水中细菌总数测定ppt课件

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实验四 水中细菌总数的测定和土壤微生物的分离_PPT幻灯片

实验四 水中细菌总数的测定和土壤微生物的分离_PPT幻灯片
(一)水中细菌总数的测定
一 实验目的 1.学习水样的采取方法和水样细菌总数
测定的方法;
2.了解水源水的平板菌落计数的原则。
二.实验原理:
本实验应用平板菌落计数技术测定水中细菌总数。 由于水中细菌种类繁多,它们对营养和其他生长
条件的要求差别很大,不可能找到一种培养基在 一种条件下,使水中所有的细菌均能生长繁殖, 因此,以一定的培养基平板上生长出来的菌落, 计算出水中细菌总数仅是一种近似值。 目前一般是采用肉膏蛋白胨琼脂培养基。
6.菌落计数:
1)挑取无片状菌苔生长的平板作为计数平板,若片状菌 苔的大小不到平板的一半,而其余的一半菌落分布很均 匀时,可将此一半的菌落数乘2以代表全平板的菌落数。
2)选择平均菌落数在30~300之间的平板来计算该水样的 菌落总数。如果所有的平板的菌落总数都不在30—300 范围之内,则取最靠近30—300的平板进行计数
本实验以普通牛肉膏蛋白胨琼脂培养基,采用平 板菌落计数技术来分别测定自来水和河水中的细 菌总数。
4.涂布平板法:
用移液管吸取0.1mL水样,滴于平板中;将玻璃涂布棒于酒 精灯的外焰上加热,杀死表面微生物,然后耐心待其冷却, 然后用涂布棒将水滴均匀的涂满整个平板表面,尽量将水 涂干。
5. 倒置于37℃培养箱中培养24h。
注:营养琼脂培养基用10-4,10-5 ,10-6 土壤稀释液; 高氏1号琼脂培养基用10-1, 10-2,10-3土壤稀释液; 马丁氏琼脂培养基用100 , 10-1,10-2 若平板数量不足, 取前两个稀释度
4、培养 将高氏1号培养基平板和马丁氏培养基平板
倒置于28 ℃恒温培养箱中培养3-5d,营养琼 脂培养基平板倒置于37 ℃恒温培养箱中培养 2-3d。

实验水中细菌总数的测定

实验水中细菌总数的测定

实验水中细菌总数的测定前言水是我们生活的重要组成部分,无论是生命的起源,还是人类生活和生产都与水密不可分。

但是随着工业化进程的加快,水质越来越受到污染,水中细菌总数也成为常见的水质指标之一。

本文将介绍如何进行水中细菌总数的测定实验。

实验目的1.掌握测定水中细菌总数的方法;2.熟悉细菌结构及其生长条件;3.加深对水质检测的认识。

实验原理水中的细菌一般通过卫生污染途径进入自来水、地下水、河流等水体,污染水源后就会对人们的生活、工作和生产带来很大的危害。

痢疾、霍乱、伤寒、腹泻等疾病多是由于口腔、消化系统中的有害菌群外移至消化道。

测定方法主要是基于发酵方法,通过统计水中微生物的数量,其基本依据在于微生物在适宜的温度和环境下,利用某些碳水化合物发酵而产生可测定的气体。

常用的指标为断氧时间(DT),根据氧的量来判断细菌数量的多少,一定程度上可以反映出水的卫生状况。

实验步骤1.取水样:从自来水水源处取出应检样品,需注意的是要使用无菌容器,最好是预先消毒过的。

在取水样前,最好流动5分钟以上方可取样,避免得到不实际的结果;2.加入营养元素:滤上滤膜后,再将约5ml的最少粉末培养基、4-5滴的氯化甲烷胺(1%)和约200ml无菌水混合均匀,将混合溶液倒入水样中;3.发酵过程:将水样发酵瓶通过逆时针旋紧,摇晃均匀;4.测定结果:记录下发酵瓶开始发酵的时间,水样中的气体不断地逸出,瓶内逐渐产生负压下降,直到完全断氧的时间。

