紫甘薯色素提取工艺研究

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紫甘薯色素提取工艺及研究进展略述

紫甘薯色素提取工艺及研究进展略述作者：陈林茂来源：《科学与财富》2018年第14期摘要：紫甘薯是甘薯中的一种，其具有较高的红色素含量，属于天然色素类型。

为实现的对紫甘薯色素的利用，需择取有效的提取工艺，确保紫甘薯的合理利用。

故此，文章结合紫甘薯色素提取工艺展开分析，分析具体提取工艺，再对相关具体研究进展进行简述，旨意推动紫甘薯色素提效果，为进一步开放色素资源提供帮助。

关键词：紫甘薯；色素；提取工艺；研究进展紫甘薯色素为紫甘薯红色素，其主要提取部位是紫甘薯的块根和茎叶，属于天然色素类型，具有营养、保健等功能，符合当前人们追求品质生活和健康生活的需求。

这样的情况下，紫甘薯色素的提取就变得十分重要，需采取适宜的紫甘薯提取工艺。

基于此，本文对紫甘薯色素提取工艺展开研究，并对紫甘薯色素提取工艺的研究进展进行论述。

1紫甘薯及紫甘薯色素分析紫甘薯属旋花科1年生草本植物，其皮紫褐色，肉紫红色。

早期紫甘薯是由日本培育出的新品种，我国于1988年左右引入，并经过不断杂交得实验等，使得紫甘薯得到了进一步改良，更为适宜中国的土地类型，且产量和色素含量均得到了提升。

紫甘薯的根系发达，块根可无氧呼吸产生乳酸。

紫甘薯在具有普通甘肃具备的营养成分外，紫甘薯还富含青花素，使得紫甘薯在营价值外，还具备明显的药用价值。

紫甘薯色素，则是一种富含花青素的天然着色剂，具有广泛的市场需求。

而且，使用紫甘薯着色剂，可避免合成着色剂对人体的损害，紫甘薯色素可以直接服用，具有较好的应用价值。

而紫甘薯的提取时，所使用的紫甘薯品种外观要求不高，但要求紫甘薯品种的适应能力强，具有较高的抗病能力，且需要紫甘薯富含较高的花青素，且保障花青素色价比在25以上。

2紫甘薯色素提取工艺及研究进展鉴于紫甘薯色素的价值较高，比人工合成色素安全性更高、营养价值更高，可直接用于食品加工中。

这也就使得紫甘薯色素的提取工艺成为影响紫甘薯色素产量的重要方式。

当前，紫甘薯色素的提取工艺，多以酸性溶液浸提法。

紫薯色素提取与抗氧化研究实验方案

紫薯色素提取与抗氧化研究一、紫薯色素提取：1、新鲜紫薯，洗净，去除病害部位，切成 3 mm 薄片，在 60℃下烘干至恒重后粉碎，避光保存备用。

2、准确称取的紫薯粉2.5g 分别与5%柠檬酸、95%乙醇、乙酸乙酯、水在60℃下提取一次（此时料液比为1:20），每次60 min 。

提取液在3500r/min 下离心10 min,收集上清液。

以提取剂为空白对照，在波长525nm 下测定其吸光值，平行测定3次，检测提取物中紫薯色素的含量。

3、准确称取5份质量为2.5g 的紫薯粉分别加入50ml 三角瓶中，并分别加入浓度为0.5%、1.0%、5%、10%、15%的柠檬酸各50ml ，60℃恒温水浴60min ，在3500r/min 下离心10 min,收集上清液。

以提取剂为空白对照，在波长525nm 下测定其吸光值，平行测定3次，检测提取物中紫薯色素的含量。

实验组数试剂5%柠檬酸 95%乙醇乙酸乙酯水稀释 10 倍无稀释无稀释稀释 5 倍 1 0.305 0.092 0.036 0.251 2 0.304 0.095 0.038 0.260 3 0.301 0.092 0.040 0.245 平均值0.303 0.093 0.038 0.252实验组数温度0.5%1.0%5%10%15%稀释 10倍稀释 10倍稀释 10 倍稀释 10 倍稀释10 倍1 0.141 0.211 0.273 0.354 0.4102 0.143 0.212 0.280 0.357 0.407 3 0.149 0.209 0.279 0.357 0.409 平均值 0.144 0.211 0.277 0.356 0.4094、准确称取的紫薯粉0.5、1g 、2.5g 、5g 、7.5g 、10g 分别至于三角瓶中，各加入50ml 提取液，在60℃下提取60min ，提取液后在3500r/min 下离心10 min,收集上清液。

柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液法提取紫甘薯花青素的工艺研究

ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｆｎｙｘｂ．ｃｎ
ＩＳＳＮ２０９ＤＯＩ：１０．３９６９／ｊ：ｉｓｓｎ．２０９５－１１９１．２０１３．４．６５３
ｔｈｏｇｏｎａｌｔｅｓｔｗｉｔｈｔｈｒｅｅｉｎｌｆｕｅｎｃｉｎｇｆａｃｔｏｒｓ（ｍａｔｅｒｉａｌｓｔａｔｕｓ，ｅｘｔｒａｃｔｉｎｇｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ，ａｎｄｅｘｔｒａｃｔｉｎｇｔｉｍｅｓ）ｗｅｒｅｄｅｓｉｇｎｅｄｔｏｅｘｔｒａｃｔａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎｓｒｏｆｍｆｏｕｒｔｙｐｅｓｏｆｐｕｒｐｌｅｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ（Ｗａｎｚｉ５６，Ｎｉｎｇｚｉｓｈｕｌ，１０２４ — ２０ａｎｄ０９２９－１１５）ｕｓｉｎｇｃｉｔｉｒｃ
柠檬酸一磷酸氢二钠缓冲液法提取紫甘薯花青素的工艺研究
杨国才，陈香颖，王季春，杜川，张凯，蔡叶茂，高旭，唐道彬，赵勇
（西南大学农学与生物科技学院，重庆４００７１６）
摘要：【目的】探索一种更好的紫甘薯花青素提取方法，为提高青花素的开发利用奠定基础。【方法】采用柠檬酸一磷酸氢二钠缓冲液法提取４个不同品种（系）紫甘薯（万紫５６、宁紫甘薯１号、１０２４．２０、０９２９－１１５）的花青素，并通过采用单因素试验及正交试验，从材料状态（鲜样／干样）、提取温度、提取次数等３个影响因素对其提取工艺进行优化。【结果】各因素对紫甘薯花青素提取量的响应主次顺序为：提取温度＞材料状态＞提取次数；综合考虑提取效率及生产成

紫甘薯中花青素的提取及含量的测定

紫甘薯中花青素的提取及含量的测定山东农业大学化学学院09级材化2班赵林静152********山东农业大学化学学院09级材化2班李新152********摘要用乙醇酸溶液从紫甘薯中提取花青素。

用PH示差法对提取液中花青素含量进行测定。

关键字：紫甘薯花青素PH示差法1前言：花青素又称花色素，是一种广泛存在于植物中的水溶性天然色素。

属黄酮类化合物，多以糖苷的形式存在，也称花色苷。

花色苷是一种以黄酮核为基础的一类糖苷，天然花色苷配糖体的基本结构为3、5、7-三羟基-2-苯基并呋喃。

最早且最丰富的花青素的花青素是从后葡萄渣中提取的葡萄皮红，花青素作为一种天然食用色素，安全，无毒，资源丰富，而且具有一定的营养和药用价值，在视屏、化妆、医药等方面有着巨大的应用潜力。

有实验证明，花青素是迄今为止所发展的最强效的自由基清除剂。

目前对花青素的定量没有较好的方法，常用的方法是以色价或吸光度表示其相对含量，也有用花青素纯品配置不同浓度梯度制作标准曲线测定色素的含量但由于花青素的标准品很不稳定，限制了这种方法的使用。

