westernblotting蛋白质印迹实验的流程
Western Blot技术详细操作步骤
Western Blot技术详细步骤蛋白质印记（Western Blot）是一种常用的生物技术，用于检测特定蛋白质在细胞提取物中的存在。
Western Blot基本步骤如下：1. 准备样品和设备：收集细胞或组织样品，然后使用适当的细胞裂解缓冲液将细胞破碎。
前处理样本并测定蛋白质浓度。
准备凝胶电泳设备，包括聚丙烯酰胺凝胶和Tris-glycine SDS运行缓冲液。
2. 凝胶电泳：将处理好的样品与样品缓冲液混合并加热，然后将其加载到凝胶孔中。
接着将预染蛋白质分子量标记也加载至凝胶中。
开始分子量依赖的电泳，使蛋白质在凝胶中分离。
3. 转印：将蛋白质从凝胶转移到结构更加稳定的膜载体，如聚偏氟乙烯 （PVDF）或者硝酸纤维素膜。
使用电转印或半干转印设备进行转移。
4. 封闭：为防止非特异性结合，使用5%无脂奶粉或BSA溶于TBST （Tris-缓冲的盐水加Tween 20）在膜上进行封闭。
一般封闭时间约为1小时，根据实验需求可调整。
5. 第一抗体孵育：将特异性的一抗稀释 （通常为多克隆或单克隆抗体），然后在封闭液中孵育膜。
根据抗体浓度与孵育时间进行相应优化。
6. 清洗：使用TBST清洗膜，以去除未结合的一抗。
通常需要清洗3次，每次5-10分钟不等，避免一抗非特异性结合。
7. 第二抗体孵育：将标记有荧光或酶的二抗稀释后，再次孵育膜。
封闭液中的二抗通常是与一抗长在不同宿主动物中的特异性抗体。
孵育时间需要优化。
8. 清洗：再次清洗膜，以去除未结合的二抗。
重复步骤6的清洗方法。
9. 检测：将膜放入检测设备中，如化学发光仪、荧光扫描仪等。
等待信号产生并记录结果。
测定蛋白质相对表达量的强度并进行定量分析。
10.数据分析：使用图像处理软件进行定量分析，如ImageJ等软件，并进行归一化处理，一般以内参蛋白（如β-actin, GAPDH等）数据为基准。
以上就是蛋白印记的基本操作步骤，具体细节及操作条件可能因实验室环境和试剂不同而有所差异。
蛋白质印迹显色方法
蛋白质印迹显色方法
蛋白质印迹显色方法，又称为Western blotting，是一种用于检测特定蛋白质在混合蛋白质样品中的存在和数量的方法。
其基本原理是将蛋白质样品在凝胶电泳中分离，然后将其转移至膜上，并通过与特异性抗体结合来检测目标蛋白质。
蛋白质印迹显色的具体步骤包括以下几个方面：
1. 凝胶电泳：将待检测的蛋白质样品通过凝胶电泳分离，这可以将蛋白质按照大小分开。
通常采用聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）。
2. 转膜：将分离后的蛋白质转移到硝酸纤维素或聚乙烯醇酸酯等半透膜上，这样可以将蛋白质分离出来的凝胶膜转移到膜上。
3. 阻断：在膜上阻止非特异性结合，通常采用牛血清白蛋白或者非脂类牛奶粉等阻断剂进行处理，这可以避免抗体非特异性结合。
4. 检测：将目标蛋白质进行检测，通常采用与目标蛋白质特异性的抗体进行结合，随后采用辅助抗体进行检测。
5. 显色：通过显色剂将目标蛋白质反应出来，一般采用酶标记剂如HRP和AP 等，通过产生化学反应使显色剂发色。
总的来说，蛋白质印迹显色方法是一种精确可靠的蛋白质检测方法，广泛应用于分子生物学、生物化学、免疫学等领域，可以用于检测蛋白质的相对分子量、表达水平、修饰状态等。
WB实验步骤详解
WB实验步骤详解Western blotting（简称WB）是一种常用的蛋白质检测技术，通过将蛋白质分离、转移和检测，可以用来确定特定蛋白质的存在和表达水平。
本文将详细介绍WB实验的步骤，以帮助读者了解该技术的操作流程。
1. 细胞培养和蛋白提取。
首先，需要培养细胞并收集细胞样本。
将细胞样本离心，去除培养基，然后用PBS洗涤细胞。
接下来，加入细胞裂解液并振荡离心，收集上清液，即为蛋白提取物。
2. 蛋白质浓度测定。
使用BCA或Bradford方法测定蛋白提取物的浓度，以确保后续实验中使用的蛋白质量一致。
3. SDS-PAGE凝胶电泳。
将蛋白提取物加入蛋白负载缓冲液，然后加入SDS-PAGE凝胶槽中。
进行电泳分离蛋白质，根据蛋白质大小和电荷不同，蛋白质会在凝胶中形成不同的条带。
4. 蛋白质转印。
将SDS-PAGE凝胶中的蛋白质转移到膜上，通常使用半湿式或全湿式转印。
将蛋白质从凝胶转移到膜上，使得蛋白质可以与抗体结合。
5. 阻塞。
将膜放入含有蛋白质的溶液中，如5%脱脂奶粉或蛋白质阻塞缓冲液中，阻塞非特异性结合位点。
6. 一抗孵育。
加入第一抗体，孵育过夜。
第一抗体与目标蛋白结合，形成抗原-抗体复合物。
7. 洗涤。
用TBST或PBS洗膜，去除未结合的抗体。
8. 二抗孵育。
加入HRP标记的二抗，孵育1小时。
二抗与第一抗体结合，形成复合物。
9. 洗涤。
用TBST或PBS洗膜，去除未结合的二抗。
10. 显色。
加入ECL显色液，使得膜上的蛋白质产生发光反应。
将膜放入暗室中，用X光片曝光，然后用显影液显影。
11. 图像获取和分析。
将X光片放入X光片扫描仪中，获取蛋白质条带的图像。
使用图像分析软件，如ImageJ，分析蛋白质的相对表达水平。
以上就是WB实验的详细步骤，每一步都至关重要，需要严格按照操作规程进行。
希望本文能够帮助读者更好地理解WB实验的操作流程，并在实验中取得准确、可靠的结果。
免疫印迹实验操作具体步骤及详细说明
免疫印迹实验操作具体步骤及详细说明免疫印迹（Western Blotting，简称WB）是一种常用的分子生物学技术，主要用于检测和鉴定蛋白质的存在以及其在不同样本中的表达水平。
下面将详细介绍WB实验的具体步骤。
