奶牛绿脓杆菌的分离与鉴定
免疫奶牛群布鲁氏菌病的实验室诊断经验分析
免疫奶牛群布鲁氏菌病的实验室诊断经验分析布鲁氏菌病是一种由布鲁氏菌引起的家畜传染病,对奶牛群的免疫系统造成了严重的威胁。
布鲁氏菌不仅会导致奶牛产出下降,甚至引起不孕或者流产,对养殖业产生了严重的影响。
对于免疫奶牛群的布鲁氏菌病的实验室诊断必不可少,本文将对免疫奶牛群布鲁氏菌病的实验室诊断经验进行分析。
一、标本的采集和保存在进行实验室诊断之前,首先需要对患有布鲁氏菌病的奶牛进行标本采集。
一般来说,可以采集牛血、乳汁、脾脏组织等样本进行检测。
对于血样的采集,需要保证采血的操作规范,避免外部细菌的污染。
采集的血样可以直接送至实验室进行分离培养和PCR检测。
对于乳汁样本的采集,需要保证乳汁样本的新鲜度和卫生性,避免混有外来细菌。
采集的乳汁样本需要处理后送至实验室进行培养和PCR检测。
对于脾脏组织的采集,需要注意对标本的保存,避免标本的腐败和细菌的污染。
二、布鲁氏菌的分离培养在实验室诊断中,最主要的方法就是对布鲁氏杆菌进行分离培养。
分离布鲁氏杆菌的基本方法是将样本接种到含有布鲁氏菌选择性培养基的琼脂平板上,培养基一般是布鲁氏增菌琼脂培养基。
将样本均匀涂布到琼脂培养基表面后,将琼脂平板置于37℃孵育24-48小时。
在孵育期间,布鲁氏菌会生长并形成典型的圆形菌落,呈现出乳白色至淡黄色的圆形凸起状。
也需要结合光镜和酶标仪等检测设备进行观察,以确保分离的菌落是布鲁氏菌。
三、 PCR检测在布鲁氏菌的实验室诊断中,PCR技术的应用也是非常重要的。
PCR技术能够通过扩增目标DNA序列来确认样本中是否存在布鲁氏菌。
首先需要提取标本中的DNA,然后将DNA与布鲁氏菌的特异引物进行PCR扩增,再通过电泳等方法来检测PCR产物。
通过PCR检测,可以快速、准确地鉴定样本中是否存在布鲁氏菌。
四、血清学检测血清学检测是常用的布鲁氏菌实验室诊断方法之一。
通过检测奶牛血清中的布鲁氏抗体水平,可以判断奶牛是否染上了布鲁氏菌。
主要的检测方法有凝集试验、间接血净试验、酶联免疫吸附试验等。
奶牛绿脓杆菌的分离与鉴定
无菌 采取病 死牛 的病理变 化明 显的肺 、 子宫子 叶等器官进行分离鉴定。
4病原菌分类与鉴定 4 . 1 病 原菌 的分离培养 4 . 1 . 1组 织涂片
[ 2 ]夏海 华 , 于冲 , 曲晓军 , 孙建华 ,
王金英 .绿脓杆 菌外毒 素 A的最新 研究进
展 [ J ] .生物技术 . 2 0 1 2 ( 0 2 ) . [ 3 ] 尹会方 , 戴爱玲 , 杨小燕 . 兽 医传染病 学教学 改革 与实践 [ J ] . 龙岩学
实验 室细菌鉴定 , 确 诊为绿脓 杆菌病。 前期 临床兽医未能确诊病因, 用青霉素等 本菌有 耐药性的药物治疗, 使病情进一步扩 散的直 接原因。
6 . 2绿脓杆菌 , 广泛存在于水、 土壤、 空
气、 动物 的肠道和 皮肤. 为 一种 条件性 致病
菌。 若 家畜体 内外有 创伤, 该 菌会在入侵 之
断为铜绿假单胞菌病既绿脓杆菌病 。 1发病情况及临床症状
培养物 的染色镜检 中可见 大量革兰 氏阴性 大、 中等杆菌, 革兰氏阳性球菌及大杆菌。 4 . 1 . 3 纯培养及分离培养 取肺组 织 肉汤培 养物在普 通培养 基上 划线进行纯培养。 取子叶培养物在鲜血琼脂
上用 焦性没食 子酸法进行 厌氧纯培养 和在 普通琼脂上划线进行需氧菌的纯培养。 染色
u — —— — ' 2 叮 0 1 6 r ‘ 年 ・ l 2 I , 月 F ¨ ・ 下
奶牛绿脓杆菌的分离与鉴定
地 力夏提 ・亚森 赛 米 ・阿不都 古 力
( 托克逊县夏乡畜牧业服务 中心 , 新疆 吐鲁番 8 3 8 1 0 0 ;托克逊县畜牧兽医工作站 , 新疆 吐鲁番 8 3 8 1 0 0 )
2 0 1 4 年 6月 9日, 夏 乡 莫农 户 一头 奶 牛于清晨 4 时开始阴 门流出大量血液 , 但牛 无 临产症状 , 兽 医对牛进 行了 引产 , 该 牛产
奶牛乳房炎病原菌的分离鉴定与主要致病菌耐药性分析
<3 威 廉 c, 布 汉 .奶 牛 疾 病 学 [ .沈 建 忠 , .北京 :中 国 农 业 1 雷 M] 译
大 学 出 版 社 , 0 0 20.
( ] Gr e 2 u tP,M an e tP,Be t l tX。e 1Bo iema ttsa d i— ic n rheo ta. vn sii n n ta a rm mm a yd u eie y:r ve a d es etv s [ ] Ad r r g d l r v e iw n p r p cie J. v
卡 那 霉 素 、 孢 曲松 、 方 新 诺 明 、 霉 素 、 必 治 、 大 霉 头 复 链 菌 庆 素 、 诺沙 星、 古霉素 等十种 药敏 纸片 ; 康凯 培养基 、 恩 万 麦 营
养 琼 脂 培 养 基 、 琼 脂 培 养 基 、 HB琼 脂 培 养 基 均 购 自杭 州 血 T
天 河 微 生 物 试 剂 有 限公 , 起 乳 房 炎 的 病 原 菌 对 多 种 抗 生 引
素 产 生 了 耐 药 性 , 可 能 与 奶 牛 抗 生 素 使 用 频 繁 有 关 。实 验 这 结 果 和 先 前 的 报 道 相 符 。 。 因此 , 后 在 临 床 上 应 加 强 对 今 奶牛场使 用药 物 的管理 , 注 意轮换用 药 、 叉用 药 , 时 , 要 交 同 增 加 中成 药 的 使 用 , 止 细 菌 产 生 耐 药 性 。 防
1 3 细 菌 的 分 离 与 鉴 定 .
