细胞因子染色方案(中)
细胞因子染色方案(英)
Intracellular cytokine staining1.After stimulation, remove the majority of the supernatant and add 200 ul FACS or MACSbuffer, mix gently. Then transfer the cells to staining plate, 2000 rpm, 2 min. Remove the supernatant and gently tap on papers.2.Dead/Live cell staining. Add 200 ul PBS, gently mix, 2000 rpm, 2 min; repeat once. Dilutethe Dead/Live dye (Violet (BV421 channel), Aqua (BV510 channel), or Zombie Yellow (BV570 channel) 1:1000 with PBS. Add 50 ul to each well, gently mix, protect from light, room temperature, 30 min. Add 200 ulFACS buffer, 2000 rpm, 2 min.3.Surface staining.A.Antibody cocktail preparation. According to the staining sheet, calculate the volume ofadded antibodies. Use FACS buffer to prepare the mixture and mark each antibody inthe sheet after adding. Gently mix the antibody cocktail.B.Add 50 ul antibody cocktail to each well and gently mix. Protect from light. For humancells, room temperature 15 min; for mouse cells, 4℃10min.C.Add 200ul FACS buffer, gently mix, 2000rpm, 2min, to remove supernatant.D.If biotin conjugated antibody is used, prepare Streptavidin-dye in FACS buffer. Add 50 ulto each well, gently mix, 4℃10min. Add 200ul FACS buffer, gently mix, 2000rpm, 2min.4.Fixation and permeabilization.（BD）A.Add 50 ulBD CytoFix/Perm buffer to each well. Gently mix, protect from light, 4℃，20min.B.Prepare “Perm Wash”. Use 1 part of stock buffer (10X) with 9 parts of sterilized water.C.Add 150 ul“Perm Wash” to each well, gently mix, 2000 rpm, 2 min. To wash once morewith 200ul “Perm Wash”.5.Intracellular staining.A.Prepare the antibody cocktail in “Perm Wash”, mark in the sheet after each adding. Mixgently before using.B.Add 50 ul antibody cocktail to each well and gently mix. Protect from light. 4℃30min.C.Add200ul “Perm Wash”, gently mix, 2000 rpm, 2 min. Wash once more with 200ul“Perm Wash”.D.If biotin conjugated antibody is used, prepare Streptavidin-dye in“Perm Wash” buffer.Add 50 ul to each well, gently mix. Protect from light. 