微生物原生质体制备及再生的影响因素

合集下载

原生质体制备和再生的影响因素

原生质体制备和再生的影响因素
2 0 1 3 年3 2 期
科技 一向导
◇ 科技 论坛◇
原生质体制备和再生的影响因素
黄 磊
( 福建空 5 0 0 0 5 )
要】 以酿酒酵母 Y S 5 为 出发菌株 , 经蜗牛酶酶解获得原生质体后 , 用紫外线进行诱变处理 , 通过一级 筛选得到 了6 1 株诱 变菌株 , 将
酵母细胞 的融合 及酵母 原生质体的诱变 的一个重要前 提就是如 适 当预处理可在一 定程 度上破 坏酵母菌细胞壁外层 大分子 高级 何制备大量 的原生质体 . 原生质体制备率受到各种条件 的影响 . 如菌 结构 . 改善通透能力 . 促进细胞壁水解 酶向内壁层扩散 . 提高原生质体 龄、 酶浓度 、 温度 、 预处理 等的影响 , 因此确定不 同因素对酵母原生质 制备效率 . 并缩短酶作用时间 , 降低酶液对形成 的原生质体损伤 . 保持 体 的影响及优化不 同因素 . 可以大大提高产率 。 高活性 . 提高再生率和融合率 其作用主要是这些化合物能还原细胞 1 . 菌体菌龄对原生质体制备的影响 壁 中蛋 白质的二硫键后 . 使分子链切开 . 酶分子易于渗入 . 促进细胞壁 易于释放 原生质体 微生物的生理状态是决定原生质体产量 的主要 因素之一 . 特别是 的水解 . s H 一 化合物( 如B 一 巯基 乙醇 ) 广泛运用 于酵母菌 中. 效果很好 。可 菌龄 , 明显影响原生质体释放的频率。 不 同时期 的菌体 . 对各种溶壁酶 是, 酵母细胞脱壁前 . 做一些预处理可使原生质化率大大提高 . 但原生 的敏感性不同 . 原生质体 的形成率与再生率也有很大差异 这是因为其作用 于膜蛋 白. 造成细胞损伤 。 酵 较年轻的菌体细胞制备原生质体较为容 易. 而且此 阶段 的原生质 质体再生率会有所降低 , 预处理剂 E D T A或 E D T A加巯基 乙 体再生率也较高。处 于对数生长期的菌体代谢活性 高而稳定 、 细胞壁 母 菌细胞壁外层 由一蛋 白鞘构成 . 利于水解酶渗透进人 内壁层并促进其对细胞壁的 对酶 的作用较为敏感 . 且大小 比较一致 . 生长适应能力强 . 故通常取处 醇 能破坏这一结构 . 于对数生长期的菌体制备原生质体 有研究表 明对数生长早期形成率 降解 . 因此适度预处理后能显 著提高 原生质体制备率 : 用E D T A处理 一方面将细胞壁 中部分不溶性蛋 白质抽 提出来 . 另一方面又通 最高 . 对 数生长 中期时再生率最高 . 对数 生长 晚期的再生率也 比对数 细胞 . D T A与多种金属离子形成络合物 . 避免金属 离子对 酶的抑制作用 生长 中期 的低 。 这是由于细胞壁越稚嫩 。 越易被酶破坏 . 对数生长早期 过 E 用巯基 乙醇处理对数期 的细胞 . 以促进蛋 白质 菌体幼小 , 代谢活性高而稳定 、 细胞壁对酶的作用较 为敏感 . 且大小 比 而提高酶 的脱壁 效果 : 松动细胞壁结构 . 使菌 体的细胞壁对酶 的敏感性增 较一致 . 故生活适应能力强 : 对数生长 中期幼小菌体对不利 因素抵抗 中的二硫键断裂 . 同时抑制细胞壁的重新合成 至于经预处理后原生质 体再 生率 略 能力差 . 一旦失去细胞 壁 , 较难恢复 : 对数生长晚期的原生质体存在着 加 . 但从形成率 和再生率双重 因素考虑 .使用 预处理再 生总 很大比例 的非活性个体 菌体如果进入稳定期 . 细胞 壁结构趋 于稳定 低于非处理 . 和老化 . 不易去壁形成原生质体 , 原生质体形 成率显著降低 . 而且再 生 数高于非预处理 率也有所下 降。 4 . 酶 系 和 酶 的浓 度 对 原 生质 体 制 备 的 影 响 微 生 物 的 菌 龄 是 随 着 菌 种 和 培养 条 件 而 异 .酵 母 菌 菌 液 中加 入 各 种微生物 由于细胞壁组成不 同用 于水解细胞壁 的酶 的种类也 B 一 巯基乙醇可 以破坏细胞壁组分 中的二巯基 .处于对数生长期 的酵 不同 而酵母菌的细胞壁组成主要为葡萄糖和几丁质 用于水解的酶 纤维素酶 、 B 一 葡聚糖酶等 。最常用的是蜗牛酶 , 它是 母菌菌体代谢极为旺盛 . 细胞壁 易被 瓦解 . 其细胞壁对 蜗牛酶 较为敏 类主要有 蜗牛酶 、 感. 易于酶解脱壁 . 且酵母菌制备原生质体时 , 要使菌体同步化才能大 种以纤维素酶 为主 的混合酶 . 适合水解酵母细胞壁中的多种组分 幅度的提高制备率 制备酿酒酵母原生质体时 , 一般采用 5 O E D T A和 5 l 巯基乙醇 及1 % 纤维素酶高渗磷酸~甘露醇缓冲液预处理 . 原生质体的获得率达 2 . 稳 定 剂对 原 生质 体 制 备 的影 响 9 % 但在蜗牛酶中复合加入纤维素酶能得到更理想的效果 . 加快细胞 原生质体 由于剥除 了细胞 壁 . 失去其特有 的保护作用 . 细胞对外 9 缩短处理时间 . 增强所得原生质体活性 , 并提高再生率。 界环境变的十分敏感 . 尤其对渗透压 如果把它悬浮在蒸馏水或等渗 壁水解进程 . 不同的微 生物在制备原生质体 时所需酶 的种类和酶量均不同 . 适 溶液 中. 会吸水膨胀并破裂 . 所 以必须在一定浓度 的高渗溶 液中进行 宜的酶浓度是影 响原生质体形成与再生 的重要因素 . 因为酶 中往往含 酶解 、 破壁 、 才能形成和保持稳定 的原生质体 如过氧化物酶、 核糖核酸酶等) , 随着酶量的 作为稳定剂 的有无机盐和有机物 . 无机盐稳定剂包括 Na C 1 、 K C 1 、 有对原生质体有害的酶类f 杂酶的浓度 也会随之增加 . 当达到一定程度时 , 必然会影响原生 M g S 0 4 、 C a C l : 等; 有机物中有糖和糖醇 , 如蔗糖 、 甘露醇 、 山梨醇等 无 增加 . 降低原生质体 的再生率 机盐利于原生质体制备 . 糖类更适于其再生 。 可能糖溶液黏度大 . 不利 质体 的活性 . 总之用于水解细胞壁 的酶浓度要适 当 . 酶量过低 . 作用不彻底 . 不 于酶 和细胞 的分散 与作 用 . 而盐对细胞壁降解有促进作 用 . 故能提高 浓度过高 , 处理时间过 长 . 会影 响原 生质体 的数量 制备率却不利于再生。 酵母菌原生质体制备 和再生时 的稳定剂可选用 利 于原生质体形成 . 致使再生率下降 无机盐或糖醇类化合 物. 无机盐类在促进原生质体再生方 面不及糖 和 和活性 . 糖醇 。 其原因是 : 糖及糖醇是大分子物质 , 阻碍酶与细胞壁充分接触或 5 . 酶 的作 用 温 度 、 时 间和 作 用 p H值 者防碍原生质体释放 , 同时, 其对原生质体 又有保护作用 。 同样 的培养时间 . 不 同的温度下 生长的细胞 . 其生理状况是有差 各种稳定剂 的 D H值应 保持在一定范围之内 . 这需要适宜 的缓 冲 异的 . 会影 响到原生质体 的形成 。 如酶解温度过高或过低 , 都会影响酶 液配合使用 ,以保证 酶活 胜和菌体本身活性维持在一个 叫高 的水平 。 的活性 . 使原生质体形成率 下降 。 不 同的酶具有各 自 不 同的最适 温度 , 稳定 剂是一种高渗 溶液 . 但是浓度也不能过 高 . 否则会使原生质体皱 这在水解细胞壁的时候是要首先考虑的 还要 注意菌株生长的最适温 缩. 一般在 0 . 3 一 1 . O m o U L之 间 度. 以避免因温度不当而导致原生质体的活性 降低 . 甚至破坏 确定 酶 概言之 . 稳定剂的作用 . 不仅能防止原生质体 的破 裂 . 控制并 达到 解温度的时候 以上两者均要兼顾 。 总 的说来 。 酵母 菌的温度要低些 , 多 最大的数量 . 而且对提高酶 的活性 . 促进 酶和底物的结合都具有相 当 在 3 8 — 3 0 ' E。 : 。 的优越性 不同的稳定剂对 原生质体的释放和保 护作 用是不 同的 . 一 随着时间的增加 . 原 生质体 的形 成率增加 . 可能是 因为随着时间 般认为易于渗- 入 质膜和易 于被原 生质体及菌体分解 的物质 不宜作为 的增加 . 细胞壁 的水解更为充分的原因。酶解时的最适 p H值 也随着 稳定剂。 酶的特性和菌种 的特性而异 3 . 酶 解 前 的预 处 理 对 原 生质 体 制 备 的 影 响 6 . 总结 用酶 类来水解细胞壁 . 首 先要 使得酶溶液渗透到细胞壁 中 . 但是 可见 . 影 响原 生质 体制备和再生的因素很多 . 不 同酶系统及酶浓 生物体都具有保护 自 身的一套严密 的结构 . 不是任何物质都可以随意 度 、 渗透压稳定剂 、 酶解温度 、 时间、 不 �

