实验7_种子生活力的快速测定
种子生活力快速测定
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种子生活力快速测定实验人员:候勇 2012年度国培班果蔬花卉专业试验目的:种子生活力是指种子的发芽潜力,即发芽力,是判断种子质量的重要指标;要了解种子生活力的大小,最可靠的方法是测定种子的发芽率。
种子的发芽率是指在适宜条件下种子发芽的百分数,它是鉴定种子质量的主要依据,在确定播种量以及种子生理研究中具有重要意义。
本实验的目的就是快速测定种子生活力的方法。
实验仪器及材料:1、仪器:电热恒温培养箱、培养皿、烧杯、镊子、单面刀2、试剂:3%TTC溶液、0.1%BTB溶液、1%BTB琼脂凝胶、红墨水5%3、材料:玉米、小麦吸胀种子方法一:红墨水染色法实验原理:红墨水染色法是根据活种子细胞的原生质膜具有选择性吸收物质的透性,而死种子的胚细胞原生质膜则丧失此性质,于是染料进入死细胞而染色。
操作步骤:1、浸种:取不同种子一部分用沸水煮5-10min,作为死种子;一部分用凉水浸泡一昼夜,吸涨备用。
2、染色:取已吸涨种子100粒,玉米种子可在中间阔面将胚纵切为两半将其中一半放入培养皿中,用5%红墨水染色。
3、结果观察:经过5-8min,倒出红墨水,多次用清水清洗后观察胚的颜色,凡是胚部不着色的为生活良好的种子,有略带红色的说明生活力较弱,都染红的说明无生活力。
结果:活种子%=胚不着色的种子数/供试种子*100 50%=5/10*100方法二:BTB变色法实验原理:活种子进行呼吸作用呼吸空气中的O2,放出CO2。
CO2溶于水成为H2CO3,H2CO3解离为H+和HCO3-,使得种子周围环境的酸度增加。
BTB法通过测定酸度的变化来判断种子活性。
BTB 变色范围为PH6.0—7.6,酸性呈黄色,碱性呈蓝色,中间经过绿色(变色点为PH7.1)。
色泽差异显著,易于观察。
操作步骤:1%BTB染色将吸胀的小麦种子分别整齐地埋于1%BTB琼脂凝胶两个培养皿中,胚向下,间距约1cm。
培养皿置于30C培养箱中培养0.5h,在光亮处下观察,种子附近呈现深黄色晕圈的是活种子,用沸水中杀死的种子分别进行对照。
种子生活力的快速测定
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4 方法步骤
4.1 浸种。将待测种子在 30~35 ℃温水中浸泡 ( 大麦、小 麦、籼谷 6 ~8h , 玉米 5h左右 , 梗谷 2h), 以增强种胚的呼 吸强度 , 使显色迅速。 4.2 显色。取吸胀的种子 50 粒 , 用刀片沿种胚中央纵切为两
半 , 其中一半放入培养皿中加适量红墨水溶液,处理10min
胚部不染色。而死的种胚细胞原生质膜丧生了选择用 的能力, 于是染料便能进入死细胞而使胚着色。故可
根据种胚是否染色来判断种子的生活力。
3 仪器设备、材料和试剂
• 3.1 仪器 培养皿2套;镊子1把;单面刀片1片;垫板(切
种子用)1块;烧杯1个;棕色试剂瓶;解剖针1把;搪瓷
盘1个;PH试纸。 • 3.2 试剂 • 取市售红墨水稀释 20 倍(1份红墨水加 19 份自来 水 ) 作为染色剂。 • 3.3 材料:玉米
。倒去红墨水溶液, 用水冲洗多次 , 至冲洗液无色为止 。观 察结果 。
5 实验结果
染色种子数 红墨水处理 未染色种子数 生活力
6 生理学实验
(多媒体课件)
田国政
湖北民族学院生物科学与技术学院
湖北省生物实验教学示范中心
实验2-2 种子生活力的快速测定
实验类型:基础验证型 实验学时:2学时
1 实验目的
熟悉红墨水法测定种子活力的原理和
方法及其计算。
2 实验原理
凡生活细胞的原生质膜具有选择性吸收物质能力 ,
某些染料如红墨水中的酸性大红 G 不能进入细胞内 ,
种子生活力快速测定
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种子生活力快速测定种子生活力快速测定实验人员:候勇 2012年度国培班果蔬花卉专业试验目的:种子生活力是指种子的发芽潜力,即发芽力,是判断种子质量的重要指标;要了解种子生活力的大小,最可靠的方法是测定种子的发芽率。
种子的发芽率是指在适宜条件下种子发芽的百分数,它是鉴定种子质量的主要依据,在确定播种量以及种子生理研究中具有重要意义。
本实验的目的就是快速测定种子生活力的方法。
实验仪器及材料:1、仪器:电热恒温培养箱、培养皿、烧杯、镊子、单面刀2、试剂:3%TTC溶液、0.1%BTB溶液、1%BTB琼脂凝胶、红墨水5%3、材料:玉米、小麦吸胀种子方法一:红墨水染色法实验原理:红墨水染色法是根据活种子细胞的原生质膜具有选择性吸收物质的透性,而死种子的胚细胞原生质膜则丧失此性质,于是染料进入死细胞而染色。
操作步骤:1、浸种:取不同种子一部分用沸水煮5-10min,作为死种子;一部分用凉水浸泡一昼夜,吸涨备用。
2、染色:取已吸涨种子100粒,玉米种子可在中间阔面将胚纵切为两半将其中一半放入培养皿中,用5%红墨水染色。
3、结果观察:经过5-8min,倒出红墨水,多次用清水清洗后观察胚的颜色,凡是胚部不着色的为生活良好的种子,有略带红色的说明生活力较弱,都染红的说明无生活力。
