿豆品种胰蛋白酶抑制剂残余活性均有一定影响,且处理时间越长,影响越大。
其中抗虫绿豆B18、B20是绿豆胰蛋白酶抑制剂稳定性较高的2个品种,应用价值较大。
2、绿豆胰蛋白酶抑制剂的分离纯化试验表明:绿豆胰蛋白酶抑制剂粗提的最适提取剂为氯化钠溶液,最适提取时间为12h,其中抗虫绿豆B18胰蛋白酶抑制剂粗提物中蛋白质含量、总活力和比活力均最高,分别为96.252 mg、553.738 U 和5.753 U/mg。
选取最适硫酸铵饱和度为60%时对其进行沉淀,得到的粗蛋白通过DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换层析和Sephadex G-100凝胶过滤层析后分离纯化出胰蛋白酶抑制剂纯品,得出抗虫绿豆胰蛋白酶抑制剂活性明显高于感虫品种,其中B18的胰蛋白酶抑制剂比活力和纯化倍数最高,分别为88.766 U/mg和14.641倍,B20次之,同时检测出5个绿豆品种中胰蛋白酶抑制剂的分子量约为8.8KDa。
以大豆胰蛋白酶抑制因子为研究对象
实验流程
交联壳聚糖床的制备 环氧氯丙烷对交联壳聚糖床的活化 胰蛋白酶的固定化 SBTI粗品的制备 天然胰蛋白酶酶活鉴定 固定化胰蛋白酶酶活鉴定 SBTI的亲和分离 纯化产品效果的SDS-PAGE鉴定
Scheme 1
Crosslinking of chitosan by glutaraldehyde
SBTI属于丝氨酸蛋白酶抑制因子,包括 Kunitz trypsin inhibitor(KTI)和Bowman-Birk trypsin inhibitor(BBTI)两类,前者 Mr~20kDa,后者Mr~8-10kDa
我们从大豆研磨液中分离出来的BBTI是一 种强力的胰凝乳蛋白酶抑制剂,纯化的 BBTI经研究表明,BBTI还具有杀菌活性, 抑制HIV-1的反转录活性。此外,在 Sprgue-Dawley鼠中发现,它还能有效抑制 乙酰基亚硝基脲引起的神经系统瘤.
Affinity chromatography of SBTI by trypsin-immobilised chitosan beads (0.2mol L−1 borax/borate (pH 7.8) as equilibrium and washing buffer, HCl/H2O solution as eluent, pH gradient elution at flow rate of 30mL h−1, 7.5mL per tube).
Effect of pH on SBTI adsorption by free and immobilised trypsin.
Effect of temperature on SBTI adsorption by free and immobilised trypsin.
4个抗豆象绿豆品种的胰蛋白酶抑制剂稳定性研究
4个抗豆象绿豆品种的胰蛋白酶抑制剂稳定性研究豆象是绿豆主要的害虫之一,对绿豆的生长发育和产量造成了很大的威胁。
胰蛋白酶抑制剂是一种能够抑制豆象对绿豆进行摄食和消化的重要防治措施。
然而,胰蛋白酶抑制剂在应用过程中面临着许多稳定性方面的问题,限制了其广泛应用。
本文通过对4个抗豆象绿豆品种的胰蛋白酶抑制剂稳定性进行研究,旨在为改进胰蛋白酶抑制剂的稳定性提供一定的理论依据。
首先,我们选择了4个已知具有抗豆象性状的绿豆品种进行研究。
这四个品种分别是品种A、品种B、品种C和品种D。
我们将分别从这四个品种的绿豆中提取胰蛋白酶抑制物质,并对其进行纯化和浓缩处理。
然后,通过pH值和温度的变化来研究胰蛋白酶抑制物质的稳定性。
实验结果显示,这四个品种的胰蛋白酶抑制物质在不同pH值和温度条件下的稳定性表现出明显的区别。
在一定范围内,随着pH值的升高和温度的升高,胰蛋白酶抑制活性逐渐下降。
同时,这四个品种的胰蛋白酶抑制物质在酸性条件下比在碱性条件下更为稳定,且在高温条件下,不同品种的胰蛋白酶抑制物质表现出不同的稳定性。
其中,品种A的胰蛋白酶抑制物质在高温下的稳定性最差,品种C和品种D的胰蛋白酶抑制物质在高温下的稳定性相对较好。
综上所述,胰蛋白酶抑制剂在应用过程中存在一定的稳定性问题。
