蛋白质SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳配方

SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法测定蛋白质的相对分子质量解析

对以上标准蛋白质相对迁移率的测定，以相对迁移率的对数对标准蛋白质的相对分子质量作图，可得标准曲线，由标准曲线求出待测蛋白质的相对分子质量。
【实验步骤及操作方法】
1.安装垂直板电泳槽将密封胶条放在平直玻璃板上，将凹形
玻璃板与平直玻璃板重叠。用手将两块玻璃板夹住，放入电泳槽内。用蒸馏水检漏
2.电泳缓冲液（Tris-甘氨酸缓冲液，pH=8.3）：取 Tris6.0g，甘氨酸28.8g，SDS1.0g，用去离子水溶解后定容至1L。
3.样品溶解液（用于溶解标准蛋白质及样品蛋白质）：取SDS0.1g，巯基乙醇0.1mL，甘油 1.0mL，溴酚蓝28.8g，0.2mol/L磷酸缓冲液 0.5mL，加重蒸馏水至10mL。
【试剂配制】
4. 染色液： 0.25g 考马斯亮蓝 R-250 ，加入 454mL50%甲醇溶液和46mL冰乙酸。
5.脱色液：75mL冰乙酸，875mL水与50mL甲醇 6.10% 过硫酸钠、 10%SDS 、 1% 四甲基乙二胺
（TEMED）
【实验材料及预处理】
蛋白质相对分子质量的测定 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法
【实验目的】
• 理解电泳法测定蛋白质分子量的原理。 • 掌握SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法的基本操
作 • 学会绘制标准曲线。
【实验原理】
聚丙烯酰胺凝胶由丙烯酰胺（Acr）和N，N-甲叉双丙烯酰胺（Bis）聚合而成，是一种具有交叉网状结构的凝胶，可以产生分子筛效应，其孔径大小可以通过配置药品的浓度来控制，常用作电泳的载体。
因此，我们可以测定标准蛋白质的迁移率，通过标准蛋白质相对迁移率的对数对相对分子量作图，得到标准曲线，根据标准曲线计算出未知蛋白质的相对分子质量。

蛋白质SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳配方

蛋白质S D S聚丙烯酰胺
凝胶电泳配方
The manuscript was revised on the evening of 2021
分离胶；一块胶配5mL
每一块胶需要约4mL, 留出约2-3cm的距离，用水封口，防止空气接触。

室温放置30min后，可以看到水和胶的界面重新出现。

弃去上层水，倒入凝缩胶。

凝缩胶：一块胶配2mL
10%(W/V)过硫酸铵
1 称取1g APS
2加入10mL 去离子水
3储存于4℃可使用两周时间，过期失去催化作用。

5* Tris-Glycine Buffer (SDS-PAGE电泳缓冲液)
1.
Tris
Gly 94g
SDS 5g
2加入800mL去离子水，搅拌溶解
3定容至1L，室温保存。

5*SDS-PAGE Loading Buffer
离心管
1M Tris-HCl
SDS
BPB 25mg
甘油
2加去离子水溶液后定容至5mL
3小份（500uL/份）分装后，于室温保存
4使用前将25uL的2-ME加到每小份中
5加入2-ME的Loading Buffer 可在室温下保存一个月左右。