1 3 1 病 原 菌分 离培 养 : 样 30 0rmi离 心 1 n 弃 去 .. 乳 0 / n 5mi,
乳 脂 及 管 中的 上 层 液 体 , 取 底 部 沉 淀 物 , 取 0 1ml 种 留 吸 . 接
奶牛源乳酸菌的分离、鉴定及其微生态制剂的研究
严作廷 男,博士,研究员,硕士生导师。主要从事兽医诊断与药物开发。Email:yanzuoting@caas.cn 收稿日期:20180427
44
微生物学杂志 2019年 2月第 39卷 第 1期 JOURNALOFMICROBIOLOGYFeb.2019Vol.39No.1
奶牛源乳酸菌的分离、鉴定及其微生态制剂的研究
桑梦琪1,喻 琴1,2,邵 丹1,董书伟1,王东升1,张世栋1,武小虎1 ,严作廷1
(1.中国农业科学院兰州畜牧与兽药研究所 甘肃省中兽药工程技术研究中心,甘肃 兰州 730050; 2.甘肃农业大学 动物医学院,甘肃 兰州 730070)
Abstract Inordertoscreenprobioticlactobacteriastrainstobeusedtocontrolcowendometritisandusethem as rawmaterialstomakeprobiotics.Excretionfromthecervixexitofhealthycows3050dayspostpartum wereusedas material,andMRSselectivemedium wasusedtocarryoutinitiallactobacteriascreening.Thepurifiedstrainswere stainedandmicroscopicallyexaminedforbiochemicalidentificationoftypicallactobacteria.TheDNAwasextracted andthefullsequenceof16SrDNAwasamplifiedandsequenced.Thehomologycomparisonsbetweentheobtainedse quencesandtheNCBInucleicaciddatabasewerecarriedouttoclarifythespeciesandgenusattributionofeachiso late.Theidentifiedlactobacteriawerefilteredandcentrifugedtoobtainitssupernatant,andtheresultingsupernatant wassubjectedtoabacteriostasisexperiment.Agardiffusionmethodwasadoptedtotesttheantibacterialactivity againstE.coli.Inordertoobtainstrainswithgoodantibacterialabilityasrawmaterialsandcarryoutmixedbacterio static,andfindouttheoptimalproportionofmicroecologicalpreparations,aswellasthegrowthcurveandacidpro ductionabilityofthesestrains.Theresultsshowedthatsixstrainsoflacticacidbacteriawithgoodantibacterialactivity
奶牛皮肤真菌的分离及鉴定
中 国奶 牛 ・08年 第 9期 20 ,
奶 牛皮肤真菌 的分离及鉴定
赵长城 ,王健 ,李培英 ,徐前明 江定丰 : ,
(. 1安徽 农业 大学 动物 医学系 , 肥 2 0 3 ; . 合 3 0 6 2安徽 省动 物疫病 预 防与控制 中心 合 肥 2 0 2 ) 3 0 2
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Ab t a t:n srn f2 0 ,d r t c ssh db o e u n ac t efr i fict, h i hssu ywa i d t n et ae te s r c I p go 0 7 emao i my oi a rk n o ti at am n Hee i An u.T i td same oiv s g t h l y i
dr c c o c p , s l t n c l r n e t c t n a d p to e ii x e me tRe ut h we a e d s a e w sc u e yM ir s r m i t e mir s o e ioai u t ea d i n i a i n ah g n ct e p r n . s l s o d t t h ie s a a s d b c opo u o u d i f o y i s h t
d r tp yef n u n p c e n u n i f h a r p y i n  ̄S mp e o 1 ika d4 e l yc t ew r olc e n x mi e y e mao h t g s d s e isa dq a t y t es p o h t f g u a to cu u a ls rm 0sc n 0 h at at e ec l tda d e a n db f h l e
奶牛乳房炎病原——大肠杆菌的分离与鉴定
测器 、 质谱等方法检测峰的纯度 。因为在强制降解试验条件下