本实验用PH示差法对紫甘薯中花青素的提取液中花青素的含量进行测定。

2 实验目的2.1掌握花青素的提取方法及其PH示差法测量花青素含量的原理2.2熟练掌握分离提纯操作方法步骤。

3 实验原理紫甘薯中含有花青素，用乙醇的酸溶液作为提取液在离心机的作用下即可得到粗的花青素提取液。

PH示差法的原理为花青素的色调和色度随PH值的不同而发生改变。

PH为1.0时，花青素以红色的2-苯基并呋喃的形式存在。

结合朗伯比尔定律可得出在两个不同PH值下，花青素溶液的吸光度差值与花青素含量成正比。

4实验仪器及试剂仪器：电子天平；钥匙；精密PH试纸；PH计；表面皿、玻璃棒；烧杯；干燥的带塞子的锥形瓶250ml(4支)；100ml容量瓶（4支）；胶头滴管；500ml试剂瓶（3支）；高速离心机、离心管（6支）；分光光度计；10ml小量筒（3支）；摇床；烧杯3支试剂：粉末状紫甘薯30g(自备)；分析纯的乙醇试剂500 ml 氯化钾20g 醋酸钠30g 去离子水1000ml 分析纯的盐酸50ml5 实验步骤5.1乙醇的酸溶液按85：15的比例将分析纯的乙醇溶液与去离子水混合，再用浓盐酸调节PH至1.0左右。

紫甘薯色素提取条件及稳定性研究

食品与发酵科技
ＦｏｎｅｍｅａｉｎＴｃｏｏｙｏｄａｄＦｒｎｔｔｏｅｈｎｌｇ
第４６卷（４期）Ｖ１６Ｎ．第ｏ．，ｏ４４
紫甘薯色素提取条件及稳定性研究
李博，雷激汤富蓉，露，左
（ｉｎｉｅｉｇＣｌｇ，ｉｕｎｖｒｔ，ｈｎｄ１０９ＢｏｇｎｒｏｅｅＸｈａＵｉｓｙＣｅｇｕ６０３）ｅｅｎｌｅｉ
ＡｂｔａｔＩｈｓｐｐｒｔｅｏｔｍｘｒｃｉｇｃｎｉｏｆａｔｏｙｎｎｆｏｐｒｌｓｅｔｐｔｔｎｔｓａｉｔｅｅｓｒｃ：ｎｔｉａｅ，ｈｐｉｍｕｅｔｔｏｄｔｎｏｎｈｃａｉｒｍｕｐｅｗｅｏａｏａｄｉｔｂｌｉｗｒａｎｉｓｉｙ
ｅｔｃｅｔ６ ℃ ｗｔｒａｈｆｒｌ，ｔａｔｒａ－ｏ０１ＨＣ１ａｉ１３．ｈｏｏｓｏｎｈｃａｉｎａｉｉ，ｅｔｌｘｒｔｄａｏａａｅｂｔｏｈｗｉｒｗｍａｅｉｌｔ－．％ｈｔ：０Ｔｅｃｌｒｆａｔｏｙｎｎｉｃｄｃｎｕｒｒｏａ
（西华大学生物工程学院，四川成都６０３）１０９
ห้องสมุดไป่ตู้
摘
要：用正交试验对紫甘薯花色苷的提取条件进行优化，点研究了紫甘薯花色苷在不同条件下的稳定性。结采重

紫甘薯色素提取工艺研究

影响。
（）５份０５ｇ切碎的紫甘薯，别用１２取．分
ｍｏ／ｌＬ柠檬酸溶液１，５２，５３Ｏ１，０２，０ｍＬ（应对的料液比分别为１：０１：３、４、２、０１：Ｏ１：５、０１：Ｏ在６ ℃下提取２，定滤液在５０ｍ６）Ｏ测ｈ３ｎ
分析纯（药集团北京化学试剂公司生产）国。
色素的种类及用量要求越来越严格。与合成色
素相比，然食用色素不仅种类繁多，泽自天色
７１型分光光度计（海精密科学仪器有限公２上
司生产）Ｂ２０；Ｓ１Ｓ电子天平（京赛多利斯天平北
波长下的吸光度Ａ值，选择提取紫甘薯色素最
佳的料液比。（）５份０５ｇ切碎的紫甘薯，入１３取．加ｍｏ／ｌＬ柠檬酸溶液，１：０的料液比在温度按２为３，０６，Ｏ９Ｏ４，０８，Ｏ℃下提取２ｈ测其在５０，３
笔者利用化学浸提法对紫甘薯色素进行提
取，讨提取的最佳工艺条件，探旨在为该资源的充分开发利用奠定基础。
ｎ下的吸光度Ａ值，ｍ研究提取温度对紫甘薯
收稿日期：０２０４２１—２２
色素提取效果的影响。
４０ｈ观察每个时间段色泽变化，定滤液在．，测
分为天然和合成色素２大类。随着现代科学的