断氧时间愈短,水质愈差,水中微生物愈多,反之亦然。

实验要点1.无菌取样,避免二次污染,结果更加准确;2.取样量及试剂加入的量要准确,否则会影响实验结果;3.发酵瓶要紧闭,防止气体泄漏;4.营养元素中含有的碳源、氮源等应与微生物的生长有适当的关系。

通过测定水中细菌总数,可以更加准确地判断水的卫生状况。

通过本实验的学习和操作,可以更加深入地了解微生物结构、生长条件以及水质检测的方法,具有较高的理论和实际应用价值。

实验十二-水中细菌总数和大肠杆菌检测

实验十二-水中细菌总数和大肠杆菌检测

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≥24000
大肠菌群测定
产酸判断:紫色培养液变成黄色
产气判断:发酵导管内有小气泡,如轻轻打动试 管有气泡沿管壁上浮,应考虑可能有气体产生, 需进一步试验。
稀释度选择及细菌总数报告方法
平均 菌落

水中细菌总数的测定(课堂PPT)

水中细菌总数的测定(课堂PPT)
9
10-2 10-3 10-4 10-5 10-6 10-1
10
(2)接种
以无菌操作方法用无菌吸管吸取原水样l ml或取 2-3个适宜浓度稀释液l ml,注入灭菌平皿中。倾 注约15ml已溶化并冷却到45℃左右的牛肉膏蛋 白胨琼脂培养基,并立即旋转平皿,使水样与培 养基充分混匀,每个稀释度平行三皿。另设三皿 空白对照(?)。
5
三、实验操作步骤
1. 水样的采集 供细菌学检验用的水样,必须按一般无菌操作的基 本要求进行采样,并保证在运送、贮存过程中不受 污染。为了要正确反映水质在采样时的真实情况, 水样在采取后应立即送检;一般从取样到检验不应 超过4小时。条件不允许立即检验时,应存于冰箱, 但也不应超过24小时,并应在检验报告单上注明。
(见表4-3-1例次6)。
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表 4-3-1 计算菌落总数的方法举例

不同稀释度的平均菌落数 两个稀释 菌落总数 报告方式 备注

10-1
10-2
10-3 度菌落之 (个/ml) (个/ml)
比20
-
16400 1.6×104 两位以
后的数
2
2 760
294
46
1.6 37700 3.8×104 字采取
2
一、实验目的 二、实验仪器与材料 三、实验操作步骤 四、实验结果 五、思考题
3
一、实验目的
掌握水样的取样方法; 掌握水体中细菌总数的测定方法; 了解国家的相关法规。
4
二、实验仪器与材料
1. 仪器: 高压蒸汽灭菌器、恒温箱、冰箱、体视镜(放大镜)、带刻 度试管(3)、培养皿(4)、微量移液器(配枪头)、 三角瓶(2 ) 、计数器。 2. 培养基 牛肉膏蛋白胨琼脂培养基

水的细菌学检查 ppt课件

水的细菌学检查 ppt课件
• 在人粪中粪大肠菌群细菌占总大肠菌群 数的96.4%;在外环境中粪大肠菌群不易 繁殖,因此,粪大肠菌群较总大肠菌群 作为粪便污染指示菌意义更大。
一、实验目的
1.学习水样细菌总数的测定方法。 2.掌握水中大肠菌群的测定方法。 3.了解大肠菌群的数量与生活饮用水的
重要性。
二、实验原理
(一)细菌总数的测定 水中的细菌总数可反映出水体被有机
• 多管发酵法使用历史较久,又称水的标 准分析方法,为我国大多数卫生单位与 水厂所采用;
• 滤膜法是一种快速的替代方法,而且结 果重复性好,又能测定大体积的水样, 目前国内已有很多大城市的水厂采用此 法。
• 粪大肠菌群
• 粪大肠菌群(fecal coliform)是能在 44.5℃(44~45 ℃)发酵乳糖的大肠菌 群(thermotolerant coliform),以埃希氏 菌属为主。
(1)个别其他类型的细菌在上述条件下也 可能产气,需进行下述试验(即平板分 离和复发酵试验)才能进一步确证。
(2)培养24h后产酸,但未见产气者,不 能立即判断为阴性结果,由于菌量少, 也可能延迟至48h后才产气,应视为可疑 结果,也需进行下述试验(即平板分离 和复发酵试验)进一步确证,48h后仍不 产气,可判断为阴性结果。
• 我国饮用水的卫生学指标规定:在lmL自 来水中细菌总数不得超过100个。
二、实验原理
(二)水中大肠菌群的测定(多管发酵法) 多管发酵法包括:初发酵试验、平板分
离和复发酵试验三部分。
1.初发酵试验
初发酵试验的液体培养基含有乳糖、蛋 白胨和溴甲酚紫。
乳糖起选择性碳源的作用,大肠菌群 可发酵乳糖产酸(有机酸),产气 (CO2+H2)。
四、实验操作