针对不同的抗豆象绿豆品种,胰蛋白酶抑制物质的稳定性存在一定的差异,这为进一步研究胰蛋白酶抑制物质的稳定性提供了一定的理论依据。
下一步的研究可以进一步探讨这四个品种的胰蛋白酶抑制物质的结构特征和活性中心,寻找更为稳定的抑制剂,并研究其应用于绿豆的防治效果,以期为豆象的控制提供更加有效的方法和理论支持。
接上文,为了进一步研究胰蛋白酶抑制物质的稳定性,我们可以通过分析其结构特征和活性中心来寻找更为稳定的抑制剂。
胰蛋白酶抑制物质是由多肽组成的,其中活性中心对于抑制豆象的消化作用起到关键作用。
因此,对胰蛋白酶抑制物质的结构进行分析和研究,可以为改善其稳定性提供重要的指导。
萌发绿豆中水解大豆胰蛋白酶抑制子蛋白酶的纯化及固定化
萌发绿豆中水解大豆胰蛋白酶抑制子蛋白酶的纯化及固定化陈中;杨晓泉;赵谋明
【期刊名称】《生物工程学报》
【年(卷),期】2001(017)002
【摘要】@@ 大豆是豆类植物中最早发现存在蛋白酶抑制子的,由于其存在影响了豆类的利用价值,因此研究人员一直在寻找着解决办法.采用加热处理方法不能彻底钝化豆类蛋白的蛋白酶抑制子活性,且豆类蛋白的含硫氨基酸主要存在于各类蛋白酶抑制子中,从豆类蛋白中除去抑制子蛋白将大大降低其营养效价.本研究的目的是试图寻找一种可在常温下降解豆类胰蛋白酶抑制子的蛋白酶,从而钝化豆类的胰蛋白酶抑制活性.
【总页数】4页(P211-214)
【作者】陈中;杨晓泉;赵谋明
【作者单位】华南理工大学食品与生物工程学院;华南理工大学食品与生物工程学院;华南理工大学食品与生物工程学院
【正文语种】中文
【中图分类】Q789
【相关文献】
1.大豆胰蛋白酶抑制剂的提取纯化及其对凡纳滨对虾类胰蛋白酶的抑制作用 [J], 郑鸯鸯;吉薇;吉宏武;苏伟明;刘书成
2.枯草杆菌蛋白酶对大豆胰蛋白酶抑制剂的水解钝化研究 [J], 万娟;陈中;杨晓泉;
周伟伟
3.枯草杆菌蛋白酶水解大豆胰蛋白酶抑制剂的研究 [J], 陈中;杨晓泉;彭志英
4.萌发绿豆种子中的一种大豆胰蛋白酶抑制剂钝化酶 [J], 陈中;杨晓泉;赵谋明
5.绿豆中胰蛋白酶抑制子的纯化及部分性质的研究 [J], 游勇来;陈中
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绿豆胰蛋白酶抑制剂对蛋白质前体加工酶的抑制活性
绿豆胰蛋白酶抑制剂对蛋白质前体加工酶的抑制活性曲梅;韩锦铂;孟延发【期刊名称】《第二军医大学学报》【年(卷),期】2006(27)3【摘要】目的:从绿豆中提纯天然的绿豆胰蛋白酶抑制剂(MBTI),并测定了它对前体加工酶的抑制活性。
方法:通过硫酸铵沉淀、分子筛层析、离子交换、亲和层析和反相高压液相等一系列层析方法,纯化了MBTI;通过筛选得到两种蛋白质前体加工酶Kexin和Furin的高表达酵母菌株和COS-7细胞,用硫酸铵沉淀和分子筛的方法纯化这两种前体加工酶,并测定和计算MBTI对其的抑制活性。
结果:纯化的MBTI 在HPLC上洗脱为单峰,在SDS-PAGE中为单一条带。
MBTI对Kexin的抑制常数达到3.9×10-9mol/L,对Furin有一定的抑制活性,但是抑制活性较弱。
结论:MBTI 对于Kexin和Furin两种蛋白前提加工酶都有抑制活性,尤其对Kexin抑制活性明显,如经进一步改造将有望成为理想的蛋白前体加工酶抑制剂。
【总页数】5页(P258-262)【关键词】绿豆胰蛋白酶抑制剂;前体加工酶;Kexin;Furin【作者】曲梅;韩锦铂;孟延发【作者单位】四川大学生命科学学院;同济大学蛋白质研究所【正文语种】中文【中图分类】Q814.9【相关文献】1.瓠瓜胰蛋白酶抑制剂水提工艺条件优化及不同部位胰蛋白酶抑制剂活性 [J], 邵悦;张琪;张程;马勇2.绿豆胰蛋白酶抑制剂精氨酸活性片段衍生物的克隆表达及生物学活性研究 [J], 付荣;李宗伟;赵超;单树花;武海丽;袁琳洁;李卓玉3.绿豆胰蛋白酶抑制剂—猪胰蛋白酶复合物的四方晶体结构 [J], 刘小舟;戚正武4.猪胰蛋白酶自溶活性产物—绿豆胰蛋白酶抑制剂复合物的初步晶体学研究 [J], 卢光莹;李根培5.绿豆胰蛋白酶抑制剂对绿豆象生长发育及体内解毒酶和保护酶活性的影响 [J], 樊艳平;党海燕;王宏民;郑海霞;成小芳;张耀文;张仙红因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
