微生物标本采集及保存要求

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微生物标本采集送检及处理原则

微生物标本采集送检及处理原则

微生物标本采集送检及处理原则一、标本采集1.采集时机:采集标本应在疾病出现初期进行,避免开始使用抗生素治疗前采集。

2.采集部位选择:根据病情选择合适的部位进行采集,一般可根据症状、疾病类型和临床表现进行判断。

3.采集方法:采集标本时应采取无菌手法,使用无菌采样器材,避免污染和交叉感染。

4.标本储存条件:采集后的标本应立即送往实验室进行检测,若无法及时送达实验室,则应储存在合适的条件下,避免细菌的生长和繁殖。

二、标本送检1.标注采集信息:标本送检前应在标本瓶或容器上标注病人信息、采集时间和采集部位等必要的信息,确保标本的准确性和唯一性。

2.冷藏和运输:对于易变质的标本,如粪便、尿液等,应冷藏并尽早送达实验室;对于其他标本,应采取适当的保存和运输方式,避免温度过高或过低,影响细菌的生存和检测结果的准确性。

三、标本处理1.标本处理前的准备:在对标本进行处理前,必须进行准备工作,如标记标本编号、记录标本类型、检查标本的一致性和完整性等。

2.标本处理方法:根据标本类型的不同,采取相应的处理方法,如深部标本(如脑脊液、关节液等)应优先进行细菌涂片、培养等方法,浅部标本(如咽拭子、鼻拭子等)可直接进行细菌培养。

3.标本处理的时间:不同类型的标本处理时间有所不同,但一般应尽快进行处理,避免细菌在标本中的生长和污染。

四、标本保存1.标本封存:处理完的标本应在标本瓶或容器上进行标注,并进行封存,避免污染和交叉感染。

2.标本保存时间:保存标本的时间应根据实验室的需求和标本的特性来确定,如对于一些常见的标本,如尿液、粪便等,一般保存时间较短,而对于其他一些特殊标本,如组织标本等,可保存更长时间。

总之,微生物标本采集送检及处理原则的正确遵守可以确保实验结果的准确性和可靠性,为疾病的诊断和治疗提供有力的支持。

同时,医务人员在进行标本采集和处理过程中应加强无菌操作和个人防护,有效避免交叉感染的发生,保障自身和他人的健康安全。

微生物标本采集及保存要求

微生物标本采集及保存要求

微生物标本采集及保存要求引言微生物标本的采集和保存是微生物学研究和诊断的基础。

正确的采集和保存方法能够确保标本的质量和完整性,并提供可靠的结果。

本文将介绍微生物标本采集和保存的要求,旨在帮助人们正确进行微生物标本的处理。

1. 标本采集前的准备在进行微生物标本采集之前,准备工作是至关重要的。

以下是一些需要注意的事项:•准备采集工具和材料: 预先准备好所需的采集工具和材料,如无菌容器、无菌拭子等。

•确保个人卫生: 采集标本前,采集人员应洗手,佩戴适当的个人防护设备,例如手套和口罩,以防止交叉感染。

•了解采集部位和要求: 在采集标本前,了解所要采集的部位和采集要求,以便采集人员能够正确操作。

2. 标本采集步骤下面是一些常见微生物标本的采集步骤:2.1 血液标本血液标本是常见的微生物病原体检测标本之一。

以下是血液标本的采集步骤:1.选择合适的采集部位: 常用的采集部位有静脉内和指尖采血。

根据需要选择合适的采集部位。

2.消毒采集部位: 使用适当的消毒剂对采集部位进行消毒,以减少细菌的污染。

3.利用无菌注射器或放血针采集血液: 选择合适的采血设备,按照正确的技术和步骤采集适量的血液。

4.将血液转移到无菌容器中: 将采集到的血液转移到适当的无菌容器中,如血培养瓶或离心管。

2.2 呼吸道标本呼吸道标本用于检测呼吸道感染。

以下是常见的呼吸道标本采集步骤:1.依照需要选择合适的采集方法: 常见的呼吸道标本采集方法包括咽拭子、鼻拭子、喉拭子等,根据需要选择合适的采集方法。

2.使用无菌拭子采集标本: 使用无菌拭子轻轻刮取相应部位的分泌物,注意避免刮伤黏膜。

3.将拭子转移到无菌容器中: 将采集到的标本拭子放入无菌容器中,并确保容器密封。

2.3 尿液标本尿液标本常用于病原体的检测和诊断。

以下是尿液标本的采集步骤:1.准备容器和适当的采集方法: 准备无菌容器和适当的采集方法,如尿杯或导尿管。

2.进行尿液采集: 采集尿液时应注意保持个人卫生,避免污染。

临床微生物样本采集规范

临床微生物样本采集规范

临床微生物样本采集规范临床微生物样本采集规范1. 范围和目的本规范适用于临床微生物样本的采集、处理和管理,旨在保证样本采集的质量和规范性,确保临床微生物诊断结果的准确性和可靠性。

