双抗体夹心ELISA法检测CEA

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双抗夹心法-ELISA

双抗夹心法-ELISA

双抗夹心法ELISA(TAS-ELISA)步骤:1、准备可控温培养箱或摇床和样品。

样品用液氮或研钵研磨碎,再用组织:1×GEB 缓冲液=1:10(g:ml)浓度液提取。

2、用碳酸盐包被缓冲液稀释一抗,稀释倍数为200倍。

每孔加入稀释后的一抗100μl。

将加入一抗的酶标板用锡箔纸包裹,置于4℃下过夜或室温下放置4小时或37℃下放置2小时。

3、一抗包被结束时,在水池中倒出剩余液体,用1×PBST洗4-5次,每次将酶标板在吸水纸上用力拍一下以去除多余液体。

4、每孔加入100μl事先处理好的样品,每批实验均需加入阳性对照和样品提取液(GEB)。

将加入样品的酶标板用锡箔纸包裹,置于4℃下过夜或室温下放置4小时或37℃下放置2小时。

5、样品包被时间结束时,在水池中快速倒出剩余样品液体,用1×PBST洗7次,最后一次在吸水纸上用力拍一下以去除多余液体。

在室温中放置5min,或用枪头吸尽孔中液体。

6、用ECI抗体稀释液稀释酶标二抗,稀释倍数为200倍。

每孔加入稀释后的二抗100μl。

将加入二抗的酶标板用锡箔纸包裹,置于4℃下过夜或室温下放置4小时或37℃下放置2小时。

7、二抗包被结束时,在水池中快速倒出剩余抗体,用1×PBST洗8次,最后一次在吸水纸上用力拍一下以去除多余液体。

在室温中放置5min,或用枪头吸尽孔中液体和气泡。

8、在二抗包被结束前15min中准备底物显色液。

PNPP/1×PNP Buffer=1mg/ml的浓度配制,避光保存。

每孔加入底物100μl。

将加入底物的酶标板用锡箔纸包裹,置于37℃下孵育1小时。

9、显色30min时用肉眼观察显色结果,阳性孔应该显色,GEB孔应该无色。

直到显色1h时,阴性仍然无色就在酶标仪上测405nm处的OD值,求出阴性对照的OD值的值N,若样品OD值P≥2N,则视为阳性,否则为阴性。

试剂:。

双抗体夹心实验报告(3篇)

双抗体夹心实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 掌握双抗体夹心法的基本原理和操作步骤。

2. 学习利用ELISA技术检测乙型肝炎病毒表面抗原(HBsAg)。

3. 分析实验结果,验证实验方法的有效性和准确性。

二、实验原理双抗体夹心法是一种常用的酶联免疫吸附试验(ELISA)方法,用于检测抗原。

其基本原理是将抗原与抗体结合,形成抗原-抗体复合物,再加入酶标记的抗体,通过显色反应判断抗原含量。

具体步骤如下:1. 将已知抗体包被于固相载体上,形成固相抗体。

2. 加入待测标本,若标本中含有目标抗原,则与固相抗体结合,形成抗原-抗体复合物。

3. 洗涤去除未结合的标本。

4. 加入酶标记的抗体,该抗体能与抗原-抗体复合物中的抗原结合。

5. 再次洗涤去除未结合的酶标记抗体。

6. 加入底物,底物在酶的催化下发生颜色变化,颜色深浅与抗原含量成正比。

三、实验材料1. 乙型肝炎病毒表面抗原(HBsAg)标准品2. 乙型肝炎病毒表面抗原(HBsAg)单克隆抗体3. 酶标记的二抗(辣根过氧化物酶标记的羊抗人IgG抗体)4. 酶联免疫吸附试验(ELISA)试剂盒5. 微孔板6. 仪器:酶标仪、离心机、移液器等四、实验步骤1. 包被抗体:将乙型肝炎病毒表面抗原(HBsAg)单克隆抗体稀释后,加入微孔板中,每孔100μl,37℃孵育过夜。

