消臌软坚丸对肝硬化大鼠肝组织病理学和转化生长因子_的影响_戚忠玺

消臌软坚丸对肝硬化大鼠肝组织病理学和转化生长因子_的影响_戚忠玺
消臌软坚丸对肝硬化大鼠肝组织病理学和转化生长因子_的影响_戚忠玺

第11卷 第5期 2009 年 5 月

辽宁中医药大学学报

JOURNAL OF LIAONING UNIVERSITY OF TCM

Vol. 11No. 5

May,2009

肝硬化是临床常见的慢性进行性肝脏疾病,是由一种或多种病因长期或反复作用造成的弥散性肝脏损害,肝硬化腹水是肝硬化门脉高压征的主要临床表现。消臌软坚丸是我院治疗肝硬化腹水的制剂,临床研究显示对腹水具有良好效果[1]。为了进一步阐明其作用机理,本实验采用复合因素造模法复制肝硬化大鼠模型,然后给予药物治疗,以观察消臌软坚丸对肝硬化大鼠肝组织病理学和血清和肝组织转化生长因子-α(TGF-α)的影响,以揭示其延缓肝硬化进程,治疗肝硬化腹水的作用机理。

1 材料与方法

1.1材料

1.1.1 实验动物 健康SD大鼠60只,体重(180±20)g,雌雄各半,由河南安阳华兴实验动物养殖场提供,动物合格证号:SCXK(豫)2004-0007。

1.1.2 实验用药 消臌软坚丸由河北中医肝病医院制剂室制备(该院自拟方,由黄芪30g,车前子30g,葶苈子15g,沉香6g,鳖甲30g等组成,课题组监制)。实验时用蒸馏水将其配制成所需浓度的混悬液。1.1.3 复方鳖甲软肝片(阳性药对照组)由内蒙

古福瑞制药有限责任公司提供,国药准字(2005)Z-71号。实验时用蒸馏水将其配制成所需浓度的混悬液。

1.1.4 主要试剂 转化生长因子-α(TGF-α)试剂盒(批号:20051202),购自解放军总医院科技开发中心放免所。

1.1.5 主要仪器722型光栅分光光度计,上海第三分析仪器厂;1-15K型高速冷冻离心机,美国Sigma公司;HH-W21-600型电热恒温水箱,天津泰斯特仪器有限公司;LEICA RM2125型切片机,德国LEICA公司;TDL-5-A型离心机,上海安亭科学仪器厂。

1.2方法

1.2.1 模型制备60只大鼠均适应性喂养1周,随机分为造模组48只和正常组12只。参照文献[2],48只造模组大鼠首次予皮下注射40% 四氯化碳(CCl4)花生油溶液0.5mL/100 g体重,以后每周2次皮下注射0.3mL/100g,共9周。造模开始前2 周均以20%猪油,0.5%胆固醇,79.5%玉米面混合饲料(由河北医科大学动物实验中心加工)喂养,第3~9 周

消臌软坚丸对肝硬化大鼠肝组织病理学和转化生长因子-α的影响

戚忠玺1,耿兰书1,耿束华1,王少贤2,魏 萱2

(1.河北中医肝病医院,河北 正定 050800;2.河北医科大学中医学院,河北 石家庄 050091)摘 要:目的:观察消臌软坚丸对肝硬化大鼠肝组织病理学和转化生长因子-α(TGF-α)的影响。方法:采用复合因素造模法复制肝硬化大鼠模型,以复方鳖甲软肝片为对照,观察消臌软坚丸对大鼠肝脏病理形态学和TGF-α的影响。结果:与正常组比较,模型组大鼠肝间质广泛纤维组织增生,将正常肝小叶分割成大小不等的肝细胞团(即假小叶形成),血清和肝组织TGF-α含量明显升高(P<0.05或P<0.01)。与模型组比较,高、低剂量组和对照组肝小叶结构亦受损,少量纤维组织增生,但未见形成间隔。血清和肝组织TGF-α含量明显下降(P<0.05或P<0.01)。结论:消臌软坚丸能显著改善肝硬化大鼠的肝脏病理组织学损害,同时可降低血清和肝组织TGF-α水平,具有显著的抗肝脏纤维化,阻断肝硬化进程的作用,对腹水的产生与消退也产生积极的影响。

关键词:消臌软坚丸;肝硬化;病理形态学;转化生长因子

中图分类号:R285.5文献标识码:A文章编号:1673-842X (2009)05- 0193- 02

Effect of Xiaoguruanjian Pill on Hepatic Pathological Histology and

Blood Transforming Growth Factor of Hepatic Cirrhosis Rat

QI Zhong-xi1,GENG Lan-shu1,GENG Shu-hua1,WANG Shao-xian2,WEI Xuan2

(1.HeBei Hepatopathy Hospital of TCM,Zhengding 050800,Hebei,China;

2.College of TCM,Hebei Medical University, Shijiazhuang 050091,Hebei,China)

Abstract:Objective: To observe the effect of Xiaoguruanjian pill on liver Cirrhosis rats blood and liver transforming growth factor-α(TGF-α). Methods: reproduced the rats models of cirrhosis by adopting complex factors, compared with Fufangbiejiaruanganpian, the effect of Xiaoguruanjian Pill on hepatic pathology and TGF-αwere observed. Results: Compared with normal group, extensive fibrous tissue hyperplasia can be seen in hepatic mesenchyme of the model group, the liver pseudolobule formed,the contents of TGF-αin serum and liver were increased(P<0.01 or P<0.05).Compared with model group, there were a few fibrous tissue hyperplasia in high-dosage group, low-dosage group and control group, no fibrotic septa formed. the contents of TGF-αin serum and liver were decreased(P<0.01 or P<0.05).

Conclusion: Xiaoguruanjian pill could obviously improve the cirrhosis rat pathology, decrease the contents of TGF-αin serum and liver, decrease or restrain the happening or development of ascites.

Key words:Xiaoguruanjian pill;hepatic cirrhosis; pathology; transforming growth factor-α

收稿日期:2008-12-21

基金项目:河北省中医药管理局科学研究计划课题(2007150)

作者简介:戚忠玺(1972-),男,山东威海人,副主任医师,硕士,从事各种急慢性肝病的中西医研究。

193

辽宁中医药大学学报11卷

以0.5%胆固醇和 99.5% 玉米面混合饲料(由河北医科大学动物实验中心加工)喂养。整个造模期间以 30%乙醇作为饮料让大鼠自由饮用。正常组则以正常饲料和纯净水喂养。实验9周末确认造模成功后予以分组治疗。

1.2.2 分组与治疗 正常组随机抽取9只大鼠,将造模成功大鼠随机分为4组,每组随机抽取9只,雌雄各半。给药情况:(1)正常对照组(简称“正常组”):灌服生理盐水10mL/kg体重,每日1次;(2)模型对照组(简称“模型组”):灌服生理盐水10mL/kg体重,每日1次;(3)消臌软坚丸低剂量组(简称“低剂量组”,药量相当于临床成人用量的7.5倍):每日用药剂量为1.6g/kg体重,每日1次灌胃;(4)消臌软坚丸高剂量组(简称“高剂量组”,药量相当于临床成人用量的15倍):每日用药剂量为3.2g/kg体重,每日1次灌胃;(5)阳性药对照组(简称“对照组”):用复方鳖甲软肝片的混悬液灌胃。用药剂量为0.6g/kg体重(药量相当于临床成人用量的15倍),每日1次灌胃,每次用药体积均按1mL/100g体重计算,共4周。