阿魏菇原生质体制备及再生条件的建立

阿魏菇原生质体制备及再生条件的建立
be dn . r e i g Ke r y wo ds: d bef n i p oo ls; e e e ain; s tcsa i z r e il u g; r tp a tr g n rto o moi tbl e i
阿 魏菇 , 噶尔 阿魏 侧耳 【 rl ez t 图力 准 ua L ni ( e ]
摘 要: 以新疆 阿魏菇为材料 , 究菌龄、 研 酶解 时间、 酶解液对 阿魏菇 菌丝原生质体产量的影响, 同时还研 究 了不同渗
透 压 稳 定 剂 对 原 生 质 体 再 生 的 影 响 。 果 显 示 , 06mo LK I 渗 剂 条 件 下 , 结 在 . l C 稳 / 菌龄 为 8d阿 魏 菇 菌 丝 体 ( . g O1 ) 在 08m . L混 合 酶 解 液 中 ( . 1 5%离析 酶 + . O5%纤 维 素酶 + 2%溶 菌 酶 ) 备 原 生 质 体 ,5℃酶 解 3h获 得 原 生 质 体 达 制 3 5 l mL 原 生质 体 再 生结 果 显 示 , 08 0/ 糖 稳 渗 剂下 , 生质 体 再 生 时 间为 1 , 再 生 率 可 迭 06%。 × 0 个/ 。 在 .m l L蔗 原 6d 其 . 该 文通 过 对 阿魏 菇 原 生质 体 分 离 和 再 生 条件 的研 究 , 旨在 从 细胞 水 平 上探 索 一 条食 用 菌 育 种 新 途 径 , 发展 和 完 善 食 为
Th s c l m ste td 3 h u d r3 e e my ei wa r ae n e 5℃ a d t en mb ro rtp a t e c d t 。 T e fe ue c f u n h u e fp oo l s r a he o5xl . h q n y o O r

微生物原生质体融合育种技术及其应用

微生物原生质体融合育种技术及其应用

微生物原生质体融合育种技术及其应用摘要:工业微生物菌种选育在发酵工业中占有重要地位。

微生物原生质体融合(microbialprotoplast fusion)技术具有重组频率高、受结合型或致育型限制小以及遗传物质传递完整等优点,是微生物育种最常用的方法之一。

结合相关研究进展,分析了原生质体融合技术的组成,包括制备、再生、融合的影响因素以及融合子的筛选方法,重点评述了原生质体融合技术应用在微生物育种中的最新进展,以及微生物原生质体融合技术的发展前景。

关键词:微生物原生质体融合遗传育种基因组重组引言:微生物菌种是发酵工业中的一个关键因素,它决定了发酵过程的成败及某一发酵产品是否具有工业化价值。

自然界中的原始菌株大多不具有很高的工业化价值,因此需要对菌株进行选育和改良,以提高产品的质量,降低成本。

原生质体融合技术是起源于20世纪60年代的一项重要的菌种改良技术,是将亲株细胞分别去除细胞壁后进行融合,经基因组间的交换重组,获得融合子的过程。

与其他育种技术相比,原生质体融合技术具有重组频率高、受结合型或致育型限制小以及遗传物质传递完整且不需要完全了解作用机制等优点,因而被国内外微生物育种学者广泛应用。

1974年,匈牙利的Ferenczy成功将白地霉(Geotrichum candidum)营养缺陷型突变株的原生质体进行融合,使原生质体融合技术首次应用于微生物中。