2. 洗涤:弃去孔内液体,用洗涤液洗板3次,甩干。

3. 封闭:加入封闭液,每孔200μl,37℃孵育1小时。

4. 洗涤:弃去孔内液体,用洗涤液洗板3次,甩干。

5. 加样:将待测标本、阳性对照、阴性对照和空白对照分别加入对应的孔中,每孔100μl,37℃孵育1小时。

6. 洗涤:弃去孔内液体,用洗涤液洗板3次,甩干。

7. 加酶标记二抗:将酶标记的二抗稀释后,加入各孔中,每孔100μl,37℃孵育1小时。

8. 洗涤:弃去孔内液体,用洗涤液洗板3次,甩干。

9. 加底物:将底物A液和B液按比例混合,加入各孔中,每孔100μl,37℃孵育15分钟。

双抗夹心法测抗原原理

双抗夹心法测抗原原理

双抗夹心法测抗原原理双抗夹心法是一种常用的免疫学实验方法,用于检测特定抗原的存在。

它利用抗原与抗体的特异性结合来实现检测,从而确定样本中是否含有目标抗原。

双抗夹心法的原理可以简单概括为三个步骤:固定抗体、夹心抗原和检测抗体。

固定抗体被涂在固体表面上,如实验室常用的微孔板。

这些抗体通常是特异性的,能够识别并结合目标抗原。

固定抗体的涂布可以通过直接涂布、吸附或共价结合等方法完成。

接下来,待检测的抗原样品被加入到微孔板中,与固定抗体结合形成抗原-抗体复合物。

这一步骤被称为抗原的夹心过程,因为抗原被夹在固定抗体和检测抗体之间。

检测抗体被加入到微孔板中,与已夹心的抗原结合。

检测抗体通常与标记物相结合,例如酶、荧光染料或放射性同位素等。

通过检测标记物的信号,可以确定目标抗原的存在量。

双抗夹心法的关键在于抗原与抗体的特异性结合。

抗原是一种能够被免疫系统识别并引发免疫反应的物质,可以是细菌、病毒、细胞表面蛋白等。

而抗体是由免疫系统产生的特异性蛋白质,能够与特定抗原结合形成稳定的复合物。

在双抗夹心法中,固定抗体和检测抗体的选择非常重要。

固定抗体必须具有针对目标抗原的特异性,以确保只有目标抗原能够结合。

而检测抗体则需要与固定抗体结合的位置不同,以便检测标记物的信号不受干扰。

除了特异性结合,双抗夹心法还具有高度灵敏性和可重复性的优点。

通过选择合适的抗体和优化实验条件,可以使其达到非常低的检测限度。

因此,双抗夹心法被广泛应用于医学诊断、生物学研究和药物开发等领域。

需要注意的是,双抗夹心法虽然在抗原检测中具有很高的可靠性和准确性,但仍然存在一些局限性。

首先,抗体的特异性有时可能受到干扰物的影响,导致误判。

其次,双抗夹心法无法提供关于抗原的定量信息,只能确定其存在与否。

双抗夹心法是一种常用的抗原检测技术,通过特异性抗体的结合来确定样本中是否含有目标抗原。

其原理简单明了,操作方便,具有高度灵敏性和可重复性。

在今后的医学和生物学研究中,双抗夹心法将继续发挥重要作用,为人们提供可靠的实验手段。

1.537.3.4ELISA双抗体夹心法

1.537.3.4ELISA双抗体夹心法

EE
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双抗体夹心法检测抗原
实验流程 10.终止反应:
加入1mol/L H2SO4,50μl/孔,振荡数秒混匀。
EE
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终止液
双抗体夹心法检测抗原 实验流程
11.结果判定:
(1)定性:直接用肉眼观察结果,TMB经HRP催化后变成蓝色, 加酸后转为黄色。
颜色越深,阳性程度越强;阴性反应为无色或极浅。
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抗体→洗板→加底物显色→终止反应→结果判定
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双抗体夹心法检测抗原
实验流程 1.抗体包被:
用包被液(碳酸盐缓冲液或磷酸盐缓冲液/PBS)将抗体稀 释至0.2~10μg/ml,100μl/孔,4℃过夜。
包被
固相抗体
双抗体夹心法检测抗原
实验流程 2.洗板:
弃去孔内溶液,吸水纸拍干,洗涤液洗3次,每孔大于 250μl,每次静置1分钟。
双抗体夹心法检测抗原
6.洗板:
实验流程
双抗体夹心法检测抗原 实验流程
7.加酶标抗体:
用样本稀释液稀释酶标抗体,100抗体复合物
双抗体夹心法检测抗原
8.洗板:
实验流程
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双抗体夹心法检测抗原 实验流程
9.加底物显色:
用TMB底物溶液100μl/孔,室温避光,静置5~15分钟。
4.洗板
常用封闭剂: 0.05%~0.5%的牛血清白蛋白 1%~5%的脱脂乳
双抗体夹心法检测抗原
实验流程
5.加样:
避免孔间交叉污染
用样本稀释液梯度稀释待检样品和标准品,100μl/孔, 室温,静置2小时;或4℃过夜(增加敏感性)。

ELISA法测定癌胚抗原(CEA)操作规程

ELISA法测定癌胚抗原(CEA)操作规程

ELISA法测定癌胚抗原(CEA)操作规程1.检验目的检测血清CEA主要是用于空腔脏器如胃肠道、呼吸道、泌尿道的肿瘤诊断,还可作为手术疗效、是否转移和监测复发的指标;另外在某些良性病变中也会轻度升高,如酒精性肝病、胆道疾患等。

2.方法原理采用ELISA双抗体夹心法:向抗CEA抗体包被的聚苯乙烯反应板微孔内加入待检标本,再加酶标记抗CEA抗体,加入酶底物显色,用终止液终止反应,测定吸光度值,测定光密度,查标准曲线,计算待测标本中CEA含量。

3.性能指标此方法快速简便、特异性强、检测灵敏度度0.5ng/ml。

4.标本收集4.1标本类型:静脉血或动脉血的血清或血浆标本均可作为检测标本(抗凝剂可用肝素钠、枸橼酸钠、ACD、CPDA-1或EDTA,抗凝剂的质量应符合化试药品要求——化学纯或分析纯,使用的比例以厂家推荐为准);其他体液如尿液、唾液、精液、羊水、胸水、腹水、乳汁等体液可以作为检测标本,但加热灭活的血清和血库的库存血则不宜作为检测标本。

4.2标本留取:以空腹为宜,收到标本后最好立即离心留取血清或血浆(凝固血应待其充分凝固后收集血清),不能有残留的红细胞、纤维蛋白丝,使用肝素治疗的病人宜在肝素治疗前抽血。

4.3标本保存:留取的标本最好在3小时内检测,不能立即检测的应放置于2-8℃最长达14天(可以含有凝块但要密闭以防蒸发),或者-10℃最长达14天(不能反复冻融也不能含有凝块和红细胞)。

4.4标本容器:盛放标本的容器必须为洁净的一次性真空采血管、玻璃试管、一次性的不同规格的塑料离心管4.5标本外送:如涉及到需要外送的标本,必须以规定的容器(0.5ml塑料离心管)存放并密封,并根据邮寄规则和要求进行包装,运送时还要放入冰袋(2-8℃)或干冰(-10℃)由专人运送至指定地点指定接收人。

4.6拒收标本:凡与4.1-4.5所述内容不符的标本,检验人员应向临床或就诊者说明拒收标本的原因,并提出解决的方案或建议。

双抗体夹心ELISA法检测CEA

双抗体夹心ELISA法检测CEA

双抗体夹心ELISA法检测CEA一、实验目的1. 阐述酶联免疫吸附测定(ELISA)的原理,列举ELISA类型2. 完成ELISA的基本操作3. 学会分析实验结果4. 能根据需要设计相应的ELISA实验流程二、实验原理酶联免疫吸附测定(Enzyme-linked immunosorbent assay 简称ELISA)是以免疫学反应为基础,将抗原、抗体的特异性反应与酶对底物的高效催化作用相结合起来的一种敏感性很高的实验技术。

ELISA 类型:直接法(一步法);间接法(间接ELISA、双抗体/原夹心法,竞争性ELISA、BAS-ELISA)。

1. 已知的抗原或抗体结合到特定的固相载体表面(聚苯乙烯微量反应板,利用蛋白和聚苯乙烯表面间的疏水性部分相互吸附),并保持其免疫学活性。

将抗原或抗体固定在固相载体表面的过程称为包被(coating)。

蛋白质与聚苯乙烯固相载体是通过物理吸附结合的,靠的是蛋白质分子结构上的疏水基团与固相载体表面的疏水基团间的作用。

这种物理吸附是非特异性的,受蛋白质的分子量、等电点、浓度等的影响。

大分子蛋白质较小分子蛋白质通常含有更多的疏水基团,故更易吸附到固相载体表面。

包被用抗原分为——天然抗原、重组抗原和合成多肽抗原三大类。

合成多肽抗原是抗原决定簇的氨基酸序列人工合成的多肽片段。

一般只含有一个抗原决定簇,纯度高,特异性也高,但由于分子量太小,往往难于直接吸附于固相上。

借助于偶联物与固相载体的吸附,间接地结合到固相载体表面。

2. 抗原抗体的特异性结合:可用于以已知抗原检测未知抗体或以已知抗体检测未知抗原。

本实验采用以已知抗体检测未知抗原。

3. 抗原或抗体可通过共价键与酶连接形成酶结合物,而此种酶结合物仍能保持其免疫学和酶学活性。

结合在固相载体上的酶量与标本中待测抗原或抗体的量成正比。

(制备结合物时所用纯度较高的IgG,以免在与酶联结时其他杂蛋白的干扰。

最好用层析纯化的抗体,这样全部酶结合物均具有特异的免疫活性,可以在高稀释度进行反应,实验结果本底浅淡。

elisa双抗体夹心法实验报告

elisa双抗体夹心法实验报告

elisa双抗体夹心法实验报告实验报告:ELISA双抗体夹心法实验一、实验目的本实验旨在通过ELISA双抗体夹心法,检测待测样品中目标蛋白的含量,为相关研究提供依据。

二、实验原理ELISA(酶联免疫吸附试验)是一种灵敏的免疫学检测方法,通过将特异性抗体与酶标记结合,实现对目标蛋白的定量检测。

双抗体夹心法是一种常用的ELISA 技术,其原理是将两种特异性抗体分别固定在酶标板的不同位置上,形成两个“抗体夹心”,实现对目标蛋白的双重捕获,从而提高检测的灵敏度和特异性。

