1.1液体活检与组织活检常识

什么是液体活检？

液体活检是与传统的组织活检相对应的概念，是以血液等非固态生物组织为标本进行取样和分析的体外诊断技术。液体活检中的“液体”以血液为主，也包括粪便、尿液、唾液以及其他体液样品。液体活检最主要的应用场景是肿瘤的早期筛查、诊断、用药指导、监测、预后管理，以及无创产前检测，除此之外还包括肌肉骨骼系统和结缔组织疾病、传染病和寄生虫病等其他疾病。

与传统的组织活检相比，液体活检的优势之一在于能够反映病灶的综合信息，精准治疗的前提是对肿瘤等病灶组织取样进行基因分析，传统方法为手术活检和穿刺活检，由于肿瘤细胞存在很强的异质性，传统方法只能获得取样位置的基因信息，不能反映肿瘤整体上的综合信息。优势之二在于可以进行高频率监测，肿瘤细胞的基因变化可能导致抗药性等情况，必须高频监测才能做到准确用药，液体活检通过简单的静脉抽血即可实现，可以满足高频监测的需求。优势之三在于可以显著降低成本、降低患者风险，肺穿刺活检的成本数倍于液体活检，且有更大几率导致并发症。

三、液体活检的发展情况如何？

根据检测物的不同，液体活检技术已发展出以下分支：

（1）CTC技术：循环肿瘤细胞（Circulating Tumor Cell，CTC）是游离于血液循环系统中的肿瘤细胞，来源于原发肿瘤组织，是肿瘤细胞转移的重要方式，是复发和激发癌症致死机制的重要因素。CTC作为肿瘤细胞，不仅包含肿瘤的DNA信息，同时还包含基因组、蛋白质组等信息，是研究肿瘤组织信息的丰富来源。

（2）cfDNA/ctDNA技术：游离DNA（Cell-free DNA，cfDNA）是游离于血液循环系统中的来自细胞的DNA片段，主要来自于细胞凋亡进程中片段化的DNA、坏死细胞的DNA碎片、细胞分泌的外泌体。cfDNA中最重要的一类是循环肿瘤DNA（Circulating Tumor DNA，ctDNA），ctDNA是进入血液循环系统中的来自肿瘤基因组的DNA片段，携带了突变、插入、缺失、重排、拷贝数异常和/或甲基化等基因信息。

（3）外泌体技术：外泌体（Exosome）是细胞分泌出的小泡，小泡中包含蛋白质、DNA、信使RNA以及一些非编码RNA，是细胞之间沟通的载体，与肿瘤的发生、发展、转移以及抗药性存在相关性。肿瘤细胞以这些小泡为载体帮助其逃过免疫系统的监视，这些小泡为肿瘤细胞的转移指引方向，同时也创造适合肿瘤生长的微环境。

（4）循环RNA技术：循环RNA（Circulating RNA）是存在于血液或其他体液中的胞外RNA，主要有mRNA、miRNA以及其他类型的RNA，与生理和病理状态下的细胞代谢密切相关。临床研究主要集中在产前诊断和肿瘤早期诊断。

组织活检-FFPE

福尔马林的固定容易使组织中的核酸发生不同程度的降解和分子间的交联，石蜡的高温渗入过程进一步加速核酸的降解，保存的时间及环境对样品中的核酸也有巨大的影响，从石蜡切片中提取出高质量基因组，并构建出信息完整、无偏好、可用于后续各类组学研究的文库，则是“大大”的难题。

一. 样本制备

1.样本采集

每种组织都有其特定的生理功能，并就其结构和组成细胞而言是独特的。取决于组织类型，

收获后生物分子降解、诱导或修饰的速度可能各异。从病人身上获得组织标本的手术涉及麻醉、血管结扎、组织的切除以及固定。从病人麻醉到组织固定这段时间内，组织中的基因表达可能发生变化，且可能发生组织自溶。因此，组织固定前的操作时间应当越短越好，以避免RNA转录本和蛋白表达谱发生明显改变。在处理肿瘤组织时，应当注意健康和恶性细胞并不是均匀分布的。因此，同一个组织样品中一块切片的分析结果可能与另一块切片不同。

2.福尔马林固定

组织的固定是将标本放在福尔马林溶液中，此溶液的组分可能有所差异（典型的10%福尔马林溶液可能含有3.7% 甲醛以及1-1.5% 甲醇）。产生的化学反应导致生物分子之间的交联，包括核酸之间、蛋白之间，以及核酸和蛋白之间的交联。为了获得最佳的结果，应当使用中性的福尔马林缓冲溶液，以取代无缓冲或酸性的溶液。中性缓冲液减缓福尔马林的降解，而通常认为其降解产物会损害核酸的质量(图1)。

图1. 福尔马林固定对DNA、RNA和蛋白的影响。

福尔马林固定导致核酸之间、蛋白之间以及核酸和蛋白之间的交联。固定时间越长，交联程度越大。

福尔马林大约以1 mm/小时的速率渗透组织。此外，福尔马林的渗透速率随组织厚度的增加而降低。因此，在固定一个组织标本时，它应当足够薄，以避免周边的过度固定和中间的固定不足。固定不足（underfixation）可导致组织标本中福尔马林未渗入的较深区域的核酸和蛋白降解，或基因表达发生改变。过度固定（overfixation）则导致更密集的交联，让有用核酸和蛋白的提取变得更加困难。在固定整个组织（厚度大约1 cm），而不是组织切片（厚度约4 mm或以下）时，RNA显著降解（图2）。为了获得最佳的结果，通常建议固定最多5 mm厚的组织标本。

图2. 样品厚度对RNA完整性的影响

大鼠组织以整个器官或≤4 mm的切片进行福尔马林固定和石蜡包埋。A 包埋后3天利用RNeasy® FFPE Kit 纯化RNA，并利用Agilent® 2100 Bioanalyzer分析。在整个大脑的电泳峰图中，双箭头指出了18S rRNA和28S rRNA的峰减少，表明RNA片段化的增加。B 纯化的RNA被用于一步法RT-PCR中，利用大鼠Rpl4基因特异的不同引物对和QIAGEN OneStep RT-PCR Kit。从左到右，扩增子大小分别为96、206、400、613和785个核苷酸。整个器官的分析中较大扩增子的缺失表明较大的RNA存在降解。（von Ahlfen et al. [2007] Determinants of RNA quality from FFPE samples. PloS ONE 12, e1261.）

福尔马林与组织的比例至少应为10:1，以确保最佳的固定。在处理小的组织标本，如穿刺活检时，这很容易实现。然而，在处理大的组织样品时，固定所用的福尔马林可能不足。在这种情况下，组织切片应当切割后再进行福尔马林固定。

组织的固定不应超过24小时，以避免过度固定。在一个比较过夜固定和72小时固定的实验中，72小时固定对纯化后RNA在一步法RT-PCR中的表现有不利影响：较大的扩增子无法成功扩增，这极有可能是因为RNA分子的过度交联和较高比例的不可逆交联（图3）。