浮游生物监测.ppt
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浮游生物的测定
S-- 计数的长条数。
浮游生物数/ L=
C 1000 V1 × L W D S V
V1－浓缩后的水样量， mL V－采样量，L
（2）视野计数法
浮游生物数/mL＝
C 1000 ADF
式中A-- 一个视野面积（mm2）；
D-- 视野的深度(mm)；
F-- 计数的视野数（一般至少10个）； C-- 计数的生物个数。
目前常用的计数框多采用血球计数板，框为分成400个方格的正方形，面积为 1mm2, 深度为0.1mm，框的体积为0.1mm3=0.1μl，每个方格的体积为 0.00025μl。 ◆将计数样品充分摇匀后，迅速吸取1小滴样品至计数框中，盖上盖玻片。盖玻片下 应无气泡。
◆计数时，显微镜的目镜可用10X，物镜可根据情况选用40X或10X。应将计数板所 有小方格内的藻类进行 计数，而不采用部分样品计数。每一样品应至少做4个重复 计数。 →数量统计 把计数所得结果换算为原来的水样中浮游植物的数量时，用下式计算：
当用细胞数表示时，在计数时可采用几种方法：
①对丝状、群体种类， 可先计算个体数，然后求出该种类的个体平均细胞数，进行 换算； ②在计数过程中 计算细胞数； ③对形成水华的优势种类，如微囊藻，计数前可加碱、加热、用力摇 散等方法使 之散开为单个细胞或少数细胞的群体。
浮游生物的定量测定
1. 计数框及其使用 (1) 塞奇威克一拉夫脱计数框（简称S-R计数框）： 长：50mm，宽20mm，深1mm
1mL
(2) 网格计数框
深0.25mm
2. 显微镜的校准 目测微尺 测微尺 台测微尺
两重合线之间台尺格数 目尺长度(m m) 两重合线之间目尺格数
3. 计数方法 (1) 长条计数法
浮游动物ppt课件
中华假磷虾
Pseudeuphau siasinica
总体概况
简介： 雌性体长5-16.5mm，雄性4-14mm，头部高稍大于 长，腹缘直，第1胸足基节长为宽的6倍，为其余节之 和的1.2-1.5倍。第2胸足基节长为宽的8 倍，相等于 其余节之和。第3胸足为第2胸足长2倍，其基节长为 宽6倍。第5胸足大于第4胸足1.1倍，腕节与掌节的长 度相等。第7胸足为第6胸足的1/3或较短，尾扇半圆 形。生活于大洋暖水，在近海常可见到，数量不多。 台湾东部和南部、黄海南部、东海、南海；太平洋、 印度洋和大西洋；地中海。
透明等棘虫
Acanthometra pellucida
总体概况
简介： 属于刺胞动物门，水螅虫纲。是薮枝虫有性生殖世 代——水母型世代。其结构较简单，很小，约1mm2mm。体形如一圆伞，伞边缘生有很多细的触手 （初生时16个），下伞面中央有一短的垂唇，口向内 通到胃，再由胃伸出4个辐管与个边缘的环管相通。 口、胃、辐管、环营构成水母的消化循环系。水媳水 母特征是在伞下面边缘有一圈薄膜称为缘膜，在伞边 缘有8个平衡囊，司平衡。在4条辐管上有四个由外胚 层形成的精巢或卵巢（雌雄异体）。
海蜇
Rhopilema esculentum
总体概况