产生 的降解产 物较兽药货架期产 生的降解 产物复杂 、未知杂 质多 , 分离难度大 , 上述 分析方法可有效地显示 各色谱峰 的纯 度, 以免因分离度不符合要求 , 导致分析结果 的不准确。如不 具备检测峰纯度的试验条件 ,可通过适 当调整 流动相 比例使 色谱峰保 留时 间发生改变 ,用 同份经加速破坏试验 的供 试品 溶液进样 , 然后 比较流动相调整前后杂质峰的个数 ; 也可采用 T C法 比较 同份经加速破坏 试验的供试品溶液在不 同展开系 L 定情 况 , 然后 进一步调整破坏 试验条件 ( 如光照强度 、 酸碱浓 度、 破坏的时间 、 温度等 ) 以得到能充分反 映降解物与样品分 , 离 的结果 和图谱 。另外 , 通过 比较试验前后主峰面积 的变化 , 还可粗略估算 降解物对样 品的响应值 ,了解样 品在 各种条 件 下的稳定性 , 为包装及贮藏条件的选择等提供信息。对于性质 相对稳定 的兽药 , 如有充分的文献依据或试验依据 , 则可 以免 做强制降解试验。
匀, 用无菌的小镊子捏取药敏纸片 , 置于血琼脂 培养基表面。 3 ℃温箱 , 7 需氧培养 2 4小时后 , 测量抑菌环直径。根据杭
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低度敏感 : 对青霉素 G、 复方新诺 明 、 阿莫西林 、 氨苄青霉索具
酵蔗糖 , 分解尿素 , 利 用柠檬 酸盐 ; 不 不 MR试 验 阳 性 ; — V P试
无菌采取奶牛乳房 中的奶样 , 将采集的奶样放人 1 0毫升
无 菌 离 心 管 中 ,然 后 送 到 黑 龙 江 八 一 农 垦 大 学 实 验 室 4 ℃保
奶牛乳房炎主要致病菌鉴定及药敏试验
11奶牛乳房炎是奶牛乳腺在化学、物理或微生物等因素刺激下引起的一种炎症反应,给乳品行业带来了巨大的经济损失,影响了奶牛养殖业的发展,造成这一局面的原因是引起感染的病原微生物在世界范围内存在广泛,并且发病率比较高。
在吉林省的某奶牛场中奶牛乳房炎发病率比较高,其牛乳中体细胞明显超标,对其奶牛场经济收益带来了严重影响。
本实验对该奶牛场中22份奶牛乳房炎乳汁进行致病菌鉴定及药敏试验。
1材料与方法1.1实验材料1.1.1实验样品吉林省某奶牛场检测牛乳样品22份。
1.1.2主要试验试剂天根Genomic DNA Kit DNA 提取试剂盒。
PCR 扩增反应体系、2000DL DNA Marker 等购自TaKaRa 公司。
药敏片:蒽诺沙星、复方阿莫西林乳房注入剂(泌乳期)、惠可宁(硫酸头孢喹肟乳房注入剂(泌乳期))、注射用硫酸卡那霉素、乳畅[盐酸头孢噻呋乳房注入剂(泌乳期)]、盐酸林可霉素注射液、注射链霉素。
1.2试验方法1.2.1奶牛乳样的处理每份乳样样品吸取500μL 于离心管中,离心机转速5000rpm(~离心力7400×g)离心2min 后,除去离心管上层脂质层,抽取下层清液,备用。
1.2.2细菌分离培养在血琼脂平板上将处理后的奶样进行划线培养(37℃,24h )。
1.2.3药敏实验挑取菌落用生理盐水制成菌液涂于血平板,用上述药敏片进行药敏实验。
1.2.4菌样样本DNA 的提取根据DNA 提取试剂盒使用说明书操作提取所需样本DNA 。
1.2.5基因组的扩增及鉴定2结果2.1药敏实验结果(见表1)2.2PCR 结果(见表2)3讨论实验分离出的细菌大部分是环境致病菌,根据这点我们可以知道应时刻保证奶牛附近生活环境的无污染。
对于某些属于多种病原菌引起感染的乳房炎,使用不同种类抗生素联合用药能产生更好的效果。
由于奶牛乳房炎的致病因素较多,在生活实践中,治愈率不高,因此,我们应该在养殖过程中把预防放在主要位置,采取预防治疗相结合的方针。
榆林市奶牛子宫内膜炎病原菌分离鉴定及药敏试验
榆林市奶牛子宫内膜炎病原菌分离鉴定及药敏试验报告,从子宫内膜炎患牛子宫内分离的细菌主要有链球菌、葡萄球菌、大肠杆菌、绿脓杆菌、芽孢杆菌、棒状杆菌、变形杆菌、布氏杆菌等[4]。
细菌在该病的发生和恶化的过程起着重要的作用。
科研工作者一直致力于引起奶牛子宫内膜炎的病原菌分离和鉴定研究,以求能够进行有针对性的治疗。
就其治疗许多学者做了大量的研究,主要治疗方法包括抗生素法、全身疗法、中草药法和子宫冲洗法[5]。
最常用的方法是子宫灌注抗菌药物法,选择几种抗生素配合使用,如土霉素与红霉素配合,土霉素与新霉素配合,都可以取得很好的治疗效果[6]。
但引起榆林市奶牛子宫内膜炎的病原菌种类及病原菌的药物敏感性报道较少。
本试验对榆林市某奶牛场进行病原菌分离鉴定及药敏试验,为奶牛子宫内膜炎的治疗和防治提供参考。
1 材料与方法1.1 材料1.1.1 试验样本采自榆林市某奶牛场疑似患有奶牛子宫内膜炎的子宫粘液7份。
1.1.2 试剂与药品牛肉膏、蛋白胨、氯化钠、磷酸氢二钾、琼脂、葡萄糖、革兰氏染色液、甲基红试剂、V-P 试剂。
普通琼脂培养基,肉汤培养基,麦康凯培养基,BP培养基,葡萄糖蛋白胨水,明胶固体培养基。
细菌微量生化反应管:葡萄糖、乳糖、蔗糖、麦芽糖、甘露醇、木糖、棉子等,购自杭州天和微生物试剂有限公司,批号151119。
药敏纸片:氨苄青霉素、新生霉素、阿莫西林、林可霉素、庆大霉素、环丙沙星、四环素、氯霉素、氧氟沙星、青霉素10种,批号20152400139,购自温州康泰生物科技有限公司。
1.1.3 试验仪器超净工作台:型号7278825,苏州净化设备有限公司;恒温恒湿培养箱:型号LRH-150-S,广东省医疗器械厂;立式压力蒸汽灭菌器:型号YXQ-LS-50G,上海博迅;恒温鼓风干燥箱:型号PHG-9203A,上海精宏实验设备有限公司;电子天平:型号JB/T5374-1991,梅特勒-托利多仪器有限公司;高倍电子显微镜:型号FSC-288,麦克奥迪实业集团有限公司。
绿脓杆菌实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 学习细菌分离纯化的基本方法。
2. 掌握绿脓杆菌的形态特征。
3. 熟悉绿脓杆菌的生化特性。
二、实验原理绿脓杆菌(Pseudomonas aeruginosa)是一种革兰氏阴性杆菌,广泛存在于自然界、土壤、水和植物表面。
它是一种条件致病菌,可引起人类和动物的多种感染,如肺炎、尿路感染、烧伤感染等。
本实验通过分离纯化绿脓杆菌,观察其形态特征,进行生化实验,以鉴定绿脓杆菌。
三、实验材料与仪器1. 实验材料(1)样品:土壤、水体、植物表面等。
(2)培养基:营养肉汤、营养琼脂、伊红美蓝琼脂、葡萄糖发酵管等。