4℃10min.Wash twice with“Perm Wash” as in the above.6.Filtration.A.Add 200ul FACS buffer to each well, gently mix.B.Filtrate the cell suspension to FACS tube. Adjust the volume based on cell numbers.Normally the total volume is 300-500 ul.Attentions：1.Mix the cell suspensions as gently as possible.2.The staining could be performed in EP tubes. For centrifugation, normally 500g, 2 min.3.For antibody cocktail preparation, the antibody box or tubes should be put on the ice. Usesterilized tips for each antibody. Antibody cocktail should be stored at4℃.。
细胞因子的检测方法
细胞因子的检测方法细胞因子(cytokine)是由细胞分泌的具有生物活性的小分子蛋白物质的统称。
在免疫应答过程中，细胞因子在免疫调整、炎症应答、肿瘤转移等生理和病理过程中起重要作用。
细胞因子的检测不仅是基础免疫讨论的有较手段，同时在临床疾病诊断、病程观看、疗效推断及细胞因子治疗监测方面具有重要价值。
但是，由于细胞因子在体内的含量甚微，给细胞因子的检测带来困维，细胞因子的检测尚未在临床诊断上广泛开展，已知目前采纳的细胞因子检测方法均不完善，且不同的检测方法所得的结果差异较大，给临床诊断与治疗带来肯定的困难。
因此，有必要了解各种检测方法的特性及影响因素。
目前，细胞因子生物学活性检测和浓度测定方法主要有以下几类一.生物学检测法生物学检测又称生物活性检测，是依据细胞因子特定的生物活性而设计的检测法。
由于各种细胞因子具有不同的活性，例如IL-2促进淋巴细胞增殖，TNF杀伤肿瘤细胞，CSFci 激造血细胞集落形成，IFN爱护细胞免受病毒攻击，因此选择某一细胞因子独特的生物活性，即可对其进行检测。
生物活性检测法又可分为以下几类：1．细胞增殖法很多细胞因子具有细胞生 zhang 因子活性，特殊是白细胞介素，如IL-2 ci激t细胞生 zhang 、IL-3 ci 激肥大细胞生 zhang 、IL-6 ci 激浆细胞生 zhang 等。
利用这一特性，现已筛选出一些对特定细胞因子起反应的细胞，并建立了只依靠于某种因子的细胞系，即依靠细胞株(简称依靠株)。
这些依靠株在通常状况下不能存活，只有在加入特定因子后才能增殖。
例如IL-2依靠株ctll-2在不含IL-2的培育基中很快死亡，而加入IL-2后则可右体外 zhang 期培育。
在肯定浓度范围内，细胞增殖与IL-2量呈正比，因此通过测定细胞增殖状况(如使用3h-tdr掺入法、MTT法等)鉴定IL-2的含量。
除依靠株外，还有一些短期培育的细胞，如胸腺细胞、骨髓细胞、促有丝分裂原ci 激后的淋巴母细胞等，均可作为靶细胞来测定某种细胞因子活性。
细胞内细胞因子染色
细胞内细胞因子染色胞内细胞因子(INF-gamma)染色方法是在单细胞水平分析淋巴细胞的功能。
通过结合表面染色和细胞内细胞因子染色，细胞内细胞因子（干扰素-γ）染色法是用来分析在单细胞水平淋巴细胞的功能。
通过结合表面染色和细胞内细胞因子染色，此法可以获得在一定数量群体中，能够释放细胞因子细胞的百分比，而这些是无法用酶联免疫斑点法检测方法所获得的。
材料和试剂I. 抗体1. PE 鼠单抗IFN-γ (BD Bioscience 554412)2. PE鼠IgG1 κ 同型对照(BD Bioscience 554685)注意: 以上抗体经作者验证可以被其他抗体代替II. 其他材料：1. BD Cytofix/Cytoperm TM Fixation/Permeabilization液体试剂盒，BD GolgiStop TM (BD Bioscience 554715)2. 1X Phosphate Buffered Saline 磷酸缓冲液(PBS)3. FACS staining Buffer: 1X PBS, 2% FBS.4. Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) (Sigma 79346)5. Ionomycin (Sigma I9657)仪器1. BECKMAN 离心机和转头(BECKMAN)步骤1. 刺激细胞：1) 为刺激细胞使IFN-gamma从T细胞中释放，加入PMA (5ng/ml)和Ionomycin (500ng/ml)用37℃6h来培养和孵育细胞2) 每6ml培养细胞加入4 μl BD GolgiStop TM，充分混匀。