膜技术用于紫薯花色苷色素分离纯化的工艺研究

膜分离纯化 — 浓缩膜
色素粉末
２实验部分
２１提取实验．
ｏ
１１２５４５ｏ６７８９ｏ５０００００
时间／ｎｍｉ
提取实验中采用水提法，通过单因素实验对提取时问、温度、水量、提取剂等因素分别进行
；且其具有抗氧化、
清除自由基作用，减少低密度脂蛋白（Ｄ）ＬＬ，抗突变、抗肿瘤，改善视力作用。紫薯花色苷色素
作者简介：万莹（９８一）１８，女，硕士研究生，研究方向为天然产物提取。
溶于水和乙醇，不溶于乙醚、氯仿等有机溶剂；遇醋酸铅试剂会沉淀，并能被活性炭吸附。膜技术是一种选择性分离的技术，该技术
能耗小、浓缩分离过程不发生相变；浓缩分离过
采用最佳条件提取的色素溶液通过离心后进人膜过程纯化浓缩。色素粗提液各项指标如表１。
表１色素粗提液检测结果
Ｔａｅ１Ｔｅｔｒｓｔｂｌｓｅｕｌｓ
程是连续式、母液进入系统直接产出浓液与淡液；
与传统蒸发工艺相比，节省能耗，降低成本。采用膜技术分离纯化浓缩天然色素溶液可以避免色素的
变性和损失，可以保证天然色素的活性。
２２分离纯化．
１材料设备与方法
１１实验材料与设备．
紫薯原料由武汉市花之恋食品有限公司提供。膜组件及设备：湖北工业大学膜技术研究

速煮紫薯中花青素的测定方法研究

管架，容量瓶等。
１２材料与试剂．
紫薯，市售，产地为成都，经测定鲜紫薯的水分为６．８；５１速煮紫薯的制备：紫薯经清洗、皮、鲜削切丁、色处理后，０护６ ℃热风干燥，经测定水分约为８；．６ｇＬ盐酸一化钾缓冲液的配制：．６ｇ１８／氯１８ＫＣ溶于９０ｍｌ馏水中，浓盐酸调ｐ值至１８蒸用Ｈ
粗油深加工及畏品
２
， №
ｅ
工搏铷饲科
ＣＥＡＬＦＥＥＮＤＣＥＡＬ＆ＦＥＥＤＩＵＳＴＲＲＥＮＤＵＳＴＲＹ、 — Ｙ－
速煮紫薯中花青素的测定方法研究
莫丽春，馨，里，凡骏卢曾曾
的配制：４４５．３ｇ结晶乙酸钠溶于９０ｍｌ馏水中，６蒸用浓盐酸调ｐ值至４５定容１００ｍｌ盐酸一Ｈ．，０；乙醇溶液的配制：体积分数９乙醇和５．９ｇＬ盐取５４６／酸，按体积比８１５：５混合；坏血酸、化镁，为抗氯均分析纯。
加工后，常温的静置浸提对花青素的提取率并不高。因此，文优化速煮紫薯中花青素的提取工艺，照本参该方法测定花青素的含量，算产品中花青素的保计
留率。１材料与方法
１１仪器与设备．
益气、润肺、养颜之功效，日本被誉为 “ 在太空保健食品”２。紫薯约含６的水分，易保藏。速煮紫ｌ］５不

紫甘薯色素水提工艺参数的研究

梯度试验，确定其条件范围，通过正交试验确定紫甘薯色素提取的最佳工艺条件：ｐＨ值３（ＨＣ１）、料
液比１：２（ｇ／ｍＬ）、浸提时间２ｈ、温度２５。Ｃ，共８５％。
９４．８５％．Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：ｐｕｐｌｒｅｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ；ｐｉｇｍｅｎｔ；ｗａｔｅｒｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ
紫甘薯为旋花科一年或多年生草本植物，薯形
安全无毒的食品着色剂，广泛用于食品、化妆品、医
紫甘薯原料采于湖南农业大学紫甘薯基地；ＨＣ１、柠檬酸、醋酸均为分析纯。
Ｖｉｓ一７２２０可见分光光度计：北京瑞利分析仪器公司；ＤＫ一￥２４电热恒温水浴锅：上海精宏实验设备有限公司。
（ＣｏｌｌｅｇｅｏｆＳｃｉｅｎｃｅ，ＨｕｎａｎＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，ＣｈａｎｇｓｈａＨｕｎａｎ４１０１２８）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｈｅｐｕｒｐｌｅｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｐｉｇｍｅｎｔｗａｓｅｘｔｒａｃｔｅｄｂｙｗａｔｅｒｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ．ＴｈｅｓｉｎｇｌｅｆａｃｔｏｒｔｅｓｔｓｏｆｐＨ，ｍａｔｅｉａｒＬ／ｌｉｑｕｉｄｒａｔｉｏ，ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｔｉｍｅａｎｄｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｗｅｒｅｐｅｒｆｏｒｍｅｄｔｏａｓｃｅｒｔａｉｎｔｈｅｃｏｎｄｉｔｉｏｎ．Ｔｈｅ