水中大肠菌群的含量测定PPT课件

水中大肠菌群的含量测定PPT课件
水中大肠菌群的测定
1
一、目的要求
1、掌握测定水中大肠菌群数量的多管发酵法的原理、 操作步骤及方法;
2、掌握划线分离法; 3、了解水质评价的微生物学卫生标准,明白其应用的
重要性。
2
二、基本原理
总大肠菌群(coliform group,total coliforms) 总大肠菌群指数高,表示水源被粪便污染,则有可
2)池水、河水或湖水 应取距水面10~15cm的深层水 样,先将灭菌的带玻璃塞瓶,瓶口向下浸入水中,然后翻 转过来,除去玻璃塞,水即流入瓶中,盛满后,将瓶塞盖 好,再从水中取出。最好立即检查,否则需放入冰箱充分 冷却。
9
1、初发酵试验:(自来水检查为例)
在2个含有50mL 3倍浓缩的乳糖蛋白胨发酵烧瓶中, 各加入100mL水样。在10支含有5mL3倍浓缩的乳糖蛋白 胨发酵管中,各加入10mL水样。混匀后,37℃培养24h, 24h未产气的继续培养至48h;
基,3倍浓缩乳糖蛋白胨发酵管(内有倒置小套管)培养 基,伊红美蓝琼脂平板。 3、溶液和试剂:革兰氏染液、无菌水等。 4、仪器和其他用品:显微镜、载玻片、无菌培养皿、灭 菌吸管、灭菌试管、镊子、烧杯、温箱等。
8
四、操作步骤
水样的采取
1)自来水 先将自来水龙头用火焰烧灼3min灭菌,再开 放水龙头使水流5min后,以灭菌三角烧瓶接取水样,以 待分析。
2、平板分离:
将24h培养后产酸产气和48h培养后产酸产气的发酵管, 分别划线接种于伊红美蓝琼脂平板上,再于37℃下培养18~ 24h,将符合下列特征菌落:深紫黑色,有金属光泽;紫黑 色,不带或略带金属光泽;淡紫红色,中心颜色较深,挑取 其中的一小部分,进行涂片,革兰氏染色,镜检;

实验十二 水中细菌总数和大肠杆菌检测 ppt课件

实验十二 水中细菌总数和大肠杆菌检测 ppt课件
实验十二 水中细菌总数和大肠杆菌检测 ppt课件
一 实验目的
1、掌握细菌总数的测定方法 2、掌握大肠杆菌的鉴定和计数
方法 3、巩固无菌操作技术
二 实验原理
1.细菌总数测定原理
用营养琼脂倾注平板,测定被检物在单 位重量或体积(g或ml)内所含有的活细 菌数量,以判明被检物被细菌污染的程度。
三、实验器材
板 牛肉膏蛋白胨培养基:150ml,6个平板
4400
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≥24000
大肠菌群测定
产酸判断:紫色培养液变成黄色
产气判断:发酵导管内有小气泡,如轻轻打动试 管有气泡沿管壁上浮,应考虑可能有气体产生, 需进一步试验。
将产气的发酵管分别转种在伊红美蓝琼脂平板上,置 36℃±1℃温箱内,培养18h—24h,然后取出,观察菌 落形态并做革兰氏染色和证实试验。
4.证实试验
在上述平板上,挑取可疑大肠菌群菌落1—2个进行革兰 氏染色,同时接种乳糖发酵管,置36℃±1℃的温箱内培 养24h±2h,观察产气情况。
凡乳糖管产气、革兰氏染色为阴性无芽胞杆菌,即报告 为大肠菌群阳性。
10-3无法计数
菌落计数的报告:
菌落数
报告结果
1、 30~300 之间
平均菌落数 X 稀释倍数
2、 (若有两个稀释度) 在30~300之间