1.细胞裂解和蛋白质提取：首先将待检测的组织样本或细胞样本通过离心将其收集，并添加适量的裂解缓冲液。
使用超声波或机械破碎手段将细胞打乱，使蛋白质溶解在裂解缓冲液中。
再通过离心去除细胞碎片和细胞核等。
2.蛋白质浓度测定：根据实验需要，采用BCA法、Lowry法或Bradford法等方法测定蛋白质浓度，以确定后续实验的载体中待加载的蛋白质量。
3.蛋白质电泳：将相同量的蛋白质样品加入SDS-凝胶槽中，进行电泳。
电泳时蛋白质在凝胶中向阴极迁移，分子量小的蛋白质迁移速度较快，分子量大的较慢。
电泳结束后，将凝胶转移到膜上。
4.膜上瞬时染色：在转移至膜上后，可以使用Ponceau S染色或其他瞬时染色方法，以确认蛋白质在膜上的存在和转移效果。
5.阻断：在膜上的蛋白质检测之前，需要对膜进行阻断处理，以防止非特异性结合。
常用的方法是在膜上加入牛血清蛋白或脱脂奶粉的溶液，进行阻断。
6.一抗反应：加入已稀释好的一抗抗体，与目标蛋白质特异性结合。
一抗的选择要根据待检测蛋白的特异性来确定。
7.清洗：一抗反应后，用TBST或PBS等缓冲液进行多次清洗，以去除未结合的一抗抗体。
8.二抗反应：9.清洗：二抗反应后，用TBST或PBS等缓冲液进行多次清洗，以去除未结合的二抗抗体。
10.显色和成像：使用显色剂（如ECL）使膜上的蛋白质发生化学发光反应，然后将膜放入X射线片中，进行曝光。
最后使用化学显影废片机或Gel Doc System等设备进行成像。
11.数据分析：使用专业的成像软件分析成像结果，计算蛋白质的相对表达水平，并与内参蛋白进行比较。
需要注意的是，在进行WB实验的过程中，要严格操作，避免污染和交叉反应的出现。
同时，应根据实验需求选择适当的试剂和抗体，并进行标记、保存和储存等操作。
westernblot法
Western blot，也称为蛋白质印迹或免疫印迹，是一种常用的生物化学技术，用于分析样品中特定蛋白质的存在、细胞中特异蛋白质的半定量分析以及蛋白质分子的相互作用研究等。
下面是Western blot的基本步骤和注意事项：一、实验步骤蛋白样品制备：从细胞或组织中提取蛋白质样品，常用的方法有细胞裂解、组织匀浆等。
蛋白定量：使用BCA蛋白浓度测定法等对蛋白质样品进行定量，以便后续的Western blot分析。
凝胶电泳：将蛋白质样品在聚丙烯酰胺凝胶中电泳分离，根据蛋白质的大小和电荷进行分离。
转膜：将电泳分离后的蛋白质样品转移到硝酸纤维素膜上，以便进行后续的免疫检测。
免疫检测：使用特异性抗体对转移后的蛋白质样品进行免疫检测，抗体与目标蛋白质结合后，通过显色反应呈现阳性结果。
数据分析：对免疫检测结果进行定量和定性分析，如条带大小、灰度值等。
二、注意事项实验前要充分了解实验原理和操作流程，确保实验的正确性和可行性。
蛋白样品制备过程中要保证细胞或组织充分裂解和匀浆，以获得更纯的蛋白质样品。
在进行Western blot分析前，要对蛋白质样品进行定量，以保证实验结果的准确性。
在转膜过程中，要选择合适的转移缓冲液和转移时间，以保证蛋白质样品的完整转移。
在免疫检测过程中，要选择合适的抗体和显色试剂，以保证免疫检测结果的特异性。
在数据分析过程中，要选择合适的分析方法和软件，以保证数据分析的准确性和可靠性。
总之，Western blot是一种常用的生物化学技术，在蛋白质分析领域具有广泛的应用价值。
在进行Western blot实验时，要严格遵守实验步骤和注意事项，以保证实验结果的准确性和可靠性。
蛋白质免疫印迹(Western Blot )实验步骤和原理及注意事项
蛋白质免疫印迹（Western Blot ）实验步骤和原理及注意事项1.收集蛋白样品(Protein sample preparation)可以使用适当的裂解液。
收集完蛋白样品后，为确保每个蛋白样品的上样量一致，需要测定每个蛋白样品的蛋白浓度。
根据所使用的裂解液的不同，需要采用适当的蛋白浓度测定方法。
因为不同的蛋白浓度测定方法对于一些去垢剂和还原剂等的兼容性差别很大。
BCA法。
2. 电泳(Electrophoresis)(1) SDS-PAGE凝胶配制(2) 样品处理在收集的蛋白样品中加入适量浓缩的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液。
例如2X或5X的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液。
使用5X的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液可以减小上样体积，在相同体积的上样孔内可以上样更多的蛋白样品。
100℃或沸水浴加热3-5分钟，以充分变性蛋白（根据蛋白分子的大小，煮沸时间可适当变化，一般不低于5min。
煮沸只是变性蛋白，而不是分解，一般加了抑制酶不会分解。
煮沸对于SDS-PAGE凝胶电泳是必须的，只有煮沸,才能消除蛋白质的立体二级结构,伸展为一维线性结构,所以一般来讲二聚体都会解体,才能完全按照分子量跑电泳,加的蛋白Marker才有指示分子量的意义。
蛋白样品变性后与SDS充分结合，SDS使每个氨基酸带相同的电荷,使整个蛋白呈线性结构. 抗体因为要是线性表位结合的，100度煮10min 后13000,离心5分钟,取上清电泳,因为沉淀会导致拖尾.也可以取上清到另一管,4度可以放一周备再次电泳）。
(3)电泳i.清洗玻璃板：一只手扣紧玻璃板，另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。
两面都擦洗过后用自来水冲，再用蒸馏水冲洗干净后立在筐里晾干。
ii.灌胶与上样（1）玻璃板对齐后放入夹中卡紧。
然后垂直卡在架子上准备灌胶。