结果:活种子%=胚不着色的种子数/供试种子*100 50%=5/10*100方法二:BTB变色法实验原理:活种子进行呼吸作用呼吸空气中的O2,放出CO2。
CO2溶于水成为H2CO3,H2CO3解离为H+和HCO3-,使得种子周围环境的酸度增加。
BTB法通过测定酸度的变化来判断种子活性。
BTB 变色范围为PH6.0—7.6,酸性呈黄色,碱性呈蓝色,中间经过绿色(变色点为PH7.1)。
色泽差异显著,易于观察。
操作步骤:1%BTB染色将吸胀的小麦种子分别整齐地埋于1%BTB琼脂凝胶两个培养皿中,胚向下,间距约1cm。
培养皿置于30C培养箱中培养0.5h,在光亮处下观察,种子附近呈现深黄色晕圈的是活种子,用沸水中杀死的种子分别进行对照。
实验七种子生活力的快速测定(精)
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种子冲洗l~2次,观察种胚被 染色的情况。凡种胚全部或 大部分被染成红色的即为具 有生活力的种子,种胚不被 染色的为死种子。如果种胚
(30℃~35℃)中保温
中非关键性部位(如子叶的
0.5~1h。另取100粒吸涨种 一部分)被染色,而胚根或
子,于沸水中煮5min后,
胚芽的尖端不染色,都属于
再加入0.5%TTC溶液染色。 不能正常发芽的种子。根据
2
实验原理
有生活力的种子能够进行呼吸代谢,在呼吸代谢途 径中由脱氢酶催化所脱下来的氢可以将无色的2,3, 5 - 三苯基氯化四唑(2,3,5 - triphenyl tetrazolium chloride 简称为TTC)还原为红色、不溶 性的甲月替,而且种子的生活力越强,代谢活动越
旺盛,被染成红色的程度越深。死亡的种子由于没 有呼吸作用,因而不会将TTC还原为红色。种胚生 活力衰退或部分丧失生活力,则染色较浅或局部被
染色。因此,可以根据种胚染色的部位以及染色的 深浅程度来判定种子的生活力。
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3
实验材料和器材
• 实验材料
水稻种子
• 器材:恒温箱、小白瓷碗、
镊子、刀片、小烧杯
• 试剂: 0.5% TTC溶液:
称取0.5 g TTC放入小烧杯 中,先加少许乙醇溶解后, 再用蒸馏水稀释定容至100 mL。TTC溶液最好随用随 配,不宜久藏。溶液应遮光
实验七:种子生活力的快速测定
(一)实验目的及意义 (二)实验原理 (三)实验步骤 (四)实验报告
2019/5/4
1
实验目的和意义
种子生活力(seed viability测定种子
生活力常采用萌发实验,即在适宜的条件下,
种子生活力快速测定
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种子生活力快速测定一、实验原理通过本实验,掌握种子生活力快速测定的原理和方法。
二、实验原理(1)活细胞染色:脱氢辅酶(NADH或NAFPH)存在于活的细胞内,当TTC渗透进入细胞内作为受体被脱氢辅酶上的氢还原,便由无色的TTC变为红色的三苯基甲(TTE)。
当细胞死亡后,NADH会迅速被降解,不会发生相应的颜色反应,故TTC染色法可显示细胞是否存活。
(2)死细胞染色:有生命力的细胞膜是一个半透性膜,因此对内渗透的物质有选择性;而无生命力的细胞,其细胞膜已经消失,因此有的有色物质(如品红)不能进入活的细胞内,但可以进入已经死亡的细胞,从而使细胞内出现该有色成分特有的颜色,故可以据此鉴别细胞是否死亡。
三、实验材料、药品和器具1、实验材料:花生、黄豆2、实验药品和器具:品红、TTC、培养皿、吸水纸、镊子、解剖针、刀片等四、试验方法1、分别取10颗红豆和黄豆的种子,沿种子的培从中切成两半,将带胚的部分放入培养皿中,加入TTC培养1h左右,观察胚染色的情况。
胚被染色的为有活力种子,未被染色的为无活力的种子。
2、别取10颗红豆和黄豆的种子,沿种子的培从中切成两半,将带胚的部分放入培养皿中,加入品红培养10-20min,倒掉品红溶液,冲洗数次,观察胚染色的情况。
胚被染色的为无活力种子,未被染色的为有活力的种子。
五、实验结果品种测定方法测定种子总数有生活力种子粒数无生活力种子粒数种子生活率花生TTC 30 28 2 93% 品红30 28 2 93%黄豆TTC 30 30 0 100% 品红30 29 1 97% 实验结果可以得出选用TTC染色和品红染色得出的结果存在差异,用TTC染色得出的结果高于品红染色法。
结果分析:可能的原因是在清洗品红时没有清洗干净,品红粘在胚上,影响实验的观察,导致结果差异。
六、注意事项1、选取种子的时候,要尽量选取未发芽的种子,避免影响测定。
2、添加染色液时,要是然也尽量没过种胚,使种胚和染液充分接触。
种子生活力的测定
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种子生活力的测定一、氯化三苯基四氮唑(TTC)法【原理】凡有生活力的种子胚部在呼吸作用过程中都有氧化还原反应,而无生活力的种胚则无此反应。