实验三水中细菌总数的测定PPT课件

实验三水中细菌总数的测定PPT课件

03
CATALOGUE
实验步骤
实验步骤
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实验步骤
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实验步骤
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02
培养数据分析能力
通过对实验数据的分析,可以培养数据分析能力,提高数据处理水平。
03
学习并掌握实验报告撰写的基本方法
通过撰写实验报告,可以培养报告撰写能力,提高文字表达能力。
02
CATALOGUE
实验原理
细菌总数的概念及测定意义
细菌总数
指在一定条件下,每毫升水样中 可以生长的细菌菌落的总数。
测定意义
中细菌总数。
学习并掌握无菌操作技术
02
在实验过程中结果的准确性。

实验十一水中细菌总数的测定

实验十一水中细菌总数的测定
数据处理
根据菌落计数结果,计算每毫升水样中的细菌总数。计算公式 为:细菌总数(cfu/mL)=(平均菌落数×稀释倍数)/接种体 积。同时,计算标准差和变异系数,评估结果的可靠性。
04 实验结果与数据分析
菌落形态描述及数量统计
菌落形态
在培养皿中观察到不同形态的菌落, 包括圆形、不规则形状等。菌落表面 光滑或粗糙,颜色也有所不同,从白 色到黄色不等。
结果分析与讨论
结果分析
根据实验结果,可以对水样中的细菌总数进行评估。如果细菌总数超过了相应的卫生标准,则说明水 样受到了污染,需要采取相应的措施进行处理。
结果讨论
在实验过程中,可能会受到一些因素的影响,如温度、pH值、营养物质等。这些因素可能会导致实验 结果的偏差。因此,在讨论实验结果时,需要考虑这些因素的影响,并对实验结果进行合理的解释和 讨论。同时,也可以提出改进实验方法的建议,以提高实验的准确性和可靠性。
时一般采用平板计数法,选择菌落数在30-300之间的平板进行计数,
以确保结果的准确性。
03 实验步骤与操作
样品稀释与接种
样品稀释
取1mL水样,加入9mL无菌水中,充分混匀,得到10^-1稀释液。以此类推, 制备10^-2、10^-3等稀释液。
接种
分别取不同稀释度的水样1mL,倾注于无菌平皿中,每个稀释度做两个平行样。 同时,以无菌水作空白对照。
计数误差
在细菌计数过程中,可能因计数不准确或视野选择不当导 致误差。为减小误差,应采用合适的计数方法,如平板计 数法,并选择具有代表性的视野进行计数。
提高实验准确性的建议
严格控制实验条件
在实验过程中,应严格控制温度、湿 度、光照等实验条件,确保实验结果 的准确性和可重复性。

细菌总数与大肠菌群数测定 PPT课件

细菌总数与大肠菌群数测定 PPT课件
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初发酵
器材与试 剂