(3)试剂:无菌生理盐水、无菌接种环、无菌移液器、无菌棉签等。
2. 实验仪器(1)显微镜(2)恒温培养箱(3)高压蒸汽灭菌器(4)无菌操作台四、实验方法1. 绿脓杆菌的分离(1)将土壤、水体、植物表面等样品采集后,用无菌生理盐水进行稀释。
(2)取适量稀释液接种于营养琼脂平板,进行涂布培养。
(3)将培养皿放入恒温培养箱中,37℃培养24小时。
2. 绿脓杆菌的形态特征观察(1)观察菌落特征:菌落呈绿色,表面光滑、湿润,边缘整齐。
(2)显微镜观察:取少量菌落涂片,进行革兰氏染色,观察细菌形态。
3. 绿脓杆菌的生化实验(1)葡萄糖发酵实验:将适量菌液接种于葡萄糖发酵管,观察是否有气泡产生。
(2)伊红美蓝琼脂实验:将适量菌液接种于伊红美蓝琼脂平板,观察菌落颜色变化。
五、实验结果与分析1. 绿脓杆菌的分离在营养琼脂平板上,观察到绿色菌落生长,经涂布培养后,菌落形态一致,表明已分离得到绿脓杆菌。
2. 绿脓杆菌的形态特征观察(1)菌落特征:菌落呈绿色,表面光滑、湿润,边缘整齐。
(2)革兰氏染色:细菌呈革兰氏阴性,呈长棒形,两端钝圆。
3. 绿脓杆菌的生化实验(1)葡萄糖发酵实验:接种后,发酵管内产生气泡,表明绿脓杆菌能发酵葡萄糖。
(2)伊红美蓝琼脂实验:接种后,菌落呈黑色,周围有绿色晕圈,表明绿脓杆菌具有氧化酶活性。
利用16SrRNA基因序列鉴定奶牛乳腺炎致病菌的技术方法 - 奶牛养殖
利用16SrRNA基因序列鉴定奶牛乳腺炎致病菌的技术方法-奶牛养殖奶牛乳腺炎是困扰奶牛业发展的四大疾病之首,是最常见、治疗花费最高的疾病之一,主要是由病原微生物在奶牛乳腺内感染引起的炎症反应。
据统计,我国每年因乳房炎造成的经济损失达135亿元。
可以引起奶牛乳房炎的微生物种类有很多,如细菌、病毒、真菌、支原体等,目前从患有乳房炎的奶牛乳汁中分离到了160多种微生物,以细菌感染比较多见,引发该疾病的致病菌主要有葡萄球菌、链球菌和大肠杆菌,这三种细菌引起的乳腺炎占总发病率的90%以上。
本研究中,通过对乳腺炎患牛乳汁的病原菌培养、分离及药敏试验后,得到乳腺炎致病菌株,通过对其16S rRNA基因的序列进行分析,为该株致病菌的研究提供参考。
1、材料与方法乳腺炎致病菌分离将乳腺炎患牛乳汁稀释后,分别接种到血琼脂平板和伊红美蓝琼脂平板上,恒温培养,观察记录菌落形态、大小及溶血情况,接种到肉羊培养基中增菌培养。
分离菌株药敏试验将上述分离的致病菌分别接种到肉汤培养基培养,周围黏贴药敏片,培养24 h,观察抑菌直径。
细菌学鉴定及致病性确定采用生化与革兰氏染色镜检,确定耐药菌形态,并进行细菌学分类。
抽取分离培养后的菌液500 μL,腹腔注射健康小鼠,24 h后观察小鼠发病情况,如小鼠死亡则认定该菌株具有致病性。
细菌16S rRNA基因克隆与测序使用细菌基因组DNA提取试剂盒对菌液进行基因组DNA的提取,后利用细菌16S rRNA基因通用引物(F:5 7- AGAGTTTGATCMTG-GCTCAG - 3´; R:5’-TACGGYTACCTTGTTACGACTT-3’)进行细菌16S rRNA基因PCR扩增(扩增体积为50lJL;条件为:95℃预变性5 min,94℃变性30 s,56℃退火30 s,72℃延伸90 s,30个循环;最后72℃终延伸10 min,4℃结束反应),电泳以及胶回收后,连接pMD - 18T载体连接克隆,经过筛选后将有16S rRNA基因序列插入的质粒提取测序。
奶牛源化脓隐秘杆菌的分离鉴定及其毒力基因的检测
奶牛源化脓隐秘杆菌的分离鉴定及其毒力基因的检测李伟杰;魏财文;刘燕;岂晓鑫;田野;蒋桃珍【摘要】本研究旨在分离鉴定来自北京某奶牛场死亡奶牛肺脏的1株疑似病原菌CVCC 3982,并测定其致病性.通过分离培养获得疑似病原菌,采用Biolog鉴定系统和16S rDNA序列分析对其进行了鉴定,人工接种CD-1小鼠测定了其致病性,合成引物对其主要毒力基因进行了检测.结果显示,该疑似病原菌为革兰氏阳性杆菌,β溶血,Biolog鉴定结果显示其为化脓隐秘杆菌,其16S rDNA序列与化脓隐秘杆菌模式菌株NCTC 5224的同源性达100%,系统发育分析显示其与化脓隐秘杆菌处于同一分支.腹腔注射该菌可致小鼠死亡.分离菌株基因组中含有溶血素(PLO)基因,神经氨酸酶H(NanH)基因,神经氨酸酶P(NanP)基因,菌毛基因(fimA、fimC和fimE),但缺失胶原结合蛋白(CbpA)基因和菌毛fimG基因.结果表明该分离菌株为化脓隐秘杆菌且具有致病性.【期刊名称】《中国畜牧兽医》【年(卷),期】2014(041)011【总页数】5页(P68-72)【关键词】奶牛;化脓隐秘杆菌;Biolog;16S rDNA;毒力基因【作者】李伟杰;魏财文;刘燕;岂晓鑫;田野;蒋桃珍【作者单位】中国兽医药品监察所,北京 100081;中国兽医药品监察所,北京100081;北京动物园,北京 100081;中国兽医药品监察所,北京 100081;中国兽医药品监察所,北京 100081;中国兽医药品监察所,北京 100081【正文语种】中文【中图分类】S852.61化脓隐秘杆菌(Trueperella pyogenes)是一种不运动,不形成芽孢的革兰氏阳性短杆菌,Yassin等(2011)通过系统发育分析将其从Arcanobacterium属划归Trueperella属。
化脓隐秘杆菌最早从牛的脓汁中分离到,主要寄生在动物的上呼吸道、消化道和泌尿生殖道等黏膜处,是一种条件性致病菌,可引起奶牛的乳腺炎、子宫内膜炎和子宫炎,引起肉牛和高产奶牛的肝脓肿、猪的肺炎等,给养殖业带来较大的经济损失(Machado等,2014;Goldstone等,2014)。
奶牛铜绿假单胞菌的分离与鉴定
奶牛铜绿假单胞菌的分离与鉴定
张耀相;邱立;曹振莲;张彦明
【期刊名称】《动物医学进展》
【年(卷),期】2007(28)12
【摘要】从奶牛颈部脓肿中分离出一株革兰氏阴性杆菌,经生物学特性研究和生理生化试验鉴定为铜绿假单胞菌.该菌对小鼠有很强的致病性,药物敏感性试验对氟哌酸、氧氟沙星、先锋必等抗生素高度敏感;对庆大霉素、氨苄青霉素、链霉素等抗生素有耐药性.
