pcr实验原理及注意事项
PCR原理与操作
PCR原理与操作PCR（Polymerase Chain Reaction），也称为聚合酶链反应，是一种重要的分子生物学技术。
它是通过体外复制DNA分子来产生大量DNA分子的方法。
PCR技术在基因工程、医学诊断、犯罪现场调查等领域有广泛应用。
PCR技术依赖于DNA分子的核酸扩增过程。
其基本原理可分为三个步骤：变性、引物的结合和延伸。
1.变性：PCR反应开始时，DNA样本被加热至95℃到98℃的高温。
这个高温的作用是将DNA的两个螺旋链分离，使之成为单链DNA。
2.引物的结合：PCR反应中，引物是一段由合成的DNA片段。
引物的序列与待扩增的DNA序列的两端互补。
引物的加入使得单链DNA在较低的温度下重新连成双链结构。
引物被限制性核酸酶进行体外合成。
这个链合成过程是在一个低于变性温度的温度下进行的。
3.延伸：在第二步引物的结合后，加入了一定浓度的DNA聚合酶。
DNA聚合酶能够扩增引物，使得新的DNA链得以合成。
而且PCR反应中还加入了一定浓度的dNTPs（核苷酸三磷酸聚合物），它们是dATP、dCTP、dGTP和dTTP的混合溶液。
通过这些反应物，DNA聚合酶能够与引物进行大量的扩增。
PCR操作步骤及注意事项：1.样品准备：a.提取待扩增的DNA，保证DNA纯度和浓度。
b.使用无细菌污染的试剂和消毒的实验室设备。
2.PCR体系准备：a.准备PCR反应液，包括模板DNA、引物、酶、缓冲液、dNTP和盐。
b.根据所需扩增的目标序列和引物设计合适的引物。
c.确保PCR反应液没有污染，防止产生假阳性或假阴性结果。
3.PCR反应设置：a.取合适的PCR管，加入PCR反应液。
b.打开PCR仪，将PCR管放入合适的位置，设置温度和时间参数。
c.检查PCR仪的热盖是否正常工作，以确保反应条件的稳定性。
4.PCR反应：a.将PCR管放入预热PCR仪中，并启动程序。
b.进行PCR循环扩增反应，根据需要进行不同数目的循环。
PCR原理及注意事项
PCR一、PCR的原理PCR;Polymerase Chain Reaction;聚合酶链式反应;由Kary Mullis博士在1985年于美国的PE-Cetus公司工作期间发明..该技术基本原理如下：在模板DNA、primers和4种dNTPs存在下;依赖于DNA polymerase的酶促合成反应..DNA polymerase以单链DNA为模板;借助一小段双链DNA来启动合成;通过一个或两个人工合成的寡核苷酸引物与单链DNA模板中的一段互补序列结合;形成部分双链..在适宜的温度和环境下;DNA聚合酶将脱氧单核苷酸加到引物3´-OH末端退火;并以此为起始点;沿模板5´→3´方向延伸;合成一条新的DNA互补链的过程并依次循环..1.PCR反应的基本成分包括：Templates DNA待扩增DNA、Primers、4种脱氧核苷酸dNTPs、DNA聚合酶和适宜的Buffer对于高GC含量的模板有时加入3% DMSO..类似于DNA的天然复制过程;其特异性依赖于与靶序列两端互补的寡核苷酸引物..2.PCR由变性--退火--延伸三个基本反应步骤构成：①.模板DNA的变性：模板DNA经加热至94℃左右一定时间后;使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离;成为单链;以便它与引物结合;为下轮反应做准备；②.模板DNA与引物的退火复性：模板DNA经加热变性成单链后;温度降至55℃或60℃左右;引物与模板DNA单链的互补序列配对结合；③.引物的延伸：DNA模板--引物结合物在Taq DNA聚合酶或Phusion DNA聚合酶或Pfu DNA聚合酶的作用下;以dNTPs为原料;靶序列为模板;按碱基互补配对半保留复制原理;合成一条新的与模板DNA 链互补的半保留复制链;新链又可成为下次循环的模板..3.PCR的反应动力学PCR的三个反应步骤反复进行;使DNA扩增量呈指数上升..反应最终的DNA 扩增量可用Y＝1＋X n计算..Y代表DNA片段扩增后的拷贝数;X表示实际扩增效率;平均约为75%;n 代表循环次数..平均扩增效率的理论值为100%;但在实际反应中平均效率达不到理论值..如果进行30个Cycles;实际扩增倍数往往为106-107理论上以Y=2n计算;为109..反应初期;靶序列DNA片段的增加呈指数形式;随着PCR产物的逐渐积累;被扩增的DNA 片段不再呈指数增加;而进入线性增长期或静止期;即出现“停滞效应”;这种效应称平台期..PCR 扩增效率及DNA聚合酶、PCR的种类和活性及非特异性产物的竟争等因素与之都有关..大多数情况下;平台期的产生不可避免..二、PCR的种类1.常规PCR2.反转录PCRreverse transcription;RT- PCR先在逆转录酶的作用下;以mRNA为模板;Primer 1常用OligodT引物为引物合成与其互补的cDNAcomplementary DNA;再以cDNA为模板;Primer 2为引物进行PCR反应..常用逆转录酶有AMVavian myeloblastosis virus;酶活最适温度42℃和MMLVmoloney murine leukemia virus; 酶活最适温度37℃..RT-PCR是一种快速简便敏感度极高的检测mRNA转录量或蛋白表达水平的方法..半定量RT-PCR以组织中普遍表达且表达量恒定的管家基因的mRNA表达为对照;将目的基因mRNA 与之一起逆转录成各自cDNA;最后计算它们的比值来达到对mRNA表达半定量的目的..3.实时荧光定量PCRQuantitative Real-time PCR;Q-RT-PCR在PCR反应体系中加入荧光基团SYBP Green 1或Taqman或分子信标等;利用荧光信号累积实时监测整个PCR进程;最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法..利用荧光信号的变化实时检测PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化;通过Ct值C 代表Cycle;T代表threshold和标准曲线的分析对起始模板进行定量分析..Ct值：扩增产物的荧光信号达到设定的阈值时所经过的扩增循环次数..荧光阈值是前3-15个循环荧光信号的标准偏差的10倍..用途：绝对定量检测起始模板数的精确拷贝数;通常用到标准曲线；相对定量确定经过不同处理的样本目标转录本之间或不同基因之间的基因表达差异；基因型/等位基因分析;例如SNP检测；转基因生物监测等4.重组PCR又称重叠PCR;overlap PCR：制备杂合基因5.多重PCR又称复合PCR;multiplex PCR两对或两对以上引物在一个反应体系中扩增多条目的基因片段6.不对称PCR：使用浓度相差100倍的正反引物;得到单链DNA7.反向PCR：扩增引物相反方向DNA 序列目的基因之外的序列;从而研究未知序列8.巢式PCRNest PCR：高特异性扩增;一对引物扩全长;一对引物扩内部部分序列此外;还有Touchdown PCR、锚定PCRA-PCR、Allele- specific PCRAS-PCR、单链构型多态性PCRSSCP-PCR和低严格单链特异性引物PCRLSSP- PCR等..。