水样、无菌水、三倍乳糖蛋白胨,吸管、酒精灯、 吸球
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大肠菌群数测定
实验步骤: 1.初发酵 (1)2个大试管(内有倒管),100ml水样+已灭 菌的3倍浓缩乳糖蛋白胨培养液(50ml) (2)10支试管(内有倒管),10ml水样+已灭菌 的3倍浓缩乳糖蛋白胨培养液(5ml) (3)培养:37 ℃,24h (4)观察指标: 产酸(黄色),产气(倒管内有气泡)
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第二部分 总大肠菌群数测定
总大肠菌群是指那些能在37ºC,48h之内 发酵乳糖产酸产气的、需氧及兼性厌氧的 革兰氏阴性的无芽胞杆菌。主要包括埃希 氏菌属、柠檬酸杆菌属、肠杆菌属、克雷 伯氏菌属等菌属的细菌。
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总大肠菌群的检验方法中,多管发酵法适 用于各种水样(包括底泥),但操作复杂 ,需要时间长;滤膜法主要适用于杂质较 少的水样,操作简单快捷
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八、计算
1、菌落计数及报告方法
作平皿菌落计数时,可用眼睛直接观察, 必要时用放大镜检查,以防遗漏。在记下 各平皿的菌落数后,应求出同稀释度的平 均菌落数,供下一步计算时应用。
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在求同稀释度的平均数时,若其中一个平 皿有较大片状菌落生长时,则不宜采用, 而应以无片状菌落生长的平皿作为该稀释 度的平均菌落数。若片状菌落不到平皿的 一半,而其余一半中菌落数分布又很均匀, 则可将此半皿计数后乘2以代表全皿菌落 数。然后再求该稀释度的平均菌落数。
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2、操作方法
(1)以无菌操作方法用灭菌吸管吸取 1mL充分混匀的水样,注入灭菌平皿中, 倾注约15mL已融化并冷却到45℃左右的 营养琼脂培养基,并立即旋摇平皿,使水 样与培养基充分混匀。每次检验时应做一 平行接种,同时另用一个平皿只倾注营养 琼脂培养基作为空白对照

水中细菌总数测定.共29页

水中细菌总数测定.共29页
水中细菌总数测定.
56、死去何所道,托体同山阿。 57、春秋多佳日,登高赋新诗。 58、种豆南山下,草盛豆苗稀。晨兴 理荒秽 ,带月 荷锄归 。道狭 草木长 ,夕露 沾我衣 。衣沾 不足惜 ,但使 愿无违 。 59、相见无杂言,但道桑麻长。 60、迢迢新秋夕,亭亭月将圆。
41、学问是异常珍贵的东西,从任何源泉吸 收都不可耻。——阿卜·日·法拉兹
42、只有在人群中间,才能认识自 己。——德国
43、重复别人所说的话,只需要教育; 而要挑战别人所说的话,则需要头脑。—— 玛丽·佩蒂博恩·普尔
44、卓越的人一大优点是:在不利与艰 难的遭遇里百折不饶。——贝多芬Βιβλιοθήκη 45、自己的饭量自己知道。——苏联

水中细菌总数的检测

水中细菌总数的检测

三、实验仪器和材料1、高压蒸汽灭菌锅、恒温箱、冰箱、无菌接种间。

消毒酒精、消毒水。

3、试管、三角瓶、平皿、刻度吸管、涂布器等(实验前包扎灭菌处理好备用)4、培养基蛋白陈lOg 牛肉膏3g 氯化钠5g 琼脂10~20g 蒸镭水1000ml制备方法:按照实际的需要量,按上述配方称取各成分混合后,加热溶解,调整 为7.4-7.6,,分装于玻璃容器中,用咼压蒸汽火菌锅四、实验内容:(一)、培养基的制备:(-)、取水样:打开龙头放水1-2分钟,用无菌空三角瓶接取水样200毫升。

2、纯净水取样:用消毒酒精棉擦拭纯水机出口后,先放走部分水,再用 无菌空三角瓶接取水样200毫升。

细菌总数测定 定量接 种水样 宕予•一制作培养基平板 37 C F 培养 24h 、自来水的取样:先将自来水龙头用酒精棉擦拭,再用酒精灯火焰灭菌,pH121 r 灭菌 20mi n,倒5、水样:制成平板后储存于冷处备用。

自来水、 实验前事先准备好培养基平板(方法见上),每小组2-4个平板。

3、池水、河水或湖水应取距水面10- 155的深层水样,先将灭菌的带玻璃塞瓶,瓶口向下浸入水中,然后翻转过来,除去玻璃塞,水即流入瓶中,盛满后,将 瓶塞盖好,再从水中取出,最好立即检查,否则需放入冰箱中保存。

