免疫组化非特异性背景染色及其控制方法

免疫组化非特异性背景染色及其控制方法

一、非特异性染色的识别

常出现在组织边缘、胶原纤维及血浆渗出处，坏死组织及固定不良的组织中心处。表现为弥漫性，均匀性的背景染色。也可以是随机分布的阳性反应产物点、团或块状。

二、非特异性染色的原因

1. Ig与Fc受体结合

多见于冰冻切片（特别是淋巴造血组织，淋巴细胞，单核细胞，组织细胞表面多），主要是和二抗反应，因为一抗一般稀释度均较大，因此Fc受体的干扰基本不存在。由于福尔马林固定破坏了大部分的Fc受体，所以石蜡切片不多见。

避免方法：

①用以二抗相同种族的正常血清封闭切片；

②用不含Fc段的抗体，但价格贵

（V区，C1区不含Fc段，用Pepsin消化）

2．静电吸附

抗体是一种带负电荷的球蛋白，容易和带正电荷的组织相结合，如胶原纤维。

避免方法：

①尽量稀释一抗

②降低抗体的电荷，如用2.5%NaCl，0.05mTBS代替PBS；

③用去垢剂如triton-100处理切片。Tween-20等；

3.二抗与组织中的Ig结合

如羊抗兔的二抗，二抗可以标本中（人）Ig发生交叉反应，科学上越接近的动物，交叉反应越

明显，如人与猴，兔与豚鼠。

避免方法：用与待测组织相同的5%的正常血清稀释二抗。如人血清。

4．组织中残存醛基与Ig的结合

如醛类固定后未能彻底的冲洗，残流醛基可以和Ig结合。

避免方法：

①彻底冲洗；

②0.02%的新鲜的硼氧化钾液处理10分钟后冲洗；

5．内源性过氧化物酶

红细胞，粒细胞的含量尤其高，镜下可以识别，不要将其当成阳性结果。

避免方法：

①石蜡切片0.3%双氧水-甲醇溶液处理切片；

②冰冻切片3%双氧水处理切片5分钟（99：1）因为未经固定包埋，大部分酶未被破坏；

③对于骨髓涂片

最好用非过氧化物酶标记的抗体

如碱性磷酸酶（AP）

↓

磷酸萘酯+水→α-萘酚+偶氮染料

↓

快兰(fast blue)或快红(fast red)

↓ ↓

兰色红色

用明胶甘油封片，不能用含二甲苯的封片剂，溶于二甲苯。

6. 内源性生物素

以24mg/ml的卵白素封片15分钟；

7. 交叉反应

PcAb敏感性高，但特异性稍低，容易出现非特异性染色。

避免方法：

①尽可能稀释抗体；

②尽可能用McAb;

三、抗体最大稀释度的求法

最大稀释度的目的：

1.节约、

2.特异性染色↑、非特异性染色↓（决定其最大稀释度）棋盘法

如稀释度

1：50 1；100 1：150 1；200

特异性染色+++ ++ ++ +

非特异性染色++ + - -