1.2.3 标本制备 治疗4周末,于最后一次给药禁食12h后用10%水合氯醛(0.2mL/kg)麻醉大鼠,腹部正中切口,腹主动脉取血,立即以4℃ 3500r/min 离心5min,分离血清,密封,-20℃冻存待检;大鼠取血后,迅速剖取肝脏,并在肝脏最大叶距边缘约0.5cm处取1cm×1cm×1cm大小组织块,置于4%多聚甲醛溶液固定24h,逐级酒精脱水、透明、浸蜡、包埋、切片,采用HE染色法,光镜下观察肝硬化大鼠肝组织病理形态学变化;剩余肝组织匀浆,离心提取上清,-20℃冻存待检。分别依据试剂盒要求测定血清和肝组织TGF-α含量。

1.2.4 统计学处理 数据采用均数±标准差(x—±s)表示,运用SPSS for windows 11.5统计软件,用方差分析、Student- Newman-Keul检验。显著性差异水平以0.05、0.01为标准。

2 结 果

2.1各组大鼠病理形态学的变化

正常组大鼠肝脏柔软,红润,被膜光滑。肝组织结构完整、清晰,肝小叶结构正常,肝细胞排列规则成索状,在中央静脉周围呈放射状分布。肝血窦结构清晰,无异常改变。肝细胞呈多边形,胞浆均匀,细胞核形态正常。模型组大鼠肝脏体积有所增大,质地变硬,色黯红,切面可见多个小结节。肝小叶正常结构消失,间质内弥漫性淋巴细胞浸润。肝细胞体积明显增大,局部肝细胞出现严重的脂肪变性,可见到再生的肝细胞(双核)。肝间质广泛纤维组织增生,将正常肝小叶分割成大小不等的肝细胞团(即假小叶形成)。高、低剂量组和对照组大鼠肝脏体积、质地、色泽与模型组比较均明显改善,接近正常组。肝小叶结构受损,少数肝细胞气泡样变性但仅偶见坏死细胞,较少炎性细胞浸润,少量纤维组织增生,但未见形成间隔。

2.2各组大鼠血清和肝组织TGF-α含量变化

见表1。

与正常组比较,模型组大鼠血清和肝组织TGF-α含量明显升高(P<0.01)。与模型组比较,高、低剂量组和对照组血清和肝组织TGF-α含量明显下降(P<0.05或P<0.01)。

表1 各组大鼠血清和肝组织TGF-α

含量变化(pg/mL,x—±s)

组别n血清TGF-α匀浆TGF-α

正常组9 7.980±2.683△ 16.254±6.050△△

模型组9 11.049±2.020 25.045±5.689

对照组9 8.216±2.757△ 19.009±8.321△

高剂量组9 7.992±3.108△ 16.858±4.296△△低剂量组9 8.149±2.998△ 18.494±6.008△注:与模型组比较,△P<0.05,△△P<0.01。

3 讨 论

肝硬化腹水是临床上常见的危重病证。多由感受湿热疫毒或酒毒虫蛊,复因酒食不节,情志失畅,而致肝脾失调、气滞血瘀、水液停聚,其中尤以脾虚血瘀,水湿内停为要,故消臌软坚丸突出益气健脾,活血利水,方中鳖甲咸寒入肝脾血分,软坚散结,穿山甲咸能软坚,性善走窜,可透达经络直达病所,二者合用共为通络软坚、消癥化积之主药,丹参“专入血分”,泽兰芳香悦脾、疏利悦肝,黄芪益气健脾,“脾健则积自消”,配白术培固中州以制水之中源;葶苈子为肺家气药,宣肺利水,以开水之上源;沉香性温气香,降气平逆,兼纳肾气以理下焦;厚朴苦能下气,辛能散结,温能燥湿,兼理中下二焦之气滞,大腹皮下气宽中,行水消肿;佐以大剂甘淡渗利之品如茯苓皮、车前子、泽泻等以引湿邪外走。

TGF-α是粘附在细胞膜上的多肽,其高表达最常见于肿瘤系细胞,如肝癌、肺癌、胃癌等多种肿瘤组织中TGF-α都有高度表达。在正常肝组织中仅见TGF-α微量的表达,而肝硬化时TGF-α血清水平是否升高,国内文献报道不一[3-6]。

本实验结果表明,伴随着大鼠肝组织病理形态学变化,模型组大鼠血清和肝组织TGF-α含量较正常组有明显的升高,说明了TGF-α作为肝细胞分裂与增殖的促进因子,对于促进肝再生有重要作用[7-8]。经过用药治疗后,消臌软坚丸高、低剂量组和对照组均能明显降低TGF-α含量。说明消臌软坚丸能显著改善肝硬化大鼠的肝脏病理组织学损害,具有促进肝脏的修复与再生,抑制胶原纤维合成、沉积,减轻肝损伤的作用,同时通过降低血清和肝组织TGF-α含量发挥抗肝脏纤维化,阻断肝硬化进程的作用,对腹水的产生与消退也产生积极的影响。◆

参考文献

[ 1 ] 戚忠玺,耿兰书,贡桂英,等.消臌软坚丸治疗肝炎肝硬化腹水 88例的临床观察[ J ] .中医杂志,2004,45 ( 5 ):347-349.

[ 2 ] 韩德五,马学慧,赵元昌.肝硬化动物模型的研究[ J ] .山西医 药杂志,1979 ( 4 ):1-5.

[ 3 ] 徐军,罗南萍,孙文杰,等.肝癌患者血清转化生长因子α检测 的临床意义[ J ] .中国肿瘤临床,2000,27 ( 3 ):196-197.

[ 4 ] 刘东屏,刘峥艳,郑有贵,等.肝硬化合并原发性肝癌血清转化 生长因子-α测定及临床意义[ J ] .中国医科大学学报,2000, 2 ( 2 ):125,142.

[ 5 ] 叶晓光,罗润齐.各型肝病患者外周血转化生长因子-α水平 及其临床意义[ J ] .现代临床医学生物工程学杂志,1999,5 ( 4 ): 269-270.

[ 6 ] 李根武,伍灵达.血清转化生长因子-α的测定对肝硬化及其 恶变的价值[ J ] .中国现代医学杂志,2001,11 ( 7 ):47,53. [ 7 ] 杨牧祥,张一昕,王少贤,等.柔肝消癥饮对肝硬化大鼠血清和 肝组织IL-1β、IL-6和TNF-α的影响[ J ] .中华中医药杂志, 2007,22 ( 10 ):729-731.

[ 8 ] 孙自勤,王要军.转化生长因子α及β与肝细胞再生不能有 效发挥肝再生作用[ J ] .临床肝病杂志,1999,11 ( 1 ):49.