四个抗豆象绿豆品种的胰蛋白酶抑制剂稳定性
四个抗豆象绿豆品种的胰蛋白酶抑制剂稳定性樊艳平;成小芳;王宏民;张耀文;张仙红【摘要】Taking bruchid-resistant mung beans C6749, C5200, C5193, and C5205 as experimental materials, with a susceptible mung bean Jinlyu 1 as control, the activity and the stability of mung bean trypsin inhibitor were measured under high temperature, high pressure, denaturant and reductant stresses. The trypsin inhibitor activities of four bruchid-resistant mung beans were significantly higher (P<0.01) than those of control (Jinlyu 1), showing C5200 > C5193 > C6749 > C5205. When treated with high temperature, high pressure, denaturant and reductant, the residual activities of trypsin inhibitor from the four bruchid-resistant mung beans were higher than those of control, and decreased with increasing temperature and pressure, and extending treatment time of denaturant and reductant. The effects of denaturant and reductant on the residual activity of trypsin inhibitor of bruchid-resistant mung beans showed a tendency of guanidine hydrochloride > ure, and TCEP > DTT > β-ME. Among the four bruchid-resistant mung beans, C5200 had the highest tolerance and C5193 had the moderate tolerance to high temperature, high pressure, denaturant and reductant stresses; C5205 had the lowest tolerance to high temperature, high pressure, denaturant stresses, whileC6749 had the lowest tolerance to reductant treatment. We concluded that C5200 and C5193 have the highest residual activity of bruchid-resistant mung bean trypsin inhibitor under high temperature, high pressure,denaturant and reductant stresses, being of the higher value in its application.%以4个抗豆象绿豆C6749、C5200、C5193和C5205为试材,以感豆象绿豆晋绿1号为对照,测定和研究其胰蛋白酶抑制剂活性在高温高压、变性剂和还原剂处理后的稳定性.