【总页数】3页(P110-112)
【作者】张耀相;邱立;曹振莲;张彦明
【作者单位】西北农林科技大学动物医学院,陕西杨陵,712100;西北农林科技大学动物医学院,陕西杨陵,712100;柞水县畜牧站,陕西柞水,711400;西北农林科技大学动物医学院,陕西杨陵,712100
【正文语种】中文
【中图分类】S852.6;S858.23
【相关文献】
1.一株鸽源绿铜绿假单胞菌的分离与鉴定 [J], 赵振振;许梦怡;许静;王彦红
2.奶牛场中乳房炎相关致病菌的分离与鉴定 [J], 唐俊妮;屈云;赵燕英;陈娟;朱成林;刘骥
3.两株水源性铜绿假单胞菌的分离与鉴定 [J], 梁涛波;龙慧;占忠旭;莫逆;陈波;于帆;吴鑫
4.河北省部分奶牛场奶牛子宫内膜炎病原菌分离与鉴定 [J], 张义冉;汪恩强;秦建华;马玉忠;程晶晶
5.狮铜绿假单胞菌的分离与鉴定 [J], 沈莉萍;沈素芳;刘佩红;王建
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奶牛乳房炎主要致病菌的分离鉴定及药敏试验
0
合计
5 6 17 6
16
47.05
10
29.41
3
8.82
2
5.88
2
5.88
1
2.94
34
100.00
2.3 动物实验结果 分别给小白鼠腹腔注射金黄色葡 萄球菌、大肠杆菌、克雷伯氏菌、停乳链球菌、沙门氏菌。 注射金黄色葡萄球菌的 6 只小白鼠 24 h 后均死亡,并从 其肝脏、心脏中分离到金黄色葡萄球菌;注射大肠杆菌 的 6 只小白鼠 48 h 后只有 2 只死亡,从肝脏、心脏中分 离到大肠杆菌;注射克雷伯氏菌 3 只的小白鼠,24 h 之内 有 1 只死亡,从肝脏、心脏分离到克雷伯氏菌;注射停乳 链球菌、沙门氏菌的小鼠未出现死亡,但分别有不同程 度的临床反应,如精神沉郁、采食量下降等。说明引起奶 牛乳房炎的多数病原菌致病力不同,但这些细菌在乳房 内繁殖和产生的毒素、代谢产物等可引发乳房炎。 2.4 药敏试验结果 2.4.1 乳样中主要致病菌药敏试验结果 各种病原菌对
收稿日期:2011- 04- 18
基金项目:国家十一五重点支撑项目(2006BAD04A16)
作者简介:郭春燕(1986-),女,硕士研究生。
通讯作者:吴树清(1957-),男,蒙古族,教授,硕士生导师。
文章编号:1007- 9726(2011)04- 0077- 04
中图分类号:S858.23
牛乳房炎提供科学依据。 1 材料与方法 1.1 材料 1.1.1 样品 2010 年春季, 采集锡林浩特市某奶牛场临 床型乳腺炎乳样 15 份、隐性乳房炎乳样 32 份、相应的环 境样品 35 份(分别取自牛舍产犊区 5 份、牛饲养区 8 份、 牛舍卧床土样 8 份和挤奶区空气样品 14 份)。乳样的采 集按《动物疾病实验室检验手册》[2]进行。空气样本的采 集:将制备的营养琼脂平板盖揭开,放在采样区 5 min,然 后收集营养琼脂平板并倒置。土样:在采样区多个位点 取少量样放到灭菌容器中。全部样品低温下迅速送回实 验室进行细菌培养。 1.1.2 培养基及试剂 5 %脱纤绵羊鲜血琼脂培养基、尿 素-动力-吲哚、高盐甘露醇琼脂培养基等常规生化培养 基均参考文献[3]配制。普通琼脂培养基、麦康凯琼脂培 养基、伊红美兰琼脂培养基、SS 琼脂培养基、营养肉汤、 三糖铁琼脂培养基、西檬氏枸橼酸盐培养基、生化鉴定所
绿脓细菌菌实验报告
一、实验目的1. 学习绿脓杆菌的分离与培养方法。
2. 掌握绿脓杆菌的形态观察和特征鉴定。
3. 了解绿脓杆菌的生物学特性。
二、实验原理绿脓杆菌(Pseudomonas aeruginosa),又称铜绿假单胞菌,是一种革兰氏阴性杆菌,具有运动性、形成芽孢和荚膜等特点。
绿脓杆菌广泛存在于自然界,如土壤、水、空气等,是一种条件致病菌,可引起多种感染。
本实验采用平板划线法和稀释涂布平板法分离绿脓杆菌,通过显微镜观察其形态和运动性,并对其进行革兰氏染色、氧化酶试验等鉴定。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:绿脓杆菌标准菌株、土壤样品、营养肉汤、营养琼脂、生理盐水、无菌棉签、无菌镊子、无菌移液器、无菌试管、酒精灯、高压蒸汽灭菌器、显微镜、接种环、接种针等。
2. 试剂:革兰氏染液、氧化酶试剂、无菌生理盐水等。
四、实验方法1. 绿脓杆菌的分离(1)取土壤样品10g,放入100ml无菌生理盐水中,振荡混匀,制成10^-1稀释液。
(2)取10^-1稀释液1ml,加入9ml无菌生理盐水中,制成10^-2稀释液。
(3)取10^-2稀释液0.1ml,涂布于营养琼脂平板上,用接种环划线。
(4)将平板倒置,放入37℃恒温培养箱中培养24小时。
2. 绿脓杆菌的鉴定(1)观察分离得到的菌落,挑选典型菌落,用接种环挑取少量菌体,进行革兰氏染色。
(2)在显微镜下观察菌体形态,记录结果。
(3)进行氧化酶试验,观察菌体是否产生颜色变化。
五、实验结果与分析1. 绿脓杆菌的分离经过培养,营养琼脂平板上出现典型的绿色菌落,符合绿脓杆菌的特征。
2. 绿脓杆菌的鉴定(1)革兰氏染色:菌体呈革兰氏阴性,呈短杆状,两端钝圆,无芽孢,无荚膜。
(2)氧化酶试验:菌体产生颜色变化,说明具有氧化酶活性。
根据实验结果,分离得到的菌落符合绿脓杆菌的特征,可初步判断为绿脓杆菌。
六、实验结论通过本次实验,我们成功分离和鉴定了绿脓杆菌。
实验过程中,我们掌握了绿脓杆菌的分离、培养和鉴定方法,了解了绿脓杆菌的生物学特性,为后续研究绿脓杆菌的致病机制和防治提供了基础。