（操作时要使两玻璃对齐，以免漏胶。
）（2）配10%分离胶，加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。
灌胶时，可用10 ml枪吸取5 ml胶沿玻璃放出，待胶面升到绿带中间线高度时即可。
western-blot实验操作步骤
western-blot实验操作步骤Western，也称Western blot、Western blotting、Western印迹，是用抗体检测蛋白的重要方法之一。
可按照以下步骤操作。
1.收集蛋白样品(Protein sample preparation)使用细胞裂解液，对贴壁细胞、悬浮细胞或组织样品进行裂解。
然后测定每个蛋白样品的蛋白浓度。
2. 电泳(Electrophoresis)(1) SDS-PAGE凝胶配制SDS-PAGE凝胶（分离胶及浓缩胶）可以参考一些文献资料进行配制(2) 样品处理在收集的蛋白样品中加入适量浓缩的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液。
例如2X或5X的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液。
使用5X的SDS-PAGE 蛋白上样缓冲液可以减小上样体积，在相同体积的上样孔内可以上样更多的蛋白样品。
5X的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液可以参考相关文献资料配制， 100℃或沸水浴加热3-5分钟，以充分变性蛋白。
(3) 上样与电泳（1）冷却到室温后，把蛋白样品直接上样到SDS-PAGE胶加样孔内即可。
为了便于观察电泳效果和转膜效果，以及判断蛋白分子量大小，最好使用预染蛋白质分子量标准。
（2）电泳时通常推荐在上层胶时使用低电压恒压电泳，而在溴酚蓝进入下层胶时使用高电压恒压电泳。
对于Bio-Rad的标准电泳装置或类似电泳装置，低电压可以设置在80-100V，高电压可以设置在120V左右。
（3）为了电泳方便起见，也可以采用整个SDS-PAGE过程恒压的方式，通常把电压设置在100V，然后设定定时时间为90－120分钟。
设置定时可以避免经常发生的电泳过头。
通常电泳时溴酚蓝到达胶的底端处附近即可停止电泳，或者可以根据预染蛋白质分子量标准的电泳情况，预计目的蛋白已经被适当分离后即可停止电泳。
3. 转膜(Transfer)（1）我们推荐在Western实验中选用PVDF膜。
硝酸纤维素膜(NC膜)也可以使用，但硝酸纤维素膜比较脆，在操作过程中特别是用镊子夹取等过程中容易裂开。
蛋白质印迹(Western blotting)
蛋白质印迹(Western blotting)一、实验目的：免疫印迹主要用于蛋白质的结构和活性检测等方面，学生掌握与免疫印迹相关的原理和方法，如电泳技术，转膜技术等。
二、实验原理：蛋白质印迹(Western blotting)是将蛋白质转移并固定在化学合成膜的支撑物上，然后以特定的亲和反应、免疫反应或结合反应及显色系统分析此印迹。
蛋白质印迹(免疫印迹)的实验包括5个步骤：1)固定(immobilization)：蛋白质进行聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)，强度比较差，需要从胶上转移到硝酸纤维素膜上。
2)封闭(blocked)：保持膜上没有特殊抗体结合的场所，使场所处于饱和状态，用以保护特异性抗体结合到膜上,并与蛋白质反应。
3)初级抗体(第一抗体)是特异性的。
4)第二抗体或配体试剂对于初级抗体是特异性结合并作为指示物。
5)适当保温后的酶标记蛋白质区带，产生可见的、不溶解状态的颜色反应。
三、试剂与器材：试剂:(1)人IgG免疫兔的抗血清；(2)辣根过氧化酶一羊抗兔IgG；(3)PBS缓冲液：NaCl 8 g，KCl 0.2 g，KH2P04 O．24 g，Na2HP04·12H20 2.9 g，加蒸馏水至1000 ml，pH值为7.4；(4)PBS-T缓冲液：PBS缓冲液加O.05 9／6 Tween-20；(5)封闭液：0.5％(质量分数)BSA(用PBS缓冲液配制)；(6)底物溶液：A液：溶解30 mg CN在5 ml甲醇中；B液：溶解10 mg DAB在5 ml甲醇中；C液：分别搅拌A液和B液10～15 rain，直到完全溶解，然后将A液和B液混合，加PBS至50 ml，分成10 ml 一份，不用的可冷冻(一20~C)(下次直接化冻运用)；D液：取10 ml C液，运用时加10 ml 30％(体积分数)H202；(7)转移缓冲液：0.025 mol／L Tris，O．192 mol／L甘氨酸(glycine)，20％(体积分数)甲醇(methan01)，pH值为8.3。
Western blot(蛋白印迹法)详细步骤
Western blot（蛋白印迹法）详细步骤一、组织的研磨准备：研钵、研磨棒、EP管、药匙、液氮、液氮匙、自封袋、一次性手套、棉手套步骤：①用研磨棒将装有冻存组织的EP管敲碎，取出组织，在研钵中盛满液氮，用力敲碎组织，研磨。
②研磨过程中一旦液氮干了，立即加入液氮，保持研磨在液氮中进行，直至组织呈干粉状。
③用在液氮中浸泡过的药匙将研磨好的粉末盛入新的EP管中。
④装有组织粉末的EP管现在液氮中保存，待所有组织都研磨结束后装入自封袋，于-80℃保存。
注意：1.研钵使用前要用锡纸包口、研磨棒用锡纸包头，在烘箱中烘烤180℃至少3h 以上。
2.组织研磨成粉末后待液氮全部挥发后再将组织粉末装管。
3.每种样品都最好留有副管，备用。