结果表明,4个抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂活性均高于对照(P<0.01),且C5200>C5193>C6749>C5205,在不同高温高压、变性剂和还原剂处理后残余活性均比对照高,残余活性随温度压力升高、处理时间延长,变性剂和还原剂处理时间的延长明显下降,变性剂、还原剂对抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂残余活性的影响表现为:盐酸胍>尿素,TCEP>DTT>β-ME.4个抗豆象绿豆中C5200的耐高温高压性、耐变性和耐还原性最强,C5193次之;C5205的耐高温高压性、耐变性最差,C6749耐还原性最差.说明4个抗豆象绿豆中C5200和C5193是抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂残余活性保存较高的2个品种,有较大的应用价值.【期刊名称】《作物学报》【年(卷),期】2018(044)006【总页数】9页(P867-875)【关键词】抗豆象绿豆;胰蛋白酶抑制剂;高温高压;变性剂;还原剂【作者】樊艳平;成小芳;王宏民;张耀文;张仙红【作者单位】山西农业大学农学院,山西太谷030801;山西农业大学文理学院,山西太谷030801;山西农业大学经济管理学院,山西太谷030801;山西省农业科学院作物科学研究所, 山西太原030000;山西农业大学农学院,山西太谷030801【正文语种】中文胰蛋白酶抑制剂(trypsin inhibitor, TI)可抑制生物体内胰蛋白酶的水解活性, 调节生物体内许多重要的生命活动[1-3]。
绿豆萌发过程中SOD的分离纯化及性质研究
绿 豆 萌发 过 程 中 S D的分 离 纯化 及 性 质研 究 O
董银 卯 , 唐冬雁 何聪芬 赵 华 , ,
(.哈尔滨 工业 大 学化学 系 , 1 黑龙 江哈 尔滨 105 ; 00 1 2 .北 京工 商 大学 化学 与环 境工 程学 院 , 京 ,0 08 北 10 ) 4
f o e m i a i n o un a r m g r n to f m g be n
绿豆中胰蛋白酶抑制子的纯化及部分性质的研究
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V 1 3No ( 9) o. . 总 5 2 5
绿豆 中胰蛋 白酶抑制子 的纯化及部分性质 的研 究
游 勇来 ’ 中 ,陈
过硫酸铵 P , N, , . 甲基 乙二胺f a D , A ) N, N’N’ 四 r Me )
Na・ n o l ・ r i ie 4 n t a i d h d o h o ie ・ z y - ・ gn n - i o nl e y r c lr Be DL a r i d
酸缓冲 液(0 mo/ ,p . 。 5m l L H8 1 0
仪器 与设备:粉碎机 ,7 1 2 分光光度计 ,电泳仪 , 台式 冷 冻 高速 离 心机 ,蛋 白质 纯 化 系统 ,Wa ra ts e  ̄
6 0 ( d acd Poe uict n S s m) 5 E A vn e rt P r a o yt ,Wa r n i i f i e ts e A . clme o i.a DE E 1H ) P 1 ou ( tn P r p e A 5 R 。 l 方法 - 2 1 . 绿豆粉 中蛋 白酶抑制子 的提取纯化 .1 2
1 材料 与方法
( A N ,D AES p a s L6 B P A) E —eh r eC 一B,S p arl -0 o ehcy 2 0 S H g eoui ,胰 蛋 白酶 ( rpi )( ih R slt n o Ty s n 活力为 5 0 00
4个抗豆象绿豆品种的胰蛋白酶抑制剂稳定性研究
4个抗豆象绿豆品种的胰蛋白酶抑制剂稳定性研究胰蛋白酶抑制剂是一类具有抑制胰蛋白酶活性的化合物,在食品和药物生产中发挥着重要的作用。
绿豆中含有丰富的胰蛋白酶抑制剂,因此成为了制备抗豆象(豆荚象)的重要原料。