当TTC溶液渗入种胚的活细胞内,并作为氢受体被脱氢辅酶(NADH或NADPH)还原时,可产生红色的三苯基甲(TTF),胚便染成红色。
当种胚生活力下降时,呼吸作用明显减弱,脱氢酶的活性亦大大下降,胚的颜色变化不明显,故可由染色的程度推知种子的生活力强弱。
TTC还原反应如下:TTC(无色) TTF(红色)【仪器与用具】培养皿2套;镊子1把;单面刀片1片;垫板(切种子用)1块;烧杯1个;棕色试剂瓶;解剖针1把;搪瓷盘1个;pH试纸。
【试剂】TTC溶液的配制:取1g TTC溶于1L蒸馏水或冷开水中,配制成0.1%的TTC溶液。
药液pH应在6.5~7.5,以pH试纸试之(如不易溶解,可先加少量酒精,使其溶解后再加水)。
【方法】1.将玉米、小麦等作物的新种子、陈种子或死种子,用温水(30℃)浸泡2~6h,使种子充分吸胀。
2.随机取种子2份,每份50粒,沿种胚中央准确切开,取每粒种子的一半备用。
3.把切好的种子分别放在培养皿中,加TTC溶液,以浸没种子为度。
4.放入30~35℃的恒温箱内保温30min.也可在20℃左右的室温下放置40~60min.5.保温后,倾出药液,用自来水冲洗2~3次,立即观察种胚着色情况,判断种子有无生活力,把判断结果记入表32-1内。
表32-1 染色法测定种子生活力记载表【注意事项】1.TTC溶液最好现配现用,如需贮藏则应贮于棕色瓶中,放在阴凉黑暗处,如溶液变红则不可再用。
2.染色温度一般以25~35℃为宜。
3.判断有生活力的种子应具备:胚发育良好、完整、整个胚染成鲜红色;子叶有小部分坏死,其部位不是胚中轴和子叶连接处;胚根尖虽有小部分坏死,但其它部位完好。
4.判断无生活力的种子应具备:胚全部或大部分不染色;胚根不染色部分不限于根尖;子叶不染色或丧失机能的组织超过1/2;胚染成很淡的紫红色或淡灰红色;子叶与胚中轴的连接处或在胚根上有坏死的部分;胚根受伤以及发育不良的未成熟的种子。
快速测定玉米种子生活力三法
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进一步研究玉米种子生活力的影 响因素和作用机制,为农业生产
提供更加科学、准确的依据。
探索更加快速、简便的测定方法 ,提高方法的可操作性和实用性
。
结合现代生物技术,研究玉米种 子生活力与其他性状的关系,为 选种育种提供新的思路和方法。
THANK YOU
盐水漂浮法
该方法操作简便,但结果 受环境温度和种子质量影 响较大,准确性相对较低 。
剥胚染色法
该方法能够较为准确地测 定玉米种子的生活力,但 操作较为繁琐,需要较高 的实验技能。
适用范围比较
碘化钾染色法
适用于所有类型的玉米种子, 特别是对于已经经过处理的玉 米种子,该方法也能够得到较
为准确的结果。
染色法是根据种子胚部是否被染色来判断种子是否具有生 活力。具有生活力的种子胚部在染色液中会被染色,而没 有生活力的种子则不会被染色。
染色法通常使用的染色液为红色染料,如品红、甲基品红 等,因为这些染料能够与活细胞中的蛋白质结合,使其染 色。
染色法操作步骤
1. 将玉米种子放入染色液中浸泡3060分钟,使种子充分染色。
4. 加水浸泡
将称好的样品加入一定量的蒸馏水中 ,浸泡一定时间,一般以24小时为 宜。
5. 测定电导率
将浸泡后的样品用镊子取出,用滤纸 吸干表面水分,放入电导仪中测定其 电导率。
6. 数据记录
记录每个样品的电导率和对应的测量 值。
7. 数据处理
根据测定的电导率值,利用标准曲线 或公式计算出玉米种子的生活力。
电导率测定法是一种快速、简便、可靠的玉米种子生活力快速测定方法。
电导率测定法操作步骤
01
02
03
1. 仪器准备
准备好电导仪、烧杯、称 量纸、镊子等仪器和试剂 。
种子活性测定实验报告
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种子活性测定实验报告1. 引言种子活性是指种子在适宜的环境下发芽并形成新的植株的能力。
测定种子活性有助于评估种子的品质和提高农作物的产量。
本实验旨在通过测定种子的发芽率和活力指数来评估不同处理下的种子活性。
2. 材料与方法2.1 材料- 待测种子样本:A品种、B品种、C品种- 无菌培养基- 无菌培养皿- 实验室摄像机和计算机- 光照设备- 定量滴管和移液管2.2 方法1. 种子表面消毒:将待测种子分别放入无菌培养皿中,用70%酒精浸泡5分钟,然后用无菌水冲洗3次,以达到表面消毒的目的。
2. 播种:在每个无菌培养皿上均匀撒上100颗已消毒过的种子,使其分散排列。
3. 添加培养基:在每个培养皿中加入适量的无菌培养基,使其浸没种子。
4. 培养条件:将培养皿放置在恒温恒湿的培养箱中,保持温度在25左右,相对湿度为80%。
5. 光照条件:在培养皿上方设置适当的光照设备,以提供足够的光照,模拟自然环境。
6. 数据记录:每天记录各品种种子的发芽情况,包括发芽数、芽长等指标。
7. 活力指数计算:将发芽率和芽长指标综合计算得到种子活力指数。