（推荐BD GolgiStop TM在细胞液中的时间不超过12h）2. 收集细胞:1) 1500rpm 离心3 minutes来收集细胞2) 收集细胞用PBS.重悬两次3) PBS含 2%FBS溶液将细胞稀释到. 1x107细胞/mL4) 在96孔板中加入100μl细胞液(1x106)5) 4℃ 800 x g, 3min 将板自旋6) 8)用预冷PBS 洗三次，如地7步自旋3. 细胞表面抗原染色1) 将细胞重选在100 Fc封闭液中（推荐稀释倍数：1:1000 PBS/2% FBS），冰上孵育10min,离心。
细胞内细胞因子染色
细胞内细胞因子染色胞内细胞因子(INF-gamma)染色方法是在单细胞水平分析淋巴细胞的功能。
通过结合表面染色和细胞内细胞因子染色，细胞内细胞因子（干扰素-γ）染色法是用来分析在单细胞水平淋巴细胞的功能。
通过结合表面染色和细胞内细胞因子染色，此法可以获得在一定数量群体中，能够释放细胞因子细胞的百分比，而这些是无法用酶联免疫斑点法检测方法所获得的。
材料和试剂I. 抗体1. PE 鼠单抗IFN-γ (BD Bioscience 554412)2. PE鼠IgG1 κ 同型对照(BD Bioscience 554685)注意: 以上抗体经作者验证可以被其他抗体代替II. 其他材料：1. BD Cytofix/Cytoperm TM Fixation/Permeabilization液体试剂盒，BD GolgiStop TM (BD Bioscience 554715)2. 1X Phosphate Buffered Saline 磷酸缓冲液(PBS)3. FACS staining Buffer: 1X PBS, 2% FBS.4. Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) (Sigma 79346)5. Ionomycin (Sigma I9657)仪器1. BECKMAN 离心机和转头(BECKMAN)步骤1. 刺激细胞：1) 为刺激细胞使IFN-gamma从T细胞中释放，加入PMA (5ng/ml)和Ionomycin (500ng/ml)用37℃6h来培养和孵育细胞2) 每6ml培养细胞加入4 μl BD GolgiStop TM，充分混匀。
（推荐BD GolgiStop TM在细胞液中的时间不超过12h）2. 收集细胞:1) 1500rpm 离心3 minutes来收集细胞2) 收集细胞用PBS.重悬两次3) PBS含 2%FBS溶液将细胞稀释到. 1x107细胞/mL4) 在96孔板中加入100μl细胞液(1x106)5) 4℃ 800 x g, 3min 将板自旋6) 8)用预冷PBS 洗三次，如地7步自旋3. 细胞表面抗原染色1) 将细胞重选在100 Fc封闭液中（推荐稀释倍数：1:1000 PBS/2% FBS），冰上孵育10min,离心。
细胞因子生物学活性检测
细胞因子生物学活性检测细胞因子水平测定是细胞免疫功能检测的一个重要组成部分。
由于许多细胞因子cDNA 克隆和表达的成功，给细胞因子单克隆抗体制备、生物学功能的鉴定提供必要条件。
目前检测细胞因子水平主要包括两类方法：一是生物学活性的检测，这类方法是利用细胞因子某一特定的生物学作用所设计的检测方法，如IL-2维持活化T细胞的增殖，IFN能保护病毒对正常细胞的感染，TNF-α选择性杀某些肿瘤细胞等，因此敏感性也较高；二是定量的检测，常用酶联免疫吸附试验(ELISA)，如多克隆抗体与单克隆抗体，识别不同表位两种单克隆抗体的双抗体夹心法，生物学和定量的检测方法各有优缺点，在必要时可同时进行检测。
一、白细胞介素1(IK-1)生物学活性测定白细胞介素1是一种重要的细胞因子，主要由单核-巨噬细胞产生，IL-1不仅对多种免疫活性细胞有重要的调节功能，而且与发热、炎症发生以及某些疾病的病理变化有关。
目前对IL-1产生水平的检测主要应用生物学活性检测的方法。
ConA刺激小鼠胸腺细胞检测IL-1生物学活性(一) 原理小鼠胸腺细胞在丝裂原刺激下表达IL-1受体，在有IL-1同时存在的条件下，IL-1可协同丝裂原促T细胞的增殖作用。
根据加入IL-1后增殖水平(３H-TdR掺入率)的增加可计算出样品中IL-1的活性单位，或计算出刺激指数。