奶牛乳房炎主要致病菌的分离鉴定及大肠杆菌噬菌体的生物学效应研究
奶牛乳房炎主要致病菌的分离鉴定及大肠杆菌噬菌体的生物学效应研究首先,研究人员收集了多个不同奶牛场的乳房炎样本。
样本的采集要求严格,以确保获取的样本是真正反映奶牛乳房炎症状的。
从不同样本中分离出的细菌会在特定培养基上进行进一步培养。
常用的培养基包括血琼脂、马都基琼脂等。
通过分离细菌的方式可以精确地确定致病菌的类型和数量。
在对分离出的细菌进行鉴定之前,研究人员利用不同的培养基和培养条件进行纯化。
纯化过程主要是将其他细菌和杂质与目标细菌分离,使得分离得到的细菌纯度更高。
常用的纯化方法有革兰氏染色、API试剂盒、PCR等。
通过纯化,研究人员可以获得清晰的细菌形态、生长特点和生理特性。
经过纯化后,研究人员对致病菌进行了进一步的分子鉴定。
目前,常用的分子鉴定方法主要包括16S rRNA测序技术、多重PCR技术等。
通过这些技术,研究人员可以准确鉴定奶牛乳房炎的致病菌。
在确定奶牛乳房炎主要致病菌的同时,研究人员也对大肠杆菌噬菌体的生物学效应进行了研究。
大肠杆菌噬菌体是一种寄生于大肠杆菌上的噬菌体,可以选择性地感染并杀灭大肠杆菌。
研究人员将大肠杆菌噬菌体与奶牛乳房炎患奶牛的分泌物进行接触实验,观察其对大肠杆菌的生物学效应。
实验结果显示,大肠杆菌噬菌体对大肠杆菌具有较高的选择性感染和杀灭能力。
在接触实验中,大肠杆菌噬菌体可以迅速繁殖并杀灭患奶牛分泌物中的大肠杆菌。
此外,大肠杆菌噬菌体还具有一定的溶菌能力,可以释放出一些有害细菌产生的毒素。
这些结果表明,大肠杆菌噬菌体在治疗奶牛乳房炎方面具有潜在的应用价值。
综上所述,奶牛乳房炎的致病菌鉴定是对该疾病研究的重要一步。
通过对致病菌的分离、纯化和分子鉴定,可以获得更多关于奶牛乳房炎病原菌的信息。
此外,大肠杆菌噬菌体对大肠杆菌的生物学效应研究为治疗奶牛乳房炎提供了新的思路和方法。
希望通过对奶牛乳房炎主要致病菌的深入研究,可以为奶牛养殖业的健康发展和生产提供更好的支持和保障通过6S rRNA测序技术和多重PCR技术,研究人员可以准确鉴定奶牛乳房炎的致病菌。
奶牛铜绿假单胞杆菌的分离与鉴定
奶牛铜绿假单胞杆菌的分离与鉴定肖开提;阿曼古丽;施远翔;苏皮牙;张平;王涛【期刊名称】《中国畜牧兽医》【年(卷),期】2007(34)1【摘要】应用实验室细菌培养分离技术,从产后死于出血性、败血性坏死肺炎及子宫炎的奶牛肺、子宫子叶组织中分离出一种主要的病原菌;通过细菌形态学、染色反应、培养特性、生化试验等鉴定方法,确定该病原分离株为铜绿假单胞杆菌,并通过药敏试验筛选出了环丙沙星、羧苄青霉素等对该菌敏感的药物.【总页数】2页(P49-50)【作者】肖开提;阿曼古丽;施远翔;苏皮牙;张平;王涛【作者单位】新疆自治区动物防疫监督总站,乌鲁木齐,830000;新疆自治区动物防疫监督总站,乌鲁木齐,830000;新疆自治区动物防疫监督总站,乌鲁木齐,830000;新疆自治区动物防疫监督总站,乌鲁木齐,830000;新疆自治区动物防疫监督总站,乌鲁木齐,830000;新疆自治区动物防疫监督总站,乌鲁木齐,830000【正文语种】中文【中图分类】S8【相关文献】1.菜豆花内生假单胞杆菌的分离与鉴定 [J], 董梦洁;左丹婷;胡玉;喻婉清;韩雪2.一株拮抗姜瘟根际青枯假单胞杆菌的沙雷氏菌的分离与鉴定 [J], 李霞;张小平;李欣3.松材线虫(Bursaphelenchus xylophilus)耐久型幼虫(LIV)携带的香茅醇假单胞杆菌(Pseudomonas citronellolis)分离与鉴定 [J], 来燕学;杨忠岐;张慧丽;王小艺;张彦龙4.奶牛铜绿假单胞菌的分离与鉴定 [J], 张耀相;邱立;曹振莲;张彦明5.神经网络优化超声波对铜绿假单胞杆菌灭菌参数及在慢性骨髓炎中的应用 [J], 代秀松;张知理;王晓盼;陈笑天;叶龙飞;石彦因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
绿脓杆菌检测方法
绿脓杆菌检测方法
一、基本原理
绿脓杆菌是革兰氏阴性杆菌,具有产生绿色色素和氧化酶等生化实验特征,因此,可利用选择性培养基培养、菌体检验和生化试验进行鉴定。
二、主要设备和材料
恒温培养箱、显微镜
三、培养基和试剂
NAC液体培养基、NAC琼脂平皿、普通营养琼脂平皿、糖发酵培养基、尿素培养基、西蒙氏柠檬酸盐培养基、硝酸盐培养基、营养明胶、氧化酶试剂。
四、检测程序
五、操作步骤
1. 采样
采取回盲部内容物、粪便或病灶组织、分泌物。
2. 分离培养
将已接种的NAC液体培养基置37℃恒温培养箱中培养24h后观察生长情况,对未产生绿色色素者转种于NAC琼脂平皿,37℃恒温培养24h。
3. 鉴定
3.1 生长特性及菌落特征
绿浓杆菌在NAC液体培养基中均匀浑浊生长、有菌膜、大部分菌株可在培养液上半部形成绿色色素;在NAC琼脂平皿上形成扁平,边缘不齐呈锯齿状,2~3mm的菌落,大部分菌落可产生绿色色素而致使培养基呈绿色,部分菌株需延长培养时间方可产生色素。
3.2 菌体特征
革兰阴性杆菌,菌体长短不一。
3.3氧化酶试验阳性
被检菌为革兰阴性杆菌,氧化酶阳性及产生绿色色素,可报告检出绿脓杆菌。
3.4 生化试验
对不产生绿色色素的菌应做如下鉴定,见表1。
表1 绿脓杆菌的主要生化特性
3.5 半固体动力试验阳性
3.6 42℃生长试验阳性
4. 结果报告