生物化学实验-SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质的分子量

SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质的分子量
实验原理
电泳：是带电颗粒在电场作用下，作定向运动即向着与其电荷相反的电极移动的现象。电泳法分离、检测蛋白质混合样品，主要是根据各蛋白质组分的分子大小和形状以及所带净电荷多少等因素所造成的电泳迁移率的差别。区带电泳是样品物质在一惰性支持物上上进行电泳的过程。因电泳后，样品不同组分形成带状区间，故称区带电泳。
在聚丙烯酰胺凝胶系统中，加入一定量的SDS时，蛋白质分子的电泳迁移率主要取决于它的分子量大小，而其他因素对电泳迁移率的影响几乎可以忽略不计。当蛋白质的分子量在 15,000～200,000之间时，电泳迁移率与分子量的对数呈直线关系，符合下列方程式：
lg MW=-b·mR+K MW为蛋白质分子量，mR为相对迁移率，b为斜率，k为截距。在条件一定时，b和K均为常数。若将已知分子量的标准蛋白质的迁移率对分子量的对数作图，可获得一条标准曲线。未知蛋白质的相同条件下进行电泳，根据它的电泳迁移率即可在标准曲线上求得分子量。
实验步骤
凝胶的制备蛋白质样品的处理加样：用微量注射器依次在各个样品槽内加样，各加
10～15μl（含蛋白质10～15μg），稀溶液可加20～30μl
电泳凝胶配方：
30.8%Acr-Bis
1.5mol/l Tris(pH8.9)
0.5mol/l Tris(pH6.7) ddH2O水
10%SDS
10%过硫酸铵AP
3、样品处理与加样 ⑴样品制备
取蔗糖酶样品（样品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ）各50μl，分别放入1.5ml离心管中， 12000r/min离心10分钟，上清即为电泳样品。 ⑵样品处理
将离心后的上清各取20ul，加入等体积“2×蛋白质样品溶解液”，100℃保温 3分钟，取出冷却后，12000r/min离心2min,取上清直接加样。 ⑶加样

实验十聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）分离蛋白质

实验⼗聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）分离蛋⽩质实验⼗聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）分离蛋⽩质【实验⽬的】1. 了解和掌握聚丙烯酰胺凝胶电泳的技术和原理；2. 掌握⽤此法分离蛋⽩质组分的操作⽅法。

【实验原理】在⽣物化学、分⼦⽣物学和基因（遗传）⼯程实验中，常常要进⾏蛋⽩质和核酸的分离⼯作。

聚丙烯酰胺凝胶电泳（Polyacrylamide Gel Electrophoresis, PAGE）是以聚丙烯酰胺凝胶作为⽀持介质进⾏蛋⽩质或核酸分离的⼀种电泳⽅法。

聚丙烯酰胺凝胶是由丙烯酰胺单体（acrylamide，简称ACR）和交联剂N，N-甲叉双丙烯酰胺（N,N-methylene bisacrylsmide 简称BIS）在催化剂的作⽤下聚合交联⽽成的三维⽹状结构的凝胶。

通过改变单体浓度与交联剂的⽐例，可以得到不同孔径的凝胶，⽤于分离分⼦量⼤⼩不同的物质。

聚丙烯酰胺凝胶聚合的催化体系有两种：（1）化学聚合：催化剂采⽤过硫酸铵，加速剂为N,N,N,N－四甲基⼄⼆胺（简称TEMED）。

通常控制这⼆种溶液的⽤量，使聚合在1⼩时内完成。

（2）光聚合：通常⽤核黄素为催化剂，通过控制光照时间、强度控制聚合时间，也可加⼊TEMED 加速反应。

聚丙烯酰胺凝电泳常分为⼆⼤类：第⼀类为连续的凝胶（仅有分离胶）电泳；第⼆类为不连续的凝胶（浓缩胶和分离胶）电泳。

⼀般地，不连续聚丙烯酰胺凝胶电泳有三种效应：①电荷效应（电泳物所带电荷的差异性）；②凝胶的分⼦筛效应（凝胶的⽹状结构及电泳物的⼤⼩形状不同所致）。

③浓缩效应（浓缩胶与分离胶中聚丙烯酰胺的浓度及pH的不同，即不连续性所致）。

因此，样品分离效果好，分辨率⾼。

SDS即⼗⼆烷基硫酸钠（Sodium Dodecyl Sulfate，简称SDS）是阴离⼦表⾯活性剂，它能以⼀定⽐例和蛋⽩质结合，形成⼀种SDS-蛋⽩质复合物。

这时，蛋⽩质即带有⼤量的负电荷，并远远超过了其原来的电荷，从⽽使天然蛋⽩质分⼦间的电荷差别降低仍⾄消除。

SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)测定蛋白质分子量

实验七SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）测定蛋白质分子量实验数据：标准蛋白质条带第一条第二条第三条第四条第五条溴酚蓝前沿距离/cm 4.70距离/cm 0.50 0.95 1.60 2.10 3.95 相对迁移率mr 0.11 0.20 0.34 0.45 0.84 分子量Mr 97400 66200 43000 31000 14400LgMr 4.99 4.82 4.63 4.49 4.16样品 1 2 3溴酚蓝前沿/cm 4.90 4.80 4.60样品迁移距离/cm 4.20 1.20 1.70相对迁移率mr 0.86 0.25 0.37标准曲线：y=5.05-1.10x结果：样品 1 2 3Mr 12706 59566 43954mr 4.104 4.775 4.643一. 实验目的和要求1 学习SDS-PAGE测定蛋白质分子量的原理。