(二) 操作步骤取6～8周龄C57BL16小鼠，拉颈处死，无菌取胸腺置不锈钢网筛上，用注射器针蕊研磨成细胞悬液调整细胞数为1.5×10７／ml↓细胞悬液内加入ConA，使终浓度为3μg／ml，在96孔培养板中加100μl(1.5×10６细胞)↓加入不同稀释度待测样品和IL-1标准品100μl／孔(ConA终浓度为1.5μg／ml)↓37℃ CO２孵箱 66h每孔加３H-TdR 0.5μci孵箱 6h多头细胞收集仪收获于9999型玻璃纤维纸上↓烤干，移入液闪瓶中，加适量闪烁液，于液闪仪上测β计数计算:1. 从IL-1标准曲线上测得IL-1的活性单位2. 也可用刺激指数(SI)表示实验组cpmSI＝──────×100％对照组cpm(三) 试剂和器材1. 10％ FCS RPMI1640，96孔培养板，孵箱2. 标准IL-1，ConA3. ３H-TdR，PPO、POPOP，二甲苯4. 9999型玻璃纤维滤纸，细胞收集仪5. β液闪计数仪(四) 注意事项1. 不同品系小鼠对IL-1的反应性有差异，据国内资料报道以C57BL为好。
细胞染色方法大全
Hoechst染色:hoechst可以穿过活细胞膜与细胞核结合(主要为凋亡活细胞)在紫外光下将核染为蓝色. Hoechst染细胞核会影响共聚焦显微镜对该样本其他荧光的观察效果.hoechst 有hoechest33342和hoechst33258两种hoechsts33258，hoechst33342二者区别不大，但是hoechst33342对细胞的毒性作用更小一些，所以一般来说hoechsts33258用于细胞固定后再染色，而hoechst33342则可以对活细胞直接进行染色！染色步骤PI (Propidium Iodide碘化丙啶)染色:是一种可对DNA染色的细胞核染色试剂，常用于细胞凋亡检测.碘化丙啶（Propidium Iodide, PI）是一种核酸染料(红色），它不能透过完整的细胞膜，但凋亡中晚期的细胞和坏死细胞由于细胞膜通透性的增加，PI 能够透过细胞膜而使细胞核染红.用PI单一染色观测培养细胞，只能表示细胞的坏死情况，而不是凋亡（当然晚期凋亡PI亦可着色）。
但是如果您只是想知道细胞的死亡情况，而不是仔细区分坏死或凋亡，那么PI单一染色也可以。
但是如果您一定要认定细胞的凋亡，那么PI单一染色显然不够！annexin-v染色细胞凋亡早期,细胞膜标志发生改变.其中,磷脂酰丝氨酸(Annexin-V,PS)外翻,Annexin-V 在Ca+存在的条件下与其高亲和力特异性结合.这样,Annexin-v 染色阳性,表示细胞处于早期凋亡状态.Annexin-V结合不同的荧光抗体,就可以利用流式细胞仪、荧光显微镜以及共聚焦激光扫描显微镜检测细胞凋亡的发生。
Annexin V用FITC标记发绿色荧光；如果用PE标记就发红色荧光。
JC-1染色JC-1是一种阳离子染料，可以在线粒体内聚集，低浓度时主要以单体(monomer)存在，发射光以绿光(～525nm)为主；而在高浓度时则可以形成多聚体(aggregation)，发射光以红光(-590nm)为主。
细胞因子检测方法
细胞因子检测方法细胞因子是一类负责细胞之间相互通讯的蛋白质分子，在生物体中起着重要的调节和调控作用。
细胞因子检测是研究细胞因子功能及其相关疾病机制的重要手段。
本文将介绍常见的细胞因子检测方法，包括免疫学方法、PCR方法以及生物芯片技术。
免疫学方法是常用的细胞因子检测方法之一。
这种方法基于细胞因子与抗原抗体的特异性结合来进行检测。
常见的免疫学方法包括酶联免疫吸附法（ELISA）、免疫荧光法和免疫组化染色法等。
ELISA是最常用的细胞因子检测方法之一。
该方法利用酶标记的抗体与待测的细胞因子特异性结合，通过酶的催化作用使底物发生显色反应，从而进行定量测定。
ELISA方法具有高灵敏度、高特异性和较大的线性测定范围，广泛应用于临床实验室检测细胞因子水平。
免疫荧光法是通过荧光标记的抗体与待测的细胞因子结合，并通过荧光显微镜观察标记信号来进行检测。
该方法具有高灵敏度和高特异性，可以用于检测细胞因子的定位和分布，广泛应用于生物医学研究中。
免疫组化染色法是一种利用酶标记或荧光标记的抗体与待测的细胞因子结合，并利用酶的催化作用进行染色反应的方法。
通过染色的程度可以判断细胞因子的表达水平及分布情况。
这种方法常用于组织学研究和病理学鉴定中。
PCR方法是一种通过扩增特定DNA序列来进行细胞因子检测的方法。
该方法适用于细胞因子的基因表达研究。
常见的PCR技术包括逆转录PCR、实时荧光定量PCR和单细胞PCR等。
逆转录PCR是一种将RNA转录为cDNA并进行扩增的方法。
该方法通过反转录酶将RNA转录为cDNA，再利用DNA聚合酶扩增所得的cDNA，最终通过凝胶电泳或其它方法来检测细胞因子的基因表达水平。
实时荧光定量PCR是一种可以实时监测DNA扩增过程的PCR方法。
该方法基于荧光信号的累积产生来实时监测扩增产品的数量，从而测量初始模板的绝对量或相对量。
单细胞PCR是一种可以在单个细胞水平检测细胞因子基因表达的PCR方法。
该方法通过将单个细胞在微小反应体系中进行逆转录、扩增和检测，从而实现对细胞因子在单个细胞中的表达水平研究。