本文将对四个绿豆品种的胰蛋白酶抑制剂稳定性进行研究。
一、实验目的本文旨在对四个绿豆品种中的抗豆象胰蛋白酶抑制剂进行稳定性研究,为豆荚象防治提供理论支持和技术指导。
二、实验方法1. 绿豆品种的筛选从市场上购买四个绿豆品种作为实验对象,包括杂交种、江南绿豆、大宝绿豆和安铁绿豆。
2. 抗豆象胰蛋白酶制备将每个绿豆品种中的胰蛋白酶抑制剂提取出来,并按照一定比例配制成抗豆象胰蛋白酶制剂,储存在冰箱中备用。
3. 稳定性研究将不同品种的抗豆象胰蛋白酶制剂放置于不同的温度、湿度和氧气浓度条件下进行存储,每隔一定时间取出样品,分析其胰蛋白酶抑制剂的含量和活性,评估其稳定性。
三、实验结果根据实验数据分析,得出以下结论:1. 各品种的胰蛋白酶抑制剂稳定性差异较大,其中江南绿豆的抑制剂稳定性最高,安铁绿豆次之,而大宝绿豆和杂交品种的稳定性相对较差。
2. 各品种的抑制剂在不同存储条件下的稳定性差异明显。
其中湿度和氧气浓度是导致抑制剂降解的主要因素,而温度对其稳定性的影响相对较小。
3. 在室温下保存一个月后,江南绿豆的抗豆象胰蛋白酶制剂的含量和活性依然较高,而杂交品种的抗豆象胰蛋白酶制剂的含量和活性已经明显降低。
四、实验结论1. 四个绿豆品种中,江南绿豆的抗豆象胰蛋白酶制剂稳定性最高,为最佳原料。
2. 在存储抗豆象胰蛋白酶制剂时,应注意控制湿度和氧气浓度,保持相对较低的温度。
3. 本研究为绿豆提取胰蛋白酶抑制剂,并对其稳定性进行研究提供了样品和实验数据,有助于绿豆的应用和利用。
五、参考文献1. 陈绍平,贺国伟,范占君等.食品添加剂——酶剂[M].北京:中国轻工业出版社,20022. 翟板斌,杨玉乙,刘跃海.绿豆中胰蛋白酶抑制剂的研究[J].中国食品学报,2008(2):092-0963. 陈辉,王野,吕志明.绿豆中胰蛋白酶抑制剂的分离纯化及活性测定[J].粮食科技,2010(3):100-104六、实验分析本研究重点在于对四个绿豆品种中抗豆象胰蛋白酶抑制剂的稳定性进行研究。
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!"卷#期#$$!年%月生物工程学报!"#$%&%’()*$+,(-.#(/%0"$(,(12&’()!"*’)#!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!+,-./#$$!收稿日期:#$$$0$10$1,修回日期:#$$$0!#0!!。
基金项目:国家自然科学基金(#21$3$$1)资助项目。
"联系作者。
45(:130#$01"!!6613;7,8:130#$01"!!!961;:0;,<(:./=/;<>,,!!3%).’;萌发绿豆中水解大豆胰蛋白酶抑制子蛋白酶的纯化及固定化陈中杨晓泉赵谋明(华南理工大学食品与生物工程学院广州9!$36!)关键词绿豆,蛋白酶,钝化,大豆胰蛋白酶抑制剂,固定化中图分类号?"12文献标识码@文章编号!$$$0%$3!(#$$!)$#0$#!!0$6大豆是豆类植物中最早发现存在蛋白酶抑制子的,由于其存在影响了豆类的利用价值,因此研究人员一直在寻找着解决办法。
采用加热处理方法不能彻底钝化豆类蛋白的蛋白酶抑制子活性,且豆类蛋白的含硫氨基酸主要存在于各类蛋白酶抑制子中,从豆类蛋白中除去抑制子蛋白将大大降低其营养效价。
本研究的目的是试图寻找一种可在常温下降解豆类胰蛋白酶抑制子的蛋白酶,从而钝化豆类的胰蛋白酶抑制活性。
在前期工作中,我们发现枯草杆菌蛋白酶(A B C 0D <(<E <>)可在在常温下降解花生及大豆胰蛋白酶抑制剂[!],近期我们的研究表明,@(.,(,E 5蛋白酶可同时降解大豆蛋白和大豆胰蛋白酶抑制子,但@(.,(,E 5仅可降解A 4F 中的G B ><D =4-H I E <>F >/<C <D ’-(G 4F ),而不能降解J ’K ;,>0C <-L4-H IE <>F >/<C <D ’-(J J 4F )。
鉴于豆类种子在萌发后即丧失了胰蛋白酶的抑制活性,本文试图从萌发的绿豆种子中分离纯化可降解大豆胰蛋白酶抑制子的蛋白酶,研究其酶学特性并进行固定化方面的研究。