柠檬酸—乙醇法提取紫甘薯花青素工艺的优化

柠檬酸—乙醇法提取紫甘薯花青素工艺的优化摘要：以紫甘薯（Ipomoes batats L.）为原料，采用柠檬酸—乙醇法提取花青素，通过单因素及正交试验探讨了提取剂中柠檬酸与乙醇体积比、柠檬酸浓度、液料比、提取温度和提取时间等因素对花青素提取效果的影响，优化提取工艺。

结果表明，各因素对紫薯花青素提取的影响由大到小依次为液料比、柠檬酸浓度、提取温度、提取时间，优化的提取工艺条件为柠檬酸与乙醇体积比10∶1、柠檬酸浓度70 g/L、提取温度70 ℃，提取时间2.0 h，液料比20∶1（V∶m，mL/g）。

关键词：紫甘薯（Ipomoes batats L.）；花青素；提取；柠檬酸—乙醇法Optimization of Extraction Technology of Anthocanin from Purple Sweet Potato by Citric Acid-Ethanol MethodAbstract：Using purple sweet potato（Ipomoes batats L.）as material，anthocyanin was extracted by citric acid-ethanol method. Single factor tests and orthogonal design were conducted to study the effects of volume ratio of citric acid to ethanol，citric acid concentration，liquid to solid ratio，extraction temperature and extraction time on yield of anthocyanin so as to optimize the extraction technology. The results indicated that the effect of factors on extraction yield of anthocyanin ranking from largest to smallest were liquid to solid ratio，citric acid concentration，extraction temperature，extraction time. The optimal anthocyanin extraction technology of citric acid-ethanol method from purple sweet potato was the volume ratio of citric acid and ethanol，10∶1；citric acid concentration，70 g/L；extraction temperature，70 ℃；extraction time，2.0 h；ratio of liquid to solid，20∶1（V∶m，mL/g）.Key words：purple sweet potato（Ipomoes batats L.）；anthocyanin；extraction；citric acid-ethanol method甘薯（Ipomoes batats L.）属旋花科一年生或两年生蔓生草本植物。

紫甘薯中花青素提取工艺及测定方法研究

降，且其最大吸收峰已不明显，向长波方向移动：并
如ｐ．Ｈ６０的最大吸收峰移到了５０ｎ而ｐ．６ｍ，Ｈ７０
称取一定量的紫甘薯粉末，加入３％酸溶液，置
于安装好的微波萃取仪中进行萃取，却后进行下冷
９０年代国内外学者就开始了对紫甘薯色素的
常规提取、纯化和稳定性的研究，是常规提取通常但存在时间长、动强度大、料预处理能耗大、劳原热敏
性组分易破坏等缺点．波作为一种新兴的应用微技术，近年在植物化学领域得到广泛应用．
厂）Ｆ０高速万能粉碎机（津市泰斯特仪器有；Ｗ８天
限公司）．
无水乙醇、氯化钠、化钾、酸钠、酸，酸氯醋醋盐（Ｒ，Ａ．国药集团）
收稿日期：１０２２０— ８— ５０修回日期：００—１ —１２１００
０Ｈ
青素的定量测定提供参考依据．
表１自然界常见六种花青素的具体结构信息
１材料与方法
１１仪器与试剂．
பைடு நூலகம்
微波萃取仪（Ｄ６，海新仪）ｐ计（ＨＭＳ一上；ＨｐＳ
一
３上海雷磁）分光光度计（２Ｓ上海光谱仪器Ｃ，；７２，
作者简介：陈新（７一）女，１６９，江西南昌人，硕士，南京晓庄学院生物化工与环境工程学院教师，研究方向：有机分析及天然产物．