194

肝硬化大鼠肝脏组织病理学及血流动力学变化档

肝硬化大鼠肝脏组织病理学及血流动力学变化 作者:乔伟1,2,鲁建国1,王青1,李鹏超1 作者单位:(1. 第四军医大学唐都医院普外科,陕西西安710038;2. 西安市铁路中心医院普外科,陕西西安710054) 【摘要】目的通过建立大鼠肝硬化模型,了解肝硬化形成过程中门静脉血流动力学的变化。 方法雄性健康SD大鼠100只随机等分为5组:4个实验组(80只,每组20只)采用腹腔及皮下注射四氯化碳(CCl4),同时饮用酒精溶液进行诱导;对照组(20只)给予普通饮水和饲料。 分别于2、4、7、10周后观察肝脏的组织病理学改变及门静脉血流动力学变化。结果肝硬化过程中肝细胞经历变性、坏死、纤维组织增生及假小叶的形成;血流动力学检测指标发生 相应变化,平均动脉压(MAP)表现为逐渐下降,门静脉压力(PVP)、下腔静脉压(IVCP)及门静脉阻力(PVR)表现为逐渐升高,门静脉血流量(PVF)表现为先升高后下降,内脏血管阻力 (SVR)表现为先下降后升高。结论本方法可建立稳定的肝硬化门脉高压症模型,且适于大批量制作;在大鼠肝硬化门脉高压形成过程中门静脉血流动力学及肝组织病理学均发生了变 化,可用于肝硬化门脉高压症方面的相关研究。 【关键词】肝硬化;门脉高压;组织病理学;血流动力学;大鼠 Histopathological and hemodynamic changes of rats with liver cirrhosisQIAO Wei1,2, LU Jian guo1, WANG Qing1, LI Peng chao1 (1. Department of General Surgery, Tangdu Hospital, Fourth Military Medical University, Xi an 710038; 2. Department of General Surgery, Xi an Railway Center Hospital, Xi an 710054, China)ABSTRACT: Objective To investigate the hemodynamic changes during the progression of portal hypertension (PHT) by establishing a model of liver cirrhosis in rats. Methods Totally 100 healthy male SD rats were assigned to 5 groups randomly (1 control group and 4 experimental groups with 20 rats in each group). Animal model of cirrhosis was established by subcutaneous injection of carbon tetrachloride (CCl4) and drinking alcohol. Rats in control group were given water and forage. The changes in the portal hemodynamics during the pathological process of liver tissues were observed after 2, 4, 7 and 10 weeks. Results During the formation of experimental cirrhosis, the hepatocytes of rats underwent 4 processes: degeneration, necrosis, fibrosis and pseudolobular proliferation. The hemodynamic changes were observed: the mean arterial pressure declined gradually after injection, but the portal venous pressure, the inferior vena cava pressure and the portal vascular resistance increased slowly. The portal venous flow reduced after ascending whereas the splanchnic vascular resistance increased after descending. Conclusion This method can establish a

正常肝脏与肝脏胆管病理组织切片彩色图谱大全

正常肝脏与肝脏胆管病理组织切片彩色图谱大全

肝小叶( hepatic lobule)是肝的基本结构单位,呈多角棱柱体,长约2mm,宽约1mm, 人的肝小叶间结缔组织很少,相邻肝小叶常连成-片,分界不清(图15-7,图15-8)。肝小叶中央有一条沿其长轴走行的中央静脉( central vein) ,周園是大致呈放射状排列的肝索和肝血窦。

门管区:位相邻肝小叶间,为三角形或椭圆形结缔组织小区,内含伴行小叶间动脉、小叶间静脉和小叶间胆管。有时在肝小叶间的结缔组织中可见一条单独的静脉即小叶下静脉。小叶间胆管由单层立方或柱状上皮围成。

图13-10肝门管区图示壁厚腔小的是小叶间动脉(※)、 壁薄腔大的是小叶间静脉(★),单层立方上皮构成,核深蓝色圆形的是小叶间胆管(↑)。 天马波波

胆小管( bile canaliculus) 是相邻两个肝细胞之间局部胞膜凹陷形成的微细管道,在肝板内连接成网。靠近胆小管的相邻肝细胞膜形成由紧密连接、桥粒等组成的连接复合体,可封闭胆小管周围的细胞间隙,防止胆汁外溢至细胞间或窦周隙。当肝细胞发生变性、坏死或胆道堵塞而内压增大时,胆小管的正常结构被破坏,胆汁则溢人窦周隙,继而进人肝血窦 ,导致机体出现黄疸。 相邻肝小叶之间呈三角形或椭圆形的结缔组织小区,称门管区( portal area) , 每个肝小叶周围有3 ~4个门管区。门管区内有小叶间静脉、小叶间动脉和小叶间胆管。小叶间静脉是门静脉的分支,管腔较大而不规则,管壁薄;小叶间动脉是肝动脉的分支,管腔小,管壁相对较厚。小叶间胆管管壁为单层立方上皮,它们向肝门方向汇集,最后形成左、右肝管出肝。在非门管区的小叶间结缔组织中,还有单独走行的小叶下静脉,由中央静脉汇集形成,它们在肝门部汇集为肝静脉。 胆小管

大鼠肝脏组织病理切片的制作和 HE 染色

大鼠肝脏组织病理切片的制作和HE 染色 步骤如下: (一)固定与修块 取组织块放入Bouin氏液中,组织块的直径应小于7mm。6小时左右后用双面 刀片将组织块修剪成3-5mm3大小。 (二)脱水与透明 1.75%乙醇50分钟 2.85%乙醇50分钟 3.95%乙醇(I)30分钟 4.95%乙醇(II)30分钟 5.100%乙醇(I)30分钟 6.100%乙醇(II)30分钟 7 1/2 二甲苯(乙醇与二甲苯等体积)20分钟 8.二甲苯(I)20分钟 9.二甲苯(II)10分钟(可依据透明效果而定) 若脱水不好,二甲苯溶液颜色会变混浊。在每一步骤之后,要充分滤干组织 块,一般用筒纸吸干组织块上的液体,以免影响其他液体的浓度,但也要防止组织块干燥。全过程约需要5h。 (三)浸蜡、包埋与修蜡块 1.浸蜡:将60℃恒温箱打开,使石蜡充分溶解,待脱水与透明结束后,将 组织块转入石蜡里,放置于60℃恒温箱120分钟。 2.包埋:将60℃的石蜡倒入纸盒内,然后用小镊子将各组织块按一定的顺 序排列好,使切面朝下。不同组别的同一组织包埋于一个蜡块中,以保证切片和染色条件相同。为防止倒入纸盒内的石蜡底部立刻凝固,可将纸盒置于一玻璃板上(或大培养皿内),然后将玻璃板置于80-90℃左右热水上,包埋时蜡盒底部 要放平,做蜡块的蜡要反复冻融较好。 3.修蜡块:待纸盒内蜡凝固后,用刀片将其修成梯形,组织块与蜡块边缘 之间的距离不得小于2mm。 (四)切片 在载玻片上擦少量甘油蛋白。可滴半滴甘油蛋白于载玻片上,用手指充分抹 匀,呈半干状为佳。切片厚约4-8μm,将切片在55℃左右水浴中展开,展开程度以带黄颜色的组织完全摊平为准。用涂有甘油蛋白的载玻片从水浴中捞取切片,放入37℃烘箱中过夜。每个组织块捞片2张。过夜后,将载玻片置于玻片架上,进行下面的实验。 (五)脱蜡、染色与脱水 倾斜玻片架,将玻片架和载玻片下缘的试剂用筒纸吸干,减轻对其他试剂浓 度的影响。全过程约需要60分钟。 1.脱蜡 (1)二甲苯(I)15分钟 (2)二甲苯(II)15分钟 (3)100%乙醇2分钟 (4)95%乙醇(I)1分钟 (5)95%乙醇(II)1分钟 (6)蒸馏水浸洗1分钟