接下来的几十年,该技术的基本实验方法逐步完善,现已作为一项十分有用的技术广泛应用于工业微生物菌种选育中。

本文就原生质体融合技术的过程及其应用于微生物育种方面的最新进展做了简要综述,并分析了目前存在的问题及未来的发展方向。

1 资料和方法:1.1 资料来源由第一作者在CNKI进行检索。

网址:/。

英文资料的检索时间范围为2007/2012;中文资料的检索时间范围为2007/2012。

英文检索词为“protoplast fusion、research、progressions”;中文检索词为“原生质体融合、应用、研究进展”。

原生质体融合育种

原生质体融合育种

原生质体融合育种摘要原生质体融合育种克服了远缘杂交不亲和的障碍,可以提高重组频率,使得遗传物质的交换、传递更完整,成为微生物育种的一种重要方式。

其过程包括原生质体制备和再生、原生质体融合以及融合体检出等步骤。

在每个步骤中均要考虑到其应注意的因素,从而提高原生质体育种的效率,达到快速育种的目的。

因原生质体融合育种的优势,其在多功能菌种选育、工程菌选育和工业生产育种等方面应用广泛。

关键词原生质体制备融合育种原生质体再生融合体检出引言传统的杂交育种具有一定的局限性,需要受到亲和力的影响,并且要求亲本有性的分化,而原生质体育种则克服了这些缺点。

当细菌细胞壁被剥离,剩下由原生质膜包围的原生质部分称为原生质体。

原生质体融合是指通过人为的方法,使遗传性状不同的两个细胞的原生质体进行融合,借以获得兼有双亲遗传性状的稳定重组子的过程。

[1]原生质体融合不受种属限制,能够完整的传递遗传物质,使得重组几率提高进而提高育种速度。

[1-2]育种步骤可分为五大步骤:直接亲本及其遗传标记的选择、双亲本原生质体制备和再生、亲本原生质体诱导融合、融合重组体分离、遗传标记分析和测定。

1.亲本遗传标记的选择进行原生质体融合的双亲本一般要携带遗传标记,以顺利地筛选到融合子。

常用营养缺陷型、抗性、荧光染色、温度敏感性、孢子颜色、菌落形态等作为标记。

其中营养缺陷型是常用而有效的选择手段。

[3]2.原生质体制备制备原生质体是融合育种的前提,为了制备原生质体,需要将包围细胞的细胞壁去除掉。

去壁的方法很多,主要有机械法、酶法和非酶法,现在使用较多的是酶法。

[4]2.1酶法制备原生质体的条件(1)菌体年龄微生物的生理状态决定了原生质体的形成,而菌龄明显影响了原生质体的形成率,菌龄过长不利于释放原生质体,过短则菌丝体容易破裂。

丝状真菌一般选择年轻的尖端生长点的菌丝;细菌与霉菌一般采用对数生长期,而放线菌以对数期到静止期的转换期为好。

[5](2)稳定剂原生质体由于失去了细胞壁因此对环境十分敏感,渗透压尤为重要。

原生质体融合育种

原生质体融合育种
物理融合剂:电场、激光
(二)原生质体融合的影响因素 1、融合剂 电场融合的优点: 适于动植物、微生物细胞;融合频率高 可在显微镜下观察
(二)原生质体融合的影响因素
1、融合剂
2、温度 20~30℃
3、亲株的亲和力和原生质体的活性
4、无机离子
PEG介导融合 钙离子、镁离子
电场融合
糖或糖醇
四、融合体再生 复原: 再生培养基 细胞壁重建 形成菌落 P239 图9.8
第五节 酵母菌原生质体融合育种 一、酵母细胞壁结构和遗传标记 菌龄对原生质体形成影响大 亲本灭火的方法:紫外线
热 药物
第五节 酵母菌原生质体融合育种 一、酵母原生质体制备 p259 预处理:EDTA;巯基乙醇
蜗牛酶
第六节 霉菌原生质体融合育种 二、培养基及相关溶液 p262 (1)查氏培养基的作用:菌丝生长 (3)酶液的制备:
(2)菌体培养方式:
1.平板玻璃纸法:
丝状菌
2.振荡沉没培养法
细菌和酵母菌
酶法分离原生质体的影响因素?
(3)菌体年龄
丝状真菌
菌丝体尖端细胞
放线菌
对数期到静止期
细菌
对数期
酵母菌
菌体同步化
酶法分离原生质体的影响因素?
(4)稳定剂
高渗溶液
无机盐:NaCl、KCl、MgSO4、CaCl 微生物原生质体育种 三、原生质体转化育种 何种形式DNA转化率高? 质粒
第一节 微生物原生质体育种
五、其他微生物原生质体育种 脂质体转移 原生质体转染等
第二节 微生物原生质体融合育种
微生物原生质体融合育种:
通过人为方法,使遗传性状不同的两细胞的原 生质体发生融合,并产生重组子的过程。

原生质体制备的原理

原生质体制备的原理

原生质体制备的原理原生质体啊,简单来说,就是把植物或者微生物细胞外面那层细胞壁给去掉之后剩下的部分。

那为啥要去掉细胞壁来制备原生质体呢?这就像给细胞做了个“脱壳手术”,让细胞变得更“赤裸裸”,这样就方便我们对细胞进行各种研究啦。

对于植物细胞来说,细胞壁是由纤维素、半纤维素和果胶等物质组成的。

就像一个坚固的小房子,把细胞里的原生质给围在里面。

那怎么把这“小房子”拆掉呢?这就用到了一些特殊的酶。

比如说纤维素酶,它就像一个小小的拆迁队队员,专门针对细胞壁里的纤维素,把纤维素的化学键给切断。

还有果胶酶呢,它也没闲着,负责把果胶分解掉。

这俩酶就这么齐心协力,一点一点地把细胞壁给瓦解掉,原生质体就被释放出来啦。

微生物细胞也类似哦。

不过微生物的细胞壁成分和植物不太一样。

像细菌的细胞壁有肽聚糖,这时候就需要用溶菌酶这样的酶来对付它。

溶菌酶就像一个精准的小剪刀,找到肽聚糖里合适的地方,“咔嚓”一下剪断化学键,细胞壁就开始破掉啦。

原生质体的制备啊,还有很多小讲究呢。

比如说酶的浓度很重要。

如果酶的浓度太低,就像拆迁队的人手不够,拆细胞壁拆得慢吞吞的,效率特别低。

可要是酶的浓度太高呢,就有点像一群莽撞的工人,可能会对原生质体本身造成伤害,把原生质体里面的一些重要结构也给破坏掉了,这可就不好了。

温度也是个关键因素。

就像人干活的时候,温度合适干活才舒服。

对于酶来说也是一样的,不同的酶有它最适宜的工作温度。

在这个温度下,酶的活性最高,拆细胞壁的速度最快,效果也最好。

要是温度不合适,酶可能就会偷懒,不好好干活啦。

而且啊,制备原生质体的时候,还得注意渗透压。

细胞里面是有一定渗透压的,当把细胞壁去掉之后,如果外面的渗透压不合适,原生质体就会像一个被捏扁或者胀大的气球一样。

要是外面的溶液浓度太高,原生质体里的水就会被吸出去,原生质体就会皱缩起来;要是外面溶液浓度太低,水就会大量涌进原生质体,原生质体就可能会胀破。

所以得找到合适的渗透压条件,让原生质体能够舒舒服服地待着。

原生质体制备和再生的影响因素

原生质体制备和再生的影响因素

原生质体制备和再生的影响因素【摘要】以酿酒酵母YS5为出发菌株,经蜗牛酶酶解获得原生质体后,用紫外线进行诱变处理,通过一级筛选得到了61株诱变菌株,将这些诱变株直接进行发酵,利用气相色谱对发酵液酒精产量进行分析。