3. 结果与讨论经过实验观察和数据统计,我们得到了以下结果:品种处理1 处理2 处理3 平均发芽率平均芽长- -A 90% 80% 95% 88.3% 3.6cmB 75% 90% 85% 83.3% 4.2cmC 85% 70% 80% 78.3% 3.8cm通过计算我们得到了各品种的种子活力指数:- A品种:88.3% * 3.6cm = 317.88- B品种:83.3% * 4.2cm = 349.86- C品种:78.3% * 3.8cm = 297.54根据结果我们可以看出,B品种的种子活力指数最高,最适合作为优良的种子来源。
活力指数越高,说明种子具有更好的发芽能力和生长潜力。
而对于不同处理方式的比较,我们可以看出处理2对种子的发芽率和芽长有较为显著的提高。
这可能是由于处理2提供了适宜的环境条件,如更加合理的温度和光照,促进了种子的发芽和生长。
种子生活力的测定
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种子生活力的测定一、氯化三苯基四氮唑(TTC)法【原理】凡有生活力的种子胚部在呼吸作用过程中都有氧化还原反应,而无生活力的种胚则无此反应。
当TTC溶液渗入种胚的活细胞内,并作为氢受体被脱氢辅酶(NADH或NADPH)还原时,可产生红色的三苯基甲(TTF),胚便染成红色。
当种胚生活力下降时,呼吸作用明显减弱,脱氢酶的活性亦大大下降,胚的颜色变化不明显,故可由染色的程度推知种子的生活力强弱。
TTC还原反应如下:TTC(无色) TTF(红色)【仪器与用具】培养皿2套;镊子1把;单面刀片1片;垫板(切种子用)1块;烧杯1个;棕色试剂瓶;解剖针1把;搪瓷盘1个;pH试纸。
【试剂】TTC溶液的配制:取1g TTC溶于1L蒸馏水或冷开水中,配制成0.1%的TTC溶液。
药液pH应在6.5~7.5,以pH试纸试之(如不易溶解,可先加少量酒精,使其溶解后再加水)。
【方法】1.将玉米、小麦等作物的新种子、陈种子或死种子,用温水(30℃)浸泡2~6h,使种子充分吸胀。
2.随机取种子2份,每份50粒,沿种胚中央准确切开,取每粒种子的一半备用。
3.把切好的种子分别放在培养皿中,加TTC溶液,以浸没种子为度。
4.放入30~35℃的恒温箱内保温30min.也可在20℃左右的室温下放置40~60min.5.保温后,倾出药液,用自来水冲洗2~3次,立即观察种胚着色情况,判断种子有无生活力,把判断结果记入表32-1内。
表32-1 染色法测定种子生活力记载表【注意事项】1.TTC溶液最好现配现用,如需贮藏则应贮于棕色瓶中,放在阴凉黑暗处,如溶液变红则不可再用。
2.染色温度一般以25~35℃为宜。
3.判断有生活力的种子应具备:胚发育良好、完整、整个胚染成鲜红色;子叶有小部分坏死,其部位不是胚中轴和子叶连接处;胚根尖虽有小部分坏死,但其它部位完好。
4.判断无生活力的种子应具备:胚全部或大部分不染色;胚根不染色部分不限于根尖;子叶不染色或丧失机能的组织超过1/2;胚染成很淡的紫红色或淡灰红色;子叶与胚中轴的连接处或在胚根上有坏死的部分;胚根受伤以及发育不良的未成熟的种子。
实验三十九种子生活力的快速测定
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实验三十九种子生活力的快速测定种子发芽率是鉴定种子品质的重要标志,在确定播种量以及种子生理研究方面具有重要的作用,常需加以测定。
但一般测定发芽率的方法所需时间长,尤其是对处在深休眠状态的种子,根本无法应用,所以有必要根据活种子的生理特性建立起一套快速鉴定种子生活力的方法,以克服常规方法的缺点。
本实验介绍剥胚法,染色法和荧光法三类方法,可根据具体情况选用。
Ⅰ、剥胚法一、目的掌握用剥胚法测定种子生活力的原理和方法。
二.原理此法适于测定休眠状态的种子的生活力。
种子深休眠的原因很多,有些是因为果皮或种皮的束缚(如不透水、不透气)造成的;也有的在果皮、种皮、胚乳中存在着萌发抑制剂,这类障碍可以用除去果皮、种皮、胚乳或切去一部分子叶的办法克服。
当阻碍萌发的物理或化学因素被排除以后,胚就很快萌发。
三、材料与设备1. 材料:苹果、柑桔的成熟种子或玉米乳熟期籽粒。
2. 设备:培养皿;滤纸;刀片;镊子。
3. 试剂:0.1﹪升汞。
四、实验步骤1. 种子处理取刚从成熟果实中剥出的新鲜柑桔种子300粒,已晒干的柑桔种子100粒,乳熟期新鲜玉米种子200粒,经晒干的乳熟期玉米种子或贮存三年以上的玉米陈种子各100粒,用0.1%升汞消毒后再用水充分洗净,进行以下处理:1.1柑桔新鲜种子,不加处理,作为对照;1.2 柑桔新鲜种子,用镊子小心剥去种皮,留下完整的胚;1.3柑桔新鲜种子,用刀片把种子横切为二,留下带胚根的一半,注意切除部分应不少于种子全长的一半。
1.4晒干的柑桔种子*,处理同1.2;*柑桔种子经晒干后即失去发芽能力。
1.5新鲜乳熟期玉米粒,不加处理作为对照(新鲜乳熟玉米种子粒因胚乳中存在着萌发抑制剂,不能萌发)。
1.6新鲜乳熟期玉米子粒,用镊子小心地将胚剥出。
1.7 晒干的乳熟期玉米子粒,不加处理。
1.8 贮存三年以上的玉米陈子粒,不加处理。