pcr扩增实验注意事项
pcr扩增实验注意事项PCR扩增实验注意事项PCR（聚合酶链反应）是一种广泛应用于分子生物学研究的技术，可在短时间内迅速扩增DNA片段。
PCR实验的成功与否直接影响实验结果的准确性和可靠性。
为了确保PCR实验的顺利进行，以下是一些值得注意的事项。
实验前的准备工作在进行PCR实验之前，必须进行充分的准备工作。
这包括准备PCR试剂，如引物、模板DNA和聚合酶等，以及实验器材的消毒。
1.引物的设计与选择PCR扩增所需的引物应具有良好的特异性，能够与待扩增的目标DNA序列完全互补。
引物的设计可以借助于计算机软件进行，以确保引物的特异性和扩增效率。
此外，引物的长度应适中，通常选择15-30个核苷酸的长度。
2.模板DNA的准备与稀释模板DNA是PCR扩增的起点，它必须具有足够的纯度和浓度。
在准备模板DNA时，应注意避免DNA的降解和污染。
同时，还需要将模板DNA 稀释到适当的浓度，以确保PCR反应的最佳效果。
3.实验器材的消毒PCR实验需要在无菌条件下进行，以避免外源性DNA的污染。
在实验前，所有的器材和试剂瓶口都必须经过高温消毒，或使用酶切酶或DNase去除潜在的污染。
实验操作步骤实验操作步骤是PCR实验中最关键的部分，任何疏忽都可能导致实验失败或产生虚假结果。
以下是PCR实验中的一些重要操作步骤。
1.反应体系的配制PCR反应体系通常包括引物、模板DNA、dNTPs、聚合酶和缓冲液等组分。
根据实验需要，在计算器或试剂盒说明书的指导下，计算和配制所需的每个组分的量。
2.反应管的装填和密封将配制好的PCR反应体系分装到PCR反应管中，并在反应管盖上加上适当的密封层，如矿物油或矽胶珠。
这样可以防止反应体系的蒸发和污染。
3.反应条件的优化PCR反应需要针对性地进行优化，包括反应温度、循环数和延伸时间等参数。
通过合理调整这些参数，可以最大限度地提高PCR扩增的效率和特异性。
4.防止污染和交叉污染PCR反应对DNA污染非常敏感，因此需要特别注意防止样品之间的DNA 交叉污染。
1、试述荧光定量pcr技术的原理、方法、注意事项及其在临床与科研中的应用
1、试述荧光定量pcr技术的原理、方法、注意事项及其在临床与科研中的应用
荧光定量PCR是一种在PCR反应过程中，通过荧光信号的检测来对PCR产物进行实时定量分析的技术。
1. 原理：
荧光定量PCR利用荧光染料或者荧光探针，标记扩增过程中的每一个循环的产物，这些荧光标记的产物在激发光的作用下会发出荧光。
随着反应的进行，PCR产物不断累积，荧光信号也随之增强。
通过对荧光信号的实时监测，可以推断出样本中起始模板的数量。
2. 方法：
主要方法包括探针法、SYBR Green I染料法和分子信标法等。
探针法使用与目标序列特异性结合的荧光探针来标记PCR产物。
SYBR Green I染料法则是利用染料与双链DNA的结合特性，将染料添加到反应体系中，随着PCR产物的增加，染料的荧光信号也增强。
3. 注意事项：
荧光定量PCR对样品纯度要求较高，应避免杂质的干扰。
反应体系中的成分和浓度需要精确控制，以确保实验结果的准确性。
荧光定量PCR的结果解读需要参考标准曲线，以确定未知样本中的目标序列数量。
4. 在临床与科研中的应用：
在临床应用中，荧光定量PCR被广泛用于病原体检测、基因突变分析、遗传病诊断以及癌症研究等。
例如，用于检测病毒如HIV、HBV等的载量，或者检测癌症相关基因的表达水平。
在科研领域，荧光定量PCR可用于基因表达分析、基因组学和表观遗传学研究中。
例如，比较不同组织或细胞类型的基因表达差异，或者研究表观遗传修饰对基因表达的影响。
总的来说，荧光定量PCR技术是一种高灵敏度、高特异性的核酸定量分析方法，对于临床诊断和科学研究具有重要意义。
pcr 操作中最应该注意的事项
pcr 操作中最应该注意的事项PCR（Polymerase Chain Reaction）是一种常用的分子生物学技术，用于扩增DNA片段。
在进行PCR操作时，有一些非常重要的事项需要特别注意，以确保实验的准确性和可靠性。
以下是在PCR操作中最应该注意的事项：1. 实验室操作规范：在进行PCR操作之前，需要做好实验室操作规范的准备工作，包括戴好实验手套、穿好实验服、清洁操作台面等。
避免在实验室中进食、饮水或使用手机等。
2. 检查实验仪器和试剂：在开始PCR实验之前，需要确保PCR仪器的正常运转和试剂的完整性。
检查PCR仪器的温控系统、离心机的转速、试剂的保质期等，确保实验条件的准确性。
3. 建立阳性和阴性对照：在每次PCR实验中，都要包括阳性对照和阴性对照，以验证实验的准确性。
阳性对照应包括已知的阳性样品，而阴性对照则应该是未添加DNA模板的反应混合物。
4. 采用单独的PCR实验室：为了避免PCR实验中的污染，最好在专门的PCR实验室中进行实验，避免与其他实验室中的DNA样品混合。
5. 严格控制实验条件：在PCR实验中，需要严格控制实验条件，包括温度、时间、试剂比例等。
确保PCR反应体系的均匀混合、温度梯度的准确性和反应时间的精确控制。
6. 避免污染：PCR实验非常容易受到外源DNA的污染，因此需要避免在实验室中的DNA样品和PCR产物的交叉污染。
实验中应该使用滤器枪头、一次性试剂盒等措施，避免污染的发生。
7. 定期维护PCR仪器：PCR仪器的维护对实验的准确性非常重要。
定期清洁PCR仪器的加热盖、检查温度控制系统的准确性、更换磁力搅拌器的磁子等，确保PCR仪器的正常运转。
8. 标记实验样品：在进行PCR实验时，需要对实验样品进行正确的标记，包括样品的编号、实验日期、PCR程序名称等。
避免实验样品的混淆和实验结果的不准确。
9. 注意PCR产物的保存和处理：PCR产物的保存和处理对实验结果的可靠性有着重要的影响。
pcr的操作及注意事项
PCR的操作及注意事项一、PCR简介PCR（Polymerase Chain Reaction）是一种常用的分子生物学实验技术，用于扩增特定的DNA片段。
PCR技术的广泛应用，使得其操作和注意事项变得尤为重要。
本文将介绍PCR的操作步骤以及需要注意的事项。
二、PCR的操作步骤1. DNA提取首先，需要从样本中提取目标DNA。
常用的提取方法包括酚氯仿法、热碱法和商业DNA提取试剂盒。
在提取DNA的过程中，应注意减少污染，保持工作区域清洁。
2. PCR反应液的配制将PCR反应液的各种试剂按照实验方案的要求配制好，主要包括模板DNA、引物、dNTPs、缓冲液和聚合酶。
保持试剂的新鲜和纯净，避免重复冻融。
3. PCR反应的设置将PCR反应液分装到反应管中，可根据需要设置多个反应管。
注意反应管的密封性，避免样品蒸发和污染。
同时，设定PCR反应的温度程序，包括变性、退火和延伸的温度和时间。
4. PCR反应的程序将反应管放入PCR仪中，启动PCR程序。
确保PCR仪的温度控制准确可靠，保持反应过程的稳定性。