简介： 属于腔肠动物门，有触手纲，球水母目，栉水母属 。 又称球形侧腕水母。体如小玻璃球会发光，夜间，其 蓝白色光有时使海水变色，对人无害。有8条显著的 栉毛带。触手2条，充分伸展时，其长度可达体高的 20余倍，为主要捕食器。雌雄同体。精巢和卵巢并列 于子午水管的内壁。海水中受精，经胚胎发育后成为 幼体。球栉水母为暖水近岸性海洋动物，广泛分布于 印度、日本和中国沿海。春夏之间，经常在贝虾类养 殖池中大量发生，吞食贝虾幼苗，为贝虾类养殖业的 敌害之一。
海洋生物资源调查-第3章 鱼类浮游生物调查及评价(专业知识模板)
海洋生物要素调查及评价
种类鉴定
主要鱼类浮游生物应鉴定到属或科。 2.2 调查要素
包括鱼卵和仔、稚鱼的种类组成和数量分布。 3 采样
3.1 采样设备
网具 30m以浅海域,应采用浅水Ι型浮游生物网垂直取样， 30m以深海区,应采用大型浮游生物网垂直取样或用双鼓网 倾斜取样。此外可根据海区位置或深度、调查的性质、目
Na——全网鱼卵或仔、稚鱼个体数，单位为粒(ind)或尾(ind)； S——网口面积,单位为平方米（m2）； L——流量计转数； C----流量计校正值。
海洋生物要素调查及评价
水平拖曳样品
以粒/网（ind/net）或尾/网(ind/net)计算。 6 填写报表
按本部分的有关规定填写报表； 7 7.1 分布图绘制
是衡量亲鱼资源量大小和预报补充资源量所必需的资料。
海洋生物要素调查及评价
2
2.1
技术要求和调查要素
技术要求
垂直或倾斜拖网深度
水深大于200m的海区拖网深度为200m至表垂直拖网或斜 拖，水深小于200m的则由底至表垂直拖网或斜拖。 水平拖网深度 水平拖网深度为0m3m层。
垂直或倾斜分段拖网水层
根据测站深度、调查性质和目的的不同来确定.
平面分布图一般用等值线或不同量级的圆圈符号表示。
等值线的取值标准如下：
a)鱼卵和仔、稚鱼总量（单位为 ind/m3或ind/100m3）：1， 5，10，25，50，100，250，500，1 000，5 000；
海洋生物要素调查及评价
b) 鱼 卵 和 仔 、 稚 鱼 主 要 科 、 属 或 种 ( 单 位 为 ind/m3 或
c) 数量小于上述等级时，可用“ +”标在测站上，以示出现。
种类鉴定
主要鱼类浮游生物应鉴定到属或科。 2.2 调查要素
包括鱼卵和仔、稚鱼的种类组成和数量分布。 3 采样
3.1 采样设备
网具 30m以浅海域,应采用浅水Ι型浮游生物网垂直取样， 30m以深海区,应采用大型浮游生物网垂直取样或用双鼓网 倾斜取样。此外可根据海区位置或深度、调查的性质、目
Na——全网鱼卵或仔、稚鱼个体数，单位为粒(ind)或尾(ind)； S——网口面积,单位为平方米（m2）； L——流量计转数； C----流量计校正值。
海洋生物要素调查及评价
水平拖曳样品
以粒/网（ind/net）或尾/网(ind/net)计算。 6 填写报表
按本部分的有关规定填写报表； 7 7.1 分布图绘制
是衡量亲鱼资源量大小和预报补充资源量所必需的资料。
海洋生物要素调查及评价
2
2.1
技术要求和调查要素
技术要求
垂直或倾斜拖网深度
水深大于200m的海区拖网深度为200m至表垂直拖网或斜 拖，水深小于200m的则由底至表垂直拖网或斜拖。 水平拖网深度 水平拖网深度为0m3m层。
垂直或倾斜分段拖网水层
根据测站深度、调查性质和目的的不同来确定.