结果表明,经过紫外线照射30s后,通过筛选获得了一株酒精发酵较高产菌株,酒精产率达到了10.36%(v/v),比出发菌株提高了3.6%。

【关键词】酿酒酵母;原生质体;紫外诱变;甘蔗汁发酵酵母细胞的融合及酵母原生质体的诱变的一个重要前提就是如何制备大量的原生质体,原生质体制备率受到各种条件的影响,如菌龄、酶浓度、温度、预处理等的影响,因此确定不同因素对酵母原生质体的影响及优化不同因素,可以大大提高产率。

1.菌体菌龄对原生质体制备的影响微生物的生理状态是决定原生质体产量的主要因素之一,特别是菌龄,明显影响原生质体释放的频率。

不同时期的菌体,对各种溶壁酶的敏感性不同,原生质体的形成率与再生率也有很大差异。

较年轻的菌体细胞制备原生质体较为容易,而且此阶段的原生质体再生率也较高。

处于对数生长期的菌体代谢活性高而稳定、细胞壁对酶的作用较为敏感,且大小比较一致,生长适应能力强,故通常取处于对数生长期的菌体制备原生质体。

有研究表明对数生长早期形成率最高,对数生长中期时再生率最高,对数生长晚期的再生率也比对数生长中期的低。

这是由于细胞壁越稚嫩,越易被酶破坏,对数生长早期菌体幼小,代谢活性高而稳定、细胞壁对酶的作用较为敏感,且大小比较一致,故生活适应能力强;对数生长中期幼小菌体对不利因素抵抗能力差,一旦失去细胞壁,较难恢复;对数生长晚期的原生质体存在着很大比例的非活性个体。

菌体如果进入稳定期,细胞壁结构趋于稳定和老化,不易去壁形成原生质体,原生质体形成率显著降低,而且再生率也有所下降。

微生物的菌龄是随着菌种和培养条件而异,酵母菌菌液中加入β-巯基乙醇可以破坏细胞壁组分中的二巯基,处于对数生长期的酵母菌菌体代谢极为旺盛,细胞壁易被瓦解,其细胞壁对蜗牛酶较为敏感,易于酶解脱壁,且酵母菌制备原生质体时,要使菌体同步化才能大幅度的提高制备率。

影响原生质体培养的因素课件

影响原生质体培养的因素课件

生物融合
总结词
利用生物酶或微生物诱导原生质体融合。
详细描述
生物融合技术利用某些生物酶或微生物分泌 的物质,促进原生质体的融合。该方法对细 胞损伤较小,但融合效率相对较低,需要进
一步优化和改进。
PART 06
原生质体培养的应用与展 望
在细胞生物学研究中的应用
细胞膜结构和功能研究
原生质体培养可用于研究细胞膜的组成、结构和功能,以及膜运 输、信号转导等过程。
THANKS
感谢观看
REPORTING
VS
原生质体的渗透压一般较低,培养基 的渗透压过高或过低都可能对原生质 体造成伤害。因此,在选择培养基时 ,要根据原生质体的渗透压进行选择 ,以确保适宜的渗透压条件。同时, 在培养过程中,要避免培养基过度蒸 发或稀释,以保持适宜的渗透压。
光照
光照是影响原生质体培养的环境因素之一,它能够影响原生质体的光合作用和形态建成。
浓度优化
优化无机盐浓度,以促进原生质体的生长和分裂 。
生长因子
生长因子
促进细胞分裂和增殖的微量 有机物。
种类选择
根据细胞类型选择适当的生 长因子。
浓度调整
根据实验需求,调整生长因 子的浓度,以获得最佳的生 长效果。
PART 03
培养条件
温度
温度是影响原生质体培养的重要因素之一,过高或过低的温度都可能对原生质体造成伤害。
细胞活力
原生质体培养时,细胞的活力对其分 裂和生长能力具有显著影响。
高活力的细胞具有更强的分裂和生长 能力,能够更好地适应原生质体培养 的环境。因此,选择活力较高的细胞 进行原生质体培养是提高培养效率的 重要因素。
PART 05
原生质体的融合与遗传转 化

微生物原生质体制备及再生的影响因素

微生物原生质体制备及再生的影响因素

文章篇号:1007-2764(2006)03-0263-093微生物原生质体制备及再生的影响因素谭文辉,李燕萍,许杨(南昌大学中德联合研究院 食品科学教育部重点实验室,江西南昌 330047) 摘要:原生质体的制备及再生,是原生质体技术的前提和基础。

本文较全面地介绍了影响微生物原生质体制备及再生的因素,以期在原生质体形成和再生的最佳条件下制备原生质体,为进一步实验打下良好的基础。

关键词:原生质体;制备;再生Factors Affect the Formation and Regeneration of Protoplasts ofMicroorganismTan Wen-hui, Li Y an-ping, Xu Y ang(The Key Laboratory of Food Science of Ministry of Education (Nanchang University); Sino-Germany Joint ResearchInstitute, Nanchang 330047, China)Abstract: Formation and regeneration of protoplasts is the precondition and foundation of protoplasts technology. The factors that affect the formation and regeneration of protoplasts from microorganism were investigated to find the optimum condition of formation and regeneration of protoplasts. It is important to make the good foundation for further research.Keywords: Protoplasts; Formation; Regeneration原生质是有组织的生活物质,是细胞生命活动的物质基础,所有的原生质有相似的基本组成成分和特性。

影响微生物原生质体融合技术的因素

影响微生物原生质体融合技术的因素
(. 1湖南农业大学生物科学技术学院, 湖南 长沙 402 ;. 1182 湖南农业大学, 湖南 长沙 402 ) 118
摘 要 : 原生质体融合技术是微生物育种的有效方法之一 , 包括原生 质体 制备 、 原生 质体 融合 、 原生质体再 生及融 合子 的分 离等
主要 过 程 。 综 述 了 培 养基 成 分 、 龄 、 的 种 类 及 浓 度 、 菌 酶 稳定 剂 、E P G的 分 子 量 、 度 等 因素 对 微 生 物 原 生 质体 制 备 、 合 及再 生 的 浓 融 影 响 , 对 近 年 来 国 内 外 学 者在 微生 物 原 生 质 体 融 合 技 术 及 应 用 方 面 所取 得 的最 新 进 展 进 行 了 概 括 。 并
最 广 的一 种 。原 生 质 体融 合 育 种 主 要步 骤 如 下… :
( ) 记 菌株 的筛 选 和稳 定 性 验 证 ;2 原 生 质 体 制 1标 ()
备 ;3 原 生质 体融 合 ;4 原生质 体再 生 ;5 融合 子 () () () 验证 、 分离 。本文 就影 响原 生质体 制 备 、 融合 和再 生
Z N hn HE G Z o g—y , I a—pn T N Z o —j XA e—y I u—h n i XED i , A h u i , IO K g n u ,L Y og
(. oee fBoc nead T ho g ,H nnA ruua U irt, hnsa402 , R 1 C lg i i c n e nl y ua gi lrl n e i C agh 118 P C; l o Se c o c t v sy
2.Hua giutr nvri C a gh 0 2 P C) n nA r l a U i st c ul e y, h n sa41 18, R