2. 术语和定义(1)微生物:指包括细菌、真菌、病毒、支原体、立克次体、螺旋体等在内的微小生物体。

(2)临床样本:指从患者体内采集的各种生物标本,如血液、口腔、鼻咽部、骨髓、尿液、痰液、脑脊液等。

(3)采集容器:指用于采集临床样本的容器,如血液采集管、尿样瓶、培养皿等。

(4)采集套装:指一次完整的样本采集过程中所需的所有采集工具和材料。

3. 采集前准备(1)确定采集部位、时间和采集方式,注意患者的生命体征和病情变化。

(2)准备好所需的采集套装和采集容器,在样本采集前做好标签,并核对患者信息。

(3)认真阅读所有相关规范和实验室要求,确保样本采集符合要求。

4. 采集操作步骤(1)根据采集部位和样本类型选择合适的采集套装。

(2)采集前应让患者了解采集的目的和过程,并获得其同意。

(3)采集前要检查采集部位,患者的身体状态和生命体征,确保采集过程安全和无痛苦。

(4)采血时应注意采血量、采血速率、采血部位、采血方式等。

(5)尿样采集时应注意尿样的采集量、采集时间、采集方式、保护好样本的完整性和纯度。

(6)痰液采集时应注意痰液的颜色、黏度、量和纯度,选择合适的采集器具和采集方式。

(7)脑脊液采集时应注意采集部位、采集方式、采集量、采血顺序和样本处理标准等。

(8)其他临床样本采集时,应根据具体要求和操作规范,选择合适的采集方法和器具。

5. 样本运输和储存(1)在采集后,立即将样本放入相应的采集容器中,尽快送至实验室进行处理。

(2)若无法立即处理样本,应按要求在采集容器中注明采集时间和采集者信息,并存储在规定温度下,以便后续处理。

(3)运输过程中应遵循规范,确保样本不泄漏、不污染,并尽快送至目的地。

(4)储存过程中应保持样本的纯度和完整性,控制储存温度,在保质期内使用。

微生物检验标本采集和运送原则

微生物检验标本采集和运送原则

微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性,同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。

下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识,欢迎阅读。

采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作,非无菌部位尽量减少正常菌群的污染,采样量足。

采样容器专用的无菌,防渗漏,有盖,无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。

送检尽快送检,一般不超过2小时。

若不能及时送检可于4-8℃保存,但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。

当标本量小于1ml时应于15~30分钟内送检,防止挥发和干燥。

微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。

2.尽量在抗菌药物使用前,或停药3至5天后采集标本,如不能停用抗菌药物,应于下次抗菌药物应用前采集。

应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。

3.选择正确的解剖部位,并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。

4.采样时应严格执行无菌操作,将污染可能降至最低。

5.收集真正感染的病灶处的标本,且避免邻近区域常居菌群的污染。

6.采用专用无菌容器收集标本。

容器须灭菌处理,防止渗漏,但不得使用消毒剂。

标本中不可添加防腐剂。

7.采样后应立即送检,最好在2h内。

如不能及时送检,应将标本置于适当的储存环境待送,但不超过24小时。

对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。

当标本量小于1ml时应于15~30分钟内送检,防止挥发和干燥。

8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本,应使用专用的纤维拭子。

9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息,在检验申请单上填写足够的有关临床资料。

(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。

微生物检验标本采集规范

微生物检验标本采集规范

微生物检验标本采集规范
正确采集、运送、保存及处理微生物检验标本,对于保证微生物检验质量至关要,为了准确检出病原菌,避免漏检及误诊,临床医护人员及实验室工作人员应掌握微生物检验标本采集、运送、保存及处理原则。

下面是yjbys 小编为大家带来的关于微生物检验标本采集规范的知识,欢迎阅读。

标本采集的一般原则:
1、早期采集:采集时间最好是病程早期,急性期,且必须在使用抗菌药物(俗称消炎药)之前采集,确保病原菌的检出;
2、无菌操作:采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或黏膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本,采集的标本盛于无菌容器内送检。

盛装标本的容器不能使用消毒剂处理,标本中也不得添加防腐剂,以免降低病原菌的分离率;
3、适量标本:标本量过少可能导致假阴性结果。

各种标本采集注意事项:
一、呼吸道标本采集
(1) 送检指征:凡是发热、咳嗽和咳痰,痰呈脓性,黏稠或血性,并伴有胸痛,气急,外周血白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高,应采集痰液或下呼吸道标本。