平面分布图一般用等值线或不同量级的圆圈符号表示。
等值线的取值标准如下：
a)鱼卵和仔、稚鱼总量（单位为 ind/m3或ind/100m3）：1， 5，10，25，50，100，250，500，1 000，5 000；
海洋生物要素调查及评价
b) 鱼 卵 和 仔 、 稚 鱼 主 要 科 、 属 或 种 ( 单 位 为 ind/m3 或
c) 数量小于上述等级时，可用“ +”标在测站上，以示出现。
最新2019-04第四章海洋浮游动物-PPT课件
⑴异足类 用单鳍进行波状运 动。一些种具螺旋外 壳，另一些外壳退化 或消失，身体透明； 具备发达的视觉，靠 视觉捕食其它浮游软 体动物、桡足类、毛 颚动物、纽鳃樽或管 水母。一般出现在大 洋暖水区。
⑵被壳翼足类 多数具有一薄的钙质 外壳；所有被壳翼足类 借助一对翼或一块融合 的翼板进行游泳；所有 被壳翼足类是悬浮食性 者；食物包括浮游植物 以及小型浮游动物和有 机碎屑。
类如，住囊虫：
⑵纽鳃樽（樽海鞘纲）
仅出现在暖水 表面或近表面水域； 个体胶质圆桶状， 两端开口；主要食 物是浮游植物和细 菌；常密集成群， 摄食率高，可明显 降低周围小型生物 密度；与有尾类都 属r选择种。
其生活史特殊（有性与无性交替）：
四 季节浮游生物
主要有两大类：
底栖无脊椎动物的季节浮游幼虫
壳沉淀海底形成有孔 虫软泥。
⑷放射虫： 体呈球形，中央具有 穿孔的硅质囊（中央 囊）；杂食性，包括 细菌、原生动物、小 型甲壳类和浮游植物 （硅藻）；用轴伪足 捕食。大小50微米到 几毫米；一些种可形 成胶状群体；冷水区 常见；硅质残骸形成 放射虫软泥。
⑸浮游纤毛虫
数量丰富，分布广泛；有 纤毛可以运动，特化口纤 毛捕食；捕食小型的鞭毛 虫、小型硅藻和细菌。 砂壳纤毛虫，海洋纤毛虫 的主要类群；具有蛋白质 外壳，可降解；个体小 （20～640微米）；摄食微 型浮游硅藻和光合性鞭毛 虫。近岸水域可摄食利用 浮游植物生产量的4%～ 60%，同时是多种浮游动 物饵料（生态学意义）。
南极磷虾是生活在冰冷的南极海洋的甲壳动物， 因其身上有许多发光器能发出点点磷光而得名 。 在南极水域的磷虾有11种之多，但数量最多，个 体最大的一种称之为南极大磷虾，也就是我们平 常所称的南极磷虾。大洋中的磷虾运动时仅仅依 靠身体腹部短小附肢作为运动器官，完全抵挡不 住海洋的巨大动力，在水中总是随波逐流，因而 被称之为浮游动物。南极海洋里磷虾的数量多得 惊人，它是南极生物之间的食物链中最基本、最 关键、最重要的一环，它的数量多寡，它的盛衰， 直接关系其他南极生物的生长，在维持整个南极 海洋生态平衡中起到巨大作用 。
虾池的浮游生物
浮游生物数量
通过计数浮游生物的数量，了解虾池中浮游生物的 生物量，以判断水体营养状况和生产力。
浮游生物生长繁殖状况
观察浮游生物的生长繁殖状况，了解其繁殖 周期和生长速度，以判断水体环境是否适宜 浮游生物的生长。
监测与评估的意义
Байду номын сангаас
保护虾池生态环境
通过监测与评估虾池中的浮游生物， 了解水体生态环境的状况，及时采取 措施保护和改善生态环境，促进虾类 的健康生长。
促进微生物循环
浮游生物参与了水体中的有机物分解和微生物循环，有助于将有机物质转化为无机物质，维持 水体的生态平衡。
净化水质
吸收有害物质
浮游生物通过吸收水中的氮、磷等营 养盐，降低水体的富营养化程度，从 而起到净化水质的作用。
提高水体溶氧量
浮游生物通过光合作用产生氧气，可 以提高水体的溶氧量，有利于虾类的 呼吸和生长。
详细描述
细菌和真菌群落可以通过投放有益菌和调整水质来保持适当的数量。有益菌可以分解有机物，提高水质，同时还 可以抑制有害菌的生长。在养殖过程中，要定期检测水质中的细菌和真菌数量，及时调整投放量和采取其他管理 措施。
04
虾池浮游生物的监测与评估
监测方法
01 显微镜直接观察
使用显微镜直接观察虾池中的浮游生物种类和数 量，了解其生态分布和动态变化。
虾池的浮游生物
目录
• 虾池浮游生物的种类 • 虾池浮游生物的作用 • 虾池浮游生物的管理 • 虾池浮游生物的监测与评估 • 虾池浮游生物的生态与环境影响 • 虾池浮游生物的研究与展望
01
虾池浮游生物的种类
浮游植物
01 蓝藻
包括颤藻、鱼腥藻等，是虾池中常见的浮游植物， 能进行光合作用，为虾池提供氧气。
渔业海洋浮游生物监测与资源评估
