痰标本合格的标准
痰液及下呼吸道分泌物培养简易操作规程
、痰液及下呼吸道分泌物培养标准操作流程1 观察标本合格后操作。
一般为晨痰，再留取痰之前刷牙、反复漱口，应从气管深部咳出痰，吐进无菌容器内送检。
涂片白细胞小于10，上皮细胞大于25为不合格痰，相反白细胞大于25，上皮细胞小于10-25为合格痰标本。
2 点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3 接种环灭菌—待冷却后—取痰液—接种到血平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
（2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域得划线应接触上一区域得接种线2-3次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板得底部向上）于35°C培养18-24小时。
4观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还就是杆菌后鉴定种属。
5 做药敏试验-------报告结果。
便培养标准操作流程1、收取有粘液或脓血、稀水粪便标本。
2、点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3、接种环灭菌—待冷却后—取粪便—接种到血平板、SS平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
（2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域得划线应接触上一区域得接种线2-3次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板得底部向上）于35°C培养。
4培养18-24小时后观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还就是杆菌后鉴定种属。
5 做药敏试验-------报告结果。
尿培养标准操作流程1 收取晨尿第一泡清洁中段尿。
（把外阴用肥皂清洗一遍，再用清水清洗两遍，待干或用干净布擦干）用导尿管得病号需新换导尿管后取标本2 点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3 接种环灭菌—待冷却后将标本混匀，用定量接种环取尿液1ul(大约一接种环）—接种到血平板，接种环灭菌---待冷后取标本接种到中国兰平板（或麦康凯平板上）。
合格诱导痰痰液标本的标准
合格诱导痰痰液标本的标准
合格的诱导痰痰液标本的标准主要包括以下几个方面：
采集时，受试者需漱口，并深咳出肺部的痰。
同时，采集过程中应避免辛辣、刺激的食物，保持饮食清淡，禁止抽烟和喝酒。
在低倍镜下检查痰液时，白细胞应大于25个，鳞状上皮细胞应小于10个，或者白细胞与鳞状上皮细胞的比值应大于2.5。
合格的痰液标本应为黄色、灰色、血性、铁锈色、稠厚、团块状，不应有杂质、清稀、泡沫状。
不合格的痰标本应拒收并重新提取，不可进行培养鉴定。
采集的痰液应立即送检，时间不宜过长，最好在10分钟内送检，以避免痰液内杂菌生长和病菌自溶现象对检出结果的影响。
合格的痰液标本还应满足细胞活力不小于50%，痰液重量应大于等于1克，且调节细胞的悬浮密度应达到1×106个/ml。
以上标准仅供参考，建议咨询医生或专业医疗人员获取更详细的信息。
1。
痰培养标本采集的注意事项及合格痰的评判标准
痰培养标本采集的注意事项及合格痰的评判标准
嘿，朋友们！今天咱们来聊聊痰培养标本采集的注意事项以及合格痰的评判标准呀。
先说这采集的注意事项呢。
哎呀呀，在采集之前呀，患者一定要先用清水漱口哦，这是为啥呢？因为这样可以减少口腔内正常菌群的污染呀！采集的时候呢，一般是深咳出来的痰才好呢。
可不能随便吐一口就了事呀！如果是使用诱导痰采集的方法，那更得小心谨慎啦。