(2) 标本采集时间:a、以晨痰为好,患者清晨用凉开水反复漱口后用力自气管咳出第一口痰,将痰采集于无菌容器中尽快送检。

b、在应用抗菌药物之前采集标本。

二、脓液及创伤感染分泌物标本采集
(1) 送检指征:红、肿、热、痛和功能障碍是化脓性感染的五个典型特征。

采集运输保存使用高致病性病原微生物标本的规定

采集运输保存使用高致病性病原微生物标本的规定

采集、运输、保存、使用高致病性病原微生物标本的规定1、目的为了加强病原微生物实验室以下称实验室生物安全管理,保护中心实验室工作人员和公众的健康,制定本规定.2、适用范围实验室及其从事实验活动的技术人员.3、高致病性微生物定义第一类、第二类病原微生物统称为高致病性病原微生物.第一类病原微生物,是指能够引起人类或者动物非常严重疾病的微生物,以及我国尚未发现或者已经宣布消灭的微生物.第二类病原微生物,是指能够引起人类或者动物严重疾病,比较容易直接或者间接在人与人、动物与人、动物与动物间传播的微生物.4、样本采集病原微生物样本应当具备下列条件:1具有与采集病原微生物样本所需要的生物安全防护水平相适应的设备,包括个人防护用品隔离衣、帽、口罩、鞋套、手套、防护眼镜等、防护材料、器材和防护设施等根据病原微生物实验活动进行危害评估,确定防护要求.2具有掌握相关专业知识和操作技能的工作人员;熟练掌握采样的操作规程血样、尿样、分泌物等.3具有有效的防止病原微生物扩散和感染的措施;如防刺穿的垃圾桶、紧急处置意外的药物和器具.4具有保证病原微生物样本质量的技术方法和手段.5 采集过程中应对样本的来源、采集过程和方法等应作详细记录.5、样本的运输总体原则我国民航部门目前提出,通过民航运输菌毒种及样本,统一按国际标准进行包装、标识.样本运输的审批程序:1运输高致病性病原微生物菌毒种或样本,必须经省级以上卫生主管部门批准.2固定单位间多次运输相同品种高致病性病原微生物菌毒种或样本的可申请多次运输,有效期6个月.3本省行政区域内运输高致病性病原微生物菌毒种或样本,属省直、高校单位的由省卫计委生物安全领导小组办公室审批.省辖市、扩权县及驻豫有关单位,由所在地卫生行政部门进行初审,报省卫计委审批.4跨省运输高致病性病原微生物菌毒种或样本的单位,由省卫计委生物安全领导小组办公室初审,并报国家卫计委审批.5运输结束后,申请单位要将运输情况向原批准部门书面报告.运输高致病性微生物的要求运输目的、用途、和接收单位符合国务院卫生主管部门的规定.容器应当密封:防水、防破损、防泄漏、耐高低温、耐高压.容器或包装材料要有批准文号、合格证书复印件或者高致病性本源微生物菌毒种或样本运输容器或包装材料承诺书.容器或包装材料上应有相关规定的生物危害标识、警告语、提示语. 运输的包装系统感染性及潜在感染性物质的运输应使用三层包装系统:内层容器,中层包装以及外层包装. 包装符合联合国编号UN2814和UN2900只导致动物致病 P620的包装要求;该种包装附加要求:完整包件需通过不低于9米的跌落测试;外层容器的最小尺寸为100毫米.用防水、防漏的内层容器包装并贴上指示内容物的标签后装入中层容器;将“感染性物品”标记采用GB 190规定的标记贴在外包装外,并在“感染性物品”标记上标明其生物危害程度.两面有“向上”和“易碎”的标记采用GB 191规定的标记;将内容物详细清单放在第二层和外包装间;外包装的标签上还应包括以下内容:接收者姓名、和地址;运输者姓名、和地址.内层容器和中层容器间应放置足量的吸水性材料,以便内层容器打破或泄漏时,能吸收溢出的所有液体.然后将中层容器固定在硬质外层容器中以免中层容器在运输过程中受到物理性损坏.6、样本的保存保存的温度要求为保持菌毒种活力,运输中应尽量使菌毒种处于适宜温度内.保持温度的方法有干冰降温法、湿冰降温法和液氮法.干冰或湿冰置于二层和三层包装间.冻干菌毒种用干冰或湿冰即可满足温度要求,当采取湿冰时,要首先对第一层包装进行防水检验,运输时间应在72小时内.未冻干菌毒种最好用液氮运输;也可以用干冰、湿冰,包装要求同上,运输时间要尽可能的缩短.样本运输人员要求具备相应的微生物专业知识和生物安全知识;熟悉所携带微生物的特性;携带便捷的联络工具,有突发情况时,能够迅速与有关部门取得联系;准备必须的文件,包括微生物购买许可文件和微生物携带、运输许可文件等.应当由不少于2人的专人护送,并采取相应的防护措施.运输路线最短,时间最快,避免货物周末或公共假日.有关单位或个人不得通过公共电汽车和城市铁路运输病原微生物菌毒种或样本.承运单位应当与护送人员应有防止被盗、被抢、丢失、泄露的措施.。

微生物标本采集和运送的基本原则

微生物标本采集和运送的基本原则

微生物标本采集和运送的基本原则
微生物标本采集和运送的基本原则包括以下几点:
1. 采集时遵守无菌操作原则:采集人员应佩戴无菌手套,使用经消毒处理的工具和容器,确保采集过程不会引入外来微生物污染。

2. 标本采集要及时:一般来说,微生物标本应在病情出现或患者就诊后尽快采集,以确保标本中的微生物不会失活或过度增殖。

3. 采集要选择适当的采样部位和方法:不同类型的微生物感染,需要针对不同的组织、液体或体表进行采集。

采样时应遵循临床指南,选择适当的采样部位和方法。

4. 采集要足够数量:为了保证对病原体的准确鉴定和敏感性测试,采集的标本应足够数量。

采集过程中,避免采样物与采集容器外部环境的交叉污染。

5. 保证采样物的完整性和稳定性:采集的标本应保持完整,避免在采集、运输和处理过程中造成微生物失活或污染。

对于需保存在冷藏或冷冻条件下的标本,应采取相应的措施确保稳定性。

6. 标本运送要符合规定:标本应尽快送至实验室,运送过程中应避免温度变化、震荡和倒置等可能影响标本稳定性的因素。

运送时应采取相应的隔离措施,避免交叉感染。

7. 运送要有标志和单据:标本运送时应进行明确标识,并附上相应的单据,包括采样日期和时间、采样部位、采样者姓名、患者姓名和病历号等信息,以确保标本能够被正确识别和追踪。

总的来说,微生物标本采集和运送的基本原则是确保标本的无菌、完整和稳定性,遵循正确的采集方法和运送规定,以保证标本的质量和可靠性。

临床微生物标本的采集,储存和转运

临床微生物标本的采集,储存和转运

临床微生物标本的采集,储存和转运微生物检验的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理,但不得使用消毒剂6.送检标本应注明来源和检验目的标本采集1.尽早采集2.无菌操作3.合适部位4.适量标本5.适当方法6.安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗生素使用之前采集1.3对已用抗生素又不能停药者,可在下次用药前采集2-合适部位“背景干扰”2.1无菌标本:注意局部及周围皮肤的消毒,严格进行无菌操作与外界相通的腔道:避开腔道口区标本,以免皮肤表面正常菌群的污染,造成混淆和误诊。