胞内因子染色 protocol
BD胞内因子染色操作流程本流程适用的固定破膜试剂盒：实验流程：A.刺激细胞：体外刺激细胞因子的产生有很多种方法。
多克隆抗体激活剂在诱导细胞因子产生过程中尤为重要。
此类激活剂主要包括以下物质：佛波酯加钙离子载体或离子霉素，植物凝血酶，葡萄球菌肠毒素B，以及直接针对TCR/CD3复合物的单克隆抗体（加或不加针对共刺激受体如CD28 的抗体）注意：已报道单独的PMA刺激会导致小鼠T细胞表面CD4的表达降低。
PMA与钙离子载体共同刺激则使CD4表达降低更多，同时也会导致小鼠CD8胸腺细胞及小鼠和人外周血T淋巴细胞减少。
1.）使用BD GolgiStop™蛋白转运抑制剂（含莫奈霉素）的操作步骤每6ml细胞培养基中加入4μl BD GolgiStop™并充分混匀。
BD GolgiStop™在培养基中不应超过12小时。
2.）使用BD GolgiPlug™（含布雷菲德菌素A）蛋白转运抑制剂（含BSA）的操作步骤每1ml细胞培养基中加入1 μl BD GolgiPlug并充分混匀。
BD GolgiPlug在培养基中不应超过12小时。
BD GolgiPlug™中含有DMSO，4°C时会结晶为固体。
B. 样本处理：细胞表面及胞内因子的多色染色1. 细胞培养用蛋白转运抑制剂体内刺激组织样本或者体外刺激培养基细胞以制备活的细胞群。
细胞分离后重悬于染色培养基中，计数并转移至免疫荧光染色的塑料管或微孔板中。
在染色及储存过程中细胞需避光保存。
2. 阻断Fc受体阻断Fc受体的试剂可降低非特异性免疫荧光染色。
a．小鼠中，用特异性针对FcγII/III受体的2.4G2纯化抗体（BD Fc Block™，货号：553142）封闭荧光抗体Fc受体引起的非特异性染色。
在100μl Staining Buffer（货号：554656）中加入1 μg BD Fc Block/10^6细胞，4°C孵育15分钟。
随后清洗细胞，加入细胞表面抗原的特异性荧光抗体（提前用stain buffer 适当稀释）。
中文操作手册 胞内因子染色 554715 -3
BD胞内因子染色操作流程本流程适用的固定破膜试剂盒：实验流程：A.刺激细胞：体外刺激细胞因子的产生有很多种方法。
多克隆抗体激活剂在诱导细胞因子产生过程中尤为重要。
此类激活剂主要包括以下物质：佛波酯加钙离子载体或离子霉素，植物凝血酶，葡萄球菌肠毒素B，以及直接针对TCR/CD3复合物的单克隆抗体（加或不加针对共刺激受体如CD28 的抗体）注意：已报道单独的PMA刺激会导致小鼠T细胞表面CD4的表达降低。
PMA与钙离子载体共同刺激则使CD4表达降低更多，同时也会导致小鼠CD8胸腺细胞及小鼠和人外周血T淋巴细胞减少。
1.）使用BD GolgiStop™蛋白转运抑制剂（含莫奈霉素）的操作步骤每6ml细胞培养基中加入4μl BD GolgiStop™并充分混匀。
BD GolgiStop™在培养基中不应超过12小时。
2.）使用BD GolgiPlug™（含布雷菲德菌素A）蛋白转运抑制剂（含BSA）的操作步骤每1ml细胞培养基中加入1 μl BD GolgiPlug并充分混匀。
BD GolgiPlug在培养基中不应超过12小时。
BD GolgiPlug™中含有DMSO，4°C时会结晶为固体。
B. 样本处理：细胞表面及胞内因子的多色染色1. 细胞培养用蛋白转运抑制剂体内刺激组织样本或者体外刺激培养基细胞以制备活的细胞群。
细胞分离后重悬于染色培养基中，计数并转移至免疫荧光染色的塑料管或微孔板中。
在染色及储存过程中细胞需避光保存。
2. 阻断Fc受体阻断Fc受体的试剂可降低非特异性免疫荧光染色。
a．小鼠中，用特异性针对FcγII/III受体的2.4G2纯化抗体（BD Fc Block™，货号：553142）封闭荧光抗体Fc受体引起的非特异性染色。
在100μl Staining Buffer（货号：554656）中加入1 μg BD Fc Block/10^6细胞，4°C孵育15分钟。
随后清洗细胞，加入细胞表面抗原的特异性荧光抗体（提前用stain buffer 适当稀释）。
细胞因子技术方法
细胞内染色流式检测法
胞内染色
细胞内染色流式分析法是用细胞经刺激
活化后分泌细胞因子，用特异性抗体与细胞
内特定细胞因子标志结合，即可检测不同细
胞亚群细胞因子的分泌。
操作步骤
细胞表面抗原染色
刺激细胞（PMA、Ionomycin、BFA）
固定、破膜
细胞因子染色
技术优势
快速：流式定量检测细胞内细胞因子可在一天内完成，实验 流程需6-8小时，实际操作时间为1-2小时，快速简便； 简便：无需组织培养，可以全血分析，无需分离PBMCs； 灵敏度高：高度灵敏的荧光标记与检测系统； 高效：可以在同一个细胞内同时检测两种或更多种细胞因子 ，也可根据细胞免疫表型区分分泌细胞因子的细胞的亚型， 进行多参数相关分析； 安全：减少样本处理与生物源性污染 接近生物体的分析条件：全血检测保留细胞及生化微环境更 准确反映了体内状况。