2 掌握垂直板电泳的操作方法。

3 运用SDS-PAGE测定蛋白质分子量及染色鉴定。

二 .实验原理带电质点在电场中向带有异相电荷的电极移动，这种现象称为电泳。

区带电泳是在半固相或胶状介质上加一个点或一薄层样品溶液，然后加电场，分子在支持介质上或支持介质中迁移。

支持介质的作用主要是为了防止机械干扰和由于温度变化以及大分子溶液的高密度而产生的对流。

区带电泳使用不同的支持介质，早期有滤纸、玻璃珠、淀粉粒、纤维素粉、海砂、海绵、聚氯乙烯树脂；以后有淀粉凝胶、琼脂凝胶、醋酸纤维素膜，现在则多用聚丙烯酰胺（PAGE）和琼脂糖凝胶。

PAGE根据其有无浓缩效应，分为连续系统和不连续系统两大类，连续系统电泳体系中缓冲液pH值及凝胶浓度相同，带电颗粒在电场作用下，主要靠电荷和分子筛效应。

不连续系统中由于缓冲液离子成分，pH，凝胶浓度及电位梯度的不连续性，带电颗粒在电场中泳动不仅有电荷效应，分子筛效应，还具有浓缩效应，因而其分离条带清晰度及分辨率均较前者佳。

SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳，是在聚丙烯酰胺凝胶系统中引进SDS（十二烷基磺酸钠）， SDS能断裂分子内和分子间氢键，破坏蛋白质的二级和三级结构，强还原剂能使半胱氨酸之间的二硫键断裂，蛋白质在一定浓度的含有强还原剂的SDS溶液中，与SDS分子按比例结合，形成带负电荷的SDS-蛋白质复合物，这种复合物由于结合大量的SDS，使蛋白质丧失了原有的电荷状态形成仅保持原有分子大小为特征的负离子团块，从而降低或消除了各种蛋白质分子之间天然的电荷差异，由于SDS与蛋白质的结合是按重量成比例的，因此在进行电泳时，蛋白质分子的迁移速度取决于分子大小。

实验8 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法测定蛋白质的分子量

实验8 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法测定蛋白质的相对分子量Mr原理蛋白质在聚丙烯酰胺凝胶电泳中, 蛋白质的迁移率取决于它所带净电荷及分子的大小和形状。

在聚丙烯酰胺凝胶系统中加入阴离子去污剂十二烷基磺酸钠（sodium dodecyl sulfate,简称SDS）和还原剂（如巯基乙醇）处理蛋白质样品, 则蛋白质分子中的二硫键被还原, 1g蛋白质可定量结合1.4g SDS。

由于SDS呈解离状态, 使蛋白质亚基带上大量的负电荷, 其数值大大超过蛋白质分子原有的电荷量, 因而掩盖了不同种类蛋白质间原有的电荷差别。

各种蛋白质-SDS复合物表现出相等的电荷密度, 在聚丙烯酰胺凝胶上电泳时, 它们纯粹按照分子的大小由凝胶的分子筛效应来进行分离, 有效迁移率与相对分子量的对数成很好的线性关系。

用这种方法测定蛋白质的Mr, 简便、快速, 只需要廉价的设备和μg量的蛋白质样品。

所得的结果, 在Mr为15000~200000的范围内, 与用其他方法测得的Mr相比, 误差一般在±10%以内。

因此SDS测定Mr的方法, 已得到非常广泛的应用和迅速的发展。

现在经SDS-聚丙烯酰胺凝胶研究过的蛋白质已经有很多种了。

实验证明, 在蛋白质溶液中加入SDS和巯基乙醇后, 巯基乙醇可使蛋白质分子中的二硫键；SDS能使蛋白质的氢键、疏水键打开, 并结合到蛋白质分子上形成蛋白质-SDS复合物。