资源可持续性定 义：资源在满足 当前需求的同时， 不损害未来几代 人满足其需求的 能力
资源评估方法： 包括生物量评估、 种群动态评估、 生态系统健康评 估等
资源可持续性分 析：分析资源现 状、发展趋势、 影响因素等，评 估资源可持续性
资源可持续性评 估：根据分析结 果，评估资源可 持续性，提出保 护和管理建议
生态功能：包 括食物链、能 量流动、物质
循环等
环境影响：包 括温度、盐度、 深度、营养盐
等
研究方法：包 括现场调查、 实验室分析、
数值模拟等
浮游生物与渔业资源的关系研究
浮游生物是渔业资源的基 础
浮游生物的数量和种类对 渔业资源的影响
环境因素对浮游生物和渔 业资源的影响
浮游生物与渔业资源的可 持续利用和管理
监测数据分析和处理
数据采集：通 过卫星遥感、 船舶调查、现 场监测等方式
获取数据
数据处理：对 采集到的数据 进行清洗、整 理、分析，提
取有效信息
数据可视化： 将分析结果以 图表、地图等 形式展示，便 于理解和交流
数据应用：将 分析结果应用 于渔业资源评 估、环境保护、 海洋管理等领
域
渔业海洋浮游生 物资源评估
为渔业管理和保 护提供科学依据
监测方法和技术
卫星遥感技术：实 时监测海洋浮游生 物的分布和变化
现场调查：通过船 舶、潜水器等工具 直接观察和采样
生物标志物分析： 通过分析浮游生物 的形态、生理、生 态等特征来评估其 数量和质量
数值模拟：利用计 算机模型模拟浮游 生物的生长、繁殖 和死亡过程，预测 其未来变化趋势
章节副标题
评估目的和意义
了解海洋浮游 生物资源的现 状和变化趋势
生物监测课件-第一章 利用水生生物群落监测水体污染
样品固定
浮游生
结果报告
采样
样品浓缩
物的
浮 游 生 物 样品保存
测定
1
2
3
4
浮游生物： 随波逐流的生活在水体中的微型生物。
浮游生物
浮游植物： 浮游动物
藻类 原生动物 轮虫 枝角类、桡足类
1
一、采样
一、采样工具
（一）采样工具
1.浮游生物网 浮游生物网有两种类型，即定性网和定量网。
1－金属环；2－ 帆布，3－筛绢 ，4－帆布；5－
图2-5 浮游生物浓缩装置
定性哦
（一）定性测定
鉴定时，吸取一滴样品放在载片上，置显微镜下 进行观察。某些生物活动过快，可在载玻片加上适 量的低浓度麻醉剂，如1%硫酸镉、水合氯醛、酒 精等，也可在载玻片上加少许棉纤维，以阻止其活 动。最后将所观察到的种类分门别类地记录下来。 一个样品要多做几张装片进行观察，以确保样品中 的种类都能观察到。
第一章 利用水生生物群落监测水体污染
第一节 水生生物监测断面的布设
一、水生微生物监测断面布设的原则
水生微生物监测断面的布设，应在对所监测区域的自然环 境和社会环境进行调查研究的基础上根据不同的监测目的，根 据以下原则进行布设。 1. 断面要有代表性
根据调查计划方案的目的要求，选择具有代表性的水域布 设断面，以获得所需要的代表性样品。
3．-中污带种类 美丽网球藻（Dictyosphaerium pulchellum） 绿草履虫（Paramoecium bursaria） 剪形臂尾轮虫（Brachionus forficula） 迈压三肢轮虫（Filinia maior） 前额犀轮虫（Rhinoglena frontalis） 短尾秀体溞（Diaphanosoma bracyurum）（ 中污-寡污） 溞状溞（Daphnia pulex）（中污一寡污） 多刺裸腹溞（Moina macrocopa） 沟渠异足猛水溞（Ganthocamp
浮游生物调查方法PPT课件
浮游植物样品 浮游动物样品
第6页/共17页
浮游植物样品 • 所采水样摇匀后倒入沉淀器中静置，使浮游植物完全沉淀。 • 沉淀是一种圆柱形分液漏斗（图2）。如无沉淀器也可用甘杯、烧杯或在原水样
瓶中静置沉淀。
第7页/共17页
• 沉淀器应置于平稳处，避免摇动。水样倾入二 小时后应将沉淀器轻轻旋转一会，以减少藻类 附着在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小 时候。再用乳胶管或橡皮管利用虹吸原理小心 地抽出上都不含藻类的清液。一般约剩下2040毫升沉淀物转入30或50毫升的定量瓶中，用 上述清液冲洗沉淀器2-3次，洗液仍倒入定量瓶 中使水量恰好达到30或50毫升。然后贴上标签， 标签上要记载采集时间、地点、采水量、池号 和样品号等。
第9页/共17页