消臌软坚丸对肝硬化大鼠肝组织病理学和转化生长因子_的影响_戚忠玺

第11卷 第5期 2009 年 5 月 辽宁中医药大学学报 JOURNAL OF LIAONING UNIVERSITY OF TCM Vol. 11No. 5 May,2009 肝硬化是临床常见的慢性进行性肝脏疾病,是由一种或多种病因长期或反复作用造成的弥散性肝脏损害,肝硬化腹水是肝硬化门脉高压征的主要临床表现。消臌软坚丸是我院治疗肝硬化腹水的制剂,临床研究显示对腹水具有良好效果[1]。为了进一步阐明其作用机理,本实验采用复合因素造模法复制肝硬化大鼠模型,然后给予药物治疗,以观察消臌软坚丸对肝硬化大鼠肝组织病理学和血清和肝组织转化生长因子-α(TGF-α)的影响,以揭示其延缓肝硬化进程,治疗肝硬化腹水的作用机理。 1 材料与方法 1.1材料 1.1.1 实验动物 健康SD大鼠60只,体重(180±20)g,雌雄各半,由河南安阳华兴实验动物养殖场提供,动物合格证号:SCXK(豫)2004-0007。 1.1.2 实验用药 消臌软坚丸由河北中医肝病医院制剂室制备(该院自拟方,由黄芪30g,车前子30g,葶苈子15g,沉香6g,鳖甲30g等组成,课题组监制)。实验时用蒸馏水将其配制成所需浓度的混悬液。1.1.3 复方鳖甲软肝片(阳性药对照组)由内蒙 古福瑞制药有限责任公司提供,国药准字(2005)Z-71号。实验时用蒸馏水将其配制成所需浓度的混悬液。 1.1.4 主要试剂 转化生长因子-α(TGF-α)试剂盒(批号:20051202),购自解放军总医院科技开发中心放免所。 1.1.5 主要仪器722型光栅分光光度计,上海第三分析仪器厂;1-15K型高速冷冻离心机,美国Sigma公司;HH-W21-600型电热恒温水箱,天津泰斯特仪器有限公司;LEICA RM2125型切片机,德国LEICA公司;TDL-5-A型离心机,上海安亭科学仪器厂。 1.2方法 1.2.1 模型制备60只大鼠均适应性喂养1周,随机分为造模组48只和正常组12只。参照文献[2],48只造模组大鼠首次予皮下注射40% 四氯化碳(CCl4)花生油溶液0.5mL/100 g体重,以后每周2次皮下注射0.3mL/100g,共9周。造模开始前2 周均以20%猪油,0.5%胆固醇,79.5%玉米面混合饲料(由河北医科大学动物实验中心加工)喂养,第3~9 周 消臌软坚丸对肝硬化大鼠肝组织病理学和转化生长因子-α的影响 戚忠玺1,耿兰书1,耿束华1,王少贤2,魏 萱2 (1.河北中医肝病医院,河北 正定 050800;2.河北医科大学中医学院,河北 石家庄 050091)摘 要:目的:观察消臌软坚丸对肝硬化大鼠肝组织病理学和转化生长因子-α(TGF-α)的影响。方法:采用复合因素造模法复制肝硬化大鼠模型,以复方鳖甲软肝片为对照,观察消臌软坚丸对大鼠肝脏病理形态学和TGF-α的影响。结果:与正常组比较,模型组大鼠肝间质广泛纤维组织增生,将正常肝小叶分割成大小不等的肝细胞团(即假小叶形成),血清和肝组织TGF-α含量明显升高(P<0.05或P<0.01)。与模型组比较,高、低剂量组和对照组肝小叶结构亦受损,少量纤维组织增生,但未见形成间隔。血清和肝组织TGF-α含量明显下降(P<0.05或P<0.01)。结论:消臌软坚丸能显著改善肝硬化大鼠的肝脏病理组织学损害,同时可降低血清和肝组织TGF-α水平,具有显著的抗肝脏纤维化,阻断肝硬化进程的作用,对腹水的产生与消退也产生积极的影响。 关键词:消臌软坚丸;肝硬化;病理形态学;转化生长因子 中图分类号:R285.5文献标识码:A文章编号:1673-842X (2009)05- 0193- 02 Effect of Xiaoguruanjian Pill on Hepatic Pathological Histology and Blood Transforming Growth Factor of Hepatic Cirrhosis Rat QI Zhong-xi1,GENG Lan-shu1,GENG Shu-hua1,WANG Shao-xian2,WEI Xuan2 (1.HeBei Hepatopathy Hospital of TCM,Zhengding 050800,Hebei,China; 2.College of TCM,Hebei Medical University, Shijiazhuang 050091,Hebei,China) Abstract:Objective: To observe the effect of Xiaoguruanjian pill on liver Cirrhosis rats blood and liver transforming growth factor-α(TGF-α). Methods: reproduced the rats models of cirrhosis by adopting complex factors, compared with Fufangbiejiaruanganpian, the effect of Xiaoguruanjian Pill on hepatic pathology and TGF-αwere observed. Results: Compared with normal group, extensive fibrous tissue hyperplasia can be seen in hepatic mesenchyme of the model group, the liver pseudolobule formed,the contents of TGF-αin serum and liver were increased(P<0.01 or P<0.05).Compared with model group, there were a few fibrous tissue hyperplasia in high-dosage group, low-dosage group and control group, no fibrotic septa formed. the contents of TGF-αin serum and liver were decreased(P<0.01 or P<0.05). Conclusion: Xiaoguruanjian pill could obviously improve the cirrhosis rat pathology, decrease the contents of TGF-αin serum and liver, decrease or restrain the happening or development of ascites. Key words:Xiaoguruanjian pill;hepatic cirrhosis; pathology; transforming growth factor-α 收稿日期:2008-12-21 基金项目:河北省中医药管理局科学研究计划课题(2007150) 作者简介:戚忠玺(1972-),男,山东威海人,副主任医师,硕士,从事各种急慢性肝病的中西医研究。 193

大鼠肝脏组织病理切片的制作和 HE 染色

大鼠肝脏组织病理切片的制作和HE染色步骤如下: (一)固定与修块 取组织块放入Bouin氏液中,组织块的直径应小于7mm。6小时左右后用双面 刀片将组织块修剪成3-5mm3大小。 (二)脱水与透明 1.75%乙醇50分钟 2.85%乙醇50分钟 3.95%乙醇(I)30分钟 4.95%乙醇(II)30分钟 5.100%乙醇(I)30分钟 6.100%乙醇(II)30分钟 7 1/2二甲苯(乙醇与二甲苯等体积)20分钟 8.二甲苯(I)20分钟 9.二甲苯(II)10分钟(可依据透明效果而定) 若脱水不好,二甲苯溶液颜色会变混浊。在每一步骤之后,要充分滤干组织 块,一般用筒纸吸干组织块上的液体,以免影响其他液体的浓度,但也要防止组织块干燥。全过程约需要5h。 (三)浸蜡、包埋与修蜡块 1.浸蜡:

将60℃恒温箱打开,使石蜡充分溶解,待脱水与透明结束后,将 组织块转入石蜡里,放置于60℃恒温箱120分钟。 2.包埋: 将60℃的石蜡倒入纸盒内,然后用小镊子将各组织块按一定的顺 序排列好,使切面朝下。不同组别的同一组织包埋于一个蜡块中,以保证切片和染色条件相同。为防止倒入纸盒内的石蜡底部立刻凝固,可将纸盒置于一玻璃板上(或大培养皿内),然后将玻璃板置于80-90℃左右热水上,包埋时蜡盒底部 要放平,做蜡块的蜡要反复冻融较好。 3.修蜡块: 待纸盒内蜡凝固后,用刀片将其修成梯形,组织块与蜡块边缘 之间的距离不得小于2mm。 (四)切片 在载玻片上擦少量甘油蛋白。可滴半滴甘油蛋白于载玻片上,用手指充分抹 匀,呈半干状为佳。切片厚约4-8μm,将切片在55℃左右水浴中展开,展开程度以带黄颜色的组织完全摊平为准。用涂有甘油蛋白的载玻片从水浴中捞取切片,放入37℃烘箱中过夜。每个组织块捞片2张。过夜后,将载玻片置于玻片架上,进行下面的实验。 (五)脱蜡、染色与脱水 倾斜玻片架,将玻片架和载玻片下缘的试剂用筒纸吸干,减轻对其他试剂浓 度的影响。全过程约需要60分钟。