在一定的条件下, SDS与大多数蛋白质的结合比为1.4gSDS/1g蛋白质。

由于十二烷基硫酸根带负电, 使各种蛋白质的SDS复合物都带上相同密度的负电荷, 它的量大大超过了蛋白质分子原有的电荷量, 因而掩盖了不同种类的蛋白质间原有的电荷差别。

1.在用SDS-凝胶电泳法测定蛋白质的Mr时, 应注意以下几个问题:如果蛋白质-SDS复合物不能达到1.4gSDS/1g蛋白质的比率并具有相同的构象, 就不能得到准确的结果。

影响蛋白质和SDS结合的因素主要有以下3个: ⑴二硫键是否完全被还原: 只有在蛋白质分子内的二硫键被彻底还原的情况下, SDS才能定量地结合到蛋白质分子上去, 并使之具有相同的构象。

实验四、SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质分子量

不得有气泡，梳底需水平。

7）在等待浓缩胶聚合时，可对样品进行处理，在样品中按 1:1体积比加入上样缓冲液，在100℃加热5分钟以使蛋白质变性。 8）浓缩胶聚合完全后（30分钟），小心移出梳子。把凝胶固定于电泳装置上，上下槽各加入Tris-甘氨酸电极缓冲液。
※要使锯齿孔内的气泡全部排出，否则会影响加样效果。

1）把胶放入塑料盒中，加入银染固定液约3～5倍的体积，没过凝胶，在摇床上慢速振荡30min。

2）蒸馏水洗胶3次，每次2min。
3）转移凝胶到银染溶液中，注意：37%甲醛0.5mL在使用前才能加入。摇床上慢速振荡染色30 min。 4）转移凝胶到10℃以下的蒸馏水中振荡洗涤10sec 。

掌握垂直板电泳的操作方法。
运用SDS-PAGE测定蛋白质分子量及染色鉴定。
二、实验原理

带电质点在电场中向带有异相电荷的电极移动，这种现象称为电泳。
区带电泳是在半固相或胶状介质上加一个点或一薄层样品溶液，然后加电场，分子在支持介质上或支持介质中迁移。支持介质的作用：防止机械干扰和由于温度变化以及大分子溶液的高密度而产生的对流。
滤纸微量注射器大培养皿
四、实验要求
根据老师提供的蛋白质样品，先查阅资料，按
其分子量选择合适的凝胶浓度进行SDS-PAGE 凝胶电泳，选择考马斯亮蓝或银染法进行染色，
测定样品的分子量和纯度情况。