七、数量计算： 1、定性 2、定量结果 浮游植物定量：
第10页/共17页
• 使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容 量为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和 具有移动台的显微镜。
• 经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖 玻片，如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示 容量标准适合，检查三次均适合，此半数框即 可使用。每次计数时用的盖玻片应用碱水或肥 皂水洗净备用。
•
则两片的均数为（250+246）/2=248
•
均数与第一片之差：248-250= -2
•
均数与第二片之差：248-246=2
则：-2/248= -0.0081即 -0.81%
2/248=+0.0081 即 0.81%
因为0.81%<10%，所以上述相近值的均数应视为计数结果。
第14页/共17页
浮游动物定量：
第8页/共17页
• 虹吸动作要十分仔细、小心。开始时虹吸管一 端放在沉淀器内约三分之二处，另一端套接在 已经用手挤压出空气的橡皮球上，然后轻轻松 手并移开橡皮球使清液流出，为了避免漂浮水 面的一些微小藻类进入虹吸管而被吸走，管吕 应始终低于水面。虹吸管内清液的活动不宜过 快，可用手指轻捏管壁以控制流量，当吸到原 水样的3/5以上时，应使清淮一滴一滴地流下。 吸出的清液要用一洁净的器皿装盛，以便在浓 缩过程在出故障时，可重新倒入沉淀器中浓缩， 不必新采水。
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浮游植物样品 • 所采水样摇匀后倒入沉淀器中静置，使浮游植物完全沉淀。 • 沉淀是一种圆柱形分液漏斗（图2）。如无沉淀器也可用甘杯、烧杯或在原水样
瓶中静置沉淀。
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• 沉淀器应置于平稳处，避免摇动。水样倾入二 小时后应将沉淀器轻轻旋转一会，以减少藻类 附着在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小 时候。再用乳胶管或橡皮管利用虹吸原理小心 地抽出上都不含藻类的清液。一般约剩下2040毫升沉淀物转入30或50毫升的定量瓶中，用 上述清液冲洗沉淀器2-3次，洗液仍倒入定量瓶 中使水量恰好达到30或50毫升。然后贴上标签， 标签上要记载采集时间、地点、采水量、池号 和样品号等。
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七、数量计算： 1、定性 2、定量结果 浮游植物定量：
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• 使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容 量为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和 具有移动台的显微镜。
• 经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖 玻片，如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示 容量标准适合，检查三次均适合，此半数框即 可使用。每次计数时用的盖玻片应用碱水或肥 皂水洗净备用。
•
则两片的均数为（250+246）/2=248
•
均数与第一片之差：248-250= -2
•
均数与第二片之差：248-246=2
则：-2/248= -0.0081即 -0.81%
2/248=+0.0081 即 0.81%
因为0.81%<10%，所以上述相近值的均数应视为计数结果。
第14页/共17页
浮游动物定量：
第8页/共17页