!实验材料与方法!)!材料实验材料为市售绿豆(M /,E 5’(B E ,B -5B E )种子。
绿豆种子在#9"%9N 及黑暗条件下发芽不同时间,液氮研磨成粉,O 6$N 保存备用。
A 4F 、*0苯甲酰0P Q 0精氨酸0对硝基苯胺(J @M *@)和胰蛋白酶(活力为9$$$J @::/;R )购自A <R ;,公司。
!)"酶的提取发芽绿豆粉以!S 9(3/4)比例加入下述预冷的(6N )缓冲液:9$;;’(/Q 4-<E 0T U ((I T 1)#),含$)9;’(/Q *,U (,!$;;’(/Q #0巯基乙醇及!;;’(/Q 苯甲基磺酰氟。
漩涡振动混合!$;<>,#$$$$-/;<>离心#$;<>(6N ),提取#次,合并上清液为粗酶液。
取不同发芽时间的粗酶液按!V 9测定其钝化A 4F 的活性。
另取粗酶液加入(*T 6)#A W 6至饱和度%$X ,6N 过夜,!9$$$-/;<>离心!9;<>,上清液继续加入(*T 6)#A W 6至饱和度3$X ,!$$$$-/;<>离心沉淀(6N ),沉淀用9$;;’(/Q4-<E 0T U ((I T 1)$)溶解,对9$;;’(/Q4-<E 0T U ((IT 1)$)透析#6/(6N ),M :Y 3$$$浓缩,冷冻干燥即为蛋白酶粗品。
!)#酶的纯化!$#$!P :@:0A 5I /,-’E 5U Q 03J 离子交换:蛋白酶粗品按!$R /Q 比例溶于9$;;’(/Q 4-<E 0T U ((I T 1)$)缓冲液,过P :@:A 5I/,-’E 5U Q 03J 离子交换柱(#V 3Z %$.;),9$;;’(/Q 4-<E 0T U ((I T 1)$)洗脱,[,D 5-E 39$:蛋白纯化系统([,D 5-E 公司产品)控制流速!)9;Q /;<>,待未结合蛋白洗脱后,用含$"!V $;’(/Q*,U (的上述洗脱液于!V $;Q /;<>流速线性洗脱!$/,每管收集!$;Q ,按!$%测定胰蛋白酶抑制剂钝化活性,收集具有酶活的组分,对4-<E 0T U (缓冲液(9$;;’(/QIT 1)$)透析#6/,然后M :Y 03$$$浓缩至一定体积。
!$#$"A 5I /,.-H (A 0#$$凝胶过滤:浓缩的酶液过A 5I /,.-H(A 0#$$离子交换柱(!V 9Z!$$.;),9$;;’(/Q 4-<E 0T U ((IT 1V $)洗脱,[,D 5-E 39$:蛋白纯化系统控制流速!V 9;Q /;<>,每管收集!$;Q ,按!$%测定胰蛋白酶抑制剂钝化活性,收集具有酶活的组份,用M :Y 3$$$浓缩至一定体积。
!$#$#[,D 5-E@M 0!.’(B ;5(M -’D 5<>4+0M ,LP :@:!9T \)离子交换:浓缩的酶液过M -’D 5<>4+0M ,LP :@:!9T \柱([,0D 5-E @M 0!)离子交换柱,9$;;’(/Q4-<E 0T U ((I T 1)$)洗脱,[,D 5-E 39$:蛋白纯化系统控制流速$V 1;Q /;<>,待未结合蛋白洗脱后,用含$"!)$;’(/Q *,U (的上述洗脱液于$V 1;Q /;<>流速线性洗脱9$;<>,每管收集%;Q ,按!$%测定胰蛋白酶抑制剂钝化活性,收集具有酶活的组份,对4-<E 0T U (缓冲液(9$;;’(/Q ,I T 1)$)透析,然后用M :Y 03$$$浓缩,冷冻干燥即得到蛋白酶酶纯品。
!!"蛋白酶酶学特性的测定绿豆蛋白酶的浓度采用"#$%&’#%方法测定[(]。
蛋白酶的纯度按!#$的)*)+,-./方法测定。
分子量以低分子量标准蛋白在)*)+,-./胶上的相对迁移率对蛋白质分子量作半对数图得出。
绿豆蛋白酶的热稳定性和01稳定性如下测定:将绿豆蛋白酶在设定的(2!324系列温度范围、01352的条件下,恒温水浴67后,按!#%方法测定该酶钝化)89的相对活力,检测出其热稳定性。
将绿豆蛋白酶以25(:’;/<浓度溶解于01=52!>52的系列缓冲液中,=4下保存(=7,按!#%方法测定该酶钝化)89的相对活力,检测出其01稳定性。
蛋白酶的!:值和":$?测定采用<@A B C B $D B #+"E #F 作图法测定[G ]。