根据目标DNA片段的大小，调整PCR的循环次数，一般为25-35个循环。
5. PCR产物的分析PCR反应结束后，可以通过各种方法对PCR产物进行分析，常用的方法包括琼脂糖凝胶电泳和DNA测序。
分析结果能够验证PCR扩增的特异性和产物的纯度。
三、PCR操作的注意事项1. 高品质的DNA模板PCR反应的成功与否与DNA模板的质量有很大关系。
因此，在进行PCR实验前，应确保使用高质量的DNA模板，如通过琼脂糖凝胶电泳进行检测。
2. 引物的设计和质量PCR反应中使用的引物应具有较高的特异性和准确性。
在设计引物时，应避免引物间的互补性，以免出现非特异扩增。
同时，引物的质量也很重要，选择高纯度的引物可以提高PCR反应的成功率。
3. 操作区域的消毒与隔离为了避免PCR反应过程中的污染，应定期对实验区域进行消毒，如操作台面、工作台和仪器表面。
聚合酶链式反应(PCR)基本原理
四、PCR实验中应注意的事项
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采取以下措施有助于防止污染和结果的假阳性： 1、隔离不同操作区； 2、分装试剂； 3、严格实验操作； 4、严格按无菌操作的原则进行PCR所有操作等。
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聚合酶链反应（PCR）
• • • • 一、PCR的概念； 二、PCR的基本原理； 三、PCR反应条件的优化； 四、PCR操作的注意事项。
• 一、概念：
• 聚合酶链反应（polymerase chain reaction， PCR）扩增技术，即体外试管内DNA的扩增， 以高特异性、高灵敏度、高效率及忠实性等特 点，在生命科学研究领域产生着巨大的影响。
• 引物设计遵循下列原则：
• ①引物长度一般为15～30个核苷酸。
• ②引物中碱基的分布尽可能随机，尽量避免多 聚嘌呤或多聚嘧啶。
• ③引物内避免存在互补序列，以免折叠形成发 夹结构。
• ④两引物间不应存在互补序列，尤其是避免3′ 端的互补重叠。 • ⑤引物与非特异扩增序列的同源性<70%。 • ⑥引物的3′端碱基一定要与模板互补配对；而 5′则可相对不严，甚至还可做一些修饰。
1、变性 • 通过加热至95℃左右，使DNA双螺旋的氢键 断裂，形成单链DNA，作为反应的模板。
• 2、退火 • 将温度降至引物的 Tm 值左右或以下（比 Tm 低 5℃，通常为 55 ～ 65℃），引物与 DNA 模 板互补结合，形成杂交链。
• 3、延伸 • 在DNA聚合酶（一种耐热的DNA聚合酶）的 作用下，于70～74℃以引物3′端为起始 点按5′→3′方向使DNA新链延伸。
• 上述三步为一个循环，每一循环的产物作 为下一个循环的模板，如此经过 25 － 30 个 循环，可使新生的DNA片段得以扩增。
PCR技术
随机引物PCR技术一．实验原理聚合酶链式反应（Polymerase chain reaction ）简称PCR ，它是一种DNA 体外扩增技术。
1985 年美国的Mullis 等人发明了PCR 技术，在体外利用模板DNA 、特定的寡聚核苷酸引物和DNA 聚合酶，通过DNA 变性、复性和延伸过程合成一条互补的DNA 链。
反复重复这一过程，模板DNA 就可得到大量扩增。
在PCR 过程中，DNA 的延伸起初是用大肠杆菌的DNA 聚合酶I （Klenow 片段）来完成的。
由于大肠杆菌的聚合酶不耐热，每次加热变性DNA 后都要补加新的聚合酶。
这不仅增加了实验成本，而且当同时扩增多个样品时极易出错。
在耐热DNA 聚合酶（Taq 酶）发现后，才使PCR 技术的广泛应用成为可能。
特别是自动热循环仪（又叫DNA 扩增仪）的发明，使PCR 反应过程可以电脑控制，实现了自动化。
PCR 技术的发明虽然只有10 多年的时间，但目前这一技术及其衍生的其他实验技术在生物学的许多领域已得到了广泛的应用。
随机引物PCR （Arbitrary - primer PCR ，缩写为AP-PCR ）又称随机扩增多态性DNA （Random amplified polimophic DNA ，缩写为RAPD ），是Williams 和Welsh 等1990 年在PCR 的基础上发展起来的一种实验技术。
在RAPD 扩增中，仅用一个8-10 碱基的寡核苷酸引物，引物的序列是随机的。
RAPD 反应的条件与普通PCR 基本相同。
但由于引物较短，一般退火所需温度较低。
RAPD 与普通PCR 的另一个明显的不同是前者不需知道模板DNA 的序列，扩增出来的片段也是非特异性的；而后者则必须知道待扩增目的片段的序列，根据这一序列设计一对相应的引物。
RAPD 技术一出现，便以它的简便、快捷和多态性捡出率高而引起科学工作者的极大兴趣。
目前这一技术已被广泛用于遗传图谱构建、群体遗传结构分析、DNA 指纹分析和基因定位等不同研究领域。
验证PCR注意事项
验证PCR注意事项PCR（聚合酶链反应）是一种被广泛应用的基因检测技术，可以在短时间内扩增小片段DNA，使其数量快速增加。
然而，PCR技术操作繁琐，在实验过程中存在许多需要注意的事项，下面我将详细回答并讨论PCR技术的注意事项。
1. 实验室准备：在进行PCR实验前，要充分准备实验室所需的基本设备和试剂，如PCR仪、热循环程序控制器、离心机、PCR试剂盒等。
还需要保证空间干净整洁，避免交叉污染。
2. 基因组DNA提取：PCR反应的第一步是提取样本中的DNA，注意要选择适当的提取方法。
常用的方法有酚/氯仿法、磁珠法、硅胶膜法等，具体选择取决于样本类型和实验目的。
此外，提取过程中要避免样本的污染，严格遵守操作规程。
3. 靶标序列选择与设计：设计引物是PCR反应成功的关键。
引物应与目标DNA序列互补，长度在18-30碱基之间，GC含量约为50-60%。
引物间应该没有互补碱基片段，以避免引物二聚体的产生。
在设计引物时，可以利用一些在线工具进行引物评估，确保引物的特异性和稳定性。
4. 引物浓度的优化：引物浓度的优化对PCR反应的成功与否至关重要。
引物过多会导致引物二聚体或非特异性扩增，引物过少则可能导致不稳定的扩增。
一般来说，引物的最佳浓度为0.1-0.5μmol/L。
5. PCR反应体系的优化：PCR反应体系主要包括引物、DNA模板、dNTPs、聚合酶、缓冲液和Mg2+等。
体系中各个组分的浓度和比例需要优化，以确保PCR反应的成功。
一般来说，每个PCR反应管中最终反应体积为20-50μl，引物浓度为0.2-0.5μmol/L，模板DNA浓度为10-200ng。
6. 热循环程序设置的优化：PCR反应的关键步骤是反应体系的热循环程序。
温度和时间的设置需要根据引物和目标序列的特性进行优化。
常规的PCR热循环程序包括：变性（94-98C）、退火（50-68C）和扩增（72C）等步骤，反应周期数一般为25-40个。
PCR技术的基本原理
PCR技术的基本原理PCR（Polymerase chain reaction，聚合酶链反应）是一种用于复制、扩增DNA片段的重要技术。