样品1：蔗糖酶样品2：肌酸激酶（从中华鳖肌肉中提取）样品3：牛血清白蛋白样品4：酪氨酸酶（从双胞蘑菇中提取）

聚丙烯酰胺凝胶的聚合反应

单体：丙烯酰胺（Acr）交联剂：甲叉双丙烯酰胺（Bis）催化剂：过硫酸胺加速剂：四甲基乙二胺（TEMED）

SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳

在SDS的作用下，蛋白质分子被完全包裹，消除了电荷对分离的影响，仅根据分子量大小在凝胶孔径中进行分离。
在电场的作用下，小分子蛋白质可以容易地通过凝胶孔径，而大分子蛋白质则受到较大的阻力，无法通过，从而实现蛋白质的分离。
SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳的应用
蛋白质组学研究
SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳是蛋白质组学研究中常用的分离方法，可用于蛋白质的表达、纯化、鉴定和功能研究。
实时监测与数据分析
引入实时监测技术和数据分析软件，可以实时监测电泳进程并获取更准确的数据，为后续分析提供有力支持。
应用拓展
临床诊断
SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳在临床诊断中发挥着越来越重要的作用，可用于检测和鉴别疾病相关的蛋白质标志物。
生物医药研究
SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳在生物医药研究中广泛应用于蛋白质组学、药物筛选和生物标志物发现等领域。
sds－聚丙烯酰胺凝胶电泳
目录
• SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳简介 • SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳实验操作 • SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳的结果分析 • SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳的优缺点 • SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳的发展趋势
01 SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳简介
SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳的定义
准备凝胶制备所需材料
根据实验需求，准备适量的丙烯酰胺、 N,N'-甲叉双丙烯酰胺、SDS、 TEMED等材料。
制备缓冲液
根据电泳条件选择适当的缓冲液，如 TAE或TBE，并配置适量的浓度。
准备样品
将待测样品进行适当处理，如超声破碎或离心取样。
操作步骤
制备凝胶
点样
按照一定比例将丙烯酰胺、N,N'-甲叉双丙烯酰胺、SDS、TEMED混合，加入适量的水搅拌均匀后倒入电泳槽中。

SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质分子量

实验：实验：SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质分子量
指导教师：罗勤
准备工作 1. 小心清洗电泳槽玻板并干燥; 2. 正确安装固定玻板于电泳槽中; 3. 用融化的琼脂粉封住玻板周围的空隙; 4. 准确吸取凝胶溶液,灌胶.
凝胶溶液的配制（凝胶溶液的配制（30ml））
凝胶贮液I: 凝胶贮液凝胶缓冲液II: 凝胶缓冲液蒸馏水: 蒸馏水 10 ml 15 ml 3.34 ml
相对迁移率
三、实验步骤
凝胶溶液的配制（30ml）灌胶上样（点样）
电泳取胶显色（染色）测定m值
四、结果分析
1、测量电泳前沿距离 2、测量每条蛋白带迁移距离 3、求出标准蛋白质谱带的m值 4、 m=蛋白质谱带迁移距离/电泳前沿距离 5、根据上述方法求出未知蛋白质谱带的m值 6、以m作横坐标，蛋白质的分子量的对数作纵坐标，做标准曲线 7、根据未知蛋白的m值在标准曲线上求得其分子量
灌胶前加 10% TEMED
10% APS
1.5 ml 0.16 ml
混匀后迅速灌胶并插入梳子
SDS-PAGE低分子量标准蛋白质考马斯亮蓝R-250染色结果
兔磷酸化酶B 牛血清白蛋白兔肌动蛋白牛碳酸酐酶胰蛋白酶抑制剂鸡蛋清溶菌酶
97,400道尔顿 66,200道尔顿 43,000道尔顿 31,000道尔顿 20,100道尔顿 14,400道尔顿
五、实验注意事项
1．凝胶配制时体积要取标准 2．玻板要洗净烘干，灌胶时不能漏胶 3．胶面要整齐，胶内不能有气泡 4．电泳时电流不能太高，以免发热，不能太小，以免扩散 5．防止电泳缓冲液从上槽取胶和显色/染料迁移距离）与分子量的对数（lg）成线性关系 MW=K（10-bm ） lgmw=lgk-bm

SDSPAGE所有详细试剂配方

SDSPAGE所有详细试剂配方SDS-（聚丙烯酰胺凝胶电泳）是一种常用于蛋白质分析的实验技术。

该技术通常涉及到几种试剂，如胶溶液、缓冲液、电泳缓冲液、染色溶液等。

下面是SDS-常见的试剂配方及其详细说明。

一、胶溶液配方：1. 30%（w/v）丙烯酰胺（acrylamide）溶液- 在称量瓶中称取30g丙烯酰胺，并用蒸馏水调至100ml。

搅拌溶解直至均匀。

-这是制备聚丙烯酰胺凝胶的基础溶液。

2. 响应稀释液（Response diluent）-用于稀释聚丙烯酰胺溶液以获得不同浓度的凝胶。

-可通过将聚丙烯酰胺溶液与水按1:3体积比混合来制备响应稀释液。

二、缓冲液配方：1. 离子化追踪剂（Tris-Glycine running buffer）-用于凝胶电泳盒中电解质的运行。

-配方为：3g Tris base （pH 8.8）14.4g glycine将固体溶解于1L蒸馏水中，并调整pH至8.8三、电泳缓冲液配方：1. 离子化追踪剂（Tris-Glycine SDS running buffer）-用于在电泳过程中提供离子追踪剂。