四氯化碳综合法制备大鼠肝硬化模型_叶春华

·论著·四氯化碳综合法制备大鼠肝硬化模型 叶春华 刘浔阳 (中南大学湘雅三医院普外科,湖南 长沙 410013) [摘要]【目的】探讨建立一种理想的大鼠肝硬化模型的复制方法并加以评价,为下一步探索肝硬化门脉 高压症治疗方法提供可靠、稳定的模型动物。【方法】90只雄性SD大鼠随机分为两组:实验组(70只)采用四 氯化碳(CCl4)+苯巴比妥钠+食用白酒进行诱导,诱导期间CCl4浓度在一定范围内逐步增加,并用食用白酒 替代医用乙醇溶液;对照组(20只)给与普通饮水和饲料,频度及剂量同实验组。同时采用一系列的检查方 法加以评估。【结果】实验组70只大鼠造模结束时,死亡9只,死亡率12.86%。实验结束时,按照成模标准, 造模成功大鼠共61只,均可观察到肝硬化结节及镜下假小叶形成,成模率87.14%。实验组门静脉压力比对 照组明显增高(P<0.05);血清总胆红素、谷丙转氨酶及谷草转氨酶较正常对照组明显升高(P<0.05),而 血清白蛋白较之正常对照组明显降低(P<0.05)。对照组20只全部存活。【结论】该方法可形成稳定的肝 硬化门脉高压症模型,可用于肝硬化门脉高压症方面的相关研究。此模型制作周期短(仅需9周),成模率高, 死亡率低,具有简便、快捷、高效的优点,适于大批量制作。 [关键词] 肝硬化,实验性; 疾病模型,动物; 大鼠; 四氯化碳 Study on Method of Inducing Hepatic Cirrhosis Model in Rats by Carbon Tetrachloride  Y E Chun-hua, LIU X un-yang(Department o f General Surgery,the T hird X iangy a Hosp ital,Central South University,Changsha,410013,China) [Abstract]【Objective】T o dev elo p and evalua te an ideal means to induce cir rhotic model in rats for nex t study o n live r cir rhosis with po r tal hypertension trea tment.【M ethods】N inety male SD rats we re randomly di- vided into two gr oups,T he e xperiment g roup(n=70)wa s treated with CCl4,PBS and ea table alcoho l and the co ncentra tion of CCl4and eatable alcohol were increased stage by stag e in a ce rtain range during the ex peri- ment.T he co nt rol g roup(n=20)wa s trea ted w ith common drinking w ater and animal feeds,the f requency and do se w ere the same a s the experime nt g ro up,meanwhile evalua ted by a se ries of check methods.【Results】 Af te r being induced w ith above means,the ra t mor tality of the ex periment gr oup w as12.86%,and the fo rma- tion rate of liver cir rhosis false lobe was87.14%.T he po rtal v eno us pressure of the e xperiment g roup w as higher than the co ntrol g ro up(<0.05),ST B,G PT,G O T we re higher than the co ntro l g roup,but SA B de- crea sed(P<0.05).T he contro l g r oup w as all surv iv al.【Co nclusio n】T he pro cedure is fair ly stable and relia- ble,the model is useful for resea rch in liv er cir rhosis w ith po rtal hy pe rtension.T he cy cle time of inducing cir- rhosis model is shor t the mor ta lity is low. [Key words] liver cir rho sis,ex pe rimental; disesase models,animal; rats; carbon tetr achloride [中图分类号] R575.2 [文献标识码] A [文章编号] 1671-7171(2005)05-0619-04 由于病毒性肝炎、酒精性肝病等原因造成的慢性肝病和肝硬化患者有增多的趋势,近十年来有关门脉高压症的研究成为消化学界的热点。本实验通 [作者简介] 叶春华(1967-),男,湖南安乡人,博士,主治医师,主要从事肝胆外科临床工作。 [收稿日期] 2005-04-01过腹腔内注射四氯化碳(CCl4)加饮用苯巴比妥钠和食用酒精,探讨建立一种理想的肝硬化模型的方法。1 材料与方法 1.1 材料 1.1.1 实验动物 90只Sprag ue-Daw ley鼠(简称SD大鼠),全部雄性,体重180~220g,普通大鼠饲

实验大鼠取材方案

实验大鼠取材方案 [取材内容] 1.取大鼠静脉血,分离血浆、血清,-80℃保存。 2.取大鼠门静脉血,分离血清,-80℃保存。 3.取大鼠甲状腺组织,制备甲状腺电镜观察标本,其余组织液氮冰冻保存备用。 4.取大鼠胸腺组织,制备胸腺组织电镜观察标本、免疫组化观察标本,其余组织液氮冰冻 保存备用。 5.取大鼠肺组织,制备肺组织电镜观察标本、免疫组化观察标本,其余组织分装液氮冰冻 保存备用。 6.取大鼠肝脏组织,制备肝脏组织电镜观察标本、免疫组化观察标本,其余组织分装液氮 冰冻保存备用。 7.取大鼠胰腺组织,制备胰腺组织电镜观察标本、免疫组化观察标本,其余组织分装液氮 冰冻保存备用。 8.取大鼠肠系膜淋巴结组织,制备肠系膜淋巴结免疫组化观察标本,其余组织液氮冰冻保 存。 9.取大鼠胃部组织,制备胃粘膜组织电镜观察标本、免疫组化观察标本,其余组织分装液 氮冰冻保存备用。 10.取大鼠空肠组织,制备肠道粘膜组织电镜观察标本、免疫组化观察标本,其余组织分装 液氮冰冻保存备用。 11.取大鼠回肠组织,制备肠道粘膜组织电镜观察标本、免疫组化观察标本,其余组织分装 液氮冰冻保存备用。 12.取大鼠肾组织,制备左肾组织电镜观察标本、免疫组化观察标本,右肾组织液氮冰冻保 存备用。 13.取大鼠肾上腺组织,左侧制备肾上腺组织免疫组化观察标本,右侧肾上腺液氮冰冻保存 备用。 14.取大鼠睾丸组织,左侧制备电镜观察标本、免疫组化观察标本,右侧睾丸液氮冰冻保存 备有。 [试剂及药品] 戊巴比妥钠或10%水合氯醛、75%酒精、生理盐水、多聚甲醛或福尔马林液、3%戊二醛磷酸盐缓冲液(PBS0.01mol/LP pH7.4)或4%戊二醛、肝素钠、器械液(器械清洗消毒液) [器材] 备皮刀、解剖台、弯盘、组织剪、眼科剪、手术刀柄、刀片、小号弯式血管钳、蚊式血管钳、眼科镊、无损伤血管夹、聚乙烯管、三通管、丝线、培养皿、天平、一次性离心管(5ml、