2.2正常菌群寄生部位:采集时应特别小心;应明确检查的目的菌在进行分离培养时,采用特殊选择性培养基2.3血标本采集:应避免输液的影响。

3-无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或粘膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本。

3.1.在采集血液、脑脊液、胸腔积液、关节液等无菌标本时,应注意对局部及周围皮肤的消毒,严格进行无菌操作;3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时,如窦道标本,应从窦道底部取活组织检查,而非从窦道口取标本,以免受皮肤表面正常菌群的污染,造成混淆和误诊;3.3.采集的标本均应盛于无菌容器内送检。

盛装标本的容器须先经高压灭菌、煮沸、干热等物理方法灭菌,或使用一次性无菌容器,不能用消毒剂或酸类处理。

标本中也不得添加防腐剂,一面降低病原菌的分离率。

4-适量标本4.1标本采集应足量。

标本量过少,可能会导致假阴性结果。

4.1.1血液标本:通常成人采血量每瓶8-10ml,儿童每瓶1-5ml;脑脊液、骨髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本:三1ml尿液标本:>3ml4.1.3粪标本:1-3g 或 1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊:4.2.1痰、肺泡灌洗液或支气管冲洗液:>5ml;4.2.2清晨中段尿:5-10ml;4.2.3粪标本:>1g;4.2.4穿刺液(胸水、腹水、关节液等):5- 10ml。

临床微生物标本采集和运送基本原则

临床微生物标本采集和运送基本原则

临床微生物标本采集和运送基本原则【最新版】目录一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.无菌操作3.采集量4.标本保存5.标本运输三、微生物标本运送的基本原则1.运送条件2.运送时间3.运送包装四、微生物标本采集和运送的意义正文微生物标本采集和运送是临床微生物学检验的基础环节,对于保证检验结果的准确性和可靠性具有重要意义。

本文将详细介绍微生物标本采集和运送的基本原则。

一、微生物标本采集的基本原则1.采集时机:微生物标本的采集应在抗生素使用前,以避免抗生素对病原微生物的杀灭作用。

在感染初期或病情加重时采集标本,可提高病原体的检出率。

2.无菌操作:在微生物标本采集过程中,应严格执行无菌操作,避免正常菌群和其他杂菌的污染。

采集非无菌部位的标本时,应尽量减少污染。

3.采集量:微生物标本的采集量要充足,以便进行后续的培养和检测。

不同类型的标本有不同的采集量要求,一般要求采集足够量的标本。

4.标本保存:微生物标本在采集后应及时保存,室温下保存时间不得超过 2 小时(夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存),冷藏保存时间不得超过 8 小时。

5.标本运输:微生物标本在运输过程中应保持无菌状态,避免温度过高或过低,以及剧烈震动。

运输包装应具有良好的保护性能,防止标本破损或泄漏。

二、微生物标本运送的基本原则1.运送条件:微生物标本在运送过程中应保持适宜的温度和湿度,避免高温、低温和干燥。

不同类型的标本有不同的运送条件要求,一般要求在 2-8℃的条件下运送。

2.运送时间:微生物标本的运送时间应尽量缩短,以减少病原体的死亡或活性降低。

一般要求在采集后 24 小时内送检。

3.运送包装:微生物标本的运送包装应具有良好的保护性能,防止标本在运输过程中破损或泄漏。

包装材料应无毒、无菌、防渗漏。

三、微生物标本采集和运送的意义微生物标本采集和运送的质量直接关系到临床微生物学检验的结果。

正确采集和运送微生物标本,可以提高病原体的检出率,为临床诊断、治疗和预防感染提供可靠的依据。

微生物标本采集的一般原则

微生物标本采集的一般原则

微生物标本采集的一般原则以微生物标本采集的一般原则为标题,本文将介绍微生物标本采集的基本原则和注意事项,以帮助医务人员正确采集标本,提高微生物检测的准确性和可靠性。

一、采集前准备1.了解患者病史和临床表现,确定采集标本的类型和数量。

2.告知患者采集标本的目的和方法,以及可能的不适和风险。

3.准备好采集工具和消毒液,保证采集过程的无菌和安全。

二、采集标本的基本原则1.选择合适的采集部位和方法,避免污染和误诊。

2.采集前要进行局部消毒,避免细菌和病毒的污染。

3.采集标本时要避免空气污染和手部污染,保证标本的纯度和可靠性。

4.采集后要及时送检,避免标本变质和误诊。

三、常见标本的采集方法和注意事项1.血液标本采集方法:选择合适的采血部位和针头,按照规范的采血程序进行采集。

注意事项:采集前要进行局部消毒,避免细菌和病毒的污染;采集时要避免空气污染和手部污染,保证血液的纯度和可靠性;采集后要及时送检,避免血液变质和误诊。

2.尿液标本采集方法:让患者用清洁的容器收集中段尿液,避免污染和误诊。

注意事项:采集前要告知患者正确的收集方法,避免尿液污染和误诊;采集时要避免手部污染和空气污染,保证尿液的纯度和可靠性;采集后要及时送检,避免尿液变质和误诊。

3.呼吸道标本采集方法:选择合适的采集部位和方法,如咽拭子、鼻拭子、痰液等,按照规范的采集程序进行采集。

注意事项:采集前要告知患者正确的采集方法,避免误诊和污染;采集时要避免手部污染和空气污染,保证标本的纯度和可靠性;采集后要及时送检,避免标本变质和误诊。

4.皮肤和软组织标本采集方法:选择合适的采集部位和方法,如切口分泌物、脓液、组织等,按照规范的采集程序进行采集。

注意事项:采集前要进行局部消毒,避免细菌和病毒的污染;采集时要避免手部污染和空气污染,保证标本的纯度和可靠性;采集后要及时送检,避免标本变质和误诊。

四、采集后的处理和保存1.采集后要及时送检,避免标本变质和误诊。

病原微生物标本采集运送

病原微生物标本采集运送

病原微生物标本采集运送IMB standardization office【IMB 5AB- IMBK 08- IMB 2C】病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集,运送,保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要,为了准确检出病原菌,避免漏检与误诊,临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择,采集,运送,保存及处理的一般原则。