三、实验步骤1.酶标板包被:将第一种特异性抗体(capture antibody)包被在酶标板孔中,以固定化抗体形式捕获目标蛋白。

2.封闭:加入封闭液(通常为正常血清或BSA),填充孔内未结合的位点,以减少非特异性吸附。

3.洗涤:洗涤液清洗酶标板,去除未结合的物质。

4.样本加入:将待测样本加入酶标板孔中,与固定化的抗体发生特异性结合。

5.洗涤:再次洗涤酶标板,以去除未结合的物质。

6.酶标二抗加入:将第二种特异性抗体(detection antibody)与酶标记结合,形成酶标二抗。

将酶标二抗加入酶标板孔中,与目标蛋白发生特异性结合,形成“抗体夹心”。

7.洗涤:洗涤液清洗酶标板,去除未结合的物质。

8.显色反应:加入底物溶液,发生显色反应。

若目标蛋白存在,则呈现颜色变化。

9.终止反应:加入终止液,停止显色反应。

10.吸光度测定:用酶标仪测定各孔的吸光度值(通常在450nm处测量),根据吸光度值判断目标蛋白的含量。

四、实验结果根据实验数据,绘制标准曲线图和散点图,分析待测样品中目标蛋白的含量。

通常,标准曲线图横坐标为蛋白浓度,纵坐标为吸光度值。

通过将待测样品的吸光度值与标准品进行比较,计算出待测样品中目标蛋白的浓度。

五、实验总结本实验通过ELISA双抗体夹心法成功检测了待测样品中目标蛋白的含量。

实验过程中需注意保持操作环境的清洁和干燥,避免影响实验结果。

ELISA双抗体夹心法

ELISA双抗体夹心法

E L I S A双抗体夹心法-CAL-FENGHAI-(2020YEAR-YICAI)_JINGBIANELISA双抗体夹心法点击次数: 320? 作者:百奥迈科发表于:2009-03-13 16:18转载请注明来自丁香园1、原理ELISA 的基础是抗原或抗体的固相化及抗原或抗体的酶标记。

结合在固相载体表面的抗原或抗体仍保持其免疫学活性,酶标记的抗原或抗体既保留其免疫学活性,又保留酶的活性。

受检标本与固相载体表面的抗原或抗体起反应。

用洗涤的方法使固相载体上形成的抗原抗体复合物与液体中的其他物质分开。

加入酶标记的抗原或抗体,通过反应也结合在固相载体上。

加入酶反应的底物后,底物被酶催化成为有色产物,产物的量与标本中受检物质的量直接相关,根据呈色的深浅进行定性或定量分析。

酶的催化效率很高,间接地放大了免疫反应的结果,使测定方法达到很高的敏感度。

2、特点某些分泌型蛋白,用siRNA 干扰后可以用ELISA 进行检测。

3、ELISA 实验流程示图(以双抗体夹心法为例)?4、试剂与耗材(1)包被缓冲液(pH 9.6 0.05 M 碳酸盐缓冲液):(2)洗涤缓冲液(pH 7.4,0.15 M PBS):(3)稀释液:(4)终止液(2 M H2SO4):(5)底物缓冲液(pH 5.0):(6)四甲基联苯胺(TMB)使用液:(7)2,2’-连氮基-双-3-乙基-苯丙噻唑啉磺胺(ABTS)使用液:(8)抗原、抗体和酶标记抗体:按说明书处理。

(9)标准品:用稀释液稀释成梯度浓度溶液。

(10)96 孔聚苯乙烯塑料板(酶标板)。

2、实验步骤(双抗体夹心法):(1)包被:用包被缓冲液将抗体稀释至蛋白质含量为1-10 μg/mL。

在酶标板反应孔中加0.1 mL,4℃过夜。

次日,弃去孔内溶液,用洗涤缓冲液洗板3 次,每次3 min。

(2)加样:加一定浓度稀释的待检样品(同时做空白对照,阴性对照孔及阳性对照)0.1 mL 于上述已包被的反应孔中,置湿盒中,37℃, 1 hr。

ELISA测定的常用模式--双抗体夹心法测抗原

ELISA测定的常用模式--双抗体夹心法测抗原

ELISA测定的常用模式--双抗体夹心法测抗原临床ELISA测定的常用模式--双抗体夹心法测抗原对于含多个抗原决定簇的大分子蛋白,使用双抗体夹心ELISA模式测定相当简便,现有的商品试剂盒基本上都采用此种测定模式。

具体测定方法如下:1.首先以双抗体之一于碳酸盐缓冲液中4℃下过夜包被聚苯乙烯等固相,形成固相抗体,洗涤去除未与固相结合或结合不紧的抗体后,用小牛血清或牛血清白蛋白等封闭,洗涤去除未结合的部分及杂质。

2.加入含待测物的临床样本如血清等,温育一定时间后洗板;此时,待测抗原就会与固相上特异抗体反应而吸附于固相上。

3.加入酶标记的双抗体之二,温育一定时间后洗板;此时,在固相上即形成双抗体与特异抗原的夹心产物。

4.加入酶底物,温育显色测定(图2—1)。

在该测定模式中,有两步温育和板孔洗涤步骤,如果将上述测定步骤2和3并为一步,即将待测样本和酶标抗体同时加入,从而仅有一步温育和洗板过程,即为通常所说的“一步法”。

最初的双抗夹心ELISA试剂盒,均采用两步法。

后来,人们为了节省时间,简化操作步骤,试剂生产厂家逐步推出了“一步法”试剂盒。

目前在我们的临床实验室中,测定大分子抗原如HAg、。

FP和hCG等,基本上都采用一步法。

一步法相比于两步法,虽然操作简单‘但有其固有的缺陷,处理不好,对ELISA测定结果有严重影响。

在通常的两步温育洗涤方法中,抗原抗体反应将遵循下述规律,即在第一步中加入的待测标本中抗原(Ag)浓度逐步增加时,将使固相抗体(Ab)与抗原的结合逐步达到饱和[(1)式],这样当随后加入一定浓度的酶标抗体(Ab’)后,a复合物的形成将直接与在第一步中形成的b复合物相关[(2)式],因此,待测抗原浓度的逐步增加导致了显色的逐步加深,当抗原浓度增加到一定程度时,反应显色达到平台,而呈S形变化曲线。

而一步法双抗夹心ELISA的反应曲线则为钟形曲线。

也就是说测定显色随着待则标本中抗原浓度的增加而升高至一定程度后,测定吸光度即随抗原浓度的增加而开始下降直至不显色,即所谓的“钩状效应”(hook eHect),也就是我们在免疫沉淀试验中所称的“带现象”(zonephen。

ELISA操作步骤(双抗体夹心法)

ELISA操作步骤(双抗体夹心法)

ELISA操作步骤(双抗体夹心法)ELISA操作步骤(双抗体夹心法)1. 包被过程(注意设置空白对照,阴性对照):将所用抗原用包被稀释液稀释到适当浓度,每孔抗原加入100μl, 置37℃,4h,或4℃,24h;弃去孔中液体,(为避免蒸发,板上应加盖或将板平放在底部有湿纱布的金属湿盒中)。

2 PBS洗3次,每次3分钟。

具体为.吸干或甩干孔内反应液;.用洗涤液过洗一遍(将洗涤液注满板孔后,即甩去);浸泡,即将洗涤液注满板孔,放置1-2分钟,间歇摇动,浸泡时间不可随意缩短;吸干孔内液体,可甩去液体后在清洁毛巾或吸水纸上拍干;.重复操作涤3次。