二、裂解提蛋白准备：裂解液配制比例RIPA:PMSF=1000：10=100：1若需要加入蛋白酶抑制剂，则比例一般为1:1000（即1ml裂解液加1μl蛋白酶抑制剂）步骤：①将RIPA和PMSF按比例混匀，加入到装有组织粉末的EP管中，一般加入300~500μl左右（浓度尽量高点）。
②盖好盖子，在冰上裂解30~40min.③到时间后于4℃，12000rpm离心10min，取上清液转移到新的离心管中，于-20℃保存。
注意：1.裂解液加入后用手指弹一下混匀，当加入量很少时，成粘稠状，有必要时应用枪头混匀。
三、BCA法测定蛋白浓度（BCA试剂盒）准备：BCA试剂盒（BCA试剂A、BCA试剂B、蛋白标准液）、酶标板、酶标仪、摇床步骤：①按1:15或1:30稀释待测样品，即取1μl样品+14μl水。
③按50体积BCA试剂A加1体积BCA试剂B（50:1）根据样品数量配制BCA工作液。
④每个标准品孔加入200μl BCA工作液，样品孔加入待测样品10μl和200μlBCA工作液，充分混匀，在摇床上震荡30s，37℃放置30min，于492nm下测定OD值。
⑤标准曲线以蛋白含量（μg）为横坐标，吸光度为纵坐标，根据样品的吸光度可以在标准曲线上查得相应的蛋白含量。
WB实验步骤详解
WB实验步骤详解WB实验（Western Blotting）是一种用于检测和鉴定蛋白质的实验技术。
在WB实验中，通常将目标蛋白质从混合蛋白样本中分离出来，然后通过电泳将其分离在聚丙烯酰胺凝胶上，并利用蛋白质转印技术将蛋白质迁移到膜上。
最后，使用特异性抗体进行免疫染色来检测目标蛋白质。
下面是WB实验的详细步骤：1.提取蛋白质：首先，从细胞、组织样本中提取蛋白质。
这个步骤可以使用不同的方法，例如细胞裂解、组织切碎和离心等。
提取的蛋白质可以用于整个WB实验的下一步。
2.蛋白质电泳分离：将提取的蛋白质样本与样品缓冲液混合，然后加载到聚丙烯酰胺凝胶上。
通常使用的凝胶是SDS-（聚丙烯酰胺凝胶电泳），该凝胶根据蛋白质的分子量将其分离开来。
样品加载完毕后，通电进行电泳分离。
较小的蛋白质会迁移到凝胶的上部，较大的蛋白质会停留在凝胶的下部。
3.转印：将电泳分离后的蛋白质转移到膜上。
通常使用的膜是聚偏氟乙烯（PVDF）或硝酸纤维素膜。
在转印之前，通常将凝胶浸泡在转移缓冲液中以增强转印效果。
然后，将凝胶与膜、滤纸层堆叠在一起，将其放置在转印装置中，施加电流进行蛋白质转印。
4.阻断：将转印完成的膜孔洞中的非特异性结合位点进行阻断。
阻断是为了防止以后的抗原-抗体反应受到非特异性结合的干扰。
最常用的阻断剂是1%-5%的非脂牛奶粉或5%-10%的牛血清蛋白。
5.抗体孵育：使用特异性的抗体来检测目标蛋白质。
首先将抗体稀释在主抗体稀释液中，然后将其加到阻断后的膜上进行孵育。
通常在4℃下过夜孵育，使抗体与目标蛋白质结合。
选择合适的抗体对于获得准确的结果非常重要。
6.辅助抗体孵育：将特异性抗体之外的次级抗体添加到膜上，用于识别已结合的主抗体。
这些次级抗体通常与酶（如辣根过氧化物酶）或荧光染料标记进行共轭，以便于标记的抗体的检测。
次级抗体与主抗体结合形成复合物。
7.检测：使用特定的检测方法来显示已结合的抗体。
这些方法可以使用酶标法（如辣根过氧化物酶反应和色素显色）或荧光技术（如荧光染料）。
westernblotting实验操作步骤讲解
westernblotting实验操作步骤讲解蛋⽩免疫印迹杂交（Western Blot, WB）WB是将蛋⽩样本通过聚丙烯酰胺电泳按分⼦量⼤⼩分离，再转移到杂交膜上，然后通过⼀抗/⼆抗复合物对靶蛋⽩进⾏特异性检测的⽅法。
WB 是进⾏微量蛋⽩质分析⽐较成熟的技术之⼀。
以下是总结Western Blot 操作⽅法及常见问题分析，有助于成功完成WB。
A第⼀部分：蛋⽩样本提取制备蛋⽩样品制备是Western Blotting的第⼀步，更是决定WB成败的关键步骤，总体原则和注意事项：1.尽可能提取完全或降低样本复杂度只集中于提取⽬的蛋⽩（通过采⽤不同提取⽅法或选择不同的试剂盒产品）；2.保持蛋⽩处于溶解状态（通过裂解液的pH 、盐浓度、表⾯活性剂、还原剂等的选择）；3.提取过程防⽌蛋⽩降解、聚集、沉淀、修饰等，（低温操作，加⼊合适的蛋⽩酶和磷酸酶抑制剂）；4.尽量去除核酸，多糖，脂类等⼲扰分⼦（通过加⼊核酸酶或采取不同提取策略）；5.样品分装，长期于-80℃中保存，避免反复冻融。
⽅法的选择◆⾃⾏配制抽提试剂，根据⽂献⽅法或经验提取；◆购买商品化试剂盒，按其说明书的⽅法提取。
Example 1：实验中提取肾脏总蛋⽩，具体实验过程如下：1.提前⼀天4℃解冻RIPA，⼀定要完全融化；配PBS（⽤于细胞试验则需⾼压）；2.配制裂解液：PMSF:RIPA=1:99,PMSF终浓度为100mM（根据样本数配制所需的量，临⽤临配）；3.裂解组织：每个样品称取100mg，加1ml裂解液，匀浆后4℃静置2h使其充分裂解，14000g，4℃离⼼10min，取上清。
4.蛋⽩定量：取少量上清稀释30倍蛋⽩定量，然后计算出各样本原液蛋⽩浓度。
注意由于裂解液⾥含有较⾼浓度的洗涤剂，蛋⽩定量不能选⽤Bradford法，可以选⽤改良的Lowry’s法或者BCA法。
5.样品蛋⽩浓度均⼀化：根据蛋⽩定量计算的结果将各样品蛋⽩浓度调整⼀致。
WB实验步骤详解
WB实验步骤详解Western blotting (WB)是一种用于检测蛋白质的技术，它可以分析蛋白质的大小、数量和结构。
WB通常用于检测特定蛋白质在细胞或组织中的表达水平，以及蛋白质的修饰状态。
本文将详细介绍WB实验的步骤，以帮助读者更好地理解和掌握这一技术。
步骤一，细胞或组织的裂解。
WB实验的第一步是将细胞或组织裂解，以释放蛋白质。
通常使用RIPA缓冲液或其它含有蛋白酶抑制剂的裂解液来裂解细胞或组织。