一、标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期,急性期,且必须在使用抗菌药物之前采集,确保病原菌的检出。

2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染,使病原菌与正常菌群混淆,造成临床误诊。

采集的标本应存放在无菌容器内,容器不能使用消毒剂处理,标本中也不能添加防腐剂,以免降低病原菌的检出。

3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。

4.适当的采集方法对于厌氧菌,需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的,用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物,室温保存,不能冷藏和冷冻。

5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌,防漏,应带有螺旋盖的容器内。

二、标本的运送1.标本采集后立即送检,若有延迟也应在2小时内送到实验室,否则会影响病原菌的检出,一般性的细菌培养标本若需延迟送检时,应置于4度冰箱保存,且不能超过24小时。

2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量,少量液体(小于1ml)或组织(小于1cm3)应在15~30分钟内送到实验室,较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时,厌氧培养标本原则上是床边接种,如延迟送检,需保存在厌氧运送培养基中,室温保存,不得超过24小时。

三、不同标本的采集,运送(一)血液标本采集,运送1.血培养指针征当患者出现:发热(大于38度)或低温(小于36度),寒战,白细胞增多,皮肤黏膜出血,休克,多器官衰竭,血压降低,c反应蛋白升高及呼吸加快,血液病患者出现粒细胞减少,血小板减少等,具备上述一种或几种体征时,临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养,对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前,及时做血培养。

临床微生物检验标本采集规范要求★

临床微生物检验标本采集规范要求★

24小时尿
记录尿量,将尿液混匀后取适量用于 检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便 表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下,如肠道感 染,可用直肠拭子采集粪 便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便 用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液,避免唾液和 鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下,如重症肺炎,可通 过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本 。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的,选择最 佳的采集时间,如空腹采集、餐后采 集等。
注意采集时间与用药时间的间隔,避 免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等,确保自 身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则,避免交叉感染和环境污染 。
02
标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展,选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如,对于急性感染患者,应在发热期采集标本;对于慢性感染患者,
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险,保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中,应避免接触非检 验部位,确保标本不受污染。
采集后应及时送检,避免长时 间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检,避免长时间 存放导致变质。
保存过程中应定期检查,确保标本质 量。
对于需要长时间保存的标本,应采取 适当的保存措施,如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情 况,避免干扰检验结果。