银杏叶提取物对大鼠肝硬化的治疗作用及其机制研究

银杏叶提取物对大鼠肝硬化的治疗作用及其机制研究 发表时间:2010-08-20T17:45:18.187Z 来源:《中国医药卫生》杂志2009年第3期供稿作者:高山 [导读] 研究银杏叶提取物(extract of ginkgo biloba,EGb)对大鼠肝硬化的影响并探讨其机制 高山郑州大学第三附属医院药剂科(郑州450052) 【摘要】目的研究银杏叶提取物(extract of ginkgo biloba,EGb)对大鼠肝硬化的影响并探讨其机制。方法用四氯化碳加高脂饮食法造成大鼠肝硬化模型,银杏叶片以20 mg/kg 、15mg/kg、10m g/kg的量给药30天,测定血清总蛋白(T-P)、白蛋白(ALB)、谷丙转氨酶(ALT)、谷草转氨酶(AST)、总胆红素(TBIL)、血清透明质酸(HA)、层粘蛋白(LN)和Ⅲ型前胶原(PCⅢ)的含量,计算白蛋白与球蛋白的比例(A/G)。TUNEL测肝细胞凋亡指数。结果与模型组相比,银杏叶提取物各组能显著降低ALT、AST、TBIL含量,增加白蛋白含量,提高白/球比例,显著降低血清HA、LN和PCⅢ水平;显著降低细胞凋亡指数。并具有剂量依赖性。结论银杏叶提取物对大鼠肝硬化具有保护作用,其机制可能是通过抗肝细胞凋亡来实现的。 【关键词】银杏叶提取物肝硬化肝细胞细胞凋亡 [中图分类号]R931.74 [文献标识码]A [文章编号]1810-5734(2009)03-0004-03 银杏树叶的提取物(extract of ginkgo biloba,EGb)具有扩张血管,调节血脂,抑制血栓形成;改善记忆;清除自由基等多种药理作用。临床用于治疗心脑血管方面的疾病和癌症。已发现银杏叶提取物对肝纤维化、肝癌等具有一定的治疗作用 [1-6],临床上已有银杏叶提取物成功用于治疗失代偿期肝硬化的例子,本文主要研究银杏叶提取物——银杏叶片(每片含总黄酮醇苷9.6mg,萜类内脂2.4mg)对大鼠肝硬化的作用,并进行初步的机制探讨。 1 材料与方法 1.1 试验材料: 实验动物:60只SD大鼠,体重180-220g,购自河南省实验动物中心。动物合格证号:SCXK(豫)2005-0001,动物房温度为 25±2℃,标准大鼠颗粒饲料饲养,自由饮水。 银杏叶片,扬子江药业集团生产,批号08011301。使用时用0.5%的CMC-Na混悬,配成不同浓度。 1. 2 主要试剂及仪器: 四氯化碳(CCl4):郑州化学试剂二厂;羧甲基纤维素钠(CMC-Na):上海浦东化学品有限公司,批号:20071026;透明质酸(HA)、层粘蛋白(LN)、Ⅲ型前胶原(PCⅢ)放免试剂盒均购自北京北方免疫试剂研究所;其它试剂盒均购自南京建成生物工程研究所。BT2000全自动生化分析仪,意大利Vialicenza,Roneoo156。TUNEL 试剂盒, 购自北京中杉金桥生物技术有限公司。 1.3 模型制备: 60只大鼠适应性饲养1周,随机分为造模组50只和正常组10只。采用复合造模方法复制大鼠肝硬化模型 [7] ,每周2次皮下注射四氯化碳,0.3ml/100g体重,共10周。造模开始第1-2周均以20%猪油、0.5%胆固醇、79.5%玉米面混合饲料喂养,第3-9周以0.5%胆固醇和99.5%玉米面混合饲料喂养。整个造模期间以30%乙醇作为饮料让大鼠自由饮用。正常组则以正常饲料和纯净水喂养。造模过程中死亡3只。实验10周末造模组随机抽取3只经肝组织病理切片确认造模成功后予以分组治疗。 将造模成功的44只大鼠随机分为4组,每组11只,即模型组、EGb 高、中、低剂量组,分别灌胃给予0.5%的CMC-Na及20m g/kg 、15mg/kg、10m g/kg的EGb。给药30天,给药过程中模型组死亡一只。给药结束后,大鼠禁食14小时,戊巴比妥钠麻醉,腹主动脉取血后处死动物,取肝脏。离心分离血清,全自动生化分析仪测定血清总蛋白(T-P)、白蛋白(ALB)、谷丙转氨酶(ALT)、谷草转氨酶(AST)、总胆红素(TBIL)含量,计算白蛋白/球蛋白(A/G)比例;放免法测定血清中HA、LN、PCⅢ含量。肝细胞凋亡原位检测按照试剂盒说明书操作进行,凡满足下列条件之一者即确定为凋亡肝细胞:(1)出现凋亡小体;(2)核呈新月形;(3)核浓缩。每张切片选择5个具有代表性的高倍视野(400×),共计数500个肝细胞,取阳性细胞平均百分率作为凋亡指数(Apoptosis index,AI),即:凋亡指数=(5个高倍视野内阳性肝细胞数之和/500)×100%。 1.4 统计学处理: 所有数值以±S,利用SPSS11.0软件进行单因素方差分析、两两比较及相关性分析,p<0.05具有显著性差异,p<0.01具有极显著性差异。 2 结果 2.1 银杏叶片对肝硬化大鼠血清中ALT、AST、TBIL的影响: 肝硬化模型建立后,肝细胞受损,细胞中的酶释放进入血液中,导致血清中ALT、AST含量明显升高;同时,肝功能受损时,胆红素不能与葡萄糖醛酸结合进入胆汁而在血液中蓄积,引起血液中总胆红素水平升高。经EGb干预后,与模型组相比,银杏叶提取物高中低剂量组可明显降低血清中ALT、AST、TBIL的含量,并呈剂量依赖性。 2.2 银杏叶片对肝硬化大鼠血清中T-P、ALB、A/G的影响 肝硬化大鼠肝脏受损后,合成蛋白质的能力下降,从而导致T-P、ALB的量降低,同时肝细胞损伤时球蛋白生成增加,故A/G显著降低。经银杏叶提取物干预后,与模型组相比,银杏叶提取物各剂量组可显著升高T-P、ALB和A/G。 2.3 银杏叶提取物对肝纤维化大鼠血清中HA、LN、PCⅢ水平的影响 2.4 对凋亡指数的影响: 正常组肝组织中TUNEL染色阳性肝细胞较少见,多散在分布于中央静脉周围。模型组可见不同程度的TUNEL染色阳性肝细胞,发生凋亡的肝细胞常位于脂肪变严重以及炎症细胞浸润区域附近,随着脂肪肝程度以及肝细胞炎症、坏死的加重,其肝细胞凋亡指数明显增高。给予EGb后发现TUNEL染色阳性肝细胞减少,与模型组相比,EGb高、中剂量组肝细胞凋亡指数明显降低。 3 讨论 肝硬化是肝脏慢性反复损伤后肝脏细胞外基质(ECM)合成与降解之间平衡失调、细胞外基质过度沉积的结果。当肝细胞被破坏、细胞膜通透性增高及线粒体损伤时,AST和ALT被释放到血液中,使之明显升高,酶活性的高低与肝细胞受损的程度相一致;肝细胞受损时,