3. 加入待检测样品(建立合适的浓度梯度):检测时一般采用1:50-1:400的稀释度, 应采用较大稀释体积进行,一般保证样品吸取量>20μl。

将稀释好的样品加入酶标反应孔中,每样品至少加双孔,每孔100μl,置于37℃,40-60min。

4 PBS洗3次,每次3分钟。

5. 加入酶标抗体:酶标抗体: 根据酶结合物提供商提供的参考稀释度进行或建立浓度梯度,37℃,30-60min之间,短于30min往往结果不稳定,每孔加100μl。

6 PBS洗3次,每次3分钟。

7. 加入底物液(现用现配):TMB(四甲基联苯胺)使用液:TMB(10mg/5ml无水乙醇) 0.5ml底物缓冲液(PH5.5) 10ml0.75%H2O2 32μl,底物加入量每孔100μl (TMB空白显色孔除外),置37℃避光放置20-25分钟。

8. 终止反应:每孔加入终止液50μl(2M H2SO4)终止反应, 此时蓝色立转黄色,于20min内测定实验结果。

9 结果判断:可于白色背景上,直接用肉眼观察结果:反应孔内颜色越深,阳性程度越强,阴性反应为无色或极浅。

也可测吸光值:在ELISA检测仪上,TMB反应产物检测需要450nm波长,检测时一定要首先进行空白孔系统调零。

用测定标本孔的吸收值与一组阴性标本测定孔平均值的比值(P/N)表示,当P/N大于2时作为抗体的效价即大于阴性对照吸光值的2倍,(数值的大小依具体检测要求而定)。

双抗体夹心elisa方法的原理

双抗体夹心elisa方法的原理

双抗体夹心elisa方法的原理
宝子,今天咱来唠唠双抗体夹心ELISA方法的原理哈。

ELISA呢,就是酶联免疫吸附测定,这双抗体夹心ELISA可有意思啦。

它就像是给抗原这个小坏蛋设了个包围圈。

有两种抗体参与哦。

一种是捕获抗体,就像一个小陷阱,先被固定在检测板上,就等着抗原上钩呢。

这个捕获抗体的形状和抗原的某个部分特别匹配,就像一把钥匙配一把锁一样。

然后呢,咱们要检测的抗原就大摇大摆地来了,它一头就扎进了捕获抗体这个小陷阱里,紧紧地结合在一起啦。

这时候,另一种抗体,也就是检测抗体就登场啦。

检测抗体也是专门针对抗原的,它从另一个方向和抗原结合,就像给抗原来了个前后夹击。

这个检测抗体还带着特殊的标记呢,就像是它的小标签。

这个标记可以是酶之类的东西。

接下来就更有趣啦。

当我们加入底物的时候,因为检测抗体上带着酶标记,这个酶就像一个小工匠,它会对底物进行加工。

底物被加工之后呢,就会发生一些变化,比如说变色啦。

我们就可以根据这个变化的程度来判断抗原的量。

如果颜色变得很深,那就说明抗原的量比较多;要是颜色浅,那抗原的量就少啦。

双抗体夹心ELISA方法可厉害了,它能够很灵敏地检测出抗原。

在医学上呀,它能检测出身体里是不是有病毒或者细菌的抗原,帮助医生判断病情。

在食品检测里呢,也能检测出有没有有害的微生物抗原,保障我们的食品安全。

反正这双抗体夹心ELISA方法就像一个小小的侦探,在微观的世界里,把抗原这个小目标给找出来,然后告诉我们它的情况呢。

是不是很神奇呀,宝子? 。

医学免疫实验学实验三-ELISA双抗体夹心法检测癌胚抗原

医学免疫实验学实验三-ELISA双抗体夹心法检测癌胚抗原

ELISA的类型
★双抗体夹心法 ★竞争法 ★间接法测抗体等
双抗体夹心法:检测抗原最常用的方法
双抗体夹心法:检测抗原最常用的方法
癌胚抗原CEA
(1) CEA最初发现于结肠癌和胎儿肠组织中,故名癌胚抗原。 CEA升高常见于大肠癌、胰腺癌、胃癌、乳腺癌、甲状腺髓 样癌等。但吸烟、妊娠期和心血管疾病、糖尿病、非特异性 结肠炎等疾病,15%~53%的病人血清CEA也会升高,所以CEA 不是恶性肿瘤的特异性标志,在诊断上只有辅助价值。
★使生物素抗体(二抗)与某种酶连接成酶标 抗体,这种酶标抗体既保留其免疫活性,又 保留酶的活性;

ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ

固相载体
酶标抗体/抗原
★测定时,把标本(测定其中的抗体或抗原)和酶标 抗体按不同的步骤与固相载体表面的单克隆抗体起 反应。用洗涤的方法使固相载体上形成的抗原抗体 复合物与其他物质分开,最后结合在固相载体上的 酶量与标本中受检物质的量成一定的比例;
(2) 癌胚抗原(CEA)是一种存在于结肠癌、正常胚胎肠道、 胰腺和肝内的一种蛋白多糖复合物。若与CEA升高有关的肿 瘤切除后,观察CEA水平可用于该肿瘤复发的检测。
(3) 97%的健康成人血清CEA浓度在2.5ng/mL以下。
实验材料
待测样品1、样品2 酶结合物、CEA酶标准品、微孔反应板(包被有CEA单抗) 洗涤液 底物显色液A(含过氧化氢)、底物显色液B(含TMB) 、终止液 加样枪 吸水纸、废液缸 37℃孵箱
医学免疫实验学 实验三 ELISA双抗体夹心法检测癌胚抗原
酶联免疫吸附测定
(enzyme-linked immunosorbent assay 简称ELISA)
是以免疫学反应为基础,将抗原与抗体的特异性反应

12ELISA法测血清CEA

12ELISA法测血清CEA

实验十二 ELISA法测血清CEA癌胚抗原(carcinoembryonic antigen,CEA)由Gold和Freeman等于1965年首次于结肠癌和胎儿肠组织中发现。

在胚胎发育过程中,CEA作为细胞表面蛋白,主要形成于肠道和胰腺,并分泌于体液中。

成人时CEA的合成未完全停止,也存在于许多与胃肠或肺来源有关的外胚层组织的癌细胞中。

CEA是由45%-55%糖和50%蛋白质组成的瘤胎糖蛋白,相对分子质量为180000,有9个抗原决定簇.CEA属于细胞表层糖蛋白的一个大家族,该家族以鉴定的有36种之多,主要的为CEA和非特异性反应抗原(NCA)。

检测CEA的常用方法有放射免疫法、化学发光法、电化学发光法、ELISA法和金标记免疫渗滤法等,其中以ELISA法最为常用。

【实验原理】采用ELISA双抗体夹心法。

用抗CEA单克隆抗体包被微孔板,将待测样本、标准品以及阳性和阴性对照等分别加入各孔中,反应后再加入酶结合物(HRP抗CEA单克隆抗体),充分洗涤后加酶底物/色原呈色。

呈色强度与在测定工作范围内的样本中的CEA浓度成正比。

【试剂】1.试剂的主要成分预包被板酶结合物标准品质控品显色剂终止液浓缩洗涤液2.试剂的准备、贮存及稳定性1)试剂准备使用前应将试剂移至室温(18-25ºC)平衡至室温。