凡符合上述各项检测结果者做出阳性报告,不符合者做出阴性报告。
铁门关地区奶牛肺炎细菌分离鉴定及3种主要致病菌体外抑菌试验
铁门关地区奶牛肺炎细菌分离鉴定及3种主要致病菌体外抑菌试验作者:武魁覃杰来源:《中国动物保健》2023年第12期摘要:采集铁门关地区50头肺炎奶牛脏器进行细菌的分离鉴定,选择12种抗素药、常用治疗肺炎复方中药和消毒液分别采用K-B纸片法、琼脂平板打孔法和二倍稀释法对引起肺炎的主要病原菌进行体外抑菌试验。
结果表明:溶血性曼氏杆菌检出率最高32%,其次为肺炎链球菌24%,再次多杀性巴氏杆菌22%,为主要致病菌;头孢喹肟、头孢氨苄、氟苯尼考、泰拉霉素、小檗碱对3种主要病原菌敏感,氢氧化钠的最低抑菌浓度最小。
本实验为铁门关地区奶牛肺炎的中西药结合防治提供理论依据。
关键词:铁门关;奶牛肺炎;分离鉴定;体外抑菌试验肺炎是奶牛最常见和危害最严重的疾病之一,严重降低养殖户积极性[1]。
病原菌感染是引起奶牛肺炎的主要原因之一,目前治疗奶牛肺炎主要依靠抗菌药物,但随着抗菌药的长期大量使用,病菌逐渐产生了耐药性,对治疗肺炎带来较大的影响。
中药治疗奶牛肺炎,具有无药残、无耐药性等优点,但也存在疗效不稳定、疗程长等缺点。
消毒液能有效杀灭环境细菌,对预防奶牛肺炎有重要的作用。
本试验对从铁门关地区奶牛肺炎分离鉴定出溶血性曼氏杆菌、多杀性巴氏杆菌和肺炎链球菌这3种主要致病菌进行体外抑菌试验,找到高效抗菌药和环境消毒药,筛选高效中西药,以期提高治疗效果。
1 材料与方法1.1 材料1)样品采集。
在铁门关地区3家规模奶牛场和6家散养户采集肺炎奶牛脏器(肝、肺、心、脾和肾)和鼻拭子(采集前不对肺炎牛进行任何针对性治疗和免疫),共50份。
2)主要培养基和试剂。
血清營养琼脂、MH肉汤脂等,按常规方法配置[2],药敏纸片按照徐叔云方法制作[3]。
3)主要培养基:普通营养肉汤培养基、普通琼脂培养基、麦康凯琼脂培养基、血琼脂培养基、脱纤维羊血。
细菌微量生化反应管购自杭州滨和微生物试剂有限公司。
4)药物。
抗生素:头孢喹肟、氨苄西林、头孢噻呋钠、头孢氨苄、庆大霉素、克林霉素、环丙沙星、达氟沙星、四环素、泰拉霉素、磺胺嘧啶钠、氟苯尼考;消毒液:氢氧化钠、聚维酮碘、次氯酸钠、苯扎溴铵、碘附;中药注射液:板蓝根注射液、鱼腥草注射液、双黄连注射液,小檗碱注射液[4]。
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奶牛绿脓杆菌的分离与鉴定
摘要:应用细菌学培养分离技术,从产后死于出血性、败血性坏死肺炎及子宫炎的奶牛肺、子宫子叶组织中分离出一株病原菌;通过细菌形态、染色特性及培养特性观察结合生化实验确定该病原分离株为绿脓杆菌,并通过药敏实验筛选出了环丙沙星、羧苄青霉素等对该菌敏感的药物。
关键词:奶牛;绿脓杆菌;分离鉴定
前言
绿脓杆菌病又称出血性肺炎,是一种人畜共患的传染病,是一种条件性病原菌,对人、畜均有一定程度的危害,因常对肉、蛋、奶的污染引起公共卫生的关注[1,2]。
本病在人主要表现为烧伤,外科的术后感染,但也见于癌症病人或年老体弱者的重症感染。
在动物常见于内脏器官脓肿,如乳牛子宫炎,乳房炎,水貂出血性,特别是幼龄畜禽,常表现为群体的急性暴发而导致大批死亡。
2009年3月14日,阜康某牛场一头奶牛因阴门流出红褐色血液等全身症状经抢救无效而死。
本实验室对病料进行了实验室诊断,通过病原分离培养及形态特征、生化特性鉴定观察结合流行病学、临床症状,诊断为铜绿假单胞菌病既绿脓杆菌病。
1 发病情况及临床症状
2009年3月13日,昌吉某奶牛场一头奶牛于清晨4时开始阴门流出大量血液,但牛无临产症状,兽医对牛进行了引产,该牛产下一母犊为死胎,产后该牛饮食欲废绝,至3月14日胎衣未下,且阴门流出红褐色血液。
14日晚12时该牛出现严重的呼吸困难,且有疼痛表现,兽医对牛进行了强心补液及抗生素治疗,在输液过程中牛因心衰竭呼吸困难而死亡。
2 剖检变化
肺、子宫子叶严重感染,出血性坏死,颜色发黑,切开肺流出黑褐色的液体,小肠黏膜充血、出血严重。
其他器官基本正常。
3 病料采集
无菌采取病死牛的病理变化明显的肺、子宫子叶等器官进行分离鉴定。
4 病原菌分类与鉴定
4.1病原菌的分离培养[3-5]
4.1.1 组织涂片
取病牛的肺及子宫子叶组织分别涂片,革兰氏、瑞特氏、碱性美蓝染色,镜检。
在肺组织革兰氏染色涂片中可见大量两端钝圆,无芽孢及荚膜、单在或
成对革兰氏阴性中等大小杆菌,美兰染色可见着色不均的颗粒或两端浓染中等杆菌。
子宫子叶组织革兰氏染色可见大量革兰氏阴性大、中等杆菌,革兰氏阳性球菌及大杆菌。
4.1.2细菌培养
将采集的肺、子宫子叶组织分别接种于普通肉汤、厌气肝汤,37℃培养24h,观察生长情况。
结果肺组织的肉汤培养物浑浊、在表面形成初期为绿色后期变成淡褐色的薄膜,培养物发绿,染色镜检培养物可见革兰氏阴性中等杆菌。
在对子宫子叶厌气肝汤培养物的染色镜检中可见大量革兰氏阴性大、中等杆菌,革兰氏阳性球菌及大杆菌。
4.1.3纯培养及分离培养
取肺组织肉汤培养物在普通培养基上划线进行纯培养。
取子叶培养物在鲜血琼脂上用焦性没食子酸法进行厌氧纯培养和在普通琼脂上划线进行需氧菌的纯培养。
染色镜检,可见四株菌,即革兰氏阴性大,中等杆菌,革兰氏阳性球菌及大杆菌。
无菌取上述四株菌的单个菌落分别接种于普通琼脂,鲜血琼脂,SS 琼脂,普通肉汤,厌气肝汤,37ºC培养24h,肺组织的培养物在普通琼脂上长出,较大、光滑、扁平、湿润、边缘整齐的菌落,培养物发绿色,肉汤培养物浑浊呈黄绿色。