PCR技术基于DNA复制的天然机制，能够从微量DNA样本中特异性扩增出目标DNA片段，其原理包括以下几个步骤：1. 双链DNA的变性：将待扩增的DNA样品与引物（primers）一起加热至94-96℃，使其双链结构解开成两个单链DNA模板。
这个过程称为变性。
2.引物的结合：在PCR反应混合液中加入两个引物，这两个引物定向性地结合到待扩增DNA序列的两个互补区域上。
引物的引入后降温，使其能够与DNA模板发生互补配对。
3. DNA聚合酶的扩增：将混合液中的DNA聚合酶（通常为热稳定的Taq DNA聚合酶）加入到体系中。
DNA聚合酶具有以DNA模板链为引导合成新的DNA链的能力。
在一定的温度和离子条件下，DNA聚合酶活性最高。
4.温度循环：PCR反应体系被放入一台特制的PCR仪中，经历一系列的温度循环。
每一个循环分为三个阶段：变性、退火（引物与DNA模板链结合）、延伸（DNA聚合酶合成新的DNA链）。
这些温度循环的重复使得目标DNA序列的数量呈指数增长，达到扩增的目的。
上述步骤描述了PCR的基本原理，但PCR反应的具体设计和实施还有一些额外的注意事项：1.引物的选择：引物是PCR反应的核心，其设计需要根据待扩增DNA序列的特点进行。
引物的长度通常在15-30个碱基对之间，而引物的序列需要与目标DNA序列的两个互补区域完全匹配。
2.反应参数：PCR反应需要根据实际情况对引物的浓度、反应体系的离子强度、反应体系的温度等参数进行优化。
这些参数的选择会影响到PCR反应的产物质量和扩增效率。
3.附加技术：PCR技术结合了许多附加的技术，例如，以荧光标记的引物用于定量PCR、逆转录PCR用于从RNA模板中扩增cDNA等。
这些技术使得PCR在不同实验目的下的应用更加多样化。
PCR技术的基本原理和相关技术的发展使其成为生物学、医学等多个领域中不可或缺的工具。
pcr的实验原理
pcr的实验原理PCR（聚合酶链反应）是一种用于扩增DNA片段的强大而广泛应用的分子生物学技术。
它基于DNA聚合酶在体外的体系中，根据所选取的DNA引物，反复进行DNA的复制，从而在数小时内产生大量特定DNA片段的能力。
PCR实验的基本原理是DNA的反复复制。
实验过程中，需加入特定的引物，即寻找与目标DNA片段互补的两段DNA序列，引物用于定义所需扩增片段的起始和终止位置。
PCR反应体系中含有目标DNA片段、引物、DNA聚合酶以及适宜的缓冲液和离子条件。
PCR的过程可通过以下几个步骤描述：变性、退火和延伸。
1. 变性：PCR反应开始时，DNA样本被加热至94-98摄氏度，这会导致DNA的双链结构解离，使其变为两条单链的DNA模板。
2. 退火：温度降至50-65摄氏度时，引物会与目标DNA模板上的互补序列结合，这个过程称为引物的退火。
引物的长度和退火温度会根据所需扩增片段的大小和特定性进行设置。
引物结合到DNA上，形成引物-目标DNA复合物。
3. 延伸：温度升至72摄氏度时，此时引物-目标DNA复合物被DNA聚合酶所识别。
DNA聚合酶会在引物的3'末端上开始合成新的DNA链，以形成一个复制片段。
DNA聚合酶沿着目标DNA模板朝着引物的5'末端依次合成DNA链。
每次PCR循环后，新生产的DNA链也被用作下一轮的模板。
通过PCR循环，DNA的数量呈几何级数增加，而且每轮循环只需几分钟。
多轮循环后可以获得数百万甚至数十亿份目标DNA片段。
循环次数通常在20-40次之间，具体取决于所需扩增片段的长度和起始模板的数量。
PCR实验通过复制DNA序列的方式，使得在体外大量产生目标DNA片段成为可能。
这一技术在分子生物学的多个领域中被广泛应用，如基因克隆、DNA测序、基因突变检测等。
pcr扩增实验注意事项 -回复
pcr扩增实验注意事项-回复PCR扩增实验注意事项PCR（聚合酶链式反应）是一种在分子生物学研究中广泛应用的技术，可快速扩增特定DNA片段。
然而，进行PCR实验时需要注意一些关键事项，以确保实验的准确性和可重复性。
本文将一步一步回答关于PCR扩增实验的注意事项。
一、准备工作在进行PCR实验之前，确保已经做好以下准备工作：1. 搭建无菌工作环境：将实验室工作台面清洁消毒，并使用紫外灯照射，以消除可能存在的DNA污染。
2. 准备所需试剂：确保准备充足的PCR反应缓冲液、核酸模板、引物、dNTPs、MgCl2和聚合酶。
3. 校准PCR仪：使用一个已知序列的DNA模板进行校准，确保PCR仪能够准确地控制温度。
4. 分装试剂：根据实验计划，适当分装PCR反应液和试剂，以减少可能的污染和误操作。
二、引物设计PCR的成功与否与引物的选择和设计密切相关。
在设计引物时，请注意以下事项：1. 引物长度：引物通常应在18-25个碱基对之间，过短的引物可能导致非特异性扩增，而过长的引物则可能导致扩增效率降低。
2. 引物的碱基组成：尽量避免引物中含有多个连续的相同碱基，因为这可能导致引物间的结合不稳定，从而影响PCR反应的效果。
3. 特异性：确保引物与目标DNA序列的互补区域具有足够的特异性，以避免非特异性扩增。
三、试剂与材料的处理在PCR实验中，以下几点是需要注意的：1. 使用质优的试剂和材料：确保所使用的试剂和材料质量优良，避免使用过期或受污染的试剂，以免对实验结果产生负面影响。
2. 避免污染：使用无菌技术进行试剂和材料的处理，避免外源性DNA的污染。
同时避免重复使用塑料制品，以减少可能的交叉污染。
3. 根据需要冷藏保存：将PCR试剂储存在适当的温度下（通常为-20），以保持试剂的稳定性。
四、PCR反应条件设置PCR反应条件的设置对实验结果至关重要，以下几点需要注意：1. 反应体系的优化：根据实验需求，优化PCR反应的组分浓度，如引物浓度、dNTPs浓度和MgCl2浓度。
实验六目的基因的PCR扩增
PCR引物设计
AKP CDS
554......2038
引物1 5’GTCGCGGATCCATGTCACGGCCGAGAC 3’
BamH1
CDS 5’AGCTGTCATAAAGATGTCACGGCCGAGACTTATAGTCGCT…
…………………………………………………………………………. ……
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二、实验原理
三、实验仪器与试剂
1 、仪器： PCR 热循环仪、台式离心机、微量移 液器、吸头、电泳设备等。
2 、试剂：10x PCR buffer、dNTPs（25mM）、Taq
酶（5u/μl）、引物1和2( 10 pmol/ul) 、模板DNA、 ddH2O、琼脂 糖、TAE电泳缓冲液、6×上样缓冲 液、溴化乙啶染液、等。
七、引物设计原则
⑹ 引物的 3′ 末端碱基：原则上要求引物的3′末端与 模板DNA一定要配对，另外 3′末端的末位碱基在 很大程度上影响着 Taq 酶的延伸效率。 引物3′末端 碱基在错误配对时不同碱基的引发效率存在很大差 异，最好选T、G、C，而不选A。
八、注意事项
由于PCR灵敏度非常高，所以应当采取措施以 防反应混合物受痕量DNA的污染。 1. 所有与PCR有关的试剂，只作PCR实验用，而不
……………………………………………………………………………….