裂解液中的蛋白酶抑制剂可以防止蛋白质在裂解过程中被降解，保证蛋白质的完整性。
步骤二，蛋白质的分离。
裂解后的细胞或组织中含有大量的蛋白质，需要将这些蛋白质分离出来。
通常使用聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）来分离蛋白质。
SDS-PAGE可以根据蛋白质的大小将其分离成不同的条带，方便后续的检测。
步骤三，将蛋白质转移到膜上。
分离后的蛋白质需要转移到膜上，以便进行免疫印迹检测。
通常使用半湿式或全湿式电泳转印系统将蛋白质转移到聚偏氟乙烯（PVDF）或硝酸纤维素膜上。
转印的时间和电压需要根据蛋白质的大小和数量来确定。
步骤四，膜的封闭。
转移完蛋白质后，需要将膜进行封闭，以防止非特异性结合。
封闭通常使用5%脱脂奶粉或蛋白质封闭剂进行，可以有效地减少非特异性结合，并提高抗体对目标蛋白的特异性识别。
步骤五，抗体的孵育。
封闭后的膜需要与特异性的一抗进行孵育。
一抗可以是针对目标蛋白的单克隆或多克隆抗体。
孵育时间和温度需要根据抗体的性质来确定，通常在4°C下孵育一晚上。
步骤六，膜的洗涤。
孵育完一抗后，需要对膜进行洗涤，以去除未结合的抗体和非特异性结合。
洗涤液通常是含有Tween-20的PBS或TBST缓冲液，需要进行多次洗涤以确保膜的干净。
步骤七，二抗的孵育。
洗涤完膜后，需要与特异性的二抗进行孵育。
二抗通常是与酶或荧光素结合的抗体，可以识别一抗并发出特定的信号。
孵育时间和温度需要根据二抗的性质来确定。
步骤八，膜的洗涤。
Westernblot实验步骤及注意事项
Westernblot实验步骤及注意事项Westernblot 实验步骤1. 组织块称重2. 利用液氮、研钵粉碎组织块3. 加入RIPA缓冲液（每克组织3 ml RIPA），PMSF（每克组织30μl，10 mg/ml PMSF），利用Polytron进一步匀浆（15,000转/分*1分钟）维持4℃4. 加入PMSF（每克组织30μl，10 mg/ml PMSF），冰上孵育30分钟5. 移入离心管4℃约20,000 g（约15,000转）15分钟6. 上清液为细胞裂解液可分装-20℃保存7. 进行Bradford比色法测定蛋白质浓度8. 取相同质量的细胞裂解液（体积*蛋白质浓度），并加等体积的2×电泳加样缓冲液9. 沸水浴中3分钟10. 上样11. 电泳（浓缩胶20mA，分离胶35mA）12. 电转膜仪转膜（100mA 40分钟）13. 膜用丽春红染色，胶用考马斯亮蓝染色14. Westernblot 试剂盒显色15. 分析比较记录western blot的实验步骤及注意事项的资料1. 把聚丙烯酰胺凝胶中的蛋白质电泳转移到硝酸纤维膜上。
1）转移缓冲液洗涤凝胶和硝酸纤维素膜，将硝酸纤维素膜铺在凝胶上，用5ml 移液管在凝胶上来回滚动去除所有的气泡。
2）在凝胶/滤膜外再包一张3mm滤纸（预先用转移缓冲液浸湿），将凝胶夹在中间，保持湿润和没有气泡。
3）将此滤纸/凝胶/薄膜滤纸按照厂家建议方法放入电泳装置中，凝胶面向阴极。
4）将上述装置放入缓冲液槽中，并灌满转移缓冲液以淹没凝胶。
5）按照厂家所示接通电源开始电泳转移。
6）转移结束后，取出薄膜和凝胶，弃去凝胶。
2. 将薄膜漂在氨基黑中快速染色，直至分子量标准显现时取出，记录下标准位置。
3. 用100ml水洗涤纤维素膜，必要时可用脱色缓冲液。
4. 膜置印迹缓冲液中于37℃保温1小时。
5. 室温下，用PBS-Tween缓冲液洗涤薄膜。
6. 用封口机将薄膜封入塑料袋中，尽可能不留空气。
westernblotting原理
westernblotting原理
Western blotting，又称蛋白质印迹或免疫印迹，是一种用于检测特定蛋白质在复杂样品中的存在和表达水平的分子生物学技术。
其基本原理可以分为以下几个步骤：
1. 蛋白质样品制备：首先，需要从细胞或组织中提取蛋白质，并将其稀释到适合的浓度。
2. 凝胶电泳分离：将提取的蛋白质样品加入凝胶（通常是聚丙烯酰胺凝胶）中，并通过电泳分离。
由于不同蛋白质的带电性质和分子质量不同，它们在凝胶中会分离出不同的条带。
3. 蛋白质转移：将凝胶中的蛋白质转移到一种名为硝酸纤维素（nitrocellulose）或聚偏氟乙烯（PVDF）的膜上。
这一步骤称为蛋白质转移或印迹。
蛋白质通过范德华力或电场力从凝胶转移到膜上，保证了其在膜上的空间位置与在凝胶中一致。
4. blocking：为了减少非特异性结合，需要在膜上加入一种阻断剂（如牛奶或BSA）来覆盖未被蛋白质占据的膜表面。
5. 抗原-抗体反应：将特异性抗体（通常为辣根过氧化物酶或酶联免
疫吸附测定中的酶标记抗体）与膜上的目标蛋白质结合。
这些抗体识别并与其特异性结合的目标蛋白质。
6. 检测和显色：使用一种带有酶的检测抗体（第二抗体）与第一抗体结合。
这种酶标记的第二抗体可以催化底物转化为可见的色产物。
通过化学反应，颜色的深浅与目标蛋白质在样品中的含量成正比。
7. 数据分析：最后，通过图像分析或光密度计来量化膜上的蛋白带，从而分析样品中特定蛋白质的表达水平。
总之，Western blotting是一种强大的技术，可以用于定性和定量分析样品中的特定蛋白质，是分子生物学和生物化学中不可或缺的工具。
实验七蛋白质免疫印迹实验WesternBlotting
Western Blotting 是用来检测蛋白质的一种技术。
首先将含有待测蛋白的蛋白质混合物进行凝胶电泳分离， 然后将已经分离的蛋白质通支持物目前常为硝酸纤维素薄膜。 随后以待测蛋白质上抗原决定簇特异性的抗体（称为第 一抗体）为探针，与固体支持物上的蛋白质进行免疫反 应，最后用偶联有辣根过氧化物酶或碱性磷酸酯酶的抗 第一抗体的抗体（第二抗体）与第一抗体进行免疫反应， 只有与第一抗体特异性结合的待测蛋白才能与第二抗体 发生免疫反应。在有辣根过氧化物酶的底物用显色剂存 在时就会出现颜色反应，结合有第一抗体、第二抗体的 待测蛋白，通过颜色反应即能显现出来。