还有哇，采集痰标本的容器一定要是无菌的呢，这很重要的呀！不然被其他细菌污染了，那检测结果可就不准确啦！
再来说说合格痰的评判标准吧。
哇，合格的痰标本呢，在外观上就有讲究的呢。
一般是脓性或者黏液性的痰液比较好呢。
如果痰看起来很稀薄，像口水一样，那可能就不太合格喽！而且呀，合格的痰里面要有足够多的白细胞和较少的上皮细胞呢。
这是为啥呢？因为白细胞多说明有炎症反应呀，而上皮细胞太多的话，很可能是采集的时候混入了太多口腔或者呼吸道上部的细胞啦，这样的标本可能就不太能准确反映下呼吸道的感染情况呢！总之呢，在进行痰培养标本采集的时候，一定要严格按照这些注意事项来做，这样才能得到合格的标本，检测结果也才会准确呀！朋友们，一定要记住哦！。
临床痰合格标本标准及细菌浓度指示致病菌指标
临床痰合格标本标准是及细菌浓度指示致病菌指标肺炎治疗离不开病原体的诊断，下呼吸道分泌物或痰无疑极易受到污染。
有慢性气道疾病者、老年人和危重病病人等，其呼吸道定植菌明显增加，影响痰中致病菌的分离和判断。
在采集呼吸道标本进行细菌培养时尽可能在抗菌药物应用前采集，避免污染，及时送检，结果起到指导治疗作用。
目前常用方法有：1.痰：采集方便，是最常用的下呼吸道病原学标本。
采集后在室温下 2 小时内送检。
先直接涂片, 光镜下观察细胞数量，如每低倍视野鳞状上皮细胞<10个, 白细胞＞25 个，或鳞状上皮细胞：白细胞 <1：2.5，可作为污染相对较少合格标本接种培养。
痰定量培养分离的致病菌或条件致病菌浓度≥107cfu/mL，可以认为是肺部感染的致病菌；≤104cfu/mL为污染菌；介于两者之间建议重复痰培养；连续分离到相同细菌，105~106cfu/mL 连续两次以上, 可认为是致病菌。
2.经支气管镜或人工气道吸引：受口咽部细菌污染的机会较咳痰为少，吸引物细菌培养其浓度≥105cfu/mL，可认为是致病菌，低于此浓度则多为污染菌。
3.防污染样本毛刷：细菌≥103cfu/mL，可认为是致病菌。
4.支气管肺泡灌洗：细菌≥104cfu/mL 防污染BAL标本细菌≥103cfu/mL，可认为是致病菌。
5. 经皮细针吸检和开胸肺活检：敏感性和特异性均很好，但由于是创伤性检查，容易引起气胸、出血等并发症，临床一般用于对抗菌药物经验性治疗无效或其他检查不能确定者。
6. 血培养和胸腔积液培养：肺炎病人血培养和痰培养分离到相同细菌，可确定为肺炎的病原菌。
如仅为血培养阳性, 但不能用其他原因如腹腔感染、静脉导管相关性感染解释菌血症的原因，血培养的细菌也可认为是肺炎的病原菌。
胸腔积液培养到的细菌基本可认为是肺炎的致病菌。
7. 尿抗原试验：包括军团菌和肺炎链球菌尿抗原。
8. 血清学检查：测定特异性 IgM 抗体滴度，如急性期和恢复期之间抗体滴度有 4 倍增高可诊断，支原体、衣原体、嗜肺军团菌和病毒感染等多为回顾性诊断。
以下痰液标本符合
以下痰液标本符合
痰液作为临床上常见的样本之一，检测痰标本的合格，对于疾病的诊断和治疗具有重要意义。
以下是痰标本合格的四个标准：
首先，痰液样本应符合采样标准，即在清晨起床后、未进行口腔卫生和进食的情况下进行采集。
其次，痰样本应采集足够的量，一般建议不少于2ml。
第三，采集后应尽快送往实验室处理，避免过度吞咽和长时间存储对痰液的影响。
最后，样品的温度和湿度应控制在适宜的范围内，否则会影响检测结果。
除了上述标准，我们还需注意痰液样本中的其他影响因素，如血液、唾液和口腔分泌物等，这些因素会干扰检测结果，应加以排除。
因此，在痰标本的采集、保存和检测过程中，需要严格遵守相应的操作规范以确保检测结果的准确性和可靠性。
总之，痰液作为临床诊断和治疗中不可或缺的样本之一，其质量和准确性直接影响疾病的诊断和治疗效果。
只有符合痰标本合格的四个标准和相应的操作规范，才能确保获得准确的检测结果，为疾病的早期诊断和治疗提供科学依据。
三甲医院痰标本采集标准