微生物标本采集

微生物标本采集

微生物标本采集微生物标本采集是一项基础且重要的工作,对于临床诊断、疾病防控以及科学研究都具有至关重要的作用。

本文将详细介绍微生物标本采集的基本原则、采集方法、注意事项以及标本的保存与运送。

一、微生物标本采集的基本原则1.及时性:微生物标本采集应在患者出现症状或怀疑感染微生物时尽快进行,以便获取具有代表性的标本。

2.无菌操作:采集微生物标本时,必须遵循无菌操作原则,避免污染标本,确保检测结果的准确性。

3.适量:采集的微生物标本应足够进行所需检测,同时避免过量采集,减少对患者造成的不适。

4.适宜的标本类型:根据微生物的生长特性、感染部位以及检测目的,选择适宜的标本类型。

5.标本标识:采集的微生物标本应进行清晰、准确的标识,包括患者姓名、标本类型、采集时间等信息。

二、微生物标本采集方法1.皮肤、黏膜表面:使用无菌棉签或无菌注射器,轻轻擦拭或抽取皮肤、黏膜表面的分泌物。

2.血液:采用无菌注射器抽取静脉血,避免皮肤消毒剂污染。

3.呼吸道标本:采用无菌吸痰管或纤维支气管镜采集呼吸道分泌物;咳痰患者应采集清晨第一口痰。

4.尿液:采集清洁中段尿,必要时可采用导尿术。

5.粪便:采集粪便标本时,应避免粪便与尿液混合,采用无菌容器。

6.生殖道分泌物:男性患者采用无菌拭子采集尿道口分泌物;女性患者采集宫颈分泌物。

7.组织标本:在无菌条件下,切取感染部位的组织,放入无菌容器。

三、微生物标本采集注意事项1.采集前准备:了解患者的病情、用药情况以及采集部位,确保采集时机适宜。

2.消毒:采集部位应进行充分消毒,避免污染标本。

3.避免污染:采集过程中,避免触及非无菌部位,确保无菌操作。

4.采集量:根据检测需求,采集适量的标本。

5.标本保存:采集后的微生物标本应尽快送检,无法及时送检的标本应妥善保存。

四、微生物标本保存与运送1.温度:根据微生物的生长特性,选择适宜的保存温度。

一般而言,细菌标本应在4℃保存,病毒标本应在-70℃保存。

微生物标本采集送检及处理原则

微生物标本采集送检及处理原则

微生物标本采集、送检及处理原则一、标本采集的一般原则:1、病程早期、急性期或症状典型时,使用抗生素前;2、无菌采集应无污染,严格进行无菌操作;3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本,采集量不应过少;4、注意在不同病程采集不同部位标本;5、采集标本时要防止传播和自身感染;二、标本的处理:1、标本保存在4℃环境中,在2h之内送检;脑脊液则要在25 ℃保存,用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h;对环境敏感的细菌应保温并立即送检;2、标本中可能含有致病菌,必须注意安全防护;切勿污染环境;对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送,严格按规定包装;3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送,有时可直接用抽取标本的注射器运送;Ⅰ血液及骨髓标本:血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法;如从患者血液中检出细菌,一般应视为病原菌;常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌A、B群、肺炎链球菌等、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等;1、采血时间及次数2、抽血部位及抽血量3、报告方式:培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”;查见细菌报告菌名和药敏结果;4、菌血症、败血症的诊断标准:1两次培养均出现同一种细菌可排除污染;2发病星期后血中抗体滴度上升;Ⅱ脑脊液标本:脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值;正常人的脑脊液是无菌的,检出细菌提示有细菌性急性化脓性、结核性等脑膜炎;常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌A、B群和肺炎链球菌、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等;1、涂片检查:1 一般细菌涂片检查:例如:革兰阴性、凹面相对的球菌,可能是脑膜炎奈瑟菌;链状排列的革兰阳性球菌;长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌,可能是流感嗜血杆菌;2结核分枝杆菌涂片检查3新生隐球菌涂片检查2、分离培养3、报告方式:培养48小时,仍无菌生长者报告“培养2天无细菌生长”;查见细菌报告细菌,报告菌名和药敏结果;Ⅲ呼吸系统标本:一痰标本下呼吸道的痰液是无细菌的,而经口腔咳出的痰带有多种上呼吸道的正常寄生菌如草绿色链球菌;若从患者痰标本中查见致病菌或条件致病菌,提示有上呼吸道感染;常见的病原菌主要有肺炎链球菌、A群链球菌、金黄色葡萄球菌、卡他布兰汉菌、白喉棒状杆菌、结核分枝杆菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肠杆菌和军团菌;1、标本的采集时间2、标本采集方法:1 自然咳痰法 2 气管镜下采集法 3 气管穿刺法 4 结核分枝杆菌标本收集法:收集24h痰液以提高阳性检出率;3、涂片检查:1一般细菌涂片2结核分枝杆菌涂片3放线菌及诺卡菌涂片4、培养:1培养标本的选择:应选择粘液痰作涂片;2痰标本培养前处理:用无菌盐水将痰洗涤3次,加入等量的1%胰酶溶液,37oC水浴90min,使痰液均质化后备用;3分离培养5、报告方式:痰标本培养24小时后仅有草绿色链球菌生长而无致病菌生长,报告“正常菌群”;查出的致病菌,报告菌名和药敏结果,同时报告细菌的量化指标;二咽拭标本正常咽拭有多种上呼吸道的正常菌群如草绿色链球菌;若从患者标本中查出致病菌提示上呼吸道有细菌感染如急、慢性扁桃体炎,咽炎,喉炎等常见的病原菌主要有金黄色葡萄球菌、表皮葡萄球菌、化脓性链球菌、微球菌和棒状杆菌等;1、涂片检查先培养后涂片;2、分离培养3、报告方式:同痰标本检查;Ⅳ穿刺液标本穿刺液包括胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液等;正常穿刺液是无菌的,若从患者穿刺液中查见致病菌或条件致病菌提示该部位有细菌感染;胸腔感染的病原菌以结核分枝杆菌多见;腹腔感染的病原菌以肠道细菌如大肠挨希菌、粪肠球菌,以及结核分枝杆菌多见;心包炎和关节腔液以金黄色葡萄球菌、溶血性链球菌、大肠埃希菌和铜绿假单胞菌多见;1、涂片检查先接种后涂片2、分离培养:1普通培养 2厌氧培养 3结核菌培养3、报告方式:培养24h无细菌生长,报告“培养24h无细菌生长”;查见细菌,报告菌名和药敏结果;Ⅴ泌尿、生殖道标本一尿液标本中段尿培养加计数对于泌尿道感染的诊断有重要价值;细菌培养必须结合菌落计数辨别是否为病原菌;有致病菌或条件致病菌生长,菌落计数>105/ml,提示感染膀胱炎,肾盂肾炎、肾或膀胱结核等;常见病原菌主要有大肠埃希菌、葡萄球菌、链球菌、变形杆菌和伤寒沙门菌等;1、中段尿标本采集法2、涂片检查:1一般细菌及淋病奈瑟菌2念珠菌3结核分枝杆菌3、一般细菌培养:如培养2d无细菌生长,即可弃去;1倾注平板法2平板接种环法3标准接种环法:若定量接种环含量为.001ml,则整个平板菌落数超过100个,可报告“菌落数>105/ml”;4、特殊培养:1淋病奈瑟菌培养2厌氧菌培养3结核分枝杆菌培养5、报告方式:培养24h细菌生长,报告“24h无细菌生长”;查见细菌,报告菌名及其菌落计数菌落数/ml和药敏结果;二生殖道标本正常的内生殖器是无菌的,而外生殖器包括男性尿道口和女性阴道有多种细菌寄生;查见病原菌提示有细菌感染;常见的病原菌主要有葡萄球菌、肠球菌、链球菌、淋病奈瑟菌、大肠埃细菌、变形杆菌等;1、涂片检查:革兰染色镜检2、分离培养:1普通培养2淋病奈瑟菌培养3阴道加特纳菌培养4报告方式:如查见淋病奈瑟菌、阴道加特纳菌等病原菌,报告菌名和药敏结果;Ⅵ粪便标本正常情况下肠道中有多种细菌;引起感染性腹泻的病原微生物有:1细菌性:产毒素型腹泻、侵袭型腹泻、食物中毒、慢性腹泻;2真菌性;3病毒性;1、标本采集:1自然排便采集;2直肠试子;2、涂片检查:粪便标本因各种正常菌群含量甚多,仅以染色性和形态无法分辩是否为病原菌;因此,粪便标本一般不作涂片检查;3、培养:1沙门-志贺菌培养2致病性大肠埃细菌培养3霍乱弧菌培养4副溶血弧菌培养5小肠结肠炎耶尔森菌培养6真菌培养7菌群失调的细菌学检验4、报告方式:Ⅶ脓液及创伤感染分泌物标本化脓性感染可由单种或多种细菌引起;常见病原菌主要有金黄色葡萄球菌、化脓性链球菌、大肠埃希菌、铜绿假单胞菌、变形杆菌和结核分枝杆菌、诺卡菌,以及梭杆菌和拟杆菌等;1、标本采集:1开放性脓肿和脓性分泌物;2大面积烧伤的创面分泌物;3封闭性脓肿2、涂片检查:根据形态和染色特点,可报告“查见革兰×性细菌,形似××菌”或报告“未查见细菌”;3、培养:1普通培养2厌氧菌培养3嗜血杆菌及奈瑟菌培养4结核分枝杆菌培养5真菌培养4、报告方式:查见致病菌,报告菌名和药敏结果;。