三 操作步骤
2显色反应 首先进行分子量标记的氨基黑染色。切
下转有分子量标记的硝酸纤维素薄膜， 用含有0.3%吐温20的PBS缓冲液漂洗三 次后（每次15分钟），再将其浸入氨基 黑染液中，室温染色5分钟，然后置于 氨基黑脱色液中脱去背景，水中漂洗后 景干备用。
三 操作步骤
转有样品的硝酸纤维素薄膜用含有5%脱脂牛奶的PBS 缓冲液在室温下封闭2小时，同时1：100加入兔抗GST 第一抗体，平缓摇动，室温保温1小时。然后用PBS缓 冲液将硝酸纤维素薄膜漂洗4次，每次 30分钟。将辣 根过氧分物酶标记的羊抗兔免疫球蛋白第二抗 体用封 闭液稀释50倍后，加入吐温20至终浓度为0.05%，然 后与上述漂洗的硝酸纤维素薄膜进行反应，将膜浸于 其中，平放在平缓摇动的摇床平台上，室温温育 1小 时后，用PBS缓冲液将硝酸纤维素薄膜漂洗4次，每次 5 分 钟 ， 再 加 入 4- 氯 萘 酚 显 色 液 ， 加 入 5μ1 的 30%H2O2，将硝酸纤维素薄膜置于其中缓慢摇动，待 所检测的蛋白带显色达到最深程度后，将硝酸纤维素 薄膜转入 PBS 溶液中停止显色反应。取出硝酸纤维素 薄膜，自然晾干后拍照保存结果。
western blotting原理及步骤
western blotting原理及步骤
Western blotting，也称为蛋白质印迹，是一种用于检测样品中特异性蛋白质的存在、细胞中特异蛋白质的半定量分析以及蛋白质分子的相互作用研究等的技术。
其原理基于抗原-抗体的特异性结合反应，通过将样品中的蛋白质进行电泳分离，然后转移到固相载体上，再与特异性抗体进行孵育，最后通过显色反应检测目标蛋白质的存在和位置。
Western blotting的步骤一般包括以下几步：
1. 样品制备：从细胞或组织中提取蛋白质样品，并进行浓度测定和保存。
2. 电泳分离：将样品中的蛋白质进行电泳分离，根据其分子量和电荷的不同，将蛋白质分开。
3. 转膜：将电泳分离后的蛋白质转移到固相载体上，常用的载体有硝酸纤维素膜、PVDF膜等。
4. 封闭：用特定的封闭液将膜封闭，以减少非特异性结合。
5. 孵育：将特异性抗体与膜孵育，使抗体与目标蛋白质结合。
6. 洗膜：用洗涤液将未结合的抗体洗去，减少背景干扰。
7. 显色：加入显色液，使抗体-抗原结合部位显色，从而检测到目标蛋白质的存在和位置。
8. 数据分析：对显色结果进行定量和定性分析，以获得目标蛋白质的表达情况和相互作用信息。
Western blotting具有较高的灵敏度和特异性，可以检测低浓度的蛋白质，并且可以半定量分析蛋白质的表达水平。
同时，Western blotting也可以用于研究蛋白质分子的相互作用。
然而，由于其步骤繁琐且易受干扰，Western blotting 的操作需要严格的质量控制和技术培训。
1。
蛋白印记操作流程
蛋白印记操作流程
蛋白印记（WesternBlot）是一种常用的生物学实验技术，主要用于检测和分析蛋白质在细胞或组织中的表达情况。
以下是蛋白印记的基本操作流程：
样品制备：首先，从细胞或组织中提取蛋白质。
对于细胞样品，通常需要将细胞破碎并溶解在裂解液中。
对于组织样品，可能需要将组织切成小块并加入预冷的裂解液进行匀浆。
然后，通过离心去除细胞碎片或未溶解的组织残渣，收集上清液作为蛋白质样品。
蛋白质定量：接着，对提取的蛋白质进行定量。
这可以通过使用蛋白质定量试剂盒或分光光度计等方法来完成。
蛋白质定量的准确性对于后续的实验步骤至关重要。
SDS-PAGE电泳：将定量后的蛋白质样品与SDS-PAGE上样缓冲液混合，并在一定温度下预热。
然后，将样品加入聚丙烯酰胺凝胶中进行电泳。
电泳过程中，蛋白质会根据其分子量大小在凝胶中分离。
转膜：电泳结束后，将凝胶上的蛋白质转移到硝酸纤维素膜或聚偏二氟乙烯膜上。
这一步通常通过电泳或真空转移法完成。
免疫检测：转膜后，使用特定的抗体与膜上的蛋白质进行免疫反应。
这通常包括一抗孵育、洗涤、二抗孵育和再次洗涤等步骤。
一抗是针对目标蛋白质的特异性抗体，而二抗则是与一抗结合的标记抗体，用于后续的显色反应。
显色与结果分析：最后，通过显色反应（如化学发光或荧光检测）来可视化抗体与蛋白质的结合情况。
根据显色结果，可以分析目标蛋白质在样品中的表达水平和分布情况。
整个操作流程需要严格遵循实验规范，确保实验结果的准确性和可靠性。
同时，还需要注意实验过程中的安全事项，如佩戴防护眼镜和手套等。
蛋白质印迹(Western blotting)实验操作步骤
蛋白质印迹/Western blotting实验操作步骤一、总蛋白的提取单层贴壁细胞总蛋白的提取：1)吸除培养液2)每皿细胞加4℃预冷的 PBS。
平放轻轻摇动 1min 洗涤细胞，然后弃去洗液。
重复上操作两次，共洗细胞三次以洗去培养液。
将PBS弃净后把培养瓶置于冰上。
（PBS会降低细胞裂解液的效价和总蛋白的浓度）3)加裂解液于冰上裂解 30 min，为使细胞充分裂解，培养瓶要经常来回摇动（可放置在4℃摇床裂解）。
4)裂解完后，用干净的刮棒将细胞刮于培养瓶的一侧（动作要快），然后用枪将细胞碎片和裂解液移至 1.5mL 离心管中。
（整个操作尽量在冰上进行）5)在EP管中将细胞震碎（10s/次，3次）6)于4℃下 12000rpm 离心 20-30 min。
（离心机提前预冷至4℃）7)将离心后的上清分装转移倒 1.5mL 的离心管中放于－20℃保存。