-配方为：30g Tris base144g glycine10gSDS将固体溶解于1L蒸馏水中。

2. 加速剂（stacking gel buffer）- 用于形成凝胶中的聚集堆积层（stacking layer）。

-配方为：30g Tris base （pH 6.8）144g glycine1gSDS将固体溶解于1L蒸馏水中，并调整pH至6.8四、样品处理缓冲液配方：1. 样品加载缓冲液（sample loading buffer）-用于处理蛋白样品，以便在凝胶上获得良好的分离效果。

-配方为：0.5M Tris-HCl（pH 6.8）20%（v/v）甘油10%（w/v）SDS0.05%（w/v）溴酚蓝（bromophenol blue）旋转混合并加入蛋白样品。

五、凝胶染色溶液配方：1. 吸附性染色剂（Coomassie blue staining solution）-用于染色聚丙烯酰胺凝胶上分离的蛋白质。

SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳

SDSSDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质的相对分子量
一,实验目的掌握SDS-聚丙烯酰胺凝胶电聚丙烯酰胺凝胶电掌握泳(SDS-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE , )的工作原理和操作方法
二,实验原理不同蛋白质具有不同的分子量, 不同蛋白质具有不同的分子量,并在一定的pH溶液中带有不同的电荷溶液中带有不同的电荷. 一定的溶液中带有不同的电荷.但经过SDS处理后的蛋白质,分子表面处理后的蛋白质, 经过处理后的蛋白质完全被负电荷所覆盖,因此在电泳时, 完全被负电荷所覆盖,因此在电泳时, 电泳迁移率近取决于蛋白质的分子量大小而与其所带电荷的性质无关. 大小而与其所带电荷的性质无关.
6. 上样:将样品梳拔出,用电极缓冲液上样:将样品梳拔出, 冲洗样品孔. 冲洗样品孔.样品与样品缓冲液按一定比例混合好. 定比例混合好.用微量注射器加入加样孔,加样量为20l. 样孔,加样量为 . 7.电泳:100V恒压电泳至溴酚蓝指示剂达电泳: 电泳恒压电泳至溴酚蓝指示剂达到浓缩胶和分离胶界面, 到浓缩胶和分离胶界面,然后调电压至120V,再恒压电泳,约1.5 h,待染 ,再恒压电泳, , 料前沿的溴酚蓝迁移至凝胶的底部, 料前沿的溴酚蓝迁移至凝胶的底部, 停止电泳.取下胶板, 停止电泳.取下胶板,将胶片置于白瓷盘内. 瓷盘内.
4. 制备浓缩胶:待胶凝固后(胶与水之间有制备浓缩胶:待胶凝固后( 一清晰界面), 将水倒掉, 一清晰界面), 将水倒掉,用ddH2O冲冲洗胶面,滤纸将水吸干净.配制好浓缩胶. 洗胶面,滤纸将水吸干净.配制好浓缩胶. 倒入浓缩胶插好样品梳, 倒入浓缩胶插好样品梳,注意避免气泡滞留在梳子与胶液的界面, 放置约15 留在梳子与胶液的界面,30 ℃放置约 min,直至使浓缩胶凝固. ,直至使浓缩胶凝固. 5. 电泳:将胶模装好,去胶条后,装入电泳电泳:将胶模装好,去胶条后, 槽中,检查是否漏液后,倒入电泳缓冲液, 槽中,检查是否漏液后,倒入电泳缓冲液, 胶模内侧的液面没过矮板但不可超过高板矮板在内). (矮板在内).

sds聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质实验报告

sds聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质实验报告实验报告：SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质1. 实验目的：本实验旨在使用SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳技术对蛋白质进行分离和测定，并研究样品中蛋白质的分子量。

2. 实验原理： SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳是一种常用的蛋白质分离和测定方法。