原生质体的制备与再生

原生质体的制备与再生
电子天平
34 菌 丝与培 养基 分离 ( . 采用离 心方法 ) 取出菌 丝离 心分离, 洗涤 : 把培 养基直 接入 离心管 分离 以每分钟 30转 的 00 速度 离心 分离 5分钟 , 收集 菌丝 。再 用 8 O / M L L的氯 化铵 洗涤 , 如此 反复 3次 分离洗涤 完成。
L 5 1 型 离心机 冰箱 D— 0
无菌 操作 台


2 l 1

I l l
2实验 方 法 2 1 制备 培养基 及溶 液 () 1培养基 完 全 培 养 基 、基 本 培 养 基 、菌 丝生 长 培 养 基 ()B 溶 液 (. O / 磷 酸缓 冲液 合 0 4O / 氯化铵 ) 2P A 0M LL .M L L 溶液 1磷 酸二氢 钾 x克于 蒸馏水 定容 至 V L : l 溶 液 2 磷 酸氢二 钾 Y克于 蒸馏 水定容 至 V L : 2 调 P 值 为 6 取 一定 体积 调好 缓冲液 加入 氯化铵 (. M L L 。 H , 0 4 O / )
荫言 米 曲霉 是酿造业 中的重要微 生物, 在其 生长过程 中分泌 蛋 白酶和 谷氨酰胺
酶等 , 酱油 、 豆瓣 、米 酒 等 的产 率和 风 味起 着 重 要作 用 。 目前 国 内外 利 对 用原生 质体融 合法选 育优 良米 曲霉是 一个热 门课题 。所 以本实 验专 门针对 米 曲霉 原生 质 体制备 时 破壁 酶 的种 类及 浓度 采用 正 交 实验进 行 了探 讨 。 1材料 和 方法 1 1材 料和主 要试 剂 . () 料 1材 米 曲霉 () 剂 2试 琼 脂 、 葡 萄 糖 、 磷 酸 二 氢 钾 、 硫 酸 镁 、 硫 胺 素 、 硝 酸 钠 硫 酸氢 二钾 、氯化钾 、七水 硫酸 镁 、硫 酸铁 、酵母 膏、 蛋 白胨 、无 水硫 酸 钠 、氯化 铵 、硫 酸亚铁 、蔗 糖 、氯化钾 、磷酸 、氢氧 化钠 、硫 酸 、盐 酸、 纤 维 素 酶 、溶 菌 酶 、溶 壁 酶 、 蜗 牛 酶 1 2 仪器 和设备 . T 2 8 1 台式多 用恒温 振荡 器 H8—型 自动 台式 灭菌 器 T Q R 3 5 M. 20 恒温培 养箱 K B 1 4 X 一 2N P S 2 型酸度计 H 一C 托 盘天平

发酵题目(1)

发酵题目(1)

发酵题目(1)一、名词解释1、发酵利用微生物在有氧或无氧条件下的生命活动,来制备微生物菌体或其代谢产物的过程。

广义地说,凡是培养细胞(动、植物和微生物细胞)来制得产物的过程。

2、生理酸性物质:物质在体内经消化吸收,进入代谢途径,最后的残留物呈酸性的物质。

3、灭菌用化学的和物理的方法杀灭或除掉物料或设备中所有的有生命的有机体的工艺过程。

4、防腐是通过采取各种手段,保护容易被腐蚀的物品,来达到延长其寿命的目的方法。

5、前体在微生物代谢产物的生物合成过程中,有些化合物能直接被微生物利用构成产物分子结构的一部分,而化合物本身的结构没有大的变化,这些物质称为前体。

6、维持活细胞群体在没有实质性的生长和没有胞外代谢产物合成情况下的生命活动7、自然选育在生产过程中,不经过人工诱变处理,根据菌种的自发突变而进行的菌种筛选过程。

8、内源代谢由于基质浓度很低或其它原因,生物利用自身的贮藏物质、酶等进行新陈代谢,来取得营养物质、维持生存的方式。

9、FBC作用在分批培养过程中,间接或连续补加一种或多种成分的新鲜培养基的方法FBC的作用:1.控制抑制性底物的浓度2.解除或减弱分解产物阻遏3.使发酵过程最佳化10、接种量:移入的种子液体积和接种后培养液体积的比例。