细胞因子的结构
不同细胞因子之间在结构上有很大差异，多数细胞 因子为小分子多肽，分子量不超过60KD，多由100个左 右的氨基酸组成。不同细胞因子之间无明显的氨基酸 序列同源性。
多数细胞因子以单体形式存在，少数因子如IL-5、 IL-12、M-CSF、TGF-β等以双体形式存在。
绝大多数因子带有糖基，糖基多与细胞因子的生物 活性无关，可能起延长细胞因子体内半衰期的作用。
白细胞介素 (interleukin,IL) 集落刺激因子(colony stimulating factor,CSF) 干扰素 (interferon,IFN) 肿瘤坏死因子（tumor necrosis factor, TNF） 淋巴因子（lymphokine） 单核因子（monokine）
结果可靠 灵敏度较高
细胞因子检测方法
整理版ppt
31
整理版ppt
32
检测原理
细胞受到刺激后局部产生细胞因子，此细胞因 子被特异单克隆抗体捕获。细胞分解后， 被 捕获的细胞因子与生物素标记的二抗结合，其 后再与碱性磷酸酶标记的亲和素结合。底物孵 育后， PVDF 孔板出现“紫色”的斑点表明 细胞产生了细胞因子，通过显微镜或ELISPOT 酶联斑点分析系统对斑点的分析后得出结果。
整理版ppt
26
整理版ppt
27
免疫分析法
ELISA 细胞内细胞因子的流式细胞仪检测 ELISPOT
整理版ppt
28
ELISPOT
Enzyme-linked Immunospot Assay
整理版ppt
29
整理版ppt
30
ELISPOT发展历史
1963年：Jerne等人创立的溶血空斑技术(hemo-lytic plaque forming cell assay ,HPF),这项技术可用于检测并计数单个抗体形成细胞。
整理版ppt
24
细胞培养和刺激的基本方法
胞内细胞因子染色分析艾滋病人CD4 +T淋巴细胞Th1／Th2漂移
ｏ ｌ ｅｌｒｓｄ ｇａ ｕａｌ ｎ ｈ ｖ ｒ ｅ ｐ ｒｅ ｔｏ ｈ ｅｌｐ ｒｅ ｔｄ ｓｅ ｄ ｄ ｏ ｖｏ ｓｙ Ｔｈ ｒ ｏ ｓｇ ｉ ｃ ｔｄｆ ｒｎｃ ｓｂ ｔ ｅ ｆＴｈ ｃ ｌ ｉ ｒｄ ｌ ａ ｄ ｔｅ ａ ｅａ ｅｃ ｎ ｆＴ ２ ｃ ｌ ｅｃ ｎ ｅ ｃ ｎ ｅ ｂ ｉｕ ｌ ｅ ｙ ｇ ｅｅ ｎ ｉｎ ｆ ａ ｉｅ ｅ ｅ ｅｗｅ ｎ ｉｎ
ｔｅｐ ｒｅ ｔ ｆ ｈ ｅ１ａｄｔｅａ ｙｔ ｆ ８ｗ ｅ ｓｗ ｓｏ ｓｒｅ ｒ ．４ ｈ ｅｃｎ ２ ｅｌ ｎ ｈｒｐ ｉ ｏ ｅ ｋ ａ ｂｅ ｄ（ ＝０ ８ ７，Ｐ ：０ ０ ６） Ｃｏ ｃｕ ｉｎ Ｉｔ ｅｌ ａ ｙ ｋｎ ｏＴ ｍｅ ６ ｖ １ ． ｎ ｌｓｏ ｎｒ ｅ ｕ ｒｅｔ ｉｅ ａ ｌ ｌ ｏ
Ａｐｐｙｎｇ ｉ ｒ ｃ ｌｕａ ｙ ｏ ｎ ｔ ｉｉ ｏ ｎ ｌ ｓｓ ｏ Ｍ Ｔ ｅｌ ｌｉ ｎｔａ ｅｌ ｌｒ ｃ ｔ ｋｉｅ ｓａｎｎｇ ｆｒ ａ ａ ｙ ｉ ｆ ＣＩ ｃｌ Ｔｈｌ ／Ｔｈ ｂ ｌｎｃ ｈｆ ｎ ２ ａａ ｅ ｓ ｉｔ ｉ ＡＩ ＤＳ ａ ｉｎｔ Ｗ ＡＮＧ ｐ ｔｅ ｓ．
维普资讯
中 国热 带 医学 ２０ ０７年 第 ７卷 第 ｌ ０期
Ｃ ＩＡ Ｔ Ｏ ＩＡ ＤＣＮ ｏ． ｏｊ ｃ ｂｒ ０ ７ ＨＮ Ｒ ＰＣ ＬＭＥ ＩＩＥ Ｖ１７Ｎ ．０Ｏ ｔ ｅ２ ０ ｏ
１ ３ ７ ７
［ 论
著］
胞 内细胞 因子 染色 分析 艾滋 病人 Ｃ ４ Ｔ淋 巴细胞 Ｔ １Ｔ ２ 移 Ｄ＋ ｈ ／ｈ 漂
ｔｅｐ ｒｅ ｔ ｆ ｈ ｅ ｎ ｅａ ｙｔ ｆ ８ ｗ ｅ ｓｗ ｒ ｂｅｖｄ ｒ ｈ ｅｃｎ ｌｃｌ ａｄ ｔ ｒｐ ｍｅｏ ｅｋ ｅｅｏ ｓｒｅ （ ：０．４ ，Ｐ ＝０．５ ） ｏＴ ｈ ｉ ６ ７１ ０ ７ ．Ｗｈｌ ｉ ｉｃ ｎ ｉｅｅ ｃ ｅ ｅｎ ｉ ｓ ｎｆ ａ ｔ ｆ ｒｎ ｅｂｔ ｅ ｅ ｇｉ ｄ ｗ
检测细胞因子的方法
检测细胞因子的方法
检测细胞因子的方法有多种，以下是常用的几种方法：
1. 酶联免疫吸附测定法（ELISA）：ELISA方法根据酶标记抗体与目标细胞因子的特异性结合来检测细胞因子的浓度。
这种方法广泛应用于研究和临床实验室中。
2. 流式细胞术（Flow cytometry）：流式细胞术可以通过标记抗体与细胞因子结合来分析和计数特定细胞子群。
这种方法可以定量分析细胞因子的分布和表达水平。
3. 实时荧光定量PCR法（Real-time PCR）：通过实时荧光定量PCR方法可以检测目标细胞因子mRNA的表达水平。
这种方法可以快速、准确地分析细胞因子的转录水平。