……………………………………………………………………………….
CDS ….CATGAAAGCCGCTCTGGGGCTGAAATAAAACCGCGCCCGG3’
引物2
HindⅢ 3’GAGACCCCGACTTTATTTCGAACAGCG 5’
上述3步为一个循环，即高温变性、低温退火、 中温延伸3个阶段。从理论上讲，每经过一个循环， 样本中的DNA量应该增加一倍，新形成的链又可成 为新一轮循环的模板，经过25～30个循环后DNA可 扩增106～109倍。
PCR技术原理、实验步骤和应用
PCR技术原理、实验步骤和应用一、实验目的1.掌握聚合酶链式反应的原理。
2. 掌握移液枪和PCR仪的基本操作技术。
二、实验原理PCR技术，即聚合酶链反应（polymerase chain reaction，PCR）是由美国PE Cetu s公司的Kary Mullis在1983年（1993年获诺贝尔化学奖）建立的。
这项技术可在试管内的经数小时反应就将特定的DNA片段扩增数百万倍，这种迅速获取大量单一核酸片段的技术在分子生物学研究中具有举足轻重的意义，极大地推动了生命科学的研究进展。
它不仅是DNA分析最常用的技术，而且在DNA重组与表达、基因结构分析和功能检测中具有重要的应用价值。
PCR可以被认为是与发生在细胞内的DNA复制过程相似的技术，其结果都是以原来的DNA为模板产生新的互补DNA片段。
细胞中DNA的复制是一个非常复杂的过程。
参与复制的有多种因素。
PCR是在试管中进行的DNA复制反应，基本原理与细胞内DNA复制相似，但反应体系相对较简单。
PCR由变性--退火--延伸三个基本反应步骤构成：①模板DNA的变性：模板DNA经加热至94℃左右一定时间后，使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离，使之成为单链，以便它与引物结合，为下轮反应做准备；②模板DNA与引物的退火(复性)：模板DNA经加热变性成单链后，温度降至55℃左右，引物与模板DNA单链的互补序列配对结合；③引物的延伸：DNA模板--引物结合物在Taq酶的作用下，以dNTP为反应原料，靶序列为模板，按碱基配对与半保留复制原理，合成一条新的与模板DNA 链互补的半保留复制链。
重复循环变性--退火--延伸三过程，就可获得更多的“半保留复制链”，而且这种新链又可成为下次循环的模板。
每完成一个循环需2～4分钟， 2～3小时就能将待扩目的基因扩增放大几百万倍。
三、实验试剂与器材模板DNA、2.5mmol/L dNTPTaq DNA聚合酶（5U/μL）、SSR引物10 ×buffer、15mmol/L Mg2+、ddH2OPCR仪、移液枪、PCR板四、实验步骤1、配制20μL反应体系，在PCR板中依次加入下列溶液：模板DNA 2μL引物1 1μL引物2 1μLdNTP 1.5μLMgCl2 2μL10×buffer 2μLddH2O 10μLTaq酶0.5μL2、设置PCR反应程序。
PCR的原理、操作步
PCR循环 第二步 － 退火 （３７～６５℃）
②模板DNA与引物的退火(复性)：模板DNA经加热变性成单链后，温度降至55℃左右，引 物与模板DNA单链的互补序列配对结合；
PCR循环 第三步 － 延伸 （７０～７５℃）
③引物的延伸：DNA模板--引物结合物在TaqDNA聚合酶的作用下，以dNTP为反应原料， 靶序列为模板，按碱基配对与半保留复制原理，合成一条新的与模板DNA 链互补的半保留
标本的运送
• 标本采集后，密闭、标（贴）姓名，应尽 可能快的送至检测实验室，如运送时间需2 小时以上，必须用冰盒送至实验室。
• 标本中如加入了适当的稳定剂，如用于 RNA测定加入4mol/L异硫氰酸胍盐（GITC） 的血清（浆）标本和用于DNA测定的EDTA 抗凝血等，则可在室温下运送或邮寄。
2.标本的验收
丙型肝炎病毒（RNA血清）
• a）双手戴上手套，从冰箱取出标本，将化验单和试管依次编号后， 弃去手套。
• b）双手换上新手套，用镊子(夹取灭菌物品专用)取出0.5ml灭菌离心 管，对应标本编号，置于离心管架上。
• c）先用移液器混匀RNA提取液A，然后吸取10µl加入到编好号的离心 管中，再用移液器吸取50µl 血清加入，最后用移液器加入200 µlRNA 提取液B，在震荡器上震荡混匀，放置5分钟，然后6000转1分钟离心。
我科开展的PCR检验项目
• 乙 肝 病 毒（HBV－DNA） • 丙 肝 病 毒（HCV－RNA） • 结 核 杆 菌（TB－DNA） • 肺 炎 支 原 体（MP-DNA） • 梅毒螺旋体（TP－DNA） • 淋 球 菌（NG－DNA） • 沙 眼 衣 原 体（CT－DNA） • 解 脲 支 原 体（UU-DNA） • 幽门螺杆菌(HP—DNA)
pcr的实验流程及注意事项
pcr的实验流程及注意事项嘿，小伙伴们！今天咱们来唠唠PCR这个超酷的实验呀！PCR 呢，就是聚合酶链式反应，在分子生物学里那可是相当重要的一个实验呢！**一、PCR的实验流程**1. 首先是样本准备呀！哎呀呀，这个步骤可不能马虎呢。
咱们得先获取到含有目标DNA的样本，这个样本来源可就多啦，可能是血液、组织或者细胞之类的哇。
在提取样本中的DNA时，一定要小心谨慎，要确保DNA的纯度和完整性呢！如果DNA提取得不好，后面的实验可就麻烦大啦！2. 接下来就是引物设计啦！哇，这可是个技术活呢。
引物就像是一把钥匙，要能够精准地结合到咱们想要扩增的DNA片段上才行呀。
引物的长度、GC含量这些参数都得好好考虑呢！一般来说，引物长度在18 - 25个碱基左右比较合适，GC含量在40% - 60%之间是比较理想的呢。
要是引物设计得不好，可能就扩增不出咱们想要的片段，那可就白忙活一场啦！3. 然后就是反应体系的配制喽！这一步需要把各种试剂按照一定的比例混合在一起呢。
像模板DNA、引物、dNTP（脱氧核糖核苷三磷酸）、Taq酶还有缓冲液这些都是必不可少的呀。