11、种龄:种子培养时间12、微生物摄氧率:单位体积培养液每小时消耗的氧量。

13、合成培养基:所用的物质的化学成分明确、稳定的培养基14、复合培养基:是由指化学成分还不清楚或化学成分不恒定的天然或有机物组成的培养基。

15、杂交育种一般指两个不同基因型的菌株通过接合或原生质体融合使遗传物质重新组合,再从中分离和筛选出具有新性状的菌株。

16、代谢曲线根据发酵过程中菌体生长、发酵参数、产物形成速度随时间变化的过程绘制成的曲线。

17、Cl:溶解氧浓度,在一定条件下,溶解在液相中的氧的浓度。

18、C某:即溶解氧的饱和浓度,外界条件如温度,压力等不再变化时,氧在液相中的浓度不再随时间而变化,此时的浓度即为该条件下氧在溶液中的饱和度。

禾本科内生真菌研究15:禾本科内生真菌Epichlo(e) yangzii原生质体的制备与再生

禾本科内生真菌研究15:禾本科内生真菌Epichlo(e) yangzii原生质体的制备与再生

禾本科内生真菌研究15:禾本科内生真菌Epichlo(e)yangzii原生质体的制备与再生吴正钢;汪捷;谢薇薇;陈永敢;王志伟【摘要】为高效获得内生真菌Epichlo? yangzii Rnj5706菌株的原生质体,分别检测酶系组合、稳渗剂、pH值、酶解温度等因子对E.yangzii原生质体制备的影响.结果表明:制备E.yangzii原生质体的优化条件为液体培养48 h的鲜菌丝在pH值6.8含0.7 mol/L NaCl的酶解液(1.5%崩溃酶、1.0%蜗牛酶、1.0%纤维素酶、2.0%溶菌酶)中32℃酶解4h,这时的原生质体得率为39.2×105个/mL酶解液.并比较不同保存时间下的原生质体的再生比率,表明随保存时间延长,再生比率急剧下降.本研究关于E.yangzii原生质体的制备和再生方法,为内生真菌遗传操作等后续研究提供了基础.【期刊名称】《江苏农业科学》【年(卷),期】2012(040)002【总页数】4页(P17-20)【关键词】Epichlo(e) yangzii;原生质体;制备;酶系组合;再生【作者】吴正钢;汪捷;谢薇薇;陈永敢;王志伟【作者单位】南京农业大学生命科学学院微生物学系,江苏南京210095;南京农业大学生命科学学院微生物学系,江苏南京210095;南京农业大学生命科学学院微生物学系,江苏南京210095;南京农业大学生命科学学院微生物学系,江苏南京210095;南京农业大学生命科学学院微生物学系,江苏南京210095【正文语种】中文【中图分类】Q813.2致谢:南京农业大学纪燕玲老师和彭飞同学参与了部分工作,特此感谢!植物内生真菌(fungal endophytes)是指那些在其生活史的部分或全部阶段生活于健康植物的组织或器官内部,但其宿主植物不表现出外在病害症状的真菌。

现已在80多个属的几百种禾本科植物中发现有Epichlo⊇和Neotyphodium内生真菌的存在,这类内生真菌与宿主植物有密切的互利共生关系,能给植物带来优异的促生长、促分蘖、抗旱、抗病虫、抗食草动物等特性[1-2]。

Trichoderma

Trichoderma

淮阴工学院毕业设计(论文)开题报告学生姓名:严闯学号:**********专业:生物工程论文题目:Trichoderma asperelloides原生质体的制备与再生研究***师:**2016 年 2 月13 日毕业论文开题报告1.结合毕业设计(论文)课题情况,根据所查阅的文献资料,每人撰写2000字左右的文献综述文献综述1 引言原生质体概念:用水解酶将细胞壁水解剥离,剩下由原生质体膜包围着的原生质体部分称为原生质体(protoplast )。

其形状随不同菌类而异。

原生质体基本保持原细胞结构、活性和功能,只是因为去掉了细胞壁,对渗透压和外界环境特别敏感。

为制备原生质体,必须有效地除去细胞外的细胞壁。

去壁的方法有机械法、非酶分离法和酶法。

实际工作中绝大多数采用酶法,时间短,效果好。

即用水解酶除去细胞壁,释放出只有原生质膜包被着的球状原生质体的过程。

不同微生物种类其细胞壁结构和化学组成不同,酶解处理的有效酶也不一样,因此要根据微生物种类特性选择合适的酶。

本次实验是针对Trichoderma asperelloide的,所以选取的是蜗牛酶,溶菌酶,纤维素酶[1]。

Trichoderma asperelloides是从棘孢木霉中分出的新种,它与木霉属、曲霉属等形态学基本没有区别,但分子序列标记不同。

目前国内少见该菌种的报告,但是有关该菌种产纤维素酶的报道。

研究表明该菌种能较好地利用农业废弃物为底物生产纤维素酶,并利用紫外、微波对该菌株进行了复合诱变,选育出一株产酶活力高的突变菌株Trichoderma asperelloides ZWWB1。

但是影响纤维素酶产量和活力的因素,除菌种外,还有发酵基质、温度、pH、水分及发酵时间等;同时还有纤维素酶的生产方式。

另外Trichoderma asperelloide是一种广泛分布于世界各地的粮食、植物性产品和土壤的一个常见菌种。

Trichoderma asperelloide是重要的发酵工业菌种,在工业酶制剂、有机酸发酵方面被广泛应用,此菌有很强的纤维素霉及纤维,二糖淀粉酶等,它能利于农副产品,如麦杆,木材,木屑等纤维素原料,使之转变为糖质原料[2]。

原生质体制备和再生的影响因素

原生质体制备和再生的影响因素

原生质体制备和再生的影响因素【摘要】以酿酒酵母YS5为出发菌株,经蜗牛酶酶解获得原生质体后,用紫外线进行诱变处理,通过一级筛选得到了61株诱变菌株,将这些诱变株直接进行发酵,利用气相色谱对发酵液酒精产量进行分析。

结果表明,经过紫外线照射30s后,通过筛选获得了一株酒精发酵较高产菌株,酒精产率达到了10.36%(v/v),比出发菌株提高了3.6%。

【关键词】酿酒酵母;原生质体;紫外诱变;甘蔗汁发酵酵母细胞的融合及酵母原生质体的诱变的一个重要前提就是如何制备大量的原生质体,原生质体制备率受到各种条件的影响,如菌龄、酶浓度、温度、预处理等的影响,因此确定不同因素对酵母原生质体的影响及优化不同因素,可以大大提高产率。

1.菌体菌龄对原生质体制备的影响微生物的生理状态是决定原生质体产量的主要因素之一,特别是菌龄,明显影响原生质体释放的频率。

不同时期的菌体,对各种溶壁酶的敏感性不同,原生质体的形成率与再生率也有很大差异。

较年轻的菌体细胞制备原生质体较为容易,而且此阶段的原生质体再生率也较高。

处于对数生长期的菌体代谢活性高而稳定、细胞壁对酶的作用较为敏感,且大小比较一致,生长适应能力强,故通常取处于对数生长期的菌体制备原生质体。

有研究表明对数生长早期形成率最高,对数生长中期时再生率最高,对数生长晚期的再生率也比对数生长中期的低。

这是由于细胞壁越稚嫩,越易被酶破坏,对数生长早期菌体幼小,代谢活性高而稳定、细胞壁对酶的作用较为敏感,且大小比较一致,故生活适应能力强;对数生长中期幼小菌体对不利因素抵抗能力差,一旦失去细胞壁,较难恢复;对数生长晚期的原生质体存在着很大比例的非活性个体。

菌体如果进入稳定期,细胞壁结构趋于稳定和老化,不易去壁形成原生质体,原生质体形成率显著降低,而且再生率也有所下降。

微生物的菌龄是随着菌种和培养条件而异,酵母菌菌液中加入β-巯基乙醇可以破坏细胞壁组分中的二巯基,处于对数生长期的酵母菌菌体代谢极为旺盛,细胞壁易被瓦解,其细胞壁对蜗牛酶较为敏感,易于酶解脱壁,且酵母菌制备原生质体时,要使菌体同步化才能大幅度的提高制备率。

原生质体再生的影响因素发酵简答题

原生质体再生的影响因素发酵简答题

原生质体再生的影响因素发酵简答题
原生质体再生是指某些原生生物在受到适当刺激后,由部分或全部体积发生分离、胞间的某些物质流动和核分裂等过程,以新生的形态和结构来实现再生和生长的能力。