取浓缩洗涤液,根据当批用量按要求稀释,混匀后备用。

2)试剂的贮存与稳定性●试剂盒宜存放于2-8ºC,预包被板须密封防潮。

●试剂有效期为12个月。

【仪器】全自动酶免分析仪洗板机【样本采集与准备】1.样本采集:人血清或用EDTA三钾,肝素锂和肝素钠抗凝的血浆可在检测中使用。

2.样本的准备1)冷藏的待检标本需置室温平衡30分钟再可检测。

2)离心(2500-3000r/min,10分钟)分离血清(浆)。

3)如样本浓度过高,可将样本作适当稀释后重新测定。

3.样本的保存及稳定性:4℃保存不超过1周。

长期保存应当置-20℃下冻存,并避免反复冻融。

双抗体夹心法

双抗体夹心法

1.双抗体夹心法双抗体夹心法,属于非竞争结合测定.它是检测抗原最常用的ELISA,适用于检测分子中具有至少两个抗原决定簇的多价抗原,而不能用于小分子半抗原的检测.其基本工作原理是:利用连接于固相载体上的抗体和酶标抗体分别与样品中被检测抗原分子上两个抗原决定簇结合,形成固相抗体-抗原-酶标抗体免疫复合物.由于反应系统中固相抗体和酶标抗体的量相对于待测抗原是过量的,因此复合物的形成量与待测抗原的含量成正比(在方法可检测范围内).测定复合物中的酶作用于加入的底物后生成的有色物质量(OD值),即可确定待测抗原含量. 若固相载体上的抗体和酶标抗体分别与样品中被检测抗原分子上两个不同的抗原决定簇结合,则属于双位点夹心法.若采用固相载体上的抗原和酶标抗原分别与样品中被检测抗体分子结合,则是双抗原夹心法.操作步骤:⑴将特异性抗体包被固相载体McAb.孵育一定时间,使形成固相抗体,洗涤除去未结合的抗体和杂质.⑵加待检标本,孵育,使标本中的抗原与固相载体上的抗体充分反应,形成固相抗原抗体复合物.洗涤除去其他未结合物质.⑶加酶标抗体,孵育,使形成固相抗体-待测抗原-酶标抗体夹心复合物.洗涤除去未结合酶标抗体.⑷加底物显色.固相上的酶催化底物产生有色产物,通过比色,测标本中抗原的量.现多采用针对单一抗原决定簇特异性的单克隆抗体做固相化和酶标抗体,则受检样品和酶标抗体可一次性加入,简化流程,缩短反应时间.若标本中待测抗原浓度过高,抗原可分别与酶标抗体和固相抗体结合而不形成上述夹心复合物(类似于免疫沉淀反应中抗原过剩时的后带现象),使最终结果低于实际含量(钩状效应),甚至出现假阴性现象.因此对此类标本应适当稀释后再测定.另外,当血清中存在类风湿因子(RF)时,类风湿因子(RF)可充当抗原,而形成固相抗体-类风湿因子-酶标抗体夹心复合物,从而出现假阳性结果.2.间接法此法是测定抗体最常用的方法,属非竞争结合试验.其原理是将抗原连接到固相载体上,样品中待测抗体与之结合成固相抗原-受检抗体复合物,再用酶标二抗(针对受检抗体的抗体,如羊抗人IgG抗体)与固相免疫复合物中的抗体结合,形成固相抗原-受检抗体-酶标二抗复合物,测定加底物后的显色程度,确定待测抗体含量.操作步骤⑴将已知抗原包被固相载体,形成固相抗原.洗涤除去未结合的抗原及杂质.⑵封闭:用高浓度无关蛋白封闭,阻止待检血清中非特异IgG吸附固相.⑶加待检血清,孵育,使固相抗原和待检抗体充分结合,洗涤除去未结合的非特异抗体及其他血清成分.⑷加酶标抗体或酶标SPA,孵育,形成固相抗原-待检抗体-酶标抗抗体(或酶标SPA)复合物.⑸加底物显色.间接法由于采用的酶标二抗是针对一类免疫球蛋白分子(如抗人IgG),因此该法只需要换固相抗原,即可用一种酶标二抗检测各种与抗原相应的抗体,具有更广泛的通用性.3.竞争法竞争法ELISA可用于抗原和半抗原的定量测定,也可对抗体进行检测.其方法和特点是:①酶标记抗原(抗体)与样品或标准体中的非标记抗原或抗体具有相同的与固相抗体(抗原)结合的能力;②反应体系中,固相抗体(抗原)和酶标抗原(抗体)是固定限量,且前者的结合位点少于酶标记与非标记抗原(抗体)的分子量和;③免疫反应后,结合于固相载体上复合物中被测定的酶标抗原(抗体)的量(酶活性)与样品或标准品中非标记抗原(抗体)的浓度成反比.操作步骤⑴将已知抗体包被载体,形成固相抗体.洗涤除去未结合物.⑵加入待检标本和酶标抗原,孵育,使两者与固相抗体竞争结合.洗涤除去未结合到固相上的游离酶标抗原及其他未结合物.⑶加底物显色.颜色深浅与待测抗原量成反比.同理,也可用固相抗原和酶标抗体作试剂,使固相抗原和标本中的待检抗原竞争结合酶标抗体.待检抗原竞争抑制酶标抗体和固相抗原结合,即待检抗原越多,显色越浅.以抗原测定为例,先将特异性抗体连接于固相载体,分别设置对照管和样品测定管;对照管中仅加酶标抗原,加样后,无非标记抗原竞争,酶标抗原即与固相抗体充分结合;而测定管抗原与后者的结合受到抑制而减少.加酶底物显色后,对照管因固相抗体上结合的酶标抗原多,显色深,测定管则依被检抗原和酶标抗原竞争结合固相抗体程度不同而显色深浅有异:被检抗原多,酶标抗原与固相抗体结合少,底物显色反应弱,色浅;反之呈色深.即结合于固相的酶标抗原量与样品中被检抗原浓度负相关.计算测定管与对照管颜色深度(OD值)之差,即可确定被检抗原量.4.捕获法捕获法(亦称反向间接法)ELISA,主要用于血清中某种抗体亚型成分(如IgM)的测定.以目前最常用的IgM测定为例,因血清中针对某种抗原的特异性IgM和IgG同时存在,则后者可干扰IgM的测定.因此捕获法的工作原理设计为:先将针对IgM的第二抗体(如羊抗人IgMμ链抗体)连接于固相载体,用以结合("捕获")样品中所有IgM(特异或非特异),洗涤出去IgG等无关物质,然后加入特异抗原与待检IgM结合;再加入抗原特异的酶标抗体,最后形成固相二抗- IgM-抗原-酶标抗体复合物,加酶底物作用显色后,即可对样品中待检IgM是否存在及其含量进行测定.5.其他ELSAELSA法由于测定灵敏,特异,操作简便,易于自动化,且无放射性污染等诸多优点,使其不仅成为目前应用最广而且发展最快的一种免疫测定技术.而且在方法学上的改进和衍化,使其不断有各具特点的新测定法问世,如应用生物素-亲和素放大系统(biotin-axidin system,BAS)的ELISA;利用酶催化底物发荧光的酶联免疫荧光测定(enzyme linked immunofluorecence assay,ELFIA),斑点-ELISA(dot-ELISA)和酶联免疫电转移印迹法(enzyme linked immunoelectrotransfer blot,EITB)以及酶联免疫化学发光测定(enzyme linked immunochemiluminescence assay,ELICLA)等.