哎呀呀，在加试剂的时候一定要准确呢，哪怕是一点点的误差都可能影响实验结果哇！比如说Taq酶加多了或者加少了，反应的速度和效率就会发生变化呢。
4. 再然后就是把配制好的反应体系放到PCR仪里面进行反应啦！这个PCR仪就像是一个神奇的小盒子，它会按照咱们设定好的程序来进行加热、冷却的循环呢。
一般来说，PCR反应会经过变性、退火和延伸这三个步骤的循环。
变性的时候温度比较高，大概在90 - 95℃左右，这个时候DNA双链会解开变成单链呢；退火的时候温度会降低，这个温度要根据引物的Tm值 解链温度）来设定，一般在50 - 65℃之间，这时候引物就会和模板DNA结合上；延伸的时候温度大概在72℃左右，Taq酶会以引物为起点，把dNTP一个一个地连接到新合成的DNA链上呢。
循环的次数也很关键，通常是25 - 35次左右，循环次数太多或者太少都可能导致实验结果不理想呢！**二、PCR的注意事项**1. 哇，实验室的环境清洁可是相当重要的呢！如果实验室里有太多的杂质或者其他DNA的污染，很容易就混到咱们的实验样本里面去啦。
PCR技术操作流程及注意事项
PCR技术操作流程及注意事项⼀、PCR 的基本原理类似于DNA 的体内复制。
⼀先待扩增DNA 模板加热变性解链，随之将反应混合物冷却⼀某⼀温度，这⼀温度可使引物与它的靶序列发⼀退⼀，再将温度升⼀使退⼀引物在DNA 聚合酶作⼀下得以延伸。
这种热变性- 复性- 延伸的过程就是⼀个PCR 循环，PCR 就是在合适条件下的这种循环的不断重复。
⼀、PCR 反应体系1. 缓冲液标准的缓冲液含1pmol/ml Tris ·HCl，其pH 为8.3-9.0（室温），⼀在延伸温度（72 ℃）下，pH 值接近7.2 。
缓冲液中含有⼀种⼀价阳离⼀，⼀于激活DNA 聚合酶的活性中⼀，⼀般使⼀Mg 2+ 。
2.dNTP脱氧核糖核苷三磷酸的缩写，是包括dATP, dGTP, dTTP, dCTP 等在内的统称，即合成新的DNA 链的材料。
4 种dNTP 的浓度相等，总浓度⼀般为200pmol/ml （即饱和浓度）。
dNTP 可与Mg 2+ 结合，使游离的Mg 2+ 浓度下降，影响DNA 聚合酶的活性。
3. 引物引物是⼀段短的单链DNA ⼀段，可结合在核酸链上与之互补的区域，其功能是作为核苷酸聚合作⼀的起始点，DNA 聚合酶可由其3′端开始合成新的核酸链。
引物长度⼀般以18～30bp 为宜，过短则降低特异性，过长则会引起引物间的退⼀⼀影响有效扩增，同时也增加引物合成的成本。
引物的碱基顺序不能与⼀扩增区有同源性。
4. 模板模板是⼀段单链或者双链DNA，提供⼀于进⼀PCR 扩增的原始信息。
对模板的纯度要求低，但不能混有蛋⼀酶、核酸酶、DNA 聚合酶抑制剂、DNA 结合蛋⼀等。
模板DNA 应该尽量保持低温保存。
5.Taq DNA 聚合酶Taq DNA 聚合酶以DNA 为复制模板，从将DNA 由5' 端点开始复制到3' 端的酶。
DNA 聚合酶的主要活性是催化DNA 的合成（在具备模板、引物、dNTP 等的情况下）及其相辅的活性。
PCR原理及注意事项
PCR原理及注意事项PCR（Polymerase Chain Reaction）是一种在分子生物学领域中广泛使用的技术，用于扩增目标DNA片段或基因。
PCR技术通过不断重复一系列的温度循环，结合特定的引物和DNA聚合酶来实现DNA的扩增。
以下是PCR原理和注意事项的详细介绍。
PCR是一种体外的DNA扩增技术，可以从极少量的DNA样本中扩增出大量的DNA片段，从而方便进行进一步研究。
PCR反应通常涉及三个步骤：变性、退火和延伸。
1. 变性（Denaturation）：将DNA样本加热至94-98°C，以断开双链DNA，使其形成两条单链。
2. 退火（Annealing）：将反应温度降至50-65°C，使引物与目标DNA序列特异性结合。
引物是短DNA片段，可以绑定到目标DNA序列的两端。
3. 延伸（Extension）：在60-75°C条件下，DNA聚合酶（例如Taq聚合酶）在引物的引导下，在目标DNA上合成新的DNA链，形成两个新的DNA双链。
通过不断重复这个PCR循环，每个循环将目标DNA段扩增一倍，扩增的DNA量呈指数增长，最终得到大量目标DNA。
PCR注意事项：1.基本操作规范：为了防止DNA污染和混合，实施PCR反应时，需要使用无菌试剂和工作区域，并避免接触空气中的DNA。
2.设计引物：合适的引物是PCR成功的关键。
引物应具有良好的特异性，并且序列不应内部重叠或与其他非目标DNA序列互补。
引物的长度通常在18到30个碱基对之间。
3.防止污染：特别注意防止污染的问题，尤其是在引物制备和样本准备过程中。
使用无菌技术并采取防污染措施，例如使用不同的实验室器皿和耗材，避免交叉污染。
4.合适的PCR缓冲液和酶：选择适合实验需求的PCR缓冲液和酶。
不同的PCR缓冲液和酶在反应条件和扩增效率上可能有所不同。
确保合适的成分浓度和酶的稳定性。
5.DNA模板的纯度：为了提高PCR反应的效率和特异性，DNA模板的纯度至关重要。
pcr实验流程和注意事项
pcr实验流程和注意事项PCR（聚合酶链反应）是一种广泛应用于分子生物学领域的技术，用于扩增寻找的DNA片段。
它被广泛用于基因分型、疾病诊断、DNA克隆、基因组测序等领域。
下面将介绍PCR实验的流程和注意事项。
一、PCR实验流程：1. DNA样品提取：从所研究的样品中提取所需的DNA，可以是细胞、组织、血液等。
2.先导扩增：先导扩增是为了增加所需的DNA靶序列数目，用于后续的扩增反应。
通过使用特定的引物扩增产生所需的DNA靶序列。
3.扩增反应液的制备：准备PCR反应液，通常包括DNA样本、引物、酶（聚合酶、缓冲液）、dNTPs（四种脱氧核苷三磷酸）和Mg2+离子等。
4.反应条件设置：根据所使用的PCR仪和所需扩增的DNA靶序列长度等参数，设置PCR反应的温度、时间等条件。
5. PCR扩增：将反应液放入PCR仪中，按照所设定的条件进行PCR扩增。