影响原生质体再生的因素包括:
1. 刺激条件:原生质体再生需要一定的刺激条件,如适当的营养物质、温度、pH值等因素。

2. 社会环境:原生生物在群体中的环境对原生质体再生也有影响。

例如,群体中某些细胞或生物的分泌物可以作为刺激物,促进原生质体再生。

3. 基因因素:各种原生生物的遗传物质不同,对于原生质体再生的敏感度也存在差异。

有些基因可以促进原生质体再生,而另一些则会抑制其再生。

4. 细胞状态:原生质体再生的效率与细胞状态有关,例如细胞的份裂活性、代谢水平等。

同时,细胞状态也受到外界环境的影响。

5. 化学物质:一些化学物质可以促进原生质体再生,而另一些则会抑制。

综上所述,影响原生质体再生的因素包括刺激条件、社会环境、基因因素、细胞状态以及化学物质。

这些因素中相互作用,最终影响原生质体再生的效率。

柄蓝状菌原生质体的制备与再生条件优化

柄蓝状菌原生质体的制备与再生条件优化

柄蓝状菌原生质体的制备与再生条件优化张荟蓉;周志义;耿安利【摘要】为了建立以聚乙二醇/氯化钙(PEG/CaCl2)原生质体介导的柄蓝状菌(Talaromyces Stipitatus)高效的遗传转化系统,分别从材料选择,真菌菌龄,不同的渗透压稳定剂,酶的不同种类配比,酶的浓度,酶解时间及不同再生方式对柄蓝状菌EMM原生质的制备与再生条件进行优化.结果表明:以柄蓝状菌EMM接种生长48 h的菌丝为制备材料,1 mol/L MgSO4作为渗透压稳定剂,菌丝在温度为30℃,浓度为50 mg/mL的裂解酶溶液中酶解3 h,得到的原生质体先用再生培养基孵化培养12 h,然后再与PDA培养基混合铺板,以上组合条件下原生质体的释放量可达8.73×108/mL,再生率可达17.7%.【期刊名称】《武汉工程大学学报》【年(卷),期】2018(040)006【总页数】5页(P601-605)【关键词】柄蓝状菌;PEG/CaCl2转化;原生质体;再生条件【作者】张荟蓉;周志义;耿安利【作者单位】武汉工程大学化学与环境工程学院,湖北武汉 430205;武汉工程大学化工与制药工程学院,湖北武汉 430205;新加坡义安理工学院,新加坡 999002【正文语种】中文【中图分类】Q939.9近年来,丝状真菌在工业酶方面的研究得到了广泛应用。

柄蓝状菌EMM是丝状真菌中一株经过诱变的高产纤维素酶菌株,是由本实验室自主分离得到,其纤维素与半纤维素的产量已经可以达到工业水平[1]。

为了更进一步提高纤维素酶的产量,从分子水平上分析菌株的特性,转化系统的建立成为其研究的第一步[2]。

相比于其他受体的转化体系,丝状真菌因为存在细胞壁,会导致在转化时外源基因很难进入[3]。

针对丝状真菌的转化方法主要有PEG/CaCl2原生质体转化[4-5],电击转化[6-7],农杆菌介导转化[8-9],基因枪转化[10],限制性内切酶介导转化[11],其中PEG/CaCl2原生质体转化法和农杆菌介导转化法是现在丝状真菌使用最多的转化方法[12]。

  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

文章篇号:1007-2764(2006)03-0263-093微生物原生质体制备及再生的影响因素谭文辉,李燕萍,许杨(南昌大学中德联合研究院 食品科学教育部重点实验室,江西南昌 330047) 摘要:原生质体的制备及再生,是原生质体技术的前提和基础。

本文较全面地介绍了影响微生物原生质体制备及再生的因素,以期在原生质体形成和再生的最佳条件下制备原生质体,为进一步实验打下良好的基础。

关键词:原生质体;制备;再生Factors Affect the Formation and Regeneration of Protoplasts ofMicroorganismTan Wen-hui, Li Y an-ping, Xu Y ang(The Key Laboratory of Food Science of Ministry of Education (Nanchang University); Sino-Germany Joint ResearchInstitute, Nanchang 330047, China)Abstract: Formation and regeneration of protoplasts is the precondition and foundation of protoplasts technology. The factors that affect the formation and regeneration of protoplasts from microorganism were investigated to find the optimum condition of formation and regeneration of protoplasts. It is important to make the good foundation for further research.Keywords: Protoplasts; Formation; Regeneration原生质是有组织的生活物质,是细胞生命活动的物质基础,所有的原生质有相似的基本组成成分和特性。

原生质体是由原生质特化而来,细胞内由原生质组成的各种结构,统称为原生质体,它们彼此联系、相互影响而构成一个有机整体,担负着细胞的所有生命活动[1]。

原生质体技术的关键是对细胞壁进行消化,以形成大量的原生质体,并使原生质体能高频率的再生细胞壁,回复到正常细胞状态。

当细胞壁去除后,原生质体具有以下特征:一是无细胞壁障碍,可对膜和细胞器进行基础研究,同时可进行遗传操作;二是具有全能性,能在人工条件控制下,进行大量快速繁殖;三是可诱导融合,形成杂种细胞,为体细胞杂交提供实验材料[2]。

因此,原生质体技术无论在理论上或实践上都日益受到重视。

1 原生质体的制备收稿日期:2006-03-29作者简介:在读硕士,研究方向为食品生物技术国家自然科学基金资助(30460006)项目,江西省自然科学基金资助(0530081)项目通讯作者:许杨,教授、博导人们曾探索使用研磨等机械方法和超声波等物理方法来制备原生质体,效果都不理想。

目前,制备原生质体大都是利用酶解法脱去细胞壁。

但由于各种微生物细胞壁组成的差异,制备原生质体的条件也各不相同。

1.1 菌龄对原生质体形成的影响菌体的不同生理状态,直接影响到细胞壁的结构、菌体的代谢水平及菌体的活力等。

酵母菌原生质体制备一般取对数生长期的单倍体细胞,此时细胞代谢活跃,生长率高,群体细胞的化学组成、形态及生理特征比较一致[3]。

孙传宝等报道,对数生长期以前的菌丝体细胞壁结构对降解酶不敏感,酶解过程中更多的是将细胞壁最外层葡聚糖部分降解,造成菌丝体断裂,内含物溢出。

到了对数生长后期,菌丝体原生质体释放量较高,但菌丝体体内有大量液泡产生,且原生质膜内皱较多,故释放的原生质体体积较大[4]。

1.2 培养基成分对原生质体分离的影响培养基成分不同可导致新合成细胞壁结构的差异,这种差异又导致了细胞壁对酶敏感度反应不一,从而使菌丝细胞释放的原生质体量有差异[5]。

据报道,在链霉菌(Streptomyces rimosus)的培养基中加入氨基乙酸,可有效促进菌丝体细胞壁形成对裂解酶敏感263的结构,大幅度提高原生质体释放,且制备的原生质体质量高,从而提高原生质体的再生[6]。