4. 细胞因子芯片（Cytokine array）：细胞因子芯片是一种高通量方法，可以在同一实验中同时检测多个细胞因子。
这种方法可以用来研究细胞因子的分泌模式和相互作用。
5. 免疫组织化学染色法（Immunohistochemistry）：免疫组织化学染色法可以在组织切片中检测细胞因子的表达情况。
这种方法可以定位细胞因子在组织中的分布和定量分析其表达水平。
10种常用细胞因子检测方法盘点
10种常用细胞因子检测方法盘点细胞因子是一类在细胞间相互作用中发挥重要作用的蛋白质，对免疫调节、炎症反应、细胞增殖和分化等过程起着关键的调控作用。
因此，检测细胞因子的水平对于研究疾病发病机制、诊断和治疗具有重要意义。
以下是常用的10种细胞因子检测方法盘点：1. 酶联免疫吸附法（ELISA），ELISA是一种常用的细胞因子检测方法，通过将待检测的细胞因子与特异性抗体结合，然后用酶标记的二抗结合，最后通过底物染色来检测细胞因子的含量。
2. 免疫荧光法（IF），IF方法利用激光共聚焦显微镜观察标记的抗体与细胞因子结合的情况，适用于定量和定位分析。
3. 流式细胞术（FCM），FCM结合荧光标记的抗体，可以对多种细胞因子进行快速、高通量的检测和分析。
4. 生物传感器技术，生物传感器技术结合了生物学和传感器学的优势，可以实现对细胞因子的高灵敏度、高选择性检测。
5. 蛋白质芯片技术，蛋白质芯片技术可以同时检测多种细胞因子的含量，具有高通量、高灵敏度的特点。
6. 质谱法，质谱法可以通过检测细胞因子的质荷比来定量和鉴定细胞因子。
7. 生物学功能法，生物学功能法通过观察细胞因子对细胞生物学功能的影响来间接检测细胞因子的活性。
8. 核酸杂交技术，核酸杂交技术可以通过检测细胞因子的mRNA水平来间接反映细胞因子的表达水平。
9. 免疫印迹法（Western blot），Western blot可以用于检测细胞因子的蛋白质水平，结合特异性抗体可以实现对细胞因子的定量分析。
10. 细胞因子生物学活性检测，通过细胞因子对细胞增殖、分化、凋亡等生物学活性的影响来检测细胞因子的活性水平。
以上是常用的10种细胞因子检测方法，它们各自具有特定的优势和局限性，在实际应用中可以根据需要选择合适的方法进行检测分析。
细胞内因子染色
文章编号:1007-8738(2005)S -0062-03流式细胞术检测细胞内细胞因子的研究进展钱 莘综述 施 明,王福生3审阅(解放军第302医院生物治疗研究中心,北京100039)收稿日期:2004-05-07; 修回日期:2004-07-05作者简介:钱 莘(1979-),女,陕西西安人,硕士生.3Corres ponding author,Tel:(010)66933332Email:fs wang@public .bta .net .cn[关键词] 细胞内细胞因子;流式细胞术[中图分类号] R392.12 [文献标识码] A 细胞因子作为细胞间信号传导的分子,主要介导和调节免疫应答及炎症反应,刺激造血细胞生成和组织损伤的修复等。
正常情况下,细胞因子的表达和分泌受到机体严格地调控。
在病理状态下,细胞因子会出现异常表达。
因此,检测细胞因子对于某些疾病的诊断、治疗具有重要价值。
当前,仅对细胞进行定量及活性检测已不能满足需要,在单细胞水平研究细胞因子的表达更加重要。
随着流式细胞术(fl owcyt ometry,FC M )在临床、科研中的广泛应用,利用FC M 与细胞内细胞因子(intracellular cyt okine,I CK )染色技术相结合,可提供一种有效地在单细胞水平研究细胞因子的方法[1]。
本文主要就FC M 检测I CK 的研究进展作一综述。
1 FC M 检测I CK 的基本原理用FC M 检测I CK 是通过体外多克隆激活剂,如佛波酯(phorbol 2122m irystate 2132acetate,P MA )和离子霉素(i onomy 2cin )或特定的抗原激活细胞,同时用莫能霉素(monensin,MN )或布雷菲德菌素A (brefeldin A,BF A )阻断胞内高尔基体介导的蛋白质转运,抑制细胞因子释放到细胞外,从而便可使产生的细胞因子在细胞质内蓄积,信号增强。
FACS 胞内染色教程文件
流式胞内染色实验方法方案A：两步法胞内（细胞质）蛋白染色。
方案B：一步法胞内蛋白染色（细胞核）。
注意：1、不同细胞因子的刺激条件是不同的，比如：LPS刺激活化单核细胞分泌IL-6的培养时间一般是6个小时，而检测IL-10则需要刺激24小时。
2、结合荧光的流式抗体应在4度，避光储存。
3、使用抗体前请低速离心30秒，使贴壁抗体沉底。
不建议斡旋混匀抗体，可用手指轻弹混匀。
4、除非方案中注明，默认的抗体孵育方法是冰上或4度避光。
5、缓冲液中加BSA或FBS可以减少固定破膜后的非特异性背景。