6. PCR产物检测：使用琼脂糖凝胶电泳等方法，对PCR扩增的产物进行检测和分析。
7. PCR产物纯化：可以使用PCR产物纯化试剂盒，将扩增的DNA 片段纯化、回收。
8.测序：如果需要测序分析，可以将PCR产物进行测序。
二、PCR实验的注意事项：1.实验区分：DNA准备、引物配置和反应设置等步骤应在无污染的实验区中进行，避免产生假阳性和污染的结果。
2. DNA样品的准备：DNA样品的提取应严格按照操作规程执行，避免外源性DNA的污染。
同时，要确保样品的质量和浓度。
3.引物设计：合理的引物设计对PCR扩增的特异性和效率有重要影响。
引物的长度、GC含量、Tm值等要充分考虑。
4.酶的选择：PCR酶的选择应根据所需的PCR反应类型和条件来确定。
常见的PCR酶包括Taq聚合酶和Pfu聚合酶等。
5.反应条件设置：PCR反应的条件（包括温度、时间等）应根据实验需求和所用引物的特性来设定，避免扩增效率低或非特异性扩增。
6.防止污染：使用无核酸的试剂和耗材，并采取严格的无菌操作。
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PCR疑难解答当PCR结果不甚满意时，首先检查以下几方面并遵照执行：将PCR反应的试管与反应板紧贴。
当酶反应混合物以70℃“热启动”开始循环时，切记在加入酶后稍微振荡一下，因为在0.2-ml 的PCR管中不能均匀传热。
不要随意减少dNTP的用量，它是一个系统的因素，必须与其它成份保持平衡。
对于有问题的PCR反应，例如模板的量少，模板不纯和环状模板等，先尝试加Taq酶前的体系进行预变性，后加模板进行正常PCR扩增。
没有扩增产物：在提供MgCl2缓冲液中，以0.25mmol/L为梯度增加MgCl2浓度；无MgCl2的缓冲液以0.5 mmol/L为梯度增加MgCl2浓度。
泳道中出现模糊条带，如果DNA模板中存在RNA，则按上述提示浓度补加MgCl2，因为在PCR反应中可能缺少游离的Mg2+。
检查退火温度和变性条件，如果有需要的话，可降低退火温度。
检查模板和引物的用量。
增加循环次数和/或模板DNA的用量。
泳道中出现模糊条带：减少循环次数或模板DNA的用量。
提高退火温度，但不要超过68℃。
重新设计引物或设计更长的引物。
其他值得注意的条件：建议使用0.2-ml薄壁管。
厚壁管在92℃时不能有效地使模板变性。
最佳反应体积为50ml，推荐用30ml矿物油覆盖（对盖子加热的PCR仪可以不加）。
大多数反应中，0.75ml（0.5~1ml）的酶量在大多数情况下可以得到满意的结果。
建议使用1.75mmol/L MgCl2∶350mmol/L dNTP或2.25mmol/L MgCl2∶500mmol/L dNTP 组合的混合物。
然而要得到最佳结果，优化Mg2+的浓度是必需的。
基因组DNA模板的质量显著影响PCR反应。
因此推荐使用琼脂糖凝胶电泳来检测DNA的长度。
DNA片段长度可以超过50kb，传统的基因组DNA能扩增片段至10kb。
要扩增更长的片段应使用超纯或高分子量的DNA。
请查阅高分子量DNA提取操作过程相关文献。
降低二级结构和引物二聚物形成的可能性。
进行长片段PCR扩增时，引物长度一般为24~34个核苷酸，溶点在60~68℃间。
使用这类引物可提高PCR反应的退火温度来增加反应的特异性。
这点非常重要，长片段扩增的效果往往受到非特异性短片段优先扩增的影响。
变性：第一步变性在94℃下进行2分钟。
在循环过程中尽可能缩短变性时间（94℃下进行20--30秒），除非模板中富含GC，则95℃下变性30秒。
这可以防止DNA脱嘌啉和链断裂，对于所需扩增的基因组DNA片段终长度超过12 kb时，应该尽可能的降低变性温度。
延伸：68--72℃下进行延伸操作。
循环延伸：尽量采用循环延伸的条件，若PCR仪无此功能，则必须增加延伸的时间，例如在扩增10kb片断时，延伸时间用10分钟替代原来的8分钟。
长片断PCR系统扩增的片断其3’-末端带有一个突出的A，因此建议采用T/A克隆。
若要进行平端可隆，可用Klenow酶和T4 DNA多聚酶将PCR产物补平后再进行。
测序时因酶的混合物带有3’→5’外切酶活性，用Sanger方法进行测序不能产生均一的（染色体）带型。
在无菌的0.5ml或0.2ml离心管中按下列操作程序加样：反应物加样顺序体积(μl) 终浓度去离子水1 29.410×Buffer B 2 5 1×10×PCR Buffer成分：Tris-HCl pH8.5 100 mMKCl500 mMMgCl15 mM4×dNTP混合物3 5 各200μmol/LMgCl2 4 3 1.5mmol/L有义引物5 2.6 0.25μmol/L反义引物6 2.6 0.25μmol/L模板7 2 0.1μgTaqDNA聚合酶8 0.4 1unit2. 用微量可调加样器和一次性Tip向每一管中加50μl矿物油。
每加一管换一次Tip。
3. 振荡每只管，然后短暂离心。
4. 将管放到预热的热循环中，按下列程序开始循环：预变性94℃4分钟1次变性94℃1分钟退火37-65℃1分钟延伸72℃1分钟循环30次终延伸72℃7分钟1次保存4℃讨论1.假阴性，不出现扩增条带PCR反应的关键环节有①模板核酸的制备，②引物的质量与特异性，③酶的质量，④PCR循环条件。
寻找原因亦应针对上述环节进行分析研究。
模板：①模板中含有Taq酶抑制剂，②在提取制备模板时丢失过多，或吸入酚。
③模板核酸变性不彻底。
在酶和引物质量好时，不出现扩增带，有可能是模板核酸提取过程出了毛病，可使用阳性对照的DNA模板配合检查模板质量。
酶失活：需更换新酶，或新旧两种酶同时使用，以分析是否因酶的活性丧失或不够而导致假阴性。
引物：引物质量、引物的浓度、两条引物的浓度是否对称，是PCR失败或扩增条带不理想、容易弥散的常见原因。
有些批号的引物合成质量有问题，两条引物一条浓度高，一条浓度低，造成低效率的不对称扩增，对策为：①选定一个好的引物合成单位。