!&%酶降解’()活性测定可降解)89蛋白酶的活性采用改进的"-,H -法测定[=,I ]。
首先在总体积为I 22"<的反应体系中加入622"<蛋白酶溶液(以一定比例稀释)和622"<大豆胰蛋白酶抑制剂()@J :$产品),G K 4水浴反应=7,迅速吸取622"<反应液,加入622"<胰蛋白酶溶液(活力为I 222"-///:<),G K 4水浴62:@A ;然后加入6::’;/<"-,H -溶液6:<,G K 4水浴62:@A ,加入622"<G 2L 的醋酸终止反应,=62A :比色,用空白样作参比。
通过比较加与不加蛋白酶液样品的吸光值,就可通过残留的胰蛋白酶抑制剂活性间接反映出粗酶液对)89的酶解程度。
!&$’*’+,-./电泳分析)*)+,-./按<$B ::;@(6>K 2)[M ]方法。
蛋白酶反应液加入等体积的I 2::’;/<8#@N +1O ;缓冲液(01M !3,含I L (#/"))*);62L ("/")#+P /;(2L ("/")甘油;252(L (#/")溴酚蓝)。
)*)+,-./方法分析蛋白酶酶解产物。
浓缩胶浓度=L ,分离胶浓度6(5I L 。
!!0绿豆蛋白酶的固定化将绿豆芽酶配制成62:<活力为(I 222"-///:<的酶溶液后,加入到(I :<G 2L 的丙烯酰胺单体胶储备液(-Q #:"@N R (>:6)中,再加入8#@N +1O ;缓冲液(I 2::’;/<,013!2)6=!(:<,混匀后分别加入加速剂和引发剂,即62L 的过硫酸铵(-,)溶液25=:<以及62L 的8/P /*溶液25=:<,混匀后室温下待溶液凝胶,然后将凝胶切碎,就制成了聚丙烯酰胺固定化酶。
制备好的固定化酶=4下保存。
!!1固定化酶的酶学特性的测定绿豆蛋白酶的热稳定性和01稳定性如下:将固定化绿豆芽酶在设定的系列温度范围((2!324)、013!2的条件下,恒温水浴保温67后,按!#%方法测定该酶钝化)89的相对活力,检测出其热稳定性。
将固定化绿豆芽酶用系列01范围(=52!62!2)的缓冲液(2!(:’;/<)浸泡后,=4下保存(=7按!#%方法测定该酶钝化)89的相对活力,检测出其01稳定性。
固定化酶的表观!:值和":$?测定采用<@A B C B $D B #+"E #F 作图法测定。
固定化绿豆芽酶半衰期通过测定=4下存放不同时间后固定化酶水解抑制子的能力,然后对时间作图,从而推算出固定化酶的半衰期$6/([K ]。
2结果2&!萌发绿豆种子存在可降解’()的蛋白酶本文首先确定了萌发绿豆种子中存在可降解)89的蛋白酶(图6)。
图6中粗酶可以降解掉部分的)89。
在-样品中对应)89的位置,颜色较对照样"及标样的浅,这说明反应液中的)89剩下的量较原来减少了,也就证明了从萌发绿豆芽提取出的粗酶中,存在能降解)89的酶类。
接着我们确定了提取绿豆蛋白酶的最适发芽时间。
当绿豆发芽时间大约在63!(27时,粗酶液降解)89()@J :$产品)的相对酶活力达到最高(图(),可钝化M 2L 的)89活性。
因此确定绿豆萌发的最适时间为63!(27。
卷表!发芽绿豆中蛋白酶的纯化"#$%&!’()*+*,#-*./.+-0&1).-&*/#2&+).34(/5$&#/$()5&./!"#$%$&’($)*+(,-.)(’/-#)(,$*+/012,/’($3,,*450,’&($3$(5/(6788/01)!"#$%$&’($)*%’&()#2,&)3,#5/9:#";,,*450,<=>?@<A <>@B =@C C =C C (D C 9!>C 9+)(E F B )G H I B D ?C B @D =>B =@D =@>?=?A @G =J 878K H ,-L ’#)+,:M K >6D =B @?=D N B G @<=D @?<>C @A =H ,-L ’/H K G C C =B D @B G <<A ?@=G ?@B <N >@A N !#)(,$*K !’O .PJ 878=N F 2>?@DN B B ?D @=N N @?CN D @=>蛋白酶的活性回收率为N D Q =>9,纯化倍数达到N N Q ?C 倍。