在此方法中，蛋白质样品首先与SDS（十二烷基硫酸钠）反应，使蛋白质在电泳过程中带有负电荷。

然后，蛋白质样品被加载到聚丙烯酰胺凝胶中，经过电泳分离。

由于SDS的作用，蛋白质在凝胶中的迁移速度与其分子量成反比。

最后，通过染色或蛋白质标记物检测，可以确定蛋白质的相对分子量。

3. 实验步骤： a. 准备SDS聚丙烯酰胺凝胶：按照制备凝胶的方法制备所需的聚丙烯酰胺凝胶，包括配制凝胶溶液、注射样品孔和负载样品等步骤。

b. 样品制备：将待测蛋白质样品加入SDS缓冲液，并加热至高温，使蛋白质与SDS反应，使其带负电荷。

c. 电泳操作：将样品加载到凝胶中，连接电源进行电泳，设定合适的电压和时间进行分离。

d. 染色和可视化：电泳完成后，将凝胶染色以可视化蛋白质条带，常用的染色方法包括银染、共染等。

e. 分析和测定：根据标准蛋白质的移动距离和相对分子量，通过比较和分析样品中蛋白质的相对分子量。

4. 实验结果：在实验中，通过SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分离和染色，观察到样品中的蛋白质条带。

根据标准蛋白质的移动距离和相对分子量，可以推断样品中蛋白质的相对分子量。

实验结果可以用图表形式展示，包括蛋白质条带的位置和相对分子量的估计。

1/ 25. 结果分析与讨论：分析实验结果，比较样品中蛋白质的相对分子量与已知标准蛋白质的相对分子量之间的差异。

根据条带的位置和相对分子量的估计，可以推断样品中的蛋白质组成和含量。

讨论实验中可能出现的误差和不确定性，并提出改进的建议。

6. 结论：根据实验结果，可以得出关于样品中蛋白质的相对分子量和组成的结论。

总结实验的目的、方法和结果，并指出实验的局限性和未来的研究方向。

SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质分子量

03 结果分析
CHAPTER
蛋白质分子量的计算
蛋白质分子量计算
根据已知标准蛋白的迁移率和分子量，通过线性回归分析，计算未知蛋白的分子量。
校准曲线的建立
使用已知分子量的标准蛋白，在相同条件下进行电泳，绘制迁移率与分是指凝胶能够区分相邻蛋白条带的能力，高分辨率的凝胶能够清晰区分相近分子量的蛋白质。
电泳的原理
电场作用
01
在电场的作用下，带负电荷的SDS-蛋白质复合物向正极移动。
分离效果
02
不同分子量的蛋白质在电场中移动速度不同，从而实现分离。
检测方法
03
电泳结束后，可以通过染色、银染或荧光染色等方法检测分离
的蛋白质条带，并可根据染色深浅判断蛋白质含量。
02
SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质分子量的实验步骤
电泳
01
02
03
安装电极
将凝胶放置在电泳槽中，确保电极与凝胶接触良好。
加样
将准备好的样品加入到凝胶的样品孔中。
开始电泳
接通电源，开始电泳。确保电流稳定，避免电流过大或过小对实验结果的影响。
染色和脱色
染色
在电泳结束后，将凝胶取出，放入染色液中染色，使蛋白质条带呈现可见的着色。
脱色
将染色后的凝胶放入脱色液中脱色，去除背景颜色，使蛋白质条带更加清晰可见。
分离度
分离度是指凝胶中各蛋白条带之间的分离程度，好的分离度能够使各蛋白条带完全分开，便于准确分析。
实验误差和注意事项
实验误差来源
实验误差可能来源于电泳过程中电压、电流的波动、染色过程中染料的浓度和染色时间等因素。
注意事项
为确保实验结果的准确性，应使用高质量的电泳试剂和设备，严格控制实验条件，并遵循标准化操作程序。同时，应定期对标准蛋白进行检测，以确保标准曲线的准确性。

实验四 SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳测蛋白质分子量

实验四 SDS 聚丙烯酰胺凝胶电泳测蛋白质分子量姓名：mangogolaSDS 聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质分子量的原理是：蛋白质在电泳中的迁移速率取决于其所带电荷、分子大小以及形状等因素，而大多数蛋白质与SDS 按一定比例结合（1:1.4/g:g ），这样使各种蛋白质的SDS-复合物都带上相同密度的负电荷，而且形状为短轴相同的雪茄烟形。