二、BCA法测蛋白浓度1)将BCA protein assay每孔 A液200μL,B液4μL混合，96孔板每孔加入22.5μLdd水，2.5μL蛋白提取液，200μLA+B混合液2)在烘箱中37℃，90r，孵育30min3)使用酶标仪测出吸光度后，使用公式y=0.9154x-0.118计算出蛋白浓度（浓度需要×10）4)将蛋白配成等浓度等体积（使用配置好的裂解液配），按照4：1加入5X loading buffer然后煮5min（100℃），放入-20℃保存三、SDS-PAGE电泳板子1.5mm，梳子1.5mm1）清洗玻璃板：一只手扣紧玻璃板，另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。
两面都擦洗过后用自来水冲洗2）验漏：玻璃板对齐后放入夹中卡紧，然后垂直卡在架子上，加满水验漏3）灌胶：验漏结束后用纸吸干水分，按方法配制下层胶（4mL+4mL+80μLAP),灌胶时，可用 1mL 枪吸取胶沿玻璃放出，待胶面升到绿带中间线高度时即可。
然后胶上加1 mL水，液封后的胶凝的更快。
蛋白质印迹法
蛋白质印迹法蛋白质印迹法（ProteinBlotting）是一种用于检测、调控和鉴定蛋白质水平的技术，通常也被称为蛋白质免疫印迹（Immunoblotting）、西方印迹（Western Blotting）或免疫印迹（Immunoblotting）。
它能够快速、准确、重复地测定一个新蛋白质或大量存在的蛋白质，令科学家们能够衡量蛋白质的含量以及细胞蛋白质的变化。
蛋白质印迹法包含用于分离和检测特定蛋白的一系列的步骤。
首先，蛋白质被用碱性和硫酸性溶剂分离出来，然后用紫外线伤害法进行转换，最后通过免疫印迹法测定所需的蛋白质的含量。
蛋白质印迹法的第一步是将细胞蛋白质提取出来，用特定溶剂获得有机液体，其中包含有蛋白质、糖、脂肪酸以及一些其它物质。
用碱性或硫酸性溶液将细胞蛋白质沉淀出来，然后用紫外线伤害法进行转换，将沉淀的蛋白质释放出来，使其可以测定。
接下来的步骤是用免疫印迹法测量特定蛋白质的含量。
这项技术使用对蛋白质特异性的特殊抗体，与待检测蛋白质发生作用，最后将抗体与特定蛋白质结合在一起，使得它们在一个总称为“印迹”的图像上形成可见的标记。
通过观察抗体把特定蛋白质印在“印迹”上时形成的标记，就可以测定检测蛋白质的含量。
蛋白质印迹法在研究蛋白质分子生物学、微生物学、免疫学等各个领域中都发挥着重要作用，在癌症检测中也发挥着重要作用。
通过蛋白质印迹法，研究人员可以快速、准确地测量和监测肿瘤相关的蛋白质，从而有助于癌症的早期发现，从而使得治疗更加有效。
另外，蛋白质印迹法还可以用于研究各种亚细胞定位的蛋白质，有助于科学家们更好地理解蛋白质的功能。
蛋白质印迹法在细胞生物学的研究中也有着重要的应用，它可以帮助科学家们快速、准确地测定细胞里某种蛋白质的含量，从而更好地理解细胞的结构和功能。
总的来说，蛋白质印迹法不仅是一种快速、准确的技术，而且是一种重要的技术，有助于科学家们更好地检测、调控以及鉴定蛋白质水平。
随着科学技术的发展，蛋白质印迹法在治疗和疾病诊断方面也会起到越来越重要的作用。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
实用标准文案
细胞总蛋白的提取
（1）离心后，弃去上清液，将收集的细胞用手指轻弹重悬于剩余的少量上清液中，转移至1.5ml 离心管内，用1×PBS溶液洗涤2次，每次加入1mL PBS溶液，1000r/min，4℃离心5min，弃上层液体。
洗涤两次后，将上清液完全去除，用手指轻弹细胞团，使其分散重悬（若不分散，则无法与裂解液充分混匀）。
（2）每管加入细胞团等体积的含蛋白酶抑制剂cocktail的RIPA细胞裂解液；如需检测磷酸化蛋白，则需另加入磷酸酶抑制剂。
使细胞裂解液与细胞充分混匀，冰上裂解30min。
如暂不提取蛋白，也可在洗涤细胞2次后加入含蛋白酶抑制剂cocktail和磷酸酶抑制剂的1×PBS约100μL，1000r/min，4℃离心5min后，完全弃上层液体，置于-80℃冰箱保存备用。
（3）冰上超声处理细胞，每次超声2s，间隔3s，约10-20次。
（4）13000r/min，4℃离心15min，收集上清溶液至另一干净并预冷的1.5mL离心管中，于-80℃冰箱保存备用。
2. BCA法测定蛋白质浓度
（1）配制工作液
根据标准品及待测样品的个数，按BCA试剂A和试剂B体积比为50:1配制足量BCA工作液，充分混匀，置于常温备用。
（2）配制标准品
取原标准品BSA（2mg/mL）约100μL，取出50μL，用ddH2O按对数法稀释成如下浓度：1mg/mL、0.5mg/mL、0.25 mg/mL、0.125 mg/mL、0.0625 mg/mL；设置96孔板第
一横排第一孔为空白孔，第二横排第一、二孔加入20μL 1×PBS，从第三横排起，精彩文档．实用标准文案
按浓度梯度由低到高依次取20μL标准品至96孔板中，每一浓度做2个平行孔。
（3）稀释待测样品
取5μl待测蛋白样品，用ddH2O稀释到50μL，分别取20μL至96孔板中，每一浓度做2个平行孔；
（4）分别加入200μL BCA工作液到蛋白标准品及待测样品中，轻轻混匀，并去掉每孔中的气泡，置于温箱37℃孵育30min。
（5）将96孔板取出后用酶标仪测定OD570nm值。
（6）根据标准品的OD570nm值绘制标准曲线，并根据标准曲线计算得到待测样品的蛋白质浓度。
蛋白质变性
（1）根据预计将要上样的蛋白质样品质量（25μg-50μgμg，是蛋白质而定），取适量体积的蛋白质样品于预冷的EP管中，加入5×SDS上样缓冲液（体积约为蛋白质样品体积的25%），通过调节上样缓冲液的体积将各样品混合液的终体积调节至相仿。