痰标本采集评价标准科室：姓名：评委：时间：得分：项目考核要点分值扣分得分治疗盘：检验条码、根据检验目的准备标用物不全缺一项扣1分物本容器（检便盒）；PDA；速干手消液；下 6 物品摆放不合理扣0.5分（车上、品层：生活/医用垃圾桶。
车下）准处置车脏扣1分备洗手液瓶及架脏扣1分1.仪表端庄，着装整洁、戴帽子（佩戴医着装不合格扣每处扣3分用外科口罩、护目镜）12 头发漏于外面扣1分未佩戴防护用品每处扣3分操2.电脑前双人核对医嘱（办公室），打印检未双人核对扣1分验条码 3 未在办公室核对医嘱扣1分未打印检验条码扣1分3.处置室准备用物未检查手消剂有效期一项扣1分（1）检查手消剂有效期未检查手消剂开封有效期扣1分（2）洗手、戴口罩（3) 检查一次性物品有效期及功能状态（4）PDA扫描核查标本项目，检验条码分10 未一次性物品有效期一项扣0.5分检查不实扣0.5分未用PDA扫描标本项目核对扣1分条码未贴、贴错相应痰标本各扣1别贴在相应便标本盒分（5）洗手，摘口罩未洗手一次扣1分在处置车上方洗手扣0.5分洗手不实扣0.5分（第一次七步洗手法，其余可省略需说明）作4.敲门进病室，携用物至患者床旁，问候患者，自我介绍，PDA扫描腕带（口述扫描成功）双向核对（第一次）患者、腕带、床尾卡，解释说明目的。
10进病室未敲门扣1分未问候患者扣1分未做自我介绍扣1分PDA未处于备用状态（屏幕未亮、扫描时未发出红光）扣1分；未用PDA扫描腕带双向核对患者扣1分未口述扫描成功扣0.5分未查床尾卡扣1分核对不实扣0.5分核对床号、姓名错误一项扣2分说明目的扣1分5. 评估患者身体状况，有无发热史（近14 天内）异地接触史，取得配合程度。
评估内容不全缺一项扣1分未按流程打开医用生活垃圾桶盖一次扣0.5分后打开医用生活垃圾桶盖而未洗手15扣1分未询问发热史、异地接触史各扣2分要6. PDA机再次扫描腕带（口述扫描成功），未用PDA扫描腕带核对患者姓名、扫描检验标签（核对正确），核对（第二次）患者与检验标签信息是否相符。
痰液及下呼吸道分泌物培养简易操作规程
.痰液及下呼吸道分泌物培养标准操作流程1 观察标本合格后操作。
一般为晨痰，再留取痰之前刷牙、反复漱口，应从气管深部咳出痰，吐进无菌容器内送检。
涂片白细胞小于10，上皮细胞大于25为不合格痰，相反白细胞大于25，上皮细胞小于10-25为合格痰标本。
2 点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3 接种环灭菌—待冷却后—取痰液—接种到血平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
（2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域的划线应接触上一区域的接种线2-3次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板的底部向上）于35°C培养18-24小时。
4观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还是杆菌后鉴定种属。
5 做药敏试验-------报告结果。
便培养标准操作流程1.收取有粘液或脓血、稀水粪便标本。
2.点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3.接种环灭菌—待冷却后—取粪便—接种到血平板、SS平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
（2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域的划线应接触上一区域的接种线2-3次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板的底部向上）于35°C培养。
4培养18-24小时后观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还是杆菌后鉴定种属。