(三)、接种培养:(要求无菌操作)用无菌吸管吸取1毫升水样,加入平板中(每个水样平行做两个平板),用24h-48小时培养后'统计细困困洛的总数。

(四)、菌落记数:菌落计数及报告方法作平皿菌落计数时,可用眼睛直接观察,必要时用放大镜检查以防遗漏。

在 记下各平皿的 菌落数后,应求出同稀释度的平均菌落数,供下一步计算时应用。

在求同稀释度的平均数时,若其中一个平皿有较大片状菌落产生时,则不宜采用,而应以无片状菌落产生的平皿作为该稀释度的平均菌落数。

的一半,而其余一半中菌落数分布又很均匀,则可将此半皿计数后乘 皿菌落数。

然后再求该稀释度的平均菌落数。

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37℃培养24h后,所生长细菌菌落的总数。
◈生活饮用水的细菌总数lmL不得超过100个
一、细菌总数测定的意义
◈可以反映水体有机污染的程度
精品课件
24
Ⅰ 细菌总数的测定
二、培养基的制作 三、测定方法及步骤
1.稀释水样 2.接种水样 3.培养:37℃下倒置培养24h
精品课件
6
(四)实验方法
培养基的制备过程 称量---溶解----调节pH值----过滤---分装及包扎----灭菌----灭菌后试管 摆放斜面
1.称量 按照培养基配方,准确称量各成份放于瓷缸中。 配方:牛肉膏5.0g,蛋白胨10.0g,NaCl5.0g,琼脂 20.0g,蒸馏水1000ml,pH7.0。
适用于无菌室,接种箱,手术室内的空 气及物体表面的灭菌。
精品课件
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2、步骤 1)单用紫外灯 在无菌室内或在接种箱内打开紫外线
灯开关,照射30min,将开关关闭。 2)化学消毒剂与紫外线照射结合使用 在无菌室内,先喷洒化学消毒剂溶液,
再用紫外线灯照射15imn
精品课件
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水中细菌总数测定
精品课件
精品课件
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(二)实验原理
培养基是按照微生物生长繁殖或积累代谢产物 所需的各种营养物质,用人工方法配制而成的一 种基质。它包括碳源、氮源、能源、生长因子、 无机盐和水六类营养要素。由于不同微生物细胞 组成不同,因而所需营养基质不同,为了分离、 培养和鉴定不同的微生物,必须根据其需要,配 制合适的培养基.
不同层次的搅扰;同一采样点与理化监测项目同时采样时,应 先采集细菌学检验样品
(6)采样完毕,做好记录
精品课件
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二、样品保存
采好的水样,应迅速运往实验室,进行细菌学 检验。一般从取样到检验不宜超过2h,否则应 使用10℃以下的冷藏设备保存样品,但不得超 过6h
精品课件
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Ⅰ 细菌总数的测定
细菌总数:指lmL水样在营养琼脂培养基中,于
用火焰烧灼或电热干燥箱内高温热空气灭菌 2、湿热灭菌
⑴高压蒸汽灭菌法 ⑵间歇灭菌法 ⑶煮沸消毒法
精品课件
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(三)实验器材
1.药品和试剂:牛肉膏、蛋白胨、NaCl、10% NaOH溶液、10%盐酸溶液。
2.器材:天平、药匙、瓷缸、玻璃棒、电炉、 PH试纸、试管、三角瓶、分装漏斗、牛皮纸、 棉花、线绳、干燥箱、高压锅。
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一、水样的采集
1. 采水容器
① 采样瓶:具磨口玻塞的500mL广口瓶 ② 采样瓶的洗涤
③ 采样瓶的灭菌: 160~170℃干热灭菌2h,或用高压蒸 汽灭菌器,121℃灭菌15min
精品课件
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一、水样的采集
2. 采样步骤及注意事项
(1)去氯和高浓度重金属:灭菌前按500mL采样瓶加入 0.3mL10%Na2S2O3溶液
(2) 采集江、河、湖、库等地表水样时,可握住瓶子下部直 接将已灭菌的带塞采样瓶插入水中,约距水面10~15cm处采 (集3)采集一定深度的水样时,可使用单层采水器或深层采水器
(4)从自来水龙头采集样品时,采水前可先将水龙头打开至最 大,放水3~5min,用酒精灯火焰灼烧约3min灭菌
(5)在同一采样点进行分层采样时,应自上而下进行,以免