新方法不仅进一步提高了测定灵敏,特异性,而且使ELISA技术在提高自动化程度的同时,也便于单份样本测定和简化设备条件,尤其试用于急诊,社区诊所及家庭化验.膜载体的酶免疫测定固相膜免疫测定(solid phase membrane-based immuoassay )与固相酶免疫测定(ELISA)相类似,其特点是以微孔膜作为固相.标记物可用酶和各种有色微粒子,如彩色乳胶,胶体金,胶体硒等,以红色的胶体金最为常用.固相膜的特点在于其多孔性,像滤纸一样.固相膜可被液体穿过流出,液体也可以通过毛细管作用在膜上向前移行.利用这种性能建立了两种不同类型的快速检测方法.常用的固相膜为硝酸纤维素(nitrocellulose,NC)膜.一斑点酶免疫吸附试验斑点-ELISA(dot-ELISA)实验原理与常规的ELISA相同,不同之处在于斑点-ELISA所用载体为蛋白质具有极强吸附力(近100%)的硝酸纤维素(NC)膜,此外酶作用底物后形成有色的沉淀物,使NC染色实验方法为:加少量(1~2μl)抗原于膜上,由于NC膜吸附能力强,故需在干燥后进行封闭;然后滴加样品血清,其中的待检抗体即与NC膜上抗原结合;洗涤后再滴加酶标二抗,最后滴加能形成不溶有色物的底物溶液(如HRP标记物,常用二氨基联苯胺);阳性者即可在膜上出现肉眼可见的染色斑点.斑点-ELISA的优点为:NC膜吸附蛋白力强,微量抗原吸附完全,故检出灵敏度可较普通ELISA高6~8倍;试剂用量教ELISA节约约10倍;操作简单,实验及结果判断不需特殊设备条件;吸附抗原(抗体)或已有结果的NC膜可长期保存(-20℃可长达半年),不影响其活性.二免疫渗滤实验免疫渗滤实验(IFA)的基本原理是:一硝酸纤维素(NC)膜为载体,利用微孔滤膜的可滤过性,使抗原抗体反应和洗涤在一特殊的渗滤装置上以液体渗滤过膜的方式迅速完成.免疫渗滤实验最初是从斑点ELISA基础上发展建立起来的,应用的结合物是酶标记的.20世纪90年代初发展了以胶体金为标记物的金免疫渗滤实验(GIFA),省却了酶对底物的反应,更加简单,快速.渗滤装置是IFA中的主要试剂成分之一,由塑料小盒,吸水塑料和点加了抗原或抗体的硝酸纤维素膜片三部分著称.塑料小盒可以是多种形状的,盒盖的中央有一直径约为0.4~0.8cm的小圆吸孔,盒内垫放吸水塑料,NC膜片安放在正对盒盖的圆孔下,紧密关闭盒盖,是NC膜片贴紧水塑料.如此即制备成一渗滤装置.整个反应过程都在渗滤装置中进行,因此又常称位扁平长方形渗滤装置为反应板.以双抗体夹心HCG为例,于小孔内滴加标本1~2滴,待完全渗入.此时标本中的HCG 与NC膜上的抗βHCG相结合.再于小孔内滴加结合物试剂1~2滴,待完全渗入,金标记的抗αHCG抗体与NC膜上的HCG形成双抗体夹心复合物.因胶体金为红色,在NC 膜上出现红色斑点.在膜中央有清晰的淡红色或红色斑点显示者判断为阳性反应;反之,则为阴性反应,斑点呈色的深浅相应地提示阳性强度.有将包被斑点由圆点式改成短线条式的:质控斑点横向包被成横线条,如"-"'反应斑点纵向包被成竖线条,如"│";两者相交成"+".这样,阳性反应结果在膜上显示红色的正号(+),阴性结果则为负号(-),目视判断直观,明了.三免疫层析实验免疫层析实验(ICA)是继IFA之后反站起来的另一种膜固相免疫测定.与IFA利用微孔膜的过滤性能不同,ICA中滴加在膜一端的样品溶液受膜的毛细管作用向另一端移动,犹如层析一般.移动过程中被分析物与固定于膜上某一区域的抗原或抗体结合而被固相化,无关物质则越过该区域而被分离,然后通过标记物的显色来判定实验结果.以胶体金为标记物的实验称为金免疫层析实验(GICA).ICA中所用的试剂全部为干试剂,它们被组合在一试剂条上.试剂条的底版为一单面胶塑料片,A,B两端粘贴有吸水材料.加样端A为样品垫,可用的材料有滤纸,多孔聚乙烯和玻璃纤维等,按分析物和试剂的不同选择合适的材料.B端为吸水垫,材料则为吸水性强的滤纸为佳.G处为结合物垫,胶体金结合物干燥固定在玻璃纤维膜等材料上.G,B之间粘贴吸附有抗原或抗体的硝酸纤维素膜,抗原或抗体往往以直线的形式包被在膜上.一双抗体夹心法测HCG为例.试条中G处为金标记的抗αHCG,NC膜上T处包被抗βHCG,C处包被抗小鼠IgG抗体.测试时在A端加尿液(或将A端浸入尿液中),通过层析做HCG-HCG复合物;移行至T区,形成金-抗α-HCG-HCG-抗βHCG复合物,在T区显示红色线条,为阳性反应.多余的金标记抗αHCG移行至C区时被抗小鼠IgG抗体捕获,而显示出红色对照线条.如尿液中不含HCG,在T区不出现红色线条,仅在C区出现红色线条,实验结果为阴性.如C区无红色线条出现,表示实验无效.双抗体夹心法⑷加底物显色.固相上的酶催化底物产生有色产物,通过比色,测标本中抗原的量.双位点一步法操作步骤⑴将1个McAb与固相载体联结,形成固相McAb.洗涤除去未结合物.⑵同时加入待测标本和酶标McAb,孵育,使待检抗原和固相McAb及酶标McAb反应形成双抗体夹心复合物.洗涤除去未结合物.⑶加底物显色.间接法操作步骤⑴将已知抗原包被固相载体,形成固相抗原.洗涤除去未结合的抗原及杂质.⑵封闭:用高浓度无关蛋白封闭,阻止待检血清中非特异IgG吸附固相.⑶加待检血清,孵育,使固相抗原和待检抗体充分结合,洗涤除去未结合的非特异抗体及其他血清成分.⑷加酶标抗体或酶标SPA,孵育,形成固相抗原-待检抗体-酶标抗抗体(或酶标SPA)复合物.⑸加底物显色.双抗原夹心法操作步骤⑴将已知抗原包被固相载体,形成固相抗原.洗涤除去未结合物.⑵加入待检标本,孵育,使待检抗体和固相结合.洗涤除去未结合物.⑶加入酶标抗原,孵育,形成固相抗原-待检抗体-酶标抗原复合物.洗涤除去未结合物.⑷加底物显色.竞争法操作步骤⑴将已知抗体包被载体,形成固相抗体.洗涤除去未结合物.⑵加入待检标本和酶标抗原,孵育,使两者与固相抗体竞争结合.洗涤除去未结合到固相上的游离酶标抗原及其他未结合物.⑶加底物显色.颜色深浅与待测抗原量成反比.同理,也克用固相抗原和酶标抗体作试剂,使固相抗原和标本中的待检抗原竞争结合酶标抗体.待检抗原竞争抑制酶标抗体和固相抗原结合,即待检抗原越多,显色越浅.。