5 做药敏试验-------报告结果。
尿培养标准操作流程1 收取晨尿第一泡清洁中段尿。
（把外阴用肥皂清洗一遍，再用清水清洗两遍，待干或用干净布擦干）用导尿管的病号需新换导尿管后取标本2 点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3 接种环灭菌—待冷却后将标本混匀，用定量接种环取尿液1ul(大约一接种环）—接种到血平板，接种环灭菌---待冷后取标本接种到中国兰平板（或麦康凯平板上）。
如何留取合格的痰标本护理科普
如何留取合格的痰标本护理科普痰为呼吸科住院患者最方便及常用病原诊断学标本，对疾病的诊断和指导用药特别是抗生素的使用具有重要意义。
2021年临床微生物标本规范化采集和送检-中国专家共识总则：感染性疾病的正确诊治需要正确的病原学检测作为指导，而正确的病原学检测其前提是采集和送检合格标本。
一、痰是如何产生的？气管支气管的内壁黏膜由纤毛柱状上皮和杯状细胞组成，黏膜下层含较多的黏液腺和浆液腺。
正常情况下，杯状细胞和腺体分泌少量黏液覆盖在黏膜层表面，对黏膜起保护作用，可保持气管黏膜的湿润以便把吸入气管支气管内的灰尘颗粒、细菌等粘附住，阻挡其进入肺组织深处，然后，在借助于纤毛柱状上皮的纤毛摆动，把它们排到气管上端的喉头部位，经口腔咯出即为痰。
二、痰液检查的目的：留取痰液标本检查可以协助诊断某些呼吸系统的疾病，如：支气管哮喘、嗜酸细胞性支气管炎、肺炎等。
可以确诊某些呼吸系统的疾病，如：肺结核、肺癌、卡氏肺孢子虫肺炎、肺吸虫病等；留取痰液标本还检查痰液中的致病菌，为选择抗生素提供依据观察疗效和预后判断。
三、痰标本质量合格评定标准痰标本的质量判断标准将涂片分为３类：较理想标本，鳞状上皮细胞＜１０个、白细胞＞２５个／低倍视野；可接受标本，鳞状上皮细胞１０～２５个、白细胞≤２５个／低倍视野，且细菌种类≥３种；不合格标本，鳞状上皮细胞＞２５个／低倍视野四、痰标本采集的一般原则痰标本采集应遵守的一般原则：在使用抗菌药物前采集痰标本；使用专门的无菌痰培养杯，避免污染。
采集真正病灶部位的标本，避免周围共生微生物的污染。
痰标本的量应足量，应＞1ml。
痰标本采集后应在半小时内送检，一般不得超过2小时；延迟送检的标本应该置于4℃保存，保存标本应该在24小时送检；采集过程应有医生、护士的指导。
五、痰标本的正确采集方法1.自然咳痰法：常规痰液标本采集应以清晨为佳，清晨痰量多，同时含菌量较大；嘱患者予以清水漱口至少三次，以清除口腔固有的定植菌。
痰标本的细菌学检验与质量控制
痰标本的细菌学检验与质量控制发表时间：2013-05-21T10:40:40.263Z 来源：《中外健康文摘》2013年第12期供稿作者：毕艳妮于立明[导读] 按阳性和阴性片分类保存近期3个月内的全部痰涂片，备上级实验室复验。
毕艳妮于立明 (山东省威海市立医院264200）【中图分类号】R915 【文献标识码】A【文章编号】1672-5085（2013）12-0156-02 1 标本采集1.1采集方法：痰标本最好在应用抗菌药物之前采集，以晨痰最好。
常用采集法有自然咳痰法、支气管镜采集法、胃内采痰法等。
采集可疑烈性呼吸道患者痰标本时，应注意生物安全防护。
自然咳痰法：患者清晨起床后用清水反复漱口，用力自气管咳出第一口痰于灭菌容器内，立即送检。
对于痰量少或无痰的患者可采用雾化吸入加温至45℃的10％NaCl水溶液，使痰液易于排出。
对咳痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽，将痰收集于灭菌容器内送检。
支气管镜采集法用气管镜在肺部病灶附近用导管或者支气管刷直接取材，此法患者不易接受，故不常用[1]。
1.2标本运送与保存标本采集后应立即送检，室温保存不超过2 h；做结核分枝杆菌和真菌培养的标本不能及时送检的，可放于4℃保存，以免杂菌生长。
2 检验方法2.1 显微镜检查痰标本宜先直接涂片镜检，并于低倍镜下观察白细胞和上皮细胞数目，以确定该标本适合做什么细菌培养。