• 虹吸动作要十分仔细、小心。开始时虹吸管一 端放在沉淀器内约三分之二处，另一端套接在 已经用手挤压出空气的橡皮球上，然后轻轻松 手并移开橡皮球使清液流出，为了避免漂浮水 面的一些微小藻类进入虹吸管而被吸走，管吕 应始终低于水面。虹吸管内清液的活动不宜过 快，可用手指轻捏管壁以控制流量，当吸到原 水样的3/5以上时，应使清淮一滴一滴地流下。 吸出的清液要用一洁净的器皿装盛，以便在浓 缩过程在出故障时，可重新倒入沉淀器中浓缩， 不必新采水。
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采样
浮游生物
1 2 3
样品固定 样品浓缩 样品保存
浮游生 物的 测定
结果报 告
4
1
采样
一、采样工具
2.采水器
1.1定性网 1.2定量网
1.定性样的采集 水面下0.5m处 画 二、采样层次(深度） 时间为 5～10分钟 1.江河: 在水面下0.5m处 2.定量样的采集 2.湖泊、水库
2.1水深<2m 在0.5 m 处 2.2深水水体 要分层
浮游生物的测定
定性: 将样品分类鉴定，以确定其中的种类组成
载玻片、显微镜、麻醉剂（1%硫酸镉、水合氯醛、酒精等）
1. 计数框及其使用
1.2网格计数框
1.1塞奇威克一拉夫脱计数框（简称S-R计数框）
长：50mm，宽20mm，深1mm
计 数 方 法 方 法 方 法 呢
2.显微镜的校准
两重合线之间台尺格数 目尺长度(m m) 两重合线之间目尺格数
10～50
2
固定浓缩保存
鲁哥氏液 （
KI + I2 + H2O）
1000mL水样 + 15mL鲁哥氏液
4%的福尔马林
100mL水样 + 4～5mL福尔马林
70%酒精 沉淀法：沉淀24～48小时 过滤法：用滤器过滤 离心法：用离心机离心源自 3未完待续定性测定
计数框使用
计数 计数方法
显微镜校准
定量测定
注
3.计数
个体计数仍是目前常用的浮游生物定量方法
浮游生物数/ mL=
C 1000 L W D S
计数方法
3.网格计数法
C 1000 ADF
C V1 V2
4
进利 行用 评指 价示 生 物
生利 物用 指多 数样 进性 行指 评数 价和 各 种
所利 占用 比藻 例类 进各 行类 评群 价在 群 落 中
采集对象 藻 类 原生动物
三、采样方法及采样量
1.浮游生物网
2.1水深<2m 在0.5 m 处 2.2深水水体 要分层
1～2 1～5
3.透明度盘
2.1瓶式采水器 2.2水生-81型有机玻璃采水器 （直径 20cm）
四、采样频率
采样量（升）
成熟甲壳动物 水样体积 = r2 X H r: 网口半径 H：拖取深度
浮游生物
1 2 3
样品固定 样品浓缩 样品保存
浮游生 物的 测定
结果报 告
4
1
采样
一、采样工具
2.采水器
1.1定性网 1.2定量网
1.定性样的采集 水面下0.5m处 画 二、采样层次(深度） 时间为 5～10分钟 1.江河: 在水面下0.5m处 2.定量样的采集 2.湖泊、水库
2.1水深<2m 在0.5 m 处 2.2深水水体 要分层
浮游生物的测定
定性: 将样品分类鉴定，以确定其中的种类组成
载玻片、显微镜、麻醉剂（1%硫酸镉、水合氯醛、酒精等）
1. 计数框及其使用
1.2网格计数框
1.1塞奇威克一拉夫脱计数框（简称S-R计数框）
长：50mm，宽20mm，深1mm
计 数 方 法 方 法 方 法 呢
2.显微镜的校准
两重合线之间台尺格数 目尺长度(m m) 两重合线之间目尺格数
10～50
2
固定浓缩保存
鲁哥氏液 （
KI + I2 + H2O）
1000mL水样 + 15mL鲁哥氏液
4%的福尔马林
100mL水样 + 4～5mL福尔马林
70%酒精 沉淀法：沉淀24～48小时 过滤法：用滤器过滤 离心法：用离心机离心源自 3未完待续定性测定
计数框使用
计数 计数方法
显微镜校准
定量测定
注
3.计数
个体计数仍是目前常用的浮游生物定量方法
浮游生物数/ mL=
C 1000 L W D S
计数方法
3.网格计数法
C 1000 ADF
C V1 V2
4
进利 行用 评指 价示 生 物
生利 物用 指多 数样 进性 行指 评数 价和 各 种
所利 占用 比藻 例类 进各 行类 评群 价在 群 落 中
采集对象 藻 类 原生动物
三、采样方法及采样量
1.浮游生物网
2.1水深<2m 在0.5 m 处 2.2深水水体 要分层
1～2 1～5
3.透明度盘
2.1瓶式采水器 2.2水生-81型有机玻璃采水器 （直径 20cm）
四、采样频率
采样量（升）
成熟甲壳动物 水样体积 = r2 X H r: 网口半径 H：拖取深度