培养基的种类繁多,根据培养基的成分、物 理性状不同,可分为天然培养基、合成培养基、 半合成培养基、固体培养基、半固体培养基和液 体培养基。
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灭菌是指应用物理或化学的方法,杀 灭物体表面和内部一切微生物营养体、芽孢 和孢子。灭菌方法很多,可分为加热、过滤、 照射和化学药品法等。
常用加热灭菌法: 1、干热灭菌:
5、分装过程中注意不要将培养基沾在管(瓶)口上,以免沾污棉塞 而引起污染。
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(五)实验作业
为什么湿热灭菌比干热灭菌法更有效?
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消毒与灭菌
1.干热灭菌法 2.高压蒸汽灭菌 3.紫外线灭菌法
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(二)高压蒸汽灭菌
1、原理
利用加热一个密闭的加压灭菌锅,使灭 菌锅隔套间的水沸腾而产生蒸气。由于蒸气不 能溢出,而增加了灭菌锅内的压力,从而使沸 点增高,得到高于100℃的温度。导致菌体蛋 白质凝固变性而达到灭菌的目的。
一般培养基用0.1Mpa,121.5℃,15~ 30min
加2水、步骤装待灭
菌物品
加盖
加热
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灭菌时间到后 断电源
压力降为零 开箱取物
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(三)紫外线灭菌法 1、原理
紫外线杀菌机理主要是因为它诱导了胸 腺嘧啶二聚体的形成和DNA 链的交联,从而 抑制了DNA 的复制。另一方面,由于辐射能 使空气中的氧电离成[O],再使O2 氧化生成 臭氧或使水氧化生成H2O2。O3 和H2O2 均有 杀菌作用。
2、蛋白胨极易吸湿,称取时动作要迅速;
2、配制固体培养基时,先将其他药品加热溶解到快沸时,再将称好 的琼脂加入,继续加热至琼脂完全熔化,此过程要不断搅拌,以免 琼脂糊底,并控制火力,防止沸腾外溢;
4、分装量根据试管大小和实际需要而定,固体培养基装量约为管高 的1/5,液体培养基的装量约为管高的1/4,三角瓶的装量不超过瓶 体的1/2 ;
水中的细菌总数测定
1. 培养基的配制 2. 消毒与灭菌 3. 水中细菌总数的测定 4. 菌落计数法
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培养基的制备与灭 菌
(一)实验目的
(二)实验原理
(三)实验器材
(四)实验方法 (五)实验作业
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(一)实验目的
1、明确培养基的配制原则; 2、掌握配制培养基的一般方法和步骤; 3、了解高压蒸汽灭菌的基本原理及应用范围; 4、掌握高压蒸汽灭菌技术,了解几种常用灭菌 方法。
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2.溶解
向上述瓷缸中加入所需要的水量,搅拌,加热使 其溶解。如是配制固体培养基,在琼脂的熔化过 程中,需不断搅拌,并控制火力不要使培养基溢 出或烧焦。待完全熔化后,补足所失水分。
3.调节pH值
用玻璃棒沾少许液体,测量PH值。用氢氧化钠和 盐酸调节PH。
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4.过滤 用滤纸或多层纱布过滤,一般无特殊要求可省 去。
5.分装及包扎
根据不同的需要,可将制好的培养基分装入试 管内(用分装漏斗)或三角瓶内,管(瓶)口 塞上棉塞。最后用牛皮纸将棉塞部分包好。
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6.灭菌:高压蒸汽灭菌,1210C灭菌20分钟。
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7. 灭菌后试管摆放斜面
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பைடு நூலகம்
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注意事项
1、称取药品时严防药品混杂,一把牛角匙称一种药品;
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