2. 观察测定以上处理完毕,随即将种子或胚整齐地摆在铺有适当大小滤纸的培养皿里,用蒸馏水湿润滤纸,加盖后置30℃左右的温箱中培养,并注意随时补充水分(但不可加水过多,否则易因缺氧而霉烂),从第二天起每天统计发芽种子数,记入下表,连续观察二星期。
种子活力的快速测定
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Ⅲ 红墨水染色法
• 实验原理 • 凡活种子的原生质膜具有选择性吸收物质 的能力,死种子则没有此能力,燃料就可 进入死细胞内部而染色。 • 器材及试剂 • 恒温箱,烧杯,培养皿,漏斗,镊子,5% 红墨水,萌发的小麦种子。
• 实验步骤 • 1、浸种:同上。 • 2、染色:取吸胀的小麦种子100粒,沿胚中线切 开为两半,一半置于培养皿中,加入5%红墨水没 过种子,染色10—15分钟后,倒掉红墨水,用水 冲洗多次至冲洗无红色。检查胚和胚乳着色情况。 • 用沸水杀死的另一半种子作对照试验,与为杀死 的种子比较 胚及胚乳着色情况。 • 3、计算活种子率。 • 作业 比较三种方法的优缺掌握几种种子活力快速测定方法。
Ⅰ氯三苯基四氮唑法(TTC法) 氯三苯基四氮唑法( 法
• 实验原理 • 凡命力的种子胚都有旺盛的代谢,许多生理活动过程中会 有氧化还原作用,能产生含氢的还原性物质如NADH2 或 NADPH2 ,这些物质可以还原渗入细胞中的TTC,使无色 的TTC变为红色的三苯基甲囋(TTF)。 • 器材与试剂 • 仪器:恒温箱、烧杯、培养皿、镊子、刀片、天平。 • 试剂:0.5%的TTC溶液(0.5gTTC溶于少于95%乙醇后用 蒸馏水稀释到100ml避光备用)。 • 材料:小麦种子
Ⅱ溴麝香草酚蓝法(BTB法)
• 实验原理 实验原理: • 凡活种子都有呼吸作用,吸收空气中的O2, 放出CO2。后者溶于水后成为碳酸,然后分 解出H+和HCO3-,使种胚周围环境酸化,可 用溴麝香草酚蓝法来测定酸度的变化。 • 器材与试剂 • 仪器:恒温箱,天平,培养皿,烧杯,镊子, 漏斗,滤纸和琼脂。
• 试验步骤: 试验步骤: • 1、浸种:同TTC法 • 2、显色:取吸胀的种子100粒,整齐的埋 于准备好的琼脂凝胶培养皿中,种子胚向 下相互远离,将培养皿置于30—35度恒温 箱中1h后,在蓝色背景下观察,胚周围有 黄色晕圈为活种子,没有则为死种子。 • 3、用沸水杀死的种子做同样处理,对比观 察。 • 4、计算活种子率。
种子生活力的快速测定实验报告
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种子生活力的快速测定实验报告实验室报告
种子生活力的快速测定实验报告
实验目的:
本实验的主要目的是通过快速测定种子的生活力,判断种子的
萌发能力和健康情况。
实验材料:
实验所需材料包括:玉米种子、过滤纸、蒸馏水、万能生长液、密封容器和显微镜。
实验步骤:
1. 将所需的玉米种子分为两组,每组取30颗。
2. 把过滤纸浸泡在蒸馏水中。
3. 用过滤纸分别包裹两组玉米种子,并将其放置在密封容器中,然后加入适量的万能生长液。
4. 在25摄氏度下孵育48小时,然后观察并记录萌发情况。
5. 在显微镜下观察良好萌发的玉米种子,并计算出其的萌发率。
实验结果:
经过48小时的孵育,观察到第一组玉米种子共有27颗萌发,
而第二组玉米种子只有17颗萌发。
通过对结果的分析,可知第一组的种子生命力更强,萌发率达
到了90%,而第二组的种子生命力相对较弱,萌发率只有56.6%。
结论:
本实验通过种子生活力的快速测定,有效地分析了种子的生命力和种植力,为今后的种子生产和种植工作提供了帮助。
建议:
对于同类实验,我们可以适当加大样本量或者调整测定环境,以提高实验结果的准确性和可靠性。
种子生活力的快速测定实验报告

种子生活力的快速测定实验报告种子生活力是衡量种子种植成活率和生长力的关键参数之一,其快速测定是种子质量检测的重要手段之一。
本实验旨在通过快速测定种子生活力的方法来评估不同种子的品质,并提供一些根据实验结果制定相应种植策略的指导。
1. 实验材料与方法材料:玉米种子、1%硒酸钠(Na2SeO4)、蓝色指示剂溶液(蓝色分子公司生产)、迷你冷柜。
实验步骤:1. 将需要测定的种子取出一定量,并将其表面消毒清洗,去除杂质。
2. 将种子用0.1%质量浓度的硒酸钠溶液浸泡4小时,然后用蒸馏水冲洗干净。
3. 将已处理的种子放入离心管内,加入一定量的蓝色指示剂溶液,管口用胶带密封。
4. 将离心管放入迷你冷柜内,温度设定为10°C,时间为24小时。
5. 经过一定时间的低温处理后,取出离心管,观察种子与指示剂的反应情况。
2. 实验结果与分析经过测定,观察不同种子与蓝色指示剂的反应情况,其中良种子的表现为指示剂颜色转变较深,而劣种子的表现为指示剂颜色变化有限或不显著。
根据测定结果,我们将种子分为良种子和劣种子两类,并统计不同种子品质的占比,如下表所示。
品质 | 良种子 | 劣种子-----|-------|-------样本1 | 85% | 15%样本2 | 75% | 25%样本3 | 90% | 10%从实验结果可以看出,样本1和3的品质相对较好,良种子占比高于劣种子;而样本2的种子品质相对较差,良种子占比仅为75%。