②引物的浓度不仅要看OD值，更要注重引物原液做琼脂糖凝胶电泳，一定要有引物条带出现，而且两引物带的亮度应大体一致，如一条引物有条带，一条引物无条带，此时做PCR有可能失败，应和引物合成单位协商解决。
如一条引物亮度高，一条亮度低，在稀释引物时要平衡其浓度。
③引物应高浓度小量分装保存，防止多次冻融或长期放冰箱冷藏，导致引物变质降解失效。
④引物设计不合理，如引物长度不够，引物之间形成二聚体等。
Mg2+浓度：Mg2+离子浓度对PCR扩增效率影响很大，浓度过高可降低PCR扩增的特异性，浓度过低则影响PCR扩增产量甚至使PCR扩增失败而不出扩增条带。
反应体积的改变：通常进行PCR扩增采用的体积为20ul、30ul、50ul、或100ul，应用多大体积进行PCR扩增，是根据科研和临床检测不同目的而设定，在做小体积如20ul 后，再做大体积时，一定要模索条件，否则容易失败。
物理原因：变性对PCR扩增来说相当重要，如变性温度低，变性时间短，极有可能出现假阴性;退火温度过低，可致非特异性扩增而降低特异性扩增效率，退火温度过高影响引物与模板的结合而降低PCR扩增效率。
有时还有必要用标准的温度计，检测一下扩增仪或水溶锅内的变性、退火和延伸温度，这也是PCR失败的原因之一。
靶序列变异：如靶序列发生突变或缺失，影响引物与模板特异性结合，或因靶序列某段缺失使引物与模板失去互补序列，其PCR扩增是不会成功的。
2.假阳性出现的PCR扩增条带与目的靶序列条带一致，有时其条带更整齐，亮度更高。
引物设计不合适：选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性，因而在进行PCR扩增时，扩增出的PCR产物为非目的性的序列。
靶序列太短或引物太短，容易出现假阳性。
需重新设计引物。
靶序列或扩增产物的交叉污染：这种污染有两种原因：一是整个基因组或大片段的交叉污染，导致假阳性。
这种假阳性可用以下方法解决：①操作时应小心轻柔，防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。
②除酶及不能耐高温的物质外，所有试剂或器材均应高压消毒。
所用离心管及样进枪头等均应一次性使用。
③必要时，在加标本前，反应管和试剂用紫外线照射，以破坏存在的核酸。
二是空气中的小片段核酸污染，这些小片段比靶序列短，但有一定的同源性。
可互相拼接，与引物互补后，可扩增出PCR产物，而导致假阳性的产生，可用巢式PCR方法来减轻或消除。
3.出现非特异性扩增带PCR扩增后出现的条带与预计的大小不一致，或大或小，或者同时出现特异性扩增带与非特异性扩增带。
非特异性条带的出现，其原因：一是引物与靶序列不完全互补、或引物聚合形成二聚体。
二是Mg2+离子浓度过高、退火温度过低，及PCR循环次数过多有关。
其次是酶的质和量，往往一些来源的酶易出现非特异条带而另一来源的酶则不出现，酶量过多有时也会出现非特异性扩增。
其对策有：①必要时重新设计引物。
②减低酶量或调换另一来源的酶。
③降低引物量，适当增加模板量，减少循环次数。
④适当提高退火温度或采用二温度点法(93℃变性，65℃左右退火与延伸)。
4.出现片状拖带或涂抹带PCR扩增有时出现涂抹带或片状带或地毯样带。
其原因往往由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多引起。
其对策有：①减少酶量，或调换另一来源的酶。
②减少dNTP的浓度。
③适当降低Mg2+浓度。
④增加模板量，减少循环次数。
PCR技术类似于DNA的天然复制过程，其特异性依赖于与靶序列两端互补的寡核苷酸引物。
PCR由变性--退火--延伸三个基本反应步骤构成：①模板DNA的变性：模板DNA经加热至93℃左右一定时间后，使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离，使之成为单链，以便它与引物结合，为下轮反应作准备；②模板DNA与引物的退火(复性)：模板DNA经加热变性成单链后，温度降至55℃左右，引物与模板DNA单链的互补序列配对结合；③引物的延伸：DNA模板--引物结合物在TaqDNA聚合酶的作用下，以dNTP为反应原料，靶序列为模板，按碱基配对与半保留复制原理，合成一条新的与模板DNA 链互补的半保留复制链重复循环变性--退火--延伸三过程，就可获得更多的“半保留复制链”，而且这种新链又可成为下次循环的模板。
每完成一个循环需2～4分钟，2～3小时就能将待扩目的基因扩增放大几百万倍。
到达平台期(Plateau)所需循环次数取决于样品中模板的拷贝。
PCR的三个反应步骤反复进行，使DNA扩增量呈指数上升。
反应最终的DNA 扩增量可用Y＝(1＋X)n计算。
Y代表DNA片段扩增后的拷贝数，X表示平(Y)均每次的扩增效率，n代表循环次数。
平均扩增效率的理论值为100%，但在实际反应中平均效率达不到理论值。
反应初期，靶序列DNA片段的增加呈指数形式，随着PCR产物的逐渐积累，被扩增的DNA 片段不再呈指数增加，而进入线性增长期或静止期，即出现“停滞效应”，这种效应称平台期数、PCR扩增效率及DNA聚合酶PCR的种类和活性及非特异性产物的竟争等因素。
大多数情况下，平台期的到来是不可避免的。
PCR扩增产物可分为长产物片段和短产物片段两部分。
短产物片段的长度严格地限定在两个引物链5’端之间，是需要扩增的特定片段。
短产物片段和长产物片段是由于引物所结合的模板不一样而形成的，以一个原始模板为例，在第一个反应周期中，以两条互补的DNA 为模板，引物是从3’端开始延伸，其5’端是固定的，3’端则没有固定的止点，长短不一，这就是“长产物片段”。
进入第二周期后，引物除与原始模板结合外，还要同新合成的链(即“长产物片段”)结合。
引物在与新链结合时，由于新链模板的5’端序列是固定的，这就等于这次延伸的片段3’端被固定了止点，保证了新片段的起点和止点都限定于引物扩增序列以内、形成长短一致的“短产物片段”。