一般认为，合格的痰标本含白细胞和支气管柱状上皮细胞较多，而受污染的痰标本则是来自颊黏膜的扁平鳞状上皮细胞较多。
在低倍镜视野下，白细胞超过25个、鳞状上皮细胞不超过10个的痰标本为合格标本。
①一般细菌涂片检查：挑取标本中脓性或带血部分涂片进行革兰染色镜检，根据染色性、形态及排列等特征可发出初级报告。
②结核分枝杆菌涂片检查：挑取标本干酪样或脓性部分做抗酸染色，根据所见结果报告“找到(或未找到)抗酸杆菌”[2]。
③放线菌及奴卡菌涂片检查：将痰液用生理盐水反复洗涤数次，挑取黄色颗粒(硫黄颗粒)或不透明着色斑点，置玻片上并覆以盖玻片，轻压后置高倍镜下观察。
合格痰标本的标准
合格痰标本的标准
一、合格的痰标本的标准
1、外观：具有潮湿的外观，无颜色，无异味。
2、气味：有无异味。
3、水分：含水量在10%左右，能在活动指甲上表现为清亮有光泽。
4、结构：无梗子，温和，具有弹性，应该是细密的水凝胶结构。
5、外渗：无渗漏或软化现象，无外漏。
6、检查：在显微镜下具有完整的压花结构，无显著的异常细菌或细菌芽胞形态。
7、pH值：在常温下，痰液的pH值应在6.0~9.0
之间，高于或低于此范围为不正常。
二、非合格的痰标本的标准：
1、外观：具有颜色、有异味。
2、气味：有异味。
3、水分：含水量超过10%，能在活动指甲上表现为混浊无光泽。
4、结构：有梗子，不温和，失去弹性，结构破坏，无法保持细密的水凝胶结构。
5、外渗：有渗漏或软化现象，有外漏。
6、检查：显微镜下没有完整的压花结构，有明显的异常细菌或细菌芽胞形态。
7、pH值：在常温下，痰液的pH值低于或高于6.0~9.0之间为不正常。
痰液标本采集法操作评分标准
痰液标本采集法操作评分标准本文档旨在为痰液标本采集提供操作评分标准。
痰液标本采集是一项重要的医学操作，正确的采集方法能够提供准确的病情诊断和治疗方案制定。
操作评分标准将有助于确保采样的可靠性和一致性。
评分标准评分标准按照痰液标本采集方法的正确程度和操作者的技能水平划分，共分为以下几个等级：1. 优秀（Excellent）：操作正确、流畅、熟练无误，能够提供高质量的痰液标本。
2. 良好（Good）：操作正确、流畅，有时可能出现轻微的技巧不足或痰液污染。
3. 合格（Satisfactory）：操作能够达到基本要求，但可能存在一些技巧不足或痰液污染的问题。
4. 不合格（Unsatisfactory）：操作存在严重的技术错误、痰液污染或无法提供有效的痰液标本。
评分要点为了确保评分的客观性和准确性，评分应基于以下要点进行：1. 操作步骤：操作者是否能够按照正确的痰液标本采集步骤进行操作。
2. 技巧和准确性：操作者的技巧是否熟练、准确，是否能够避免污染。
3. 标本质量：采集的痰液标本是否足够、干净，并能提供所需的诊断信息。
4. 规范遵循：操作者是否遵循相关的卫生规范和操作规程。
评分流程评分流程应基于以下步骤进行：1. 观察操作者执行痰液标本采集操作。
2. 根据评分标准，对操作者的每个要点进行评分。
3. 综合各要点的评分，得出操作者的总体评分等级。
结论痰液标本采集是一项需要高度注意和专业技巧的操作，正确的采集能够提供准确的病情信息，为患者的治疗提供帮助。
本文档提供了一套标准评分方法，能够辅助评估操作者的痰液标本采集操作水平。
通过评分过程，可以发现并改进操作者的技巧不足，从而提高痰液标本的质量。
痰液标本采集法操作评分标准
痰液标本采集法操作评分标准引言本文档旨在制定痰液标本采集法操作评分标准，以确保标本采集的准确性和一致性，提高临床诊断效果。
评分标准评分采用0-5分的五级评分法，分别代表不合格、较差、一般、良好和优秀五个等级。