临床微生物标本采集和运送规范

临床微生物标本采集和运送规范
19
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室,1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点,应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物,枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记:不要只写“伤口〞标记标本,应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序:推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序:75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量:成人8-10ml,儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h,或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养;无菌体液(胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁)真菌培养;支原体培养;衣原体检查;血清学检查(包括ASO、RF、 肥达反应)
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意:从静脉取血;不要与血气和血沉标本一起采血; 不推荐血入瓶前换针头;不推荐静脉血直接入瓶;不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕,儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1%〕。血液和肉汤之比为1:5~1: 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜,并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准

2024版临床微生物标本采集规范

2024版临床微生物标本采集规范

临床微生物标本采集规范•微生物标本采集意义与原则•临床常见微生物标本采集方法•微生物标本采集注意事项与操作规范•微生物标本运输、保存和处理流程目录•临床微生物实验室检测技术应用与进展•总结回顾与拓展思考01微生物标本采集意义与原则准确诊断指导治疗监测病情变化预防和控制感染通过采集微生物标本,可以对病原体进行准确鉴定和分类,为医生提供准确的诊断依据。

通过对微生物标本的连续检测,可以及时了解患者病情的变化情况,为医生调整治疗方案提供依据。

根据微生物标本的检测结果,医生可以选择针对性的治疗药物和方法,提高治疗效果。

通过对微生物标本的检测和分析,可以及时发现和控制感染源,防止感染的扩散和传播。

无菌操作正确选择采集部位采集足量标本及时送检01020304在采集微生物标本时,必须严格遵守无菌操作原则,避免污染标本和引入外源性微生物。

根据不同的病原体和感染类型,选择正确的采集部位,以提高标本的阳性率和准确性。

采集足够量的标本,以保证检测的准确性和可靠性。

采集后的微生物标本应及时送检,避免延误诊断和治疗。

血液标本通过静脉采血或末梢采血获得,用于检测血液中的病原体和抗体等。

尿液标本通过患者自行排尿或导尿获得,用于检测泌尿系统感染等。

粪便标本通过患者自行排便或灌肠获得,用于检测肠道感染和寄生虫病等。

呼吸道标本通过鼻咽拭子、喉拭子、痰液等获得,用于检测呼吸道感染和肺部感染等。

生殖道标本通过阴道分泌物、宫颈分泌物、前列腺液等获得,用于检测生殖道感染和性传播疾病等。

其他标本如脑脊液、穿刺液、组织活检等,用于检测相应部位的感染和病变情况。

微生物标本类型及来源02临床常见微生物标本采集方法血液及骨髓标本采集建议在患者寒战或发热初起时采集,同时在使用抗生素之前采集。

成人一般选择肘静脉,新生儿和婴儿选择颈静脉或股静脉。

成人一般采集8-10ml,儿童采集3-5ml,婴儿采集1-2ml。

严格无菌操作,避免污染,同时防止溶血。

采集时间采集部位采集量注意事项一般建议清晨第一次尿,即晨尿。

微生物检验标本的正确采集方法及注意事项

微生物检验标本的正确采集方法及注意事项

56医药健闻微生物检验标本的正确采集方法及注意事项刘洋 (河南京城皮肤中医院,河南郑州 450000)常见的微生物检验标本包括以下几种类型:血、骨髓、静脉导管标本,痰及下呼吸道标本,尿液标本,大便标本,生殖道系统标本,眼、耳、鼻、咽拭子标本。

血、骨髓、静脉导管标本正确采集方法:(1)先用75%酒精对静脉穿刺部位擦拭消毒30 s 以上,用一根碘棉签从穿刺点向外1.5~2 cm 的直径范围内再次消毒60 s 。

(2)使用75%酒精对血培养瓶和橡皮塞子消毒60 s 。

在血液注入血培养瓶前,先用无菌纱布或者棉签将橡皮塞子表面的残余酒精清除干净。

(3)在穿刺前或穿刺期间,佩戴乳胶手套将静脉进行固定,防止滑动,但是不可接触穿刺点;使用注射器无菌穿刺取血后,可直接注入血培养瓶中;在血标本进入到培养瓶后,轻轻颠倒混匀并立即送检,以免血液凝固。