通过实验结果,我们可以对不同种子品质制定相应的种植策略。
对于品质较好的种子,可以考虑减少播种量,以保证良种子的使用率最大化;而对于品质较差的种子,则需要增加播种量,以提高种植成活率和生长力。
3. 实验总结种子生活力的快速测定方法可以在较短时间内评估种子品质,为种植策略制定提供了有效的参考。
在实验过程中,需要注意对种子进行消毒和清洗,以保证实验结果的准确性;同时,还需要控制低温处理时间和温度,以避免不必要的误差。
8、种子生活力的快速测定(TTC法)
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华南农业大学实验报告专业班次11农学1班组别201130010110 题目种子生活力的快速测定(TTC法)姓名梁志雄日期2012-11-21一、实验原理有活力种胚中的脱氢酶可以将TTC还原成不溶性的红色TTF,如果种胚死亡或种胚生活力衰退,则不能染色或染色较浅,因此,可以根据种胚染色的部位或染色的深浅程度来鉴定种子的生活力二、实验材料与实验器材水稻种子、恒温箱、小白瓷碗、镊子、小烧杯三、实验步骤1、实验之前将种子放在微波炉里稍微加热,将水稻种子用温水(30~35℃)浸泡2~6h,使种子充分吸涨2、随机抽取30粒水稻种子,小心剥去种皮,千万不要伤害种胚,然后把处理好的种子置于小白瓷碗中,加入0.5%TTC溶液,以刚好浸没种子为度,与恒温箱中(30~35℃)中保温0.5-1h。
3、染色结束后要立即进行鉴定,因放置太久会褪色。
倒出TTC溶液,再用清水将种子清洗1~2次,观察种胚染色的情况。
凡种胚全部或大部分被染成红色即为具有生活力的种子,种胚不被染色的为死种子。
四、数据记录记录本实验测得染色种子25粒,无色种子5粒,其中染色的25粒种子中有19粒种子染色是比较深的,说明其生长活性物质多,生命力强。
根据以下公式种子活力(%)=有活力的种子数/种子总数×100%可以知道种子活力=25/30*100%=83.3%六、实验总结有生活力的种子能够进行呼吸代谢,在呼吸过程中的代谢物质跟TTC反应生成红色TTF,且代谢物质越多,颜色越深,代谢强度越大。
从本实验结果来看,种子生命力总体上时比较强的,且其中的19粒染色较深的那些则更高。
另外TTC法还可以运用于花粉活力的测定。
种子生活力的测定
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种子生活力的测定一、氯化三苯基四氮唑(TTC)法【原理】凡有生活力的种子胚部在呼吸作用过程中都有氧化还原反应,而无生活力的种胚则无此反应。
当TTC溶液渗入种胚的活细胞内,并作为氢受体被脱氢辅酶(NADH或NADPH)还原时,可产生红色的三苯基甲(TTF),胚便染成红色。
当种胚生活力下降时,呼吸作用明显减弱,脱氢酶的活性亦大大下降,胚的颜色变化不明显,故可由染色的程度推知种子的生活力强弱。
TTC还原反应如下:TTC(无色)TTF(红色)【仪器与用具】培养皿2套;镊子1把;单面刀片1片;垫板(切种子用)1块;烧杯1个;棕色试剂瓶;解剖针1把;搪瓷盘1个;pH试纸。
【试剂】TTC溶液的配制:取1g TTC溶于1L蒸馏水或冷开水中,配制成0.1%的TTC溶液。
药液pH应在6.5~7.5,以pH试纸试之(如不易溶解,可先加少量酒精,使其溶解后再加水)。
【方法】1.将玉米、小麦等作物的新种子、陈种子或死种子,用温水(30℃)浸泡2~6h,使种子充分吸胀。
2.随机取种子2份,每份50粒,沿种胚中央准确切开,取每粒种子的一半备用。
3.把切好的种子分别放在培养皿中,加TTC溶液,以浸没种子为度。
4.放入30~35℃的恒温箱内保温30min.也可在20℃左右的室温下放置40~60min.5.保温后,倾出药液,用自来水冲洗2~3次,立即观察种胚着色情况,判断种子有无生活力,把判断结果记入表32-1内。
【注意事项】1.TTC溶液最好现配现用,如需贮藏则应贮于棕色瓶中,放在阴凉黑暗处,如溶液变红则不可再用。
2.染色温度一般以25~35℃为宜。
3.判断有生活力的种子应具备:胚发育良好、完整、整个胚染成鲜红色;子叶有小部分坏死,其部位不是胚中轴和子叶连接处;胚根尖虽有小部分坏死,但其它部位完好。
4.判断无生活力的种子应具备:胚全部或大部分不染色;胚根不染色部分不限于根尖;子叶不染色或丧失机能的组织超过1/2;胚染成很淡的紫红色或淡灰红色;子叶与胚中轴的连接处或在胚根上有坏死的部分;胚根受伤以及发育不良的未成熟的种子。
种子生活力的快速测定实验报告

种子生活力的快速测定实验报告以下是种子生活力的快速测定实验报告:一、实验目的:1、了解种子的萌发过程;2、掌握种子活力的快速测定方法。
二、实验原理:种子的萌发是指种子在适宜的环境下,经过一定的时间后,胚根和胚芽开始向外生长并形成幼苗。
种子活力是指种子在一定时间内能够完成萌发的能力。
通过测定种子的吸水力、萌发率等指标来评估种子的活力。
常用的种子活力测定方法包括浸泡法、吸水力测定法、电导率测定法等。
三、实验材料:1、不同品种的玉米种子;2、清水;3、容器;4、计时器;5、电子天平;6、试管;7、吸水纸巾;8、显微镜。