1. 采集器械准备 (5分)- 痰杯、无菌采样棉签等采集器械准备齐全 (5分)- 采集器械无破损或污染 (4分)- 采集器械不完整或稍有污染 (3分)- 采集器械有明显破损或污染 (2分)- 采集器械未准备齐全或严重污染 (1分)- 采集器械未准备或无法使用 (0分)2. 采集环境准备 (5分)- 采集环境整洁、无异味 (5分)- 采集环境基本整洁、轻微异味 (4分)- 采集环境有轻微污染或异味 (3分)- 采集环境有明显污染或异味 (2分)- 采集环境严重污染或异味 (1分)- 采集环境不符合卫生要求 (0分)3. 采集者操作技术 (5分)- 采集者具备标本采集技能，操作熟练 (5分)- 采集者操作基本熟练 (4分)- 采集者操作一般熟练 (3分)- 采集者操作欠熟练或有失误 (2分)- 采集者操作错误或失误较多 (1分)- 采集者操作错误或失误严重 (0分)4. 标本采集质量 (5分)- 标本清晰、足量 (5分)- 标本基本清晰、足量 (4分)- 标本一般清晰，量不足或混杂有其他物质 (3分) - 标本不清晰，量不足或有明显污染 (2分)- 标本非常不清晰，量不足或严重污染 (1分)- 标本无法使用或无效 (0分)5. 标本采集时间 (5分)- 标本采集时间准确 (5分)- 标本采集时间基本准确 (4分)- 标本采集时间有轻微误差 (3分)- 标本采集时间有明显误差 (2分)- 标本采集时间误差较大 (1分)- 标本采集时间错误或不确定 (0分)结论本文档所制定的痰液标本采集法操作评分标准将有助于统一评估痰液标本采集过程中的操作质量，提高标本质量和诊断准确率。
在实际操作中，请严格按照评分标准进行操作，以确保采集结果的准确性和比对性。
痰标本留取标准操作规程
痰标本留取标准操作规程
1、咳痰标本留取
1.1 嘱病人用清水漱口三次，指导病人用力深咳嗽，从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器中。
1.2 痰量极少者可用生理盐水雾化吸入导痰。
1.3 检查分支杆菌和卡氏肺包囊虫可用3%～10%高渗氯化钠溶液雾化吸入导痰。
2、痰标本送检
2.1 痰标本收集后应及时（30分钟内）送检。
2.2 不能及时送检者，可暂存4℃冰箱。
3、痰标本质量评价：
符合以下情况之一者为合格：
3.1 痰液直接涂片光镜检查每低倍视野鳞状上皮细胞＜10个、多核白细胞＞25个。
3.2 痰液直接涂片光镜检查每低倍视中，野鳞状上皮细胞：白细胞<1:2.5。
合格痰标本的判断标准
合格痰标本的判断标准
1. 标本外观：痰标本应为无色或浅黄色，透明或微浑浊的液体，无泡沫、分层或悬浮物。
2. 标本量：痰标本的采集量应达到合适容量，一般建议采集5-10毫升的痰液。
3. 标本采集时间：痰标本应在早晨醒来后采集，尽量避免饭后采集。
4. 标本保存：痰标本应保存在干燥、清洁的容器中，并尽快送往检验实验室。
5. 标本污染：痰标本应避免污染，尽量避免唾液、血液或其它物质的污染。
6. 标本的保存时间：痰标本应在采集后立即送往实验室进行检验，不宜保存过久。
7. 标本标签：痰标本容器上应粘贴正确的患者信息标签，包括姓名、性别、年龄等。
8. 标本交接：痰标本交接时应注意双方核对患者信息，并记录接收人的姓名、时间等信息。
9. 标本运输：痰标本在运输过程中应防止温度过高或过低，避免振动和碰撞。
10. 标本检验：痰标本要在规定的时间内进行检验，以确保结果的准确性。
请注意，以上是一份合格痰标本的判断标准，仅供参考。
具体的痰标本采集和检验流程应根据医疗机构的相关规定进行操作。
正确采集痰标本的临床意义
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一、上呼吸道菌群分布
上呼吸道包括会厌、咽及口腔，其中的菌群需氧菌、微需氧菌和
厌氧菌，厌氧菌：需氧菌=1000：1，总菌量为108~9/ml。
正常情况下，各菌群之间保持一种平衡状态，对机体具有
保护作用，致使侵入的外来细菌无法定植或繁殖。
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五、合格痰标本的标准
1.吸痰：通过气管切口直接将痰吸出，只 适用于气管切开患者。
2.双套管毛刷防污染吸痰（PSB）：这是最 好、最科学的取样方法，但缺点是有创伤 性检查，病人不易接受。