(4)成人的采血量是8~10 ml ,儿童的采血量是1~3 ml ,骨髓采血量是1~2 ml 。

注意事项:(1)静脉采血的部位通常为肘静脉,不建议从动脉采血。

患者疑是细菌性心内膜炎时,可以选择肘动脉或者股动脉采血,勿要在静脉滴注抗菌药物时进行采血。

(2)使用注射器无菌穿刺取血后勿换针头,直接注入血培养瓶。

如果需要进行第二次穿刺,需要更换针头。

(3)多次采血时,应在不同部位的血管穿刺,以排除皮肤菌丛污染的可能。

除非无法从静脉穿刺处取血,否则不能从静脉植入管内取血。

(4)若是从静脉植入管内取血,应该同时自外周静脉采集血液进行培养,以协助判读血培养阳性结果,同时在申请单上注明标本类型。

(5)采血前,应该将患者信息、采血时间、部位、采血量写在标签上,并贴在培养瓶上。

(6)有血的培养瓶若不能立即送检,可放室温保存,切不可放入冰箱。

痰及下呼吸道标本正确采集方法:(1)能够自行取痰的患者,在清晨起床后未进食前,先用漱口水漱口,去除口腔细菌,再用清水漱口,深呼吸后用力咳出气管深处的痰液,放置于无菌集痰器中并盖好瓶盖;无法咳痰或者不合作的患者,需要帮助其采取卧位,由上而下叩击背部,并戴好无菌手套,将无菌集痰器分别连接吸引器和无菌吸痰器,按吸痰法将痰吸入无菌集痰器内,并盖好瓶盖,收集好后立即送检。

微生物标本采集的一般原则

微生物标本采集的一般原则

微生物标本采集的一般原则以微生物标本采集的一般原则为题,我们将从以下几个方面进行介绍。

一、采集时间和地点微生物标本的采集时间和地点非常重要,采集应尽可能在病情发生后的早期进行,以确保标本的准确性。

同时,标本的采集地点也应根据病情进行选择,例如:血液标本应从患者的静脉中采集,尿液标本应从患者的膀胱中采集等。

二、采集器具和保护标本的采集需要使用专门的采集器具和保护措施,以避免标本被污染或受到损害。

例如:血液标本应使用无菌采血器具进行采集,尿液标本应使用无菌尿采集器具进行采集等。

同时,采集后的标本应放置在适当的容器中,并妥善保存以避免温度过高或过低等情况导致标本失效。

三、采集前的准备工作标本采集前,采集者应进行适当的准备工作,例如:洗手、穿戴无菌手套等。

同时,采集者还应向患者详细介绍标本采集的过程和注意事项,以避免患者的紧张和担忧情绪对标本采集造成影响。

四、标本采集的技巧和操作标本采集的技巧和操作非常关键,采集者应具备专业知识和操作技巧,以确保标本的准确性和安全性。

例如:血液标本的采集应注意采血管的位置和深度、采血时的速度和压力等。

尿液标本的采集应注意尿液的收集量和时间、采集器具的无菌性等。

五、标本采集后的处理标本采集后,应及时进行处理,以确保标本的质量和可靠性。

例如:血液标本应在采集后立即进行标本处理,以避免血液凝固或血细胞破裂等情况导致标本失效。

尿液标本应尽快送至实验室进行检测,以避免细菌的生长和繁殖导致标本失效。

微生物标本采集的一般原则包括采集时间和地点、采集器具和保护、采集前的准备工作、标本采集的技巧和操作以及标本采集后的处理等方面。

遵循这些原则,能够确保标本的准确性和可靠性,为临床治疗和疾病诊断提供有力支持。

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微生物标本采集及保存要求
一、总则:用于培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检,检测后标本应妥善保存。

二、临床标本的采集
(一)下呼吸道分泌物(痰液)
令患者早上起床后用清水濑口,不要刷牙,立即从下部呼吸道咳出第一口痰,吐在无菌塑料痰盒中,及时送检。

(二)、尿液(中段尿)
护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中,及时送检。

(三)、粪便:取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中,如为稀水便,可直接收集于玻璃管中,及时送检。

(四)、眼、耳、鼻、喉拭子:将棉拭子沾取少许无菌生理盐水(如沾取的太多,可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份),然后采取可疑部位的分泌物,倒悬于无菌试管内,及时送检。

(五)、脓液:用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液,要尽量多取一些,然后将棉拭置于无菌试管中,及时送检。

(六)、:
1、凡怀疑菌血症和败血病的患者,采血培养时,应尽量在未使用抗菌素前采血,如已使用抗菌素,应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血,应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。

当然在病人发热或寒颤时采集也可。

2、成人每次采血5—10ml,小儿采血2—3ml;
3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口,抽一定量血液后,无菌注入血培养瓶内,轻轻摇匀,
4、从抽血到接种入瓶,动作要快,防止血液凝固,同时要及时送检。

(七)、穿刺液:胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液:
严格无菌抽取后,注入含肝素抗凝的无菌试管中,轻轻颠倒试管10余次,使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的,或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。

(八)、胆汁:由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。

(九)、脑脊液:以无菌方法取脑脊液3-5ml,置无菌试管内,常温保存送检,如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内,及时送检。

(十)、生殖器官标本:阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集,收集于无菌试管内送检。

如疑为淋病奈瑟菌感染,做培养检查时,采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。

(十一)、烧伤标本:以无菌棉拭子直接采取多个部位创面的脓汁分泌物放入无菌试管中. (十二)、支原体(解脲、人型)培养+药敏的标本采集
1、支原体对干、热抵抗力差,标本采集后应尽快接种支原体运送培养基送检。

2、男性:用细的无菌棉拭子沾取无菌盐水少许深入尿道口内2.5-3cm。

三、临床标本的保存
细菌室标本原则上要求及时送检、及时处理,不得保存。

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