大鼠肝硬化

大学答题纸 (20 11 —20 12 学年第1 学期) 课号:课程名称:医学动物实验学改卷教师: 学号:姓名:得分: 肝硬化大鼠的综述 【摘要】:肝硬化是严重威胁人类健康的常见疾病,任何破坏肝脏内环境稳定的过程,炎症、毒性损害、肝血流改变、先天性代谢障碍、化学物质和药物毒性、肝内循环紊乱和胆汁流动阻塞等都可导致肝硬化。大部分麻醉药在肝脏代谢,肝硬化对麻醉药及手术后苏醒影响较大,建立一个类似于人类肝硬化的动物模型是深入研究与肝硬化有关课题不可缺少的环节。因此,适宜的肝硬化动物模型是疾病研究的基础,对于评价疗效具有不可忽视的作用。本文以大鼠为肝硬化模型,从模型的优缺点、建立、临床研究方面加以综述。 【关键词】:肝硬化、动物模型、大鼠、临床研究 【正文】:肝硬化(liver cirrhosis)是一种常见的慢性肝病,可由一种或多种原因引起肝脏损害,肝脏呈进行性、弥漫性、纤维性病变。建立肝硬化大鼠模型不仅是研究肝硬化发病机制的重要基础,也是临床评价肝硬化诊断和治疗方法的有效手段。大鼠的肝硬化模型具有人类肝硬化的基本形态特征,其病理改变呈阶段性进展,且造模方法简单,模型形成率高,重现性好、死亡率低等特点。但同时大鼠动物模型因肝硬化病因的多样性、与人的种属差异等原因,在很多研究领域不能作为理想的实验对象。 现对目前常用的几种肝硬化大鼠的建立方法进行阐述: (一)化学损伤法 1. 四氯化碳法该法是最为常用的肝脏毒素,最早、最广泛用于实验性肝纤维化研究[1]。其作用机制是:在肝细胞内质网中,四氯化碳通过肝微粒体细胞色素P450氧化酶激活后,产生自由基—CCl3。—CCl3 与肝细胞内大分子发生共价结合,破坏肝细胞功能。此外—CCl3还可攻击膜上不饱和脂质,引发活性氧自由基的产生和脂质过氧化,损伤肝细胞,从而导致狄氏间隙内原本静止的贮脂细胞活化,释放Ⅳ型胶原酶,降解Ⅳ型胶原,肝细胞从合成分泌Ⅲ型胶原变为合成分泌I型胶原,取代了Ⅳ型胶原,促使肝脏纤维化。 2. 乙醇法乙醇可通过多种途径损害肝脏的结构和功能,直接刺激胶原蛋白的合成,从而促进肝纤维化的发生,从而建立肝硬化模型[2]。乙醇直接损伤血管内皮,导致血小板聚积,大量细胞因子释放并相互作用,激活贮脂细胞变成纤维细胞,合成并分泌大量的胶原并沉积,引起肝纤维化甚至肝硬化。常用的乙醇法有腹腔注射、尾静脉注射、灌胃,8周末肝细胞变性坏死,贮脂细胞开始活化;12周末,形成轻度纤维化改变,贮脂细胞活化明显并分泌大量胶原。 3. 致癌物法常用的有二甲基亚硝胺、硫代乙酰胺等。二甲基亚硝胺是常见的致肝癌剂。它通过肝微粒体代谢,其中间产物与核酸、蛋白质等结合致肝细胞损伤,同时产生的活性甲基化产物使核酸、蛋白质甲基化导致肝坏死[1]。常用的造模方法是用1%二甲基亚硝胺按1mL/kg腹腔注射,每周前3d给药,每天1次,持续3周,第4周仅在周一给药1次,4周后大鼠肝硬化形成…。硫代乙酰胺在肝内代谢成硫氢化合物,与肝大分子物质结合,引起肝损伤,同时还能激活磷脂酶A,,引起肝细胞膜损害,肝细胞坏死。制模时可用3%硫代乙酰胺50mL/kg体质量腹腔注射,每天1次,8周成模。 4. 铁代谢法可给大鼠喂饲铁负荷饮食和肌内注射右旋糖苷铁,导致肝内铁堆积和Ito细胞内-I型胶原基因表达增强。长期铁负荷使大鼠线粒体氧化代谢减少,库普弗细胞铁负荷。许多证据表明,铁超负荷肝硬化沙鼠铁沉积Ito细胞,导致这些细胞胶原水平增高,而在给同样程度铁负荷的沙鼠予富维生素E饮食却可以完全预防肝硬化的发生,提示脂质过氧化参与铁负荷诱导肝硬化过程[3]。 5. D-半乳糖胺法半乳糖胺进人体内后可造成尿嘧啶核苷三磷酸及其他尿嘧啶核苷酸的消耗,

肝组织病理活检介绍

肝组织病理活检介绍 肝组织病理活检是什么?肝组织病理活检是根据负压吸引的原理,采用快速穿刺方法,从肝内抽取少量的肝组织,直接在显微镜下观察其组织形态的改变,再结合临床资料,作出肝病的诊断。快速肝穿刺术操作简单,安全可靠,并发症少,是目前诊断肝硬化比较流行的方法。 一、诊断意义: 通过对活检组织显微镜下观察,可以明确脂肪肝病变程度、类型、有无合并脂肪性肝炎和肝纤维化,对病人的治疗以及预后判断亦有重要价值。此外,像病毒性肝炎、脂肪肝、各种类型的肝硬化等,其肝脏病变呈弥漫性,取出较小肝组织,也能比较准确地反映出病变的性质和程度。 肝活检病理组织学检查结果可为各种肝病或原因不明的肝脾肿大提供诊断依据,有助于确定、补充或纠正临床诊断,有助于肝纤维化、早期肝硬化的发现,也有助于判断治疗效果及预后,了解疾病的演变过程。另外,肝活检活组织也是一种治疗手段,肝脓肿病人可通过肝活检抽出脓液,同时还可通过穿刺针注入药物治疗。 二、主要应用: ①局灶性脂肪肝与肿瘤区别; ②为探明某些少见疾病,如胆固醇酯贮积病、糖原贮积病等; ③无症状性可疑非酒精性脂肪肝(NASH),肝活检是唯一诊断手段; ④戒酒后ALD或ALD有不能解释的临床或生化异常表现者; ⑤肥胖减少原有体重10%后肝酶学异常仍持续者,需肝活检寻找其他原因; ⑥任何怀疑不是单纯肝组织脂变或疑有多病因引起者。 三、术前准备: 术前应检查血小板数、出血时间、凝血时间、凝血酶原时间,如有异常,应肌注维生素Kllom9,每日1次,3天后复查,如仍不正常,不应强行穿刺(对于凝血酶原时间不符合穿刺条件者,术前应给予2~3u的新鲜干冻血浆;对于血小板低者应输血小板)。 (1) 穿刺前应测血压、脉搏并进行胸部x线检查,观察有无肺气肿、胸膜肥厚,验血型,以备必要时输血。术前l小时可服地西泮10mg。 (2) 术前应检查血小板数、出血时间、凝血时间、凝血酶原时间,如有异常,应肌注维生素Kllom9,每日1次,3天后复查,如仍不正常,不应强行穿刺(对于凝血酶原时间不符合