用封口膜将离心管封口，7000r/min离心点离样品混合液3s，使其混合均匀。
（2）将放置样品混合液的架子置于盛有适量dd H2O的磁盘中，用电磁炉加温至100℃，煮沸5min。
点离样品，使其混合均匀。
2.34.54. SDS-PAGE分离蛋白质
根据将要检测的蛋白质大小，首先确定配制10%的分离胶（10ml）：
dd H2O 4ml
精彩文档．
实用标准文案
30?r-Bis 3.3ml
1.0MTris-HCl（pH8.8）
2.5ml
10%SDS 0.1ml
10%AP 0.1ml
TEMED 0.005ml
将配置好的液体吹打混匀，灌胶，再用注射器将dd H2O缓慢均匀的加于分离胶上层，待胶凝固后（光下可见明显的水胶分离线）将上层水倒掉，并用滤纸尽量将水吸干（注意不要碰到分离胶）。
然后配制4%浓缩胶（3ml）：
dd H2O 1.8ml
30?r-Bis 0.4ml
1.0MTris-HCl（pH6.8）0.76ml
10%SDS 0.03ml
10%AP 0.03ml
TEMED 0.003ml
将配置好的液体吹打混匀后，迅速灌胶并马上插入梳齿，待胶充分凝固后放入垂直电泳槽内，加入电泳缓冲液，小心将梳齿拔出，每孔加入等质量变性蛋白质（根据不同的蛋白质具体的上样质量会有所变化，但相同蛋白质的上样质量始终不变）后进行电泳。
先采用80V恒压电泳约30min
后，改用100V恒压电泳约2h（具体视溴酚蓝跑到胶的最底端的时间而定）。
2.34.6 转膜
（1）预先裁剪出大小适宜的PVDF膜和滤纸，尽量使PVDF膜面积稍大于凝胶，但不大于海绵。
精彩文档．
实用标准文案
（2）电泳结束后，将凝胶剥下，小心的将浓缩胶切除，将分离胶浸泡于预冷的转移缓冲液中约15min，洗去杂质。
（3）将PVDF膜完全浸泡在甲醇中约30s。
（4）在倒满转移缓冲液的塑料盘中依次加入转膜用的夹子（正极一侧在下，保持水平）、一块海绵垫、滤纸、浸泡好的PVDF膜、浸泡好的凝胶、滤纸和另一块海绵垫，整个操作过程中要不断赶走气泡，在夹紧夹子前要确认各层中没有气泡（否则会影响转膜结果）。
（5）将夹子放入电泳转移槽中，确认夹子的正负极与转移槽正负极相对，整个转移槽埋在冰中进行转膜。
根据将要检测的蛋白质分子量大小确定转膜时间，小分子蛋白一般为恒压80V，1.5h；大分子蛋白一般为恒压100v，2h。
（6）转膜结束后打开夹子，小心去除负极一端的海绵、滤纸和胶，在PVDF膜的右上角剪一个角以确定正面，然后取出，根据预染蛋白Marker标准判断转膜效果及目的条带的大致位置。
2.34.7 免疫反应
（1）封闭：将PVDF膜浸泡于含5%脱脂奶粉的PBST封闭液中（如要检测磷酸化蛋白，则需使用含5%BSA的PBST封闭液进行封闭），室温下摇床摇动封闭约1-2h。
（2）剪膜：依据预染蛋白Marker标准判断目的蛋白的条带位置，并将其小心剪下，膜的宽度
应适当，并尽量保留周围可能出现条带的位置。
（3）一抗孵育：用5%BSA溶液将一抗稀释至适宜浓度，并加入到大小合适的孵育槽中，将剪好的PVDF膜置于其中，稀释好的一抗应当至少没过PVDF膜。
4℃下摇床摇动封闭过夜。
（4）洗膜：室温下，用1×PBST在摇床上洗涤PVDF膜4次，每次10min。
精彩文档．
实用标准文案
（5）二抗孵育：根据一抗选择相应的羊抗鼠IgG二抗或羊抗兔IgG二抗，用含5%脱脂奶粉的PBST将辣根过氧化物酶标记的二抗稀释至适宜浓度，并加入到大小合适的孵育槽中，将PVDF 膜置于槽中，室温下摇床摇动孵育2h。
（6）洗膜：室温下，用PBST在摇床上洗涤PVDF膜3次，每次10min。
2.34.8 显影
（1）用水冲洗好平板，将保鲜膜平整的铺于平板上，并用滤纸赶走气泡，将孵育好的PVDF膜取出置于保鲜膜上，放置整齐，并用滤纸轻轻吸去PVDF膜上的液体；
（2）取适量ECL试剂A、B液等体积混合后滴于PVDF膜上，避光孵育5min，用滤纸吸去剩余的发光试剂，并将平板放入凝胶扫描成像系统中，根据荧光强度确定曝光时间（5s-30min）。
待成像后将图片以.tif格式保存。
（3）用灰度分析软件Quantity One软件对实验结果进行灰度扫描。
2.4 5 HDAC组蛋白去乙酰化酶活性比色分析试剂盒检测HDAC活性
（1）取对照组和实验组各50μg待测蛋白质样品，用ddH2O将其稀释，使终体积为85μl，并
按0μM，1.25μM，2.5μM, 5.0μM浓度依次加入96孔酶标板中。
（2）加入10μl 10×HDAC Assay Buffer。
（3）再加入5μl HDAC Colorimetric Substrate，彻底混匀。
（4）在温箱中37℃孵育1h。
（5）加入10μl Lysine Developer并彻底混匀，终止反应。
（6）在温箱中37℃孵育30min。
精彩文档．
实用标准文案
（7）将96孔板取出后用酶标仪测定A450 OD450nm值。
将其转化为酶的活性值并进行统计学分析。
2.5 细胞周期及凋亡率检测
（1）收集实验组和各个对照组K562细胞5×106个，1000r/min，4℃离心5min，弃去上清。
（2）1×PBS洗涤细胞两次，1000r/min，4℃离心5min，完全弃去上清。
用手指轻弹细胞团，使其分散重悬。
（3）每管加入约1000μl预冷的70%乙醇固定细胞，边滴边用手指弹匀。
（4）置于-20℃冰箱中过夜。
再送往公司进行细胞周期及凋亡率检测。
2.6 统计学分析
2.6.1 所有数据均采用SPSS17.0等进行处理及统计学分析，并以P＜0.05为有显著意义的检测标准。
2.6.2 所有数据均用表示，两组间比较采用t检验，以P＜0.05为有显著意义的检测标准。
精彩文档．。