双抗体夹心法elisa原理

双抗体夹心法elisa原理

双抗体夹心法elisa原理小伙伴,今天咱们来唠唠这个双抗体夹心法ELISA的原理,可有趣啦。

ELISA呢,就是酶联免疫吸附测定的简称,这双抗体夹心法ELISA就像是一场抗体的“三明治”制作大赛。

你看啊,咱们要检测的那个东西,比如说某种抗原,就像是三明治中间那块美味的肉。

那抗体呢,就是面包片啦。

先来说说这个抗体。

在这个检测里,有两种抗体哦。

第一种抗体是被固定在检测板上的,就像把一片面包稳稳地放在盘子里一样。

这个检测板就像是一个特殊的舞台,抗体就站在上面等着抗原的到来。

这个固定的抗体有个特殊的本领,它能特异性地识别咱们要检测的抗原。

什么叫特异性识别呢?就好比一把钥匙开一把锁,这个抗体就只能和咱们要检测的那种抗原紧紧结合,对其他乱七八糟的东西可没兴趣。

当咱们把含有抗原的样本加到这个有固定抗体的检测板上的时候,就像是把肉放在了面包片上。

抗原就会和固定的抗体来个亲密接触,它们紧紧地抱在一起,这个过程就像是命中注定的相遇一样。

这时候,抗原就被固定在检测板上啦。

接下来呢,第二种抗体就该登场啦。

这第二种抗体也是针对咱们要检测的抗原的,它就像是另一片面包,要把抗原夹在中间。

这个抗体可自由啦,在溶液里游来游去,当它发现检测板上已经被固定住的抗原的时候,就会迅速地结合上去。

这就形成了抗体 - 抗原 - 抗体这样的一个“三明治”结构。

是不是超级酷?但是呢,这还没完事儿哦。

咱们怎么知道这个“三明治”已经做好了呢?这就需要一点小魔法啦,这个第二种抗体上面还连接着一种酶呢。

这个酶就像是一个小信号员,它可以催化一种化学反应。

当我们加入一种特殊的底物的时候,这个酶就开始工作啦。

在酶的催化下,底物会发生变化,这个变化我们是可以看到的。

比如说,会产生颜色变化,就像变魔术一样,从无色变成有色。

颜色的深浅就和抗原的量有关系啦。

如果抗原很多,那形成的“三明治”就多,酶催化底物产生的颜色就深;要是抗原少呢,“三明治”少,颜色就浅。

你看,这个双抗体夹心法ELISA就像是一场精心编排的小剧场。

癌胚抗原(CEA)测定(化学发光法测定)

癌胚抗原(CEA)测定(化学发光法测定)

4 操作步骤
1 开机前检查
a 察看电源是否正常安全通电
b 推主机下部的前门,打开后检查洗净水与分注液的用量是否满足当日
用量废试样杯与废吸嘴是否丢弃
2 开机
a更换75%酒精,放置基质液
b 打开电脑主机及AIA-1800电源, 点击主业面进入root
c 试样吸嘴的设置及酶标识试剂,检体稀释液的设置,按主机操作版面
Reagent/Tip键,LED指示灯变为绿色,打开试剂吸嘴护罩,将酶
标识试剂,检体稀释液设置在试剂托架上,将条形码
标识面朝前
d 试剂杯的设置,按主机操作版面的Cup Sorter键,LED指示灯
变为绿色,拉开分类器抽屉将试剂托盘设置在分类器托盘上,将分类器
抽屉推到底
3 开机日检
4 日检通过后,进行标本检测,在树形菜单上进入界面设置标
本检测项目,Assay键点击开始测定
5 测定完毕后,按主机操作版面的Cup Sorter及Reagent/Tip键,LED指
示灯变为绿色,打开试剂吸嘴护罩及分类器抽屉,收集试剂放入冰箱,
更换基质液,放置75%酒精
6 点击关机,待窗口消失,关闭AIA-1800电源,在关闭电脑及主电

5 质量控制:
每批试剂都要使用东曹公司标准品作质量控制,请参见AIA-1800仪器操作手。

人癌胚抗原(CEACD66)酶联免疫分析(ELISA)

人癌胚抗原(CEACD66)酶联免疫分析(ELISA)

人癌胚抗原(CEA/CD66)酶联免疫分析(ELISA)试剂盒使用说明书本试剂仅供研究使用目的:本试剂盒用于测定人血清,血浆及相关液体样本中癌胚抗原(CEA/CD66)的含量。

实验原理:本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中人癌胚抗原(CEA/CD66)水平。

用纯化的人癌胚抗原(CEA/CD66)抗体包被微孔板,制成固相抗体,往包被单抗的微孔中加入癌胚抗原(CEA/CD66),再与HRP标记的癌胚抗原(CEA/CD66)抗体结合,形成抗体-抗原-酶标抗体复合物,经过彻底洗涤后加底物TMB显色。

TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成最终的黄色。

颜色的深浅和样品中的癌胚抗原(CEA/CD66)呈正相关。

用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),通过标准曲线计算样品中人癌胚抗原(CEA/CD66)的浓度。

试剂盒组成:试剂盒组成48孔配置96孔配置保存说明书1份1份封板膜2片(48)2片(96)密封袋1个1个酶标包被板1×48 1×96 2-8℃保存标准品:13.5ng/ml 0.5ml×1瓶0.5ml×1瓶2-8℃保存标准品稀释液 1.5ml×1瓶 1.5ml×1瓶2-8℃保存酶标试剂 3 ml×1瓶 6 ml×1瓶2-8℃保存样品稀释液 3 ml×1瓶 6 ml×1瓶2-8℃保存显色剂A液 3 ml×1瓶 6 ml×1瓶2-8℃保存显色剂B液 3 ml×1瓶 6 ml×1瓶2-8℃保存终止液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存浓缩洗涤液(20ml×20倍)×1瓶(20ml×30倍)×1瓶2-8℃保存样本处理及要求:1. 血清:室温血液自然凝固10-20分钟,离心20分钟左右(2000-3000转/分)。

ELISA双抗体夹心法

ELISA双抗体夹心法

ELISA双抗体夹心法摘要:ELISA双抗体夹心法(enzyme linked immunosorbent assay——sandwich technique)的原理是将特异性抗体结合到固相载体上形成固相抗体,然后和待检血清中的相应抗原结合形成免疫复合物,洗涤后再加酶标记抗体,与免疫复合物中抗原结合形成酶标抗体-抗原-固相抗体复合物,加底物显色,判断抗原含量。

以检测HbsAg为例。

找产品,上生物帮>> >>相关专题生物帮之抗体制备【原理】ELISA双抗体夹心法(enzyme linked immunosorbent assay——sandwich technique)的原理是将特异性抗体结合到固相载体上形成固相抗体,然后和待检血清中的相应抗原结合形成免疫复合物,洗涤后再加酶标记抗体,与免疫复合物中抗原结合形成酶标抗体-抗原-固相抗体复合物,加底物显色,判断抗原含量。

以检测HbsAg为例。

【材料】酶标抗体(HRP-抗HBs-IgG)、抗HBs-IgG、待检血清包被液 pH9.5 0.05 mol/L CB稀释液 pH7.4 0.02 mol/L Tris-HCl缓冲液底物液0.1 mol/L Na2HPO4(Na2HPO4·12H2O 35.8 g/L)5.14 ml,0.05 mol/L枸橼酸(10.5g/L)4.86 ml混匀,加入邻苯二胺(OPD)4 mg,置棕色小瓶中,临用时加30% H2O2 4.0μl,混匀。