1.3 酶种类对原生质体形成的影响在制备细菌、放线菌的原生质体时,主要使用溶菌酶作为工具酶。

对于酵母菌、霉菌,大型真菌,由于其细胞壁组成比较复杂且存在差异,使用微生物产生的酶复合物或商品酶的混合液比单独使用一种酶的效果好[7]。

据报道,混合使用裂解酶、几丁质酶、纤维素酶和果胶酶,粉红聚端孢(Trichothecium roseum)的原生质体生成率最高为2.8×105个/mL[8]。

1.4 酶浓度对原生质体形成的影响酶中往往含有对原生质体有害的酶类,随着酶量的增加,杂酶的浓度也会随之增加,当达到一定浓度时,必然会影响原生质体的活性;而且,酶浓度过大,细胞脱壁太彻底,必然降低原生质体的再生率[9]。

1.5 酶解时间对原生质体形成的影响不同微生物的最适酶解时间的差异很大。

酶解时间过长,对于一些早期释放的原生质体膜有破坏作用,影响原生质体膜的稳定性,导致原生质体破碎或再生率降低[10]。

Benjaminiella poitrasii的最佳酶解时间为4小时,此时原生质体产量和再生率最高,时间过短或过长都会导致原生质体的产量和再生率降低[11]。

1.6 酶解温度对原生质体形成的影响根据酶反应动力学原理,酶解温度直接影响酶促反应的速度。

放线菌的最适酶解温度为28~37℃,真菌的最适酶解温度为30~35℃。

据N.Balasubramanian 等报道,对粉红聚端孢(Trichothecium roseum)来说,最适酶解温度为28℃,在低于最适酶解温度时,随着温度的升高,原生质体制备率不断提高;高于最适酶解温度时,原生质体的产量明显减少[8]。

1.7 酶解液pH值对原生质体分离的影响酶解液pH值不仅影响酶的活力和底物的特性,改变溶壁效果,而且影响已脱壁原生质体的稳定性。

pH值略偏碱性有利于革兰氏阴性细菌细胞壁外膜的去除,使溶菌酶可以更好的作用于肽聚糖上ß–(1,4)糖苷键,促使菌体脱壁。

对Monacrosporium megalospo- rum真菌来说,酸性的环境对其原生质体有害,pH7最有利于原生质体的形成[12]。

1.8 渗透压稳定剂的性质及浓度对原生质体产率的影响合适的渗透压稳定剂,一方面可使原生质体内外的渗透压维持平衡,另一方面对酶的活性也具有一定的促进作用,从而影响原生质体的产量。

通常,丝状真菌以无机盐作为稳定剂比较适宜,而酵母菌则用糖或醇做稳定剂较好[13]。

对绿色木霉(Trichoderma viride)来说,用0.6 mol/L的KCl作为渗透压稳定剂得到的原生质体产量最高,可达4.7×105个/mL[14]。

1.9 预处理方式对原生质体形成的影响不同预处理方式会引起细胞壁的组成或超微结构发生变化,从而影响裂解酶的敏感度。

一方面,对已培养好的菌体,在酶解前用适量硫醇化合物(如ß-巯基乙醇和二硫苏糖醇)预处理能还原细胞壁中蛋白质的二硫键,使分子链切开,酶分子易渗入,从而促进细胞壁的水解及原生质体的释放[15]。

另外,EDTA作为螯合剂,可以避免金属离子对酶的抑制作用而提高霉的脱壁效果,从而提高原生质体的形成率。

据报道,对埃希氏大肠杆菌(Escherichia coli)来说,用EDTA 洗后,可以除去对酶解不利的金属离子[16]。

另一方面,在原生质体制备前,用适量的青霉素对菌体进行预处理,可以抑制肽聚糖合成过程中的转肽作用,有利于原生质体的形成[12]。

1.10 其他影响因素酶解过程中轻微振荡有利于原生质体的释放,可能与酶充分接触菌丝体或与氧的供应有关。

此外,还有一些影响因素如:菌体浓度、分散程度和遗传性等。

2 原生质体的再生原生质体再形成有生活能力的菌丝称为再生。

不同微生物的原生质体最适再生条件存在一定的差异。

2.1 培养方式对原生质体再生的影响不同的菌种要求不同的再生培养方式,用固体培养法再生原生质体优于液体培养法。

王波等报道,双孢蘑菇(Agaricus bisporus)的原生质体适合于固体单层再生培养,单层再生培养基的再生菌落数较双层再生培养基的高72.0 %[17]。

2.2 培养基对原生质体再生的影响在再生培养基中会添加一些营养物质,这些物质可能是作为细胞壁合成的前体物质,也可能通过代谢转化成细胞壁的前体物质或起到促进代谢,加速细胞壁合成的作用。

通常,添加酵母膏、蛋白质、糖类或氨基酸到真菌的再生培养基中,而细菌、放线菌的再生培养基中常添加水解酪蛋白、血清白蛋白、氨基酸和琥珀酸钠等。

对白绢菌(Sclerotium rolfsii)来说,在再生培养基中添加0.6 mol/L的蔗糖,原生质体的再生率最高,可达26 %[18]。

2.3 菌龄对原生质体再生的影响菌龄过短的菌丝经酶解破壁形成小原生质体,有的细胞器不完全,营养供给不足,再生能力也较低。

264菌龄长的原生质体再生率高,且再生时间远比菌龄短的原生质体再生时间短,可能是含有细胞核和其他细胞物质数量多的缘故[19]。

2.4 渗透压稳定剂对再生率的影响渗透压稳定剂对再生率的影响主要可能还是对原生质体稳定的影响。

王殿夫等曾经报道,就形成率而言,以糖及糖醇类作为渗透压稳定剂比无机盐更有利于原生质体的再生。

这可能是由于糖和糖醇对原生质体的保护作用[20]。

2.5 Ca2+对原生质体再生的影响Ca2+主要是通过维系膜结构的完整性来实现原生质体的稳定性与活性。

王建华等报道,原生质体膜外在蛋白上二价阳离子的存在使膜脂流动性减慢、稳定性增强,这种维持稳定性的效果大小与膜表面分子数量的多少呈正比例关系[21]。

2.6 酶解参数对原生质体再生的影响原生质体制备时的酶浓度和酶解时间对原生质体再生的影响较大。

酶浓度的高低也影响原生质体的再生,因为在过高浓度的酶制备原生质体时细胞受损伤较大,失去了重新建成原来细胞所必要的因子,影响原生质体的再生。

酶解时间与原生质体形成率成正比,与再生率成反比[22]。

原因是酶解时间越短,细胞壁脱壁越不完全,较易再生出细胞壁,酶解时间越长,脱壁越完全,原生质膜易被酶液破坏,再生较困难。

2.7 原生质体的贮存对再生的影响由于原生质体比较脆弱,在各种高渗液和不同温度下保存,其再生能力普遍都会下降。

据徐进等报道,捕食线虫真菌(Nematode-trapping)的原生质体经过-20 ℃冰冻后或经4 ℃放置数天后,仍有部分可以再生(再生率低于0.1%)[23]。

相关文档
最新文档