紫甘薯色素的提取工艺研究

ｔａｔｇｐｒｄ２ｍｉ．ｒｃｉｅｏ５ｎｎｉＫｅｏｄ：ｐｒｌｗｅｔｐｔｔ；ｉｅｔｅｔａｔｇｔｃｎｌｇ；ｌａｏｉａｅｙＷｒｓｕｅｓｅａｏｐｇｎ；ｘｒｃｉｈｏｏｙｕｔｓｎｃｗｖｐｏｍｎｅｒ
摘要：了给紫甘薯色素的生产和使用提供理论依据，为以国产紫甘薯为原料，究了醇和有机酸溶液等溶剂研
提取色素的条件，考察提取液浓度、液比、料提取次数和浸取时间等因素的影响。通过单因素试验和正交试验，确定超声波提取最佳工艺是：紫甘薯样品预先浸泡４ｈ采用柠檬酸浓度为１％，液比为１：０超声功，０料３，率为３０Ｗ，０提取时间为２ｉ，取３次，５ｍｎ提紫甘薯中色素提取效果最好。关键词：紫甘薯；色素；取工艺；声波提超
（ｕａｏｅｅｏｈｍｃｌｅｈｏｏｙＺｕｈｕＨｕａ，１０４ＨｎｎＣｌｇｆｅｉａＴｃｎｌｇ，ｈｚｏ，ｎｎ４２０）ｌＣ
ＡｂｔａｔＰｒｌｗｅｏａｏｐｇｎａｅｕｉｚｄｉｒｄｃｉｎＴｒｖｄｈｏｅｉａａｅｆｒｔｅｕｅｏｕｌｓｒｃ：ｕｐｅｓｅｔｐｔｔｉｍｅｔｎｂｔｉｅｎｐｏｕｔ．ｏｐｏｉｅｔｅｒｔｌｂｓｏｓｆｐｒｅｃｌｏｃｈｐｓｅｔｐｔｔｉｅｔｔｅｐｇｅｔｅｔｃｉｎｃｎｉｏｓａｅｓｕｉｄｗｔｕｌｗｅｏａｏａａｔｒｌａｃｈｌｗｅａｏｐｇｎ，ｉｎｘｒｔｏｄｔｎｒｔｄｅｉｐｒｅｓｅｔｐｔｔｓｒｗｍａｅａ，ｏｏｏｍｈｍａｏｉｈｐｉｌａｄｏｇｎｃａｉｓｓｌｅｔＴｈｆｃｓｏｘｒｃｉｇｌｕｄｃｎｅｔｔｎｔｅｍａｅａ —ｔｎｒａｉｃｄａｏｖｎ．ｅｅｅｔｆｅｔａｔｉｉｏｃｎｒｉ，ｈｔｒｌｎｑａｏｉｏ—ｌｕｄｒｔ，ｘｒｃｉｇｉｉａｉｅｔｔｑｏａｎ

紫甘薯色素的提取工艺及贮存条件研究

素的提取条件，并对紫甘薯色素的贮存条件做了初步探究，以为紫甘薯色素的大规模生产和应用提供理论依据。
１材料与方法１．１试验材料
保存率（％）／ＡｏｘｌＯ０式中，为处理后吸光值；。为处理前吸光值。
棕色试剂瓶，各装有色素粗提液１０ｍＬ（将初始浓度调整到
Ａ＝０．８００），分成４组，每组３个平行样本。将每组色素粗提液分别置于４℃冰箱、２０、４０、６０℃恒温箱保存２周，分别计算保存率。（３）ｐＨ值对紫甘薯色素的影响。取６个３０ｍＬ棕色试剂
０．８００），采用柠檬酸一磷酸氢二钠缓冲体系，分别将ｐＨ值调
节到１．０、３．０、５．０、７．０、９．０、１１．０。静置２０ｍｉｎ后观察其颜色变
化，同时以相应ｐＨ值缓冲液为参比，考察色素溶液的最大吸收峰和吸光值的变化情况。
供试材料：将新鲜紫甘薯洗净、切薄片，置于真空冷冻干燥机内干燥，干燥后经粉碎机粉碎后过１００目筛，放置于
４℃的冰箱中避光保存备用。供试试剂：乙醇、ＨＣＩ、柠檬酸等，所用试剂均为国产分
（１）
固体产品在处理前后应配制成相同质量浓度的稀释