3.肺泡灌洗液：对肺心病、呼衰病人有一定 的危险。
4.咳痰：是最简单的方法，但污染严重，影 响结果判断。
胞）、体液免疫（SIgA参与的表面免疫）。
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三、干扰人体正常防御机制的因素
1.知觉水平的改变：危及会厌闭馈和咳嗽反射。 2.毒性物质：损害粘液—纤毛传导机制（酒精、烟、镇静
药等）。 3.支气管的机械阻塞：炎症、肿块等导致感染性分泌物的
滞留。 4.心肺损伤：引起肺部充血和水肿。 5.医院中的特殊易感因素：如麻醉、下呼吸道介入性诊疗
造成的感染及广谱抗生素治疗后病人正常的菌丛被除去继 发的医院获得性感染（医院环境中的微生物群—耐药性 强）。 6. 其它原因：血氧降低、酸中毒、寒冷、营养不良及使用 免疫抑制剂后引起的免疫力下降。
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四、上呼吸道正常菌群 对致病菌检出的影响
由于上呼吸道中存在着大量的细菌， 过不经处理，直接咳出的痰中必然混入大 量杂菌，即使我们对痰标本进行洗涤，但 仍然有许多杂菌存在，这使我们对培养结 果的判断带来许多困难。这就出现了多次 送检的同一患者的标本中，出现多种结果 的现象，给临床以错误的结论。所以，我 们只能从把好标本关入手，不合格的标本 坚决予以退回。
痰标本合格的四个标准
痰标本合格的四个标准
1、痰样品的外形特征：一般红痰、黄痰、灰痰均匀分布，无夹杂物；
2、痰样品的粘度检测：触摸石膏片易折叠，坚硬，不沾手，无杂质即为合格；
3、痰样品的气味：有少量脓气、少许腥味，无杀虫剂香味；
4、痰样品的化验报告：用炎症鉴定试剂及培养基细胞，记录详细结果，结论合理，
不超标及产生毒害物质，即为合格。
痰样品的合格主要取决于以上4个标准。
样品榨取、分离和储存过程中，管理人员的
技术要求极高，在样本搜集、质控、存储和交付过程中要求严格，这是确保痰标本合格的
基本要求。
一般痰标本中夹杂物种类多、数量大、成分复杂，容易受到外界环境和技术条
件影响，因此要求管理人员细心谨慎，仔细确认样品的质量和数量，以确保样品的合格性。
痰培养的若干问题
2.支气管镜采集法、防污染毛刷采集法、环甲膜穿刺经气 管吸引法、经胸壁针穿刺吸引法、支气管肺泡灌洗法
均由临床医生采集，必须注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群的污染。
3.小儿取痰法
用弯压舌板向后压舌，将拭子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳痰时，可喷出肺部或气管 分泌物粘在拭子上送检。幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳痰。
问题三、痰的保存和运送
尽快送检， 不能及时送检的标本，室温保存≤2h。 使用专用无菌容器
？
苛氧菌死亡 污染菌生长繁殖
问题四、为什么痰标本总不合格
主要：表皮葡萄球菌、金黄色葡萄球菌 次要：甲型链球菌、棒状杆菌、
主要：甲型链球菌、厌氧链球菌 次要：奈瑟菌、表皮葡萄球菌、
乳杆菌、假丝酵母等
1、白细胞：代表感染/炎症的存在和程度 2、鳞状上皮：分布于呼吸道的上端
一旦痰液被上呼吸道的分泌物严重污染时痰液中就会混入大量的鳞状上皮 和正常菌群。
合格标准：
WBC>25个/LP、鳞状上皮细胞<10个/LP
问题六、ICULeabharlann 管病人痰标本No!就一定合格吗？
1.插管时口腔细菌被带入气管。
2.病人平卧，分泌物（唾液、痰液、鼻涕等）均汇集到咽喉处，刺激 病人产生不经意的吞咽和呼吸动作的交替，原本位于口腔中的细菌就可能 顺着插管外壁导流进入气管中。
细菌在这样的环境中生长速度是非常快的，往往象非苛养性的G-杆菌、 葡萄球菌、肠球菌、念珠菌等这些微生物生长速度和适应能力均强于其他 微生物，经过一段时间后，往往比例就会以某种强势菌为主了。