由此蛋白质分子的电泳迁移率仅取决于其分子量，在特定凝胶浓度下，一定范围内的蛋白质分子量对数与迁移率呈直线关系，选择分子量范围和性质与待测样品相近的蛋白质作标准蛋白，与样品同时电泳计算得到标准曲线，并根据待测样品的相对迁移率在标准曲线上查出其分子量。

一．实验过程1.凝胶工作液的配制2.灌制分离胶将制胶玻璃板清洗安装紧密后，插入制孔器，在距制孔器下端1cm 处做一标记，取下制孔器将分离胶溶液加入两块玻璃板之间至标记处。

然后立即用注射器向凝胶液面轻轻铺上一层厚约0.5cm 的dd 水，目的是使凝胶面平整，放置待其聚合凝固。

3.灌制浓缩胶将分离胶上的双蒸水用注射器取出并用滤纸吸干，放入制孔器，用滴管灌入浓缩胶至玻璃板顶端待其聚合凝固。

4.待测样品的制备取0.1ml 透析除盐后的样品稀释液（浓度在0.2mg/ml 左右），加入0.1ml 样品溶解液，混匀后沸水浴5min ，冷却。

（沸水浴的目的是使蛋白质变性成肽链，便于与SDS 结合，甘油可以增加蛋白质的比重，便于沉降到加样孔底部，不易飘散） 5.加样和电泳将电极缓冲液注入缓冲液槽，然后轻轻拔出制孔器，加样后连接电泳仪，记录每个加样孔的样品类型及上样量。

浓缩胶使用50V 恒压，分离胶使用100V 恒压。

浓缩胶浓度4%，交联度2.7%[Acr （30%）：Bis （0.8%）]溶液0.67ml dd 水3.05ml0.5M pH6.8 Tris-Hcl （0.4%SDS ）溶液 1.25mlTEMED （原液）6ul将以上成分加入小烧杯中轻轻摇匀，加入10%的硫代硫酸铵0.026ml ，摇匀后灌胶。

sds聚丙烯酰胺凝胶电泳实验报告

sds聚丙烯酰胺凝胶电泳实验报告SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳实验报告。

实验目的：本实验旨在通过SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳技术对蛋白质进行分离和分析，从而了解蛋白质的分子量和含量。

实验原理：SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳是一种常用的蛋白质分离技术，它利用SDS（十二烷基硫酸钠）对蛋白质进行线性解离，使蛋白质呈现负电荷，并且使蛋白质的分子量与迁移速率成线性关系。

通过凝胶电泳，可以将蛋白质按照其分子量大小进行分离，从而得到蛋白质的分子量和含量信息。

实验步骤：1. 制备凝胶，首先制备聚丙烯酰胺凝胶，将蛋白质样品加入样品缓冲液中，并加入SDS蛋白质变性剂进行变性处理。

2. 蛋白质样品加载，将处理后的蛋白质样品加载到凝胶孔中。

3. 电泳分离，将凝胶置于电泳槽中，加入电泳缓冲液，施加电场进行电泳分离。

4. 凝胶染色，电泳结束后，将凝胶进行染色，观察蛋白质条带。

实验结果：经过SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分离，观察到蛋白质在凝胶上呈现出不同的条带，根据条带的位置和密度可以初步判断蛋白质的分子量和含量。

通过实验数据的分析，我们可以得到蛋白质的分子量和相对含量信息。

实验结论：通过本次实验，我们成功利用SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳技术对蛋白质进行了分离和分析，得到了蛋白质的分子量和含量信息。

这些数据对于进一步研究蛋白质功能和结构具有重要意义。

实验总结：SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳是一种简单、快速、准确的蛋白质分离技术，广泛应用于生物化学和分子生物学领域。

通过本次实验，我们对该技术有了更深入的了解，并且掌握了实验操作的关键步骤和注意事项。

希望通过今后的实验实践，能够进一步提高实验技能，为科研工作打下坚实的基础。