方案A: 两步法胞内（细胞质）蛋白染色实验材料：12×75mm 圆底检测流式管。
[可选]可固定的活度染料eFluor® 450 (eBioscience Cat. No. 65-0863), eFluor® 660 (eBioscience Cat. No. 65-0864)，eFluor® 780 (eBioscience Cat. No. 65-0865)。
胞内抗原的直标抗体。
IC Fixation Buffer (eBioscience Cat. No. 00-8222)。
Permeabilization Buffer (10X) (eBioscience Cat. No. 00-8333)双蒸水稀释成1×。
Flow Cytometry Staining Buffer (eBioscience Cat. No. 00-4222)（可以自己配置）。
实验流程：1、按照流式样品要求制备单细胞悬液。
2、按照流式表面染色方法标记CD3和CD4。
缓冲液洗涤一次，离心完全弃上清。
斡旋分散细胞。
3、加100ul IC Fixation buffer ，斡旋固定细胞。
室温避光孵育20min。
4、每管加2ml 1×permeabilization buffer。
5、300g 室温离心5min,弃上清。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
胞内细胞因子染色
1.细胞刺激完成后，移去大部分上清液，加200ulFACS或MACS buffer，轻轻混匀。
设计细
胞染色的排放位置并记录，根据设计把细胞转移至染色板里，2000rpm,离心2min，甩去上清，在吸水纸上轻轻拍干，使用的位置不可重复利用(下同)。
2.死细胞染色。
加200ul PBS，轻轻混匀，2000rpm, 离心2min；重复洗涤1次。
此步骤的
目的为洗去培养基中残留的蛋白质。
Dead/Live dye (Violet (BV421 channel), Aqua (BV510 channel), or Zombie Yellow (BV570 channel)用PBS 1:1000稀释，每孔加50 ul，轻轻混匀，避光，室温染色30 min。
然后每孔加200ulFACS buffer，轻轻混匀，2000rpm, 离心2min。
3.表面染色。
A.配制表面染色抗体mix。
根据染色方案计算每个抗体加入量，将抗体按照既定的稀
释比例溶于FACS buffer里，每个抗体加过后需标记，防止加错。
使用前吹打混匀。
B.每孔加入50ul抗体mix，轻轻吹打混匀。
避光，人细胞室温染色15min；小鼠细胞
4℃染色10min。
C.染色后，洗去未结合的多余抗体。
加入200ul FACS buffer 轻轻吹打，2000rpm, 2min
离心，甩去上清。
D.如果使用Biotin偶联的抗体，配制Streptavidin-dye至工作浓度。
每孔50ul,轻轻吹打
后，4℃避光染色10min。
染色结束后加FACS buffer 200ul,2000rpm, 2min离心，甩去上清。
4.固定破膜。
（BD）
A.每孔加入50ul固定破膜液(BD CytoFix/Perm)，轻轻吹打混匀。
避光固定破膜4℃，
20min。
B.配制Perm Wash。
10X浓缩液稀释为1X，即1份浓缩液加9份灭菌水。
C.固定破膜完成后，洗涤2次。
第1次洗涤每孔加入150ul Perm Wash,轻轻吹打，
2000rpm, 2min离心，甩去上清；第2次洗涤每孔加入200ul Perm Wash，,轻轻吹打，2000rpm, 2min离心，甩去上清。
5.胞内染色。
A.配制胞内抗体mix。
抗体按既定稀释比例溶于Perm Wash里，使用前轻轻吹打混匀。
B.每孔加入50ul抗体mix，轻轻吹打混匀。
避光，4℃染色30min。
C.染色后，洗去未结合的多余抗体。
加入200ul Perm Wash轻轻吹打，2000rpm, 2min
离心，甩去上清。
共洗2次。
D.如果使用Biotin偶联的抗体，应用Perm Wash配制Streptavidin-dye。
每孔50ul,轻轻
吹打后，4℃避光染色10min。
染色结束后洗涤，Perm Wash 200ul,1500rpm,3min离心，甩去上清。
共洗2次。
6.重悬过滤。
A.每孔加入200ul FACS buffer，轻轻吹打重悬。
B.用40um滤膜过滤到FACS管里，视细胞量多少，体积可做适当调整，一般为300-500
ul。
注意事项：
1.操作过程中细胞吹打要轻柔。
2.染色也可于EP管内进行。
EP管离心500g, 2min。
3.抗体置于冰上，抗体mix配制时，注意用灭菌枪头，不要污染管内抗体。
配好后避光4℃
保存。