四、实验步骤:1、将不同品种的玉米种子放入不同的容器中,每种品种的种子数量应相同;2、用清水将每个容器中的种子浸泡10分钟;3、取出浸泡过的种子,用试管将每个种子内的水分吸干,然后将吸干后的种子放在吸水纸巾上,用电子天平称重;4、记录每个种子的重量,并计算出其含水量;5、将每个种子放入一个装有适量水的容器中,观察其萌发情况并记录萌发时间和萌发率;6、使用显微镜观察每个种子的胚根和胚芽的生长情况。
五、实验结果:通过实验,我们可以得出以下结论:1、不同品种的玉米种子在吸水力方面存在差异,其中某些品种的吸水力较强,而某些品种则较弱;2、不同品种的玉米种子在萌发方面也存在差异,其中某些品种的萌发率较高,而某些品种则较低;3、通过观察胚根和胚芽的生长情况,我们可以看出种子的活力强弱与胚根和胚芽的发育情况有关。
六、实验分析:通过以上实验结果,我们可以得出以下结论:1、吸水力较强的种子具有较高的活力,因为它们能够在较短时间内吸收足够的水分并完成萌发过程;2、萌发率较高的种子也具有较高的活力,因为它们能够在较短的时间内完成萌发过程并产生幼苗;3、胚根和胚芽的发育情况也可以反映出种子的活力强弱,因为它们是植物生长发育的关键部位。
实验 植物种子生活力快速测定 (1)

实验十一植物种子生活力快速测定一、实验目的掌握植物种子生活力检测的基本原理及快速鉴定植物种子生活力的方法。
二、实验原理种子活力是决定种子在发芽和出苗期间的活性强度和种子特性的综合表现(指田间条件下的出苗能力及与此有关的其他特征和指标),种子生活力是指种子的发芽潜在能力和种胚所具有的生命力(通常指一批种子中具有生命力种子数占种子总数的百分率)。
种子贮藏过程中必须维持种子是有活力的,因此定期进行生活力和活力的检测是非常重要的。
测定种子生活力方法常用发芽率测定法,该法是指在最适宜的条件下,在规定天数内发芽的种子占供试种子的百分数。
它是决定种子品质和实用价值大小的主要依据,与播种时的用种量直接有关。
但是常规方法(直接发芽)测定种子发芽率所需的时间较长,对于处于深休眠状态的种子,几乎难于应用。
特别是有时为了应急需要,没有足够的时间来测定种子发芽率,所以有必要根据种子的生理特性建立起一套快速测定种子生活力的方法。
红墨水染色法凡是生活的活细胞的原生质膜都具有选择吸收能力,它对某些染料不让透过,因此用这类染料(如红墨水、酸性靛蓝等)不能使种胚染色。
而死种子的胚细胞原生质膜丧失了选择吸收能力,于是染料进入死细胞,将胚完全染色。
因此,可根据种胚或子叶对染料的着色情况判断种子的发芽率。
三、实验材料小麦种子、大麦种子、籼稻种子、玉米种子、粳稻种子、蚕豆种子、大豆种子。
四、设备与试剂恒温箱,培养皿,烧杯,镊子,刀片,紫外荧光灯,滤纸(无荧光),琼脂,沸水。
5%红墨水:市售红墨水5 mL加95 mL自来水。
五、实验步骤1.红墨水染色法将待测种子在30~35℃温水中浸种(小麦、大麦、籼稻种子6~8h;玉米种子5 h 左右;粳稻种子2 h),以增加种胚的呼吸速率,使显色迅速;取吸胀的种子200 粒,沿种子胚的中心线纵切为二半,将其中的一半置于红墨水培养皿中5~10 min;用红墨水染色后,倒去废液,用水冲洗多次,至冲洗液无色为止,并检查种子死活。
实验七 种子生活力的快速测定

实验七种子生活力的快速测定一、氯化三苯基四氮唑法(TTC法)[原理] 凡有生活力的种子胚部在呼吸作用过程中都有氧化还原反应,而无生活力的种胚无此反应。
当TTC溶液深入种胚的活细胞内,并作为氢受体被脱氢辅酶(NADH3或NADPH2)还原时,可产生红色的三苯基甲曁(TTF),胚便染成红色。
当种胚的生活力下降时,呼吸作用明显减弱,脱氢酶的活性亦大大下降,胚的颜色变化则不明显,故可由染色的程度推知种子生活力的强弱。
[仪器与试剂] 培养皿2套,镊子1靶;单面刀片1片;垫板(切种子用)1块;烧杯1个;综合试剂瓶;取1gTTC溶于1dm3蒸馏水或冷开水中,配成0.1%的TTC 溶液。
药液pH应在6.5~7.5,以pH试纸试之(如不易溶解,可先加少量酒精,使其溶解后在加水)。
[方法]1.将玉米、小麦等作物的新种子、陈种子或死种子,用温水(30℃)浸泡2~6h,使种子充分吸胀。
2.随机取种子2份,每份50粒,沿种胚中央准确切开,取每粒种子的一半备用。
3.把切好的种子分别放在培养皿内,加TTC溶液,以浸没种子为度。
4.放入30~50℃的恒温箱内保温30min。
也可在20℃左右的温室下放置40~60min。
5.保温后,倾出药液,用自来水冲洗种子2~3次,立即观察种胚着色情况,判断种子有无生活力,办判断结果记入表内。
[注意事项]1.TTC溶液最好现配现用。
如需要贮藏则应贮于棕色瓶中,放在阴凉黑暗处,如溶液变红则不可再用。
2.染色温度一般为25~35℃为宜。
3.判断有生活力的种子应具备:胚发育良好、完整、整个胚染成鲜红色;子叶有小部分坏死,其部位不是胚中轴和子叶连接处;胚根虽有小部分坏死,但其它部位完好。
4.判断无生活力的种子应具备:胚全部或大部分不染色;胚根不染色部分不限于根尖;子叶不染色或丧失技能的组织超过1/2;胚染成很淡的紫红色或淡灰红色;子叶与胚叶轴的连接处或在培根上有较重的坏死部分;胚根受伤以及发育不良的未成熟的种子。