子叶培养物在SS培养基上长出粉红色、较大、隆起边缘整齐的菌落。
在普通培养基上长出针尖大小的灰白色菌落,在鲜血培养基上进行的厌氧培养长出不容血且边缘不整齐的较大菌落。
4.2动物实验
取上述四株菌的纯培养物经腹腔注射给每只小白鼠0.2ml,每株两只(16g 左右由新疆医科大学动物室提供)。
注射革兰氏阴性中等杆菌的小白鼠在18h 内死亡,其余三种菌未造成实验动物死亡。
剖检死亡小白鼠可见肺充血,出血性坏死,淋巴结出血,水肿,肝、脾肿大有出血点,肠黏膜充血,出血严重,无菌取小白鼠的肺、肝、脾组织涂片,染色镜检,可见于注射菌株相同的细菌。
4.3 生化鉴定
取上述致死小白鼠菌株的普通琼脂培养物进行氧化酶实验,结果为阴性。
取培养物接种ATB EXPRESSION细菌自动鉴定及药敏测试仪ID 32E试条上37℃培养24h,上机鉴定,其结果如下。
ATB 鉴定系统编号:05-03-24-06
ID 32 E V2.0
ODC(鸟氨酸脱羧酶) + ADH(精氨酸双水解酶) + LDC(赖氨酸脱羧酶)–
URE(脲酶) + LARL(L-阿拉泊糖醇)- GAT (半乳糖酸盐)+
5KG(5-铜基-葡萄糖酸钠)– LIP(脂肪酶) + RP(酚红)–
BGLU(ß-葡萄糖甙酶)– MAN (甘露醇)– MAL(麦芽糖)-
IND (吲哚产生)–ßNAG N-乙酰-ß葡萄糖甙酶)–ßGAL(ß-半乳糖甙酶)–GUL (葡萄糖)– SAC (蔗糖)– LARA(L-阿拉伯糖) + DARL(D-阿拉伯糖醇)– aGLU(a-葡萄糖)- aGAL(a-半乳糖甙酶)–
TRE(海藻糖) - RHA (鼠李糖)– INO (肌醇)–
ADO(侧金盏花醇)– PLE –ßGUR(ß-葡萄糖酸酶)–
CEL(纤维二糖)– SOR (山梨醇)– aMAL(a-麦芽糖甙酶)–MNT(酸丙二) + AspA (L-天门冬素芳胺酶)–
================================================================== 非常好鉴定结果
铜绿假单胞菌……………………………………………%id=99.9
次选择
荧光假单假胞菌…………………………………………%id=0.1
4.4 药敏实验
取上述革兰氏阴性致病菌的纯培养物作药敏实验(药敏纸片由北京天坛药物生物技术开发公司提供,批好:200404)。
结果是羟苄青霉素、环丙沙星、诺氟沙星效果明显,氧氟沙星、庆大霉素效果不明显,头孢拉定、氨苄西林、青霉素等没有效果。
5 防制
5.1加强饲养管理,立即停止饲喂发霉麸皮,避免因不断摄入发霉饲料产生的有毒物质引起中毒,为绿脓杆菌的感染提供机会。
5.2牛舍内应用福尔马林彻底消毒,搞好环境卫生。
5.3据报道:绿脓杆菌对庆大霉素、多粘霉素、羧苄青霉素和磺胺嘧啶、新霉素、链霉素、卡那霉素敏感[6],用于治疗本病。
本实验室的药敏结果显示,该菌对环丙沙星最敏感,其次为羧苄青霉素、诺氟沙星。
氧氟沙星,庆大霉素效果不明显。
对头孢拉定、氨苄西林、青霉素等药物不敏感。
6 讨论
6.1 经观察临床症状,病理剖检变化,实验室细菌鉴定,确诊为绿脓杆菌病。
前期临床兽医未能确诊病因,用青霉素等本菌有耐药性的药物治疗,使病情进一步扩散的直接原因。
6.2 绿脓杆菌,广泛存在于水、土壤、空气、动物的肠道和皮肤,为一种条件性致病菌。
若家畜体内外有创伤,该菌会在入侵之处定居下来,并迅速分裂繁殖,再多数情况下形成居灶性脓肿,故该菌是一些疾病如脑膜炎,奶牛乳房炎、子宫炎、霉形体病、鸡痘的继发菌。
有报道,该菌与葡萄球菌,大肠杆菌混和感染。
该牛可能患有子宫炎,后来进行引产,助产使子宫感染进一步加重,且有球菌与大肠杆菌混合感染,是诱发绿脓杆菌迅速繁殖扩散,使肺部及子宫重度感染造成出血性败血性坏死,而使奶牛死亡。
6.3 因幼畜免疫系统尚不健全,病原菌即可沿着淋巴系统进入机体内,并在组织中扩散蔓延,最后进入血液中引起菌血症[6]。
在集约化饲养不断扩大的当今世代,绿脓杆菌原发病的发病率显著上升,往往会造成幼小家畜的大群暴发。
所以应注意家畜因创伤感染及乳房炎、子宫炎等疾病引起环境污染、注射污染。
作好隔离、消毒、治疗,环境卫生,加强饲养管理是防制该病的关键。
谢辞
本论文是在自治区动物防疫监督总站的肖开提老师和动物医学学院的米克热木老师的亲切关怀和耐心指导下完成的。
各位老师在我大学的生活和学习期间倾注了大量心血,使我从中获益并顺利完成论文,老师们的严肃认真的态度使我受用终生,广博的学识,严谨的学术作风,务实的工作作风也使我毕生难忘,在此表示崇高的敬意和诚恳的感谢。
此外,要特别感谢同学们对我的关心,鼓励和帮助。
真诚地感谢五年的学习,生活中给予我关心和帮助而未提及的所有老师,同学和朋友!
最后,特别要感谢最敬爱的父母和家人,是他们在我身后默默的支持和关爱着我,使我能够有信心和力量去面对学习和生活中的困难,谨以此文献给他们,表达我对他们深深的感谢。
参考文献
[1] 蔡宝祥. 家畜传染病学.北京:中国农业出版社,2001.
[2] 费恩阁. 动物传染病学.吉林:吉林科学技术出版社,1995.
[3] 扬本升,刘玉斌.动物微生物学. 吉林:吉林科学技术出版社,1995.
[4] 汪诚天,叶祝年.兽医实验检验手册.上海:上海科学技术出版社,1984.
[5] 王世若. 兽微生物学及免疫学.吉林:吉林科学技术出版社,1990.
[6] 张道永,胡景韶.绿脓杆菌研究进展.四川畜牧兽医.1995,(3),55-58.。