结论：吸走的就是这些充彻大量定植菌的混合的废物（唾液、痰液、 鼻涕等）。
如何快速获取合格的痰标本和细菌学证据
自从1940年发现青霉素以来，人类就在不断地开发新的药物以治疗细菌感染。
尤其近20余年来，头孢菌素和新的氟喹诺酮类及大环内酯药物的出现，为临床医师应用抗生素提供了许多选择，大大地提高了感染患者的治愈率，同时也选择出了许多的耐药菌株。
正是因为抗生素的多样化和临床选择抗生素的随机性，人们对于抗生素存在着滥用的情况，尤其在急诊科，存在流水作业，不同的医生对同一个病人会选择不同的抗生素，这同时也选择了细菌，导致了细菌的耐药率的逐年上升。
在欧洲，80%以上的下呼吸道感染应用抗生素治疗，大多数医生对急性支气管炎、慢性支气管炎急性发作、社区获得性肺炎、和病毒性呼吸道感染不加以鉴别就应用抗生素，不同的国家抗生素的选择不一样。
据美国1994-1995年30个医疗中心的统计显示：约24%的肺炎链球菌对青霉素不敏感，14%为中度耐药，10%为高度耐药。
非典型流感嗜血杆菌的耐药已高达36.4%，而在80年代仅为15%。
有一374例下呼吸道感染的患者的前瞻性研究表明：耐药肺炎链球菌感染同先前应用β—内酰胺类抗生素有关。
因此合理使用抗生素成为防止细菌耐药的一大重要策略。
要合理的使用抗生素，除了加强规范化的经验性治疗外，最重要的是明确感染患者的病原菌及其药敏情况，以便针对性的使用抗生素。
因此快速而准确的细菌培养是急需解决的问题。
下呼吸道感染是指声门以下的呼吸道的感染。
包括社会获得性和医院内获得性，在临床上极为常见，其病原菌种类繁多，院内感染者多以革兰氏阴性杆菌多见，混合感染也较多。
临床表现也多种多样，通过胸片和症状体征难以鉴别感染的细菌类型，因此病原学检查非常重要。
准确获取病原学证据有利于及早明确诊断，根据药敏及时地进行抗菌治疗。
获取病原菌的方法多种多样，如血培养，痰涂片和痰培养及经气管吸引术采痰、纤支镜保护性毛刷及肺泡灌洗和肺活检等。
血培养阳性率低，其临床应用价值有限，而经气管吸引术采痰、纤支镜保护性毛刷及肺泡灌洗和肺活检均为有创检查，一般患者难以接受，限制了其在临床中的广泛使用。
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痰标本合格的标准
痰标本是临床检验病原微生物感染的重要标本之一，因此其合格与否
关系到临床诊断和治疗的准确性。
为了确保痰标本的质量，需要制定一定
的合格标准。
以下是痰标本合格的标准。
1.采样时间：痰标本的采集应在早晨患者起床后进行，因为这时痰液
最易咯出，且控制饮食、情绪等因素对痰液质量的干扰最小。
2.采样部位：痰标本的采集应从下呼吸道采集，以减少口腔和咽喉的
细菌污染。
常用的采样方法有咳嗽咯痰和纤维支气管镜导管吸引。
3.标本容器：采集痰液的容器应为无菌、干燥、密封，以防止痰液的
外界污染。
一般常用的容器有无菌塑料瓶、塑料袋等。
4.样本量：标本的数量应充足，一般要求不少于5mL，以确保后续检
验能够进行多次的培养和分离。
5.标本外观：痰液应呈黏稠状，颜色为灰白或黄绿色，有时伴有粘液、脓液或血。
6.标本清洁度：痰标本应该是清洁的，避免污染杂质的存在，如食物
残渣、唾液等。
7.标本保存：痰标本应尽快送至实验室进行处理，以防止细菌的数量
和活力的丧失。
在采样后应尽快送到实验室或者冷藏保存，但需避免标本
冷冻。
8.品质控制：对于痰标本的采集、保存和运送应建立相应的质控程序，确保标本质量的稳定性和可靠性。
9.标本信息标示：在标本容器上需要标明患者的姓名、性别、年龄、
样本类型、采集时间等信息，以免发生混淆。
10.检测项目：痰标本应根据不同情况进行相应的检测项目，包括病
原微生物的培养、鉴定和药敏试验等。
综上所述，痰标本的合格标准包括采样时间、采样部位、标本容器、
样本量、标本外观、标本清洁度、标本保存、品质控制、标本信息标示和
检测项目等方面。
只有满足这些标准，才能够保证痰标本的质量和可靠性，为临床诊断和治疗提供有效依据。