实验七种子生活力的快速测定

子的百分数。但是,采用发芽实验测定种子的
生活力所需时间较长,有时在生产上或种子贸
易过程中,需要较快地知道种子的生活力,采
用萌发实验就无法满足这些要求。另外,处在
休眠状态下的种子虽然不能萌发,但仍然具有
生活力,显然,采用萌发实验是无法测定休眠
种子的生活力的。而采用以下的化学方法,可
2021以/4/24较快地测定种子的生活力。
种子冲洗l~2次,观察种胚被 染色的情况。凡种胚全部或 大部分被染成红色的即为具 有生活力的种子,种胚不被 染色的为死种子。如果种胚
(30℃~35℃)中保温
中非关键性部位(如子叶的
0.5~1h。另取100粒吸涨种 一部分)被染色,而胚根或
子,于沸水中煮5min后,
胚芽的尖端不染色,都属于
再加入0.5%TTC溶液染色。 不能正常发芽的种子。根据
贮藏。若已变为红色,则不 能继续使用。
2021/4/24
4
实验步骤
▪
浸种:将待测种子用温水 (30℃~35℃)浸泡2-6 h,
▪
使种子充分吸胀。
统计:染色结束后要立即进
行鉴定,因放置太久会褪色。 倒出TTC溶液,再用清水将
▪ 显色:随机取吸涨种子100 粒,小心剥去种皮或外壳, 务必不要伤害种胚。然后将 处理好的种子置于小白瓷碗 中,加入0.5% TTC溶液, 以浸没种子为度,于恒温箱
2
实验原理
▪ 有生活力的种子能够进行呼吸代谢,在呼吸代谢途 径中由脱氢酶催化所脱下来的氢可以将无色的2,3, 5 - 三苯基氯化四唑(2,3,5 - triphenyl tetrazolium chloride 简称为TTC)还原为红色、不溶 性的甲月替,而且种子的生活力越强,代谢活动越
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实验步骤
BTB法
1. 煮沸的1%BTB琼脂胶约20 ml,冷却倒胶至培 养皿(1/3皿);
2. 取30粒完好的小麦种子,种胚向下插入胶(不软 不硬);
3. 将培养皿置于35 ℃下培养 1hr,对光观察,如 种胚附近呈现较深黄色晕圈是活种子,否则是 死种子。
TTC/红墨水染色法
1. 2. 3. 4. 5. 将种子用温水(30℃)浸泡2-6h,使种子充分吸胀; 随机取小麦种子30粒,沿种胚中央准确切开,取其一半 TTC备用,另一半红墨水法备用; 将TTC备用的一半种子浸于5 ml TTC 中,于恒温箱(3035℃)中保温30min; 将红墨水法的另一半种子用5 ml红墨水浸5 min(室温); 染色结束后要立即进行鉴定,因放久会褪色。倒出TTC / 红墨水,再用清水冲洗种子1-2次,观察种胚被染色的情况。
(一)材料:小麦种子 (二)仪器设备:1. 小烧杯;2. 刀片;3. 镊子;4. 温箱 (三)试剂: 1. 0.12%-0.5%TTC溶液(TTC可直接溶于水,溶于水后, 呈中性,pH7±0.5,不宜久藏,应现用现配)。 2. 0.02%-0.2%靛红溶液或5%红墨水(酸性大红G) 3. BTB溶胶
思考题
TTC法和红墨水法测定种子生活力的理论依据 有何不同?
生活力:指种子能够萌发的潜在能力或种胚 具有的生命力。
实验目的
1. 了解种子生活力快速测定的方法
2. 理解TTC/BTB/染料法测定种子生活力的原理
实验原理
TTC法
1. 2. 凡有生活力的种子胚部在呼吸作用过程中都有氧化-还原反 应,而无生活力的种胚则无此反应。 当TTC溶液渗入种胚的活细胞内,并作为氢受体被脱氢辅酶 (NADH或NADPH)还原时,可产生红色的三苯甲腙 (TTF),胚便染成红色。 如种胚死亡便不被染色;如种胚生活力下降,呼吸作用明显 减弱,脱氢酶的活性亦大大下降,染色较浅;故可根据种胚 染色的部位或深浅来鉴定种子的生活力。
3.
TTC还原反应如下:
氯化三苯基四氮唑
三苯甲腙
活种子
死种子
BTB溴麝香草酚蓝法
1. 活细胞呼吸释放CO2, CO2溶于水成H2CO3解 离,使种胚周围环境酸度增加,用BTB来反映 酸度的改变; 2. BTB变色范围为pH6.0-7.6,酸性呈黄色,碱 性呈蓝色,中间经过绿色(变色点为pH7.1)。 3. 本实验观察种胚周围的黄色晕圈。
数据记录与处理
不同方法测定种子生活力统计表 方法 TTC 红墨水 有生活力 无生活力 供试粒数 种子粒数 种子粒数 30 30 有生活力种子 占供试粒数的%
BTB
30
注意事项
沿种胚中央准确切开,同粒TTC/红墨水法各一半 TTC溶液最好现配现用,如需贮藏则应贮于棕色 瓶中,放在阴凉黑暗处,如溶液变红则不可再用。 染色结束后立即进行鉴定,因放久会褪色。 显色时要使漂浮的种子全部浸入试剂中 溶胶倒至培养皿1/3处; 取完好小麦种子,将种胚向下插入BTB琼脂胶。
染料染色法
1. 有生命力种子胚细胞的原生质膜具有半透性,有选 择吸收外界物质的能力,一般染料不能进入细胞内, 胚部不染色。
2. 而丧失生命力的种子,其胚部细胞原生质膜丧失了 选择吸收能力,染料可自由进入细胞内使胚部染色。 所以可根据种子胚部是否被染色来判断种子的生命 力。
活种子
死种子
材料、设备及试剂