紫番薯色素提取精制工艺的研究

试验研究中国食品添加剂C hina Food Additives紫番薯色素提取精制工艺的研究刘学峰,石雷,郑文秀(台州职业技术学院,浙江　318000) 摘　要:对紫番薯色素的提取精制工艺条件进行了初步研究,探讨了各主要提取因素对提取效果的影响,并通过正交实验得到了色素提取和精制的较佳工艺条件:以pH310的20%乙醇作为提取剂,提取温度60℃,提取时间60m in,物料比1∶10,提取液以AB-8树脂吸作为吸附剂,以70%乙醇进行洗脱,可以对色素进行较好的分离和精制。

在以上最佳工艺条件下,总的紫番薯色素的提取收率可达到0192%。

关键词:紫番薯;紫色素;提取;花色苷色素中图分类号:TS20213 文献标识码:A 文章编号:1006-2513(2009)06-0121-05S tudi e s on the e xtracti on of anthocyani ns fr om pur p le po ta t oL IU Xue2fe n g,SH I L e i,ZHENG W en2xiu(Ta izhou Voca tional&Technical College,Zhengjiang318000)Ab stra ct:Fact ors affecti ng extracti on anthocyani ns fro m purple s wee t po t a t o were studied.A fte r single-factor and or2 t hog onal tests,one opti m al extrac ti on technol ogy was dev e l oped.The op ti ma l extrac ting conditions were as the foll ow2 i ng:with20%ethanol(pH310)as extrac t sol u ti on,p urp le po t a t o(g):extrac tion s oluti on(mL)wa s1∶20,ex2 trac ting a t50℃for60m in.The extrac ted liquid wa s further purified by AB-8re sin and eluted by70%ethanol.Un2 de r the above conditions,the total extracti on ra t e was up t o0192%.Key wor ds:pur p le s weet potat o;anthocyanin;extract;purple pig ment紫番薯又名山川紫,原产日本,后经日本人改良成富含色素的新品种,我国于1988年引进该品种,并很快得到大面积的推广种植。

紫甘薯色素的提取工艺及稳定性研究

(SO4)3、 KCl、 AlCl3、 FeSO4、 CuSO4、 MgSO4 和 CaCl2 溶液，取 0.1 ml 分别加入到 5 ml 色素溶液中，静止 24 h 后测定含金属离子的紫甘薯红色素的吸光值。 2 结果与分析 2.1 紫甘薯色素的提取单因素试验 2.1.1 提取剂的 pH 对色素提取率的影响。如图 1 所示，在提取温度为 60 ℃，物料比 1∶10，提取条件 120 min 的条件下，随着 pH 值的升高，色素提取率呈先升高再降低趋势，其中当提取剂的 pH 值达到 3 时，提取率最高。 2.1.2 提取时间对色素提取率的影响。在提取液 pH 值为 3，提取温度为 60 ℃，物料比 1︰10 的条件下，控制不同时间，结果如图 2 表明，随着提取时间的增加而增加，紫甘薯花色苷的含量在提取时间为 120 min 时为 16.5 mg/100 g，再继续延长提取时间，花色苷含量无差异。 2.1.3 提取温度对色素提取率的影响。在提取液 pH 值为 3，提取时间为 120 min，物料比为 1︰10 的条件下，选择不同的提取温度。如图 3 所示，当温度为 60 ℃时，提取所得的花色苷含量为最高，当继续升高提取温度时，花色苷含量呈下降趋势，这可能是当温度升高时导致部分花色苷分解所致。 2.1.4 物料比对色素提取率的影响。在提取液 pH 值为 3，提取时间为 120 min，在温度为 60 ℃的条件下，确定不同的物料比。当物料比由 1︰5 到 1 ︰20 变化时，花色苷含量逐渐升高，1︰20 时最高，当继续增加物料比时，花色苷含量无明显升高，由于在生产中要综合考虑到成本问题，所以物料比定为 1︰20。 2.2 紫甘薯色素稳定性试验 2.2.1 温度对紫甘薯色素的影响。用 pH 值为 3 的缓冲液溶解甘薯红色素，分别在 50 ℃、70 ℃、90 ℃条件下进行测试，每隔半小时测一次吸光度，表

紫薯花色苷提取工艺流程

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