大鼠肝脏组织病理切片的制作和HE染色

大鼠肝脏组织病理切片的制作和HE染色 步骤如下: (一)固定与修块 取组织块放入Bouin氏液中,组织块的直径应小于7mm。6小时左右后用双面 刀片将组织块修剪成3-5mm3大小。 (二)脱水与透明 1. 75%乙醇50分钟 2. 85%乙醇50分钟 3. 95%乙醇(I) 30分钟 4. 95%乙醇(II) 30分钟 5. 100%乙醇(I) 30分钟 6. 100%乙醇(II) 30分钟 7 1/2二甲苯(乙醇与二甲苯等体积)20分钟 &二甲苯(I)20分钟 9 .二甲苯(II)10分钟(可依据透明效果而定) 若脱水不好,二甲苯溶液颜色会变混浊。在每一步骤之后,要充分滤干组织块,一般用筒纸吸干组织块上的液体,以免影响其他液体的浓度,但也要防止组织块干燥。全过程约需要5h。(三)浸蜡、包埋与修蜡块 1.浸蜡:将60C恒温箱打开,使石蜡充分溶解,待脱水与透明结束后,将组织块转入石蜡里,放置于60 C恒温箱120分钟。 2 .包埋:将60 C的石蜡倒入纸盒内,然后用小镊子将各组织块按一定的顺序排列好,使切面朝下。不同组别的同一组织包埋于一个蜡块中,以保证切片和染色条件相同。为防止倒入纸盒内的石蜡底部立刻凝固,可将纸盒置于一玻璃板 上(或大培养皿内),然后将玻璃板置于80-90 C左右热水上,包埋时蜡盒底部要放平,做蜡块的蜡要反复冻融较好。 3 .修蜡块:待纸盒内蜡凝固后,用刀片将其修成梯形,组织块与蜡块边缘之间的距离不得小于2mm。 (四)切片 在载玻片上擦少量甘油蛋白。可滴半滴甘油蛋白于载玻片上,用手指充分抹 匀,呈半干状为佳。切片厚约4-8卩m,将切片在55C左右水浴中展开,展开程度 以带黄颜色的组织完全摊平为准。用涂有甘油蛋白的载玻片从水浴中捞取切片,放入37C烘箱中过夜。每个组织块捞片2张。过夜后,将载玻片置于玻片架上, 进行下面的实验。 (五)脱蜡、染色与脱水 倾斜玻片架,将玻片架和载玻片下缘的试剂用筒纸吸干,减轻对其他试剂浓 度的影响。全过程约需要60分钟。 1.脱蜡 (1)二甲苯(I)15分钟 (2)二甲苯(II)15分钟 (3)100%乙醇2分钟 (4)95%乙醇(I)1分钟 (5)95%乙醇(II)1分钟 (6)蒸馏水浸洗1分钟 2 .染色

实验大鼠常见脏器形态学取材方法和注意事项

实验大鼠常见脏器形态学取材方法和注意事项 [取材内容] 大鼠肺组织、大鼠肝脏组织、大鼠胰腺组织、大鼠胃部组织、大鼠空场回肠组织、大鼠肾组织、门静脉血、淋巴组织、大鼠心脏。 [试剂及药品] 戊巴比妥钠或10%水合氯醛、75%酒精、生理盐水、多聚甲醛或福尔马林液、3戊二醛磷酸盐缓冲液(PBS0.01mol/LP pH7.4)或4戊二醛、肝素钠、器械液器械清洗消毒液 [器材] 备皮刀、解剖台、弯盘、组织剪、眼科剪、手术刀柄、刀片、小号弯式血管钳、蚊式血管钳、眼科镊、无损伤血管夹、聚乙烯管、三通管、丝线、培养皿、天平、一次性离2ml、1.5ml 、冻存管、肝素锂真空采血管、微量移液器、高速离心机、注射器10ml、5ml、 2ml、无菌手套、冰箱、冰盒、液氮罐 [取材动物] 大鼠 [取材步骤] 1. 取材前夜禁食,自由饮水。 2. 小鼠称重,按照50mg/kg的比例用5ml的注射器配合针头抽取戊巴比妥钠备用。 3. 正左手的小指和无名指抓住大鼠的尾巴,另外三个手指抓住大鼠的颈部,使大鼠头部向向下。这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部,防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。右手持注射器,从腹部近腿根处刺入后再腹部皮下穿行深入,动作轻柔,缓慢注射。注射完药物后,缓缓拔出针头,手指按住针口对小鼠腹部轻柔按摩,促进麻醉药物的吸收,掐小鼠尾部检测小鼠麻醉程度。 4.将小鼠四肢固定于解剖台上,暴露小鼠整个胸部和腹部,修剪去腹部毛发,75%酒精消毒。 5.沿腹侧正中线自阴茎上源由下而上剪开腹部皮肤直至剑突,向两侧钝性剥开皮肤与皮下组织,暴露腹壁浅肌层。沿白线钝性分离腹壁肌肉,剪开腹膜,暴露腹腔,将肝脏向上翻起,显露肝门。 6.门静脉血采集:将剪成斜口的聚乙烯管尖端背向肝门方向插入门静脉,抽取门静脉血2ml,无创血管夹夹闭门静脉止血。将抽取门静脉血加入一次性离心管低温静置过夜,4℃离心,3000-3500/min,10分钟,吸出上清液,分装,-80摄氏度保存备用。 7.肝脏取材:结扎剪断肝门管道系统,钝锐结合完整取出大鼠肝脏,放置于无菌培养皿,生理盐水冲洗,称重并记录。①切取肝左叶约1mm×1mm×1mm组织3

肝脏病理切片形态观察步骤

肝脏病理切片形态观察 1﹑冲洗 取出已用10%甲醛固定的肝组织,用小刀将其切成小块,置包埋盒(可放多个),用纱布包裹,放于塑料瓶中,流水冲洗一晚。 2﹑脱水透明浸蜡 50%乙醇 30min 60%乙醇 30min 70%乙醇 30min 80%乙醇 30min 90%乙醇 30min 95%乙醇Ⅰ 30min 95%乙醇Ⅱ 30min 无水乙醇Ⅰ20min 无水乙醇Ⅱ20min 脱水 二甲苯Ⅰ 5min 二甲苯Ⅱ 5min 透明 石蜡Ⅰ10min 石蜡Ⅱ10min 浸蜡(提前开启水浴锅80度,待石蜡几乎融解完全后调至60度) 3﹑包埋 提前开启包埋机,预热半小时融解石蜡,将上一步已经透蜡的组织放入保温缸待用(或室内常温正常放置)。取组织至于铁包埋框,用镊子调整位置是其位于中间,上面放置包埋盒,滴入融解的石蜡进行包埋(期间同样需调组织与蜡块中间位置),待冷却后取出包埋盒,置-10度冰箱备用。 4﹑切片﹑展片﹑烤片 将包埋好的组织修整后置于切片机,调整位置且设切片厚度为4μm,连续切片(备刀片、毛笔),切好后放于白纸上,取已用30%乙醇超声漂洗后的载玻片(于烧杯乙醇浸润),在长条切片中切段依次放入装有30%乙醇小盒子中展开,几秒后用载玻片取出再放入40度水浴锅中展开,待切片展开完全整齐无褶皱后载玻片捞起放于塑料托盘中(或铁制载玻片架),于60度恒温箱烘片3h,备用。 5、染色 二甲苯Ⅰ3min

二甲苯Ⅱ3min 脱蜡 无水乙醇Ⅰ3min 无水乙醇Ⅱ3min 95%乙醇Ⅰ3min 95%乙醇Ⅱ3min 75%乙醇3min 30%乙醇3min 蒸馏水(于60度水浴)2min 复水 苏木素-伊红染色核染液染色7.5min,水洗3-5s 浆染液染色3min,增色液冲洗1-2次 滤纸吸干(或放铁制载玻片架自然晾干) 6、封片 待载玻片组织周围残余液体晾干后,立刻滴入一滴中性树胶于组织上,盖上盖玻片自然覆盖,平放,固定后显微镜观察。

相关文档
最新文档