终止液 2 mol/L H2SO4温箱、酶标反应板、酶标分光光度计【方法】1. 包被取包被液适当稀释的抗HBS-Ig 0.1 ml,加到聚苯乙烯反应板各孔中。

加盖,4℃ 24h。

次日用洗涤液充分洗涤3次,甩干。

2. 各孔内加不同稀释倍数的待检血清0.1 ml,同时加阳性和阴性对照血清,置43℃温箱60 min,移去液体。

同前法洗涤3次,甩干。

3. 各孔内加稀释HRP-抗HBs-IgG 0.1 ml,置43℃温箱60 min。

免疫层析实验双抗体夹心法测大分子抗原

免疫层析实验双抗体夹心法测大分子抗原

免疫层析实验双抗体夹心法测大分子抗原嘿,大家好!今天咱们来聊聊一个看似高大上的话题——免疫层析实验双抗体夹心法测大分子抗原。

别被这长长的名字吓到了,其实说白了就是一种用来检测大分子抗原(比如病毒、细菌或者蛋白质等)的方法,简单点说就是把抗体当做“捕手”,去“捉”那些我们想知道的抗原。

你看,咱们生活中就有很多小抓捕队一样的事情,免疫层析实验的工作原理也差不多,就像警察抓小偷一样!那双抗体夹心法又是什么呢?哈哈,其实它就像一个夹心饼干。

你看,它有三层结构:上下两层是抗体,而中间的“夹心”就是咱们的目标抗原。

这样,上下抗体就能把目标抗原“夹住”,好像两只手把心爱的玩具抓得紧紧的。

是不是觉得挺有意思的?这一法子可厉害了,不仅能帮助咱们快速、精准地检测出那些难以察觉的大分子抗原,还能做到不需要复杂设备、操作起来也很简便。

就像咱们做个家庭聚会,不需要大厨,只要厨房里有点工具就能做出大餐。

要是你想了解一下这个技术怎么实施,也不复杂。

你得有一个带有抗体的试纸条。

这些抗体被特意设计成只跟某些抗原“配对”,就像一对儿死党,只有在见到对方的时候才能手拉手,互相认同。

如果目标抗原真的出现了,这俩抗体就会“紧紧抱住”它,就像母亲紧紧搂住自己的孩子,不放手。

而这个过程就能让我们看到肉眼无法直接看到的东西。

是不是有点神奇?这也是免疫层析法的魅力之一,能在短时间内给我们答案。

不过,这个过程看起来简单,背后的原理可不简单。

双抗体夹心法得依赖抗体的高度特异性,也就是说,抗体得像警犬一样,嗅得准、抓得稳。

因为如果抗体抓错了,那我们的结果就可能大打折扣,甚至变得毫无意义。

想象一下,警察抓错了人,岂不是闹了个大笑话?所以,设计合适的抗体,确保它们只对目标抗原“有兴趣”,是免疫层析实验成功的关键。

不仅如此,免疫层析法还特别讲究实验环境的控制,特别是温度和pH值。

这些环境因素会影响抗体与抗原的“互动”,如果不注意,很容易出错。

就像你做饭时,锅里的火候太大或太小,菜就做不好一样,温度控制得当,实验结果才有可能如你所愿。

双抗体夹心酶联免疫吸附试验(ELlSA法)在胃癌患者血清HMGB-1水平检测中的应用

双抗体夹心酶联免疫吸附试验(ELlSA法)在胃癌患者血清HMGB-1水平检测中的应用

双抗体夹心酶联免疫吸附试验(ELlSA法)在胃癌患者血清HMGB-1水平检测中的应用摘要】目的探讨研究在胃癌患者血清HMGB-1水平检测中应用双抗体夹心酶联免疫吸附试验(ELlSA法)的效果。

方法: 对98例胃癌患者血清HMGB-1水平使用ELISA法进行检测,同时对血清癌胚抗原( CEA) 含量用电化学发光法进行相关测定,同时,与40例胃良性病变者及40名正常者进行相关的比较。

结果: 血清中HMGB-1检测在胃癌早期患者中和传统肿瘤标志物CEA对比,有良好敏感性( 70.6%) 与准确性(74.0%),差异显著具有统计学意义(P<0.05)。

结论: 在胃癌患者血清HMGB-1水平检测中应用双抗体夹心酶联免疫吸附试验(ELlSA法)具有显著的效果,可以根据检测血清中HMGB-1的含量来明显的提高对早期胃癌的诊断水平,该方法值得临床推广。

【关键词】高迁移率族蛋白B-1 酶联免疫吸附试验胃癌【中图分类号】R446.1 【文献标识码】A 【文章编号】1672-5085(2014)16-0233-01癌细胞侵袭人体并在其内生长、转移,这是胃癌病人死亡的重要原因[1]。

胃癌越早发现诊断出来,有利于胃癌患者的康复,因此需要寻找一种敏感有效的指标帮助胃癌的诊断。

近期研究显示[2],高迁移率族蛋白B-1在肿瘤中过度表达,推测该蛋白在肿瘤的产生发展中发挥了重要的作用。

因此,本院对98例胃癌患者血液HMGB-1的水平进行检测,分析探讨其对胃癌诊断的应用价值。

1 材料和方法1.1研究对象选取我院2012年01月至2014年01月间收治的98例胃癌患者,其中男性52例,女性46例,平均年龄( 61.5±8.6) 岁。

所有患者在采血时均未给予放化疗、免疫或抗肿瘤药物等方面的治疗。

并选胃良性病变者40例,其中男性22例,女性18例,年龄(48.7±7.8) 岁。

正常对照组选取40名体检合格者,其中男23名,女17名,年龄(49.5±8.5) 岁。

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双抗体夹心ELISA法检测CEA一、实验目的1. 阐述酶联免疫吸附测定(ELISA)的原理,列举ELISA类型2. 完成ELISA的基本操作3. 学会分析实验结果4. 能根据需要设计相应的ELISA实验流程二、实验原理酶联免疫吸附测定(Enzyme-linked immunosorbent assay 简称ELISA)是以免疫学反应为基础,将抗原、抗体的特异性反应与酶对底物的高效催化作用相结合起来的一种敏感性很高的实验技术。

ELISA 类型:直接法(一步法);间接法(间接ELISA、双抗体/原夹心法,竞争性ELISA、BAS-ELISA)。

1. 已知的抗原或抗体结合到特定的固相载体表面(聚苯乙烯微量反应板,利用蛋白和聚苯乙烯表面间的疏水性部分相互吸附),并保持其免疫学活性。

将抗原或抗体固定在固相载体表面的过程称为包被(coating)。

蛋白质与聚苯乙烯固相载体是通过物理吸附结合的,靠的是蛋白质分子结构上的疏水基团与固相载体表面的疏水基团间的作用。

这种物理吸附是非特异性的,受蛋白质的分子量、等电点、浓度等的影响。

大分子蛋白质较小分子蛋白质通常含有更多的疏水基团,故更易吸附到固相载体表面。

包被用抗原分为——天然抗原、重组抗原和合成多肽抗原三大类。

合成多肽抗原是抗原决定簇的氨基酸序列人工合成的多肽片段。

一般只含有一个抗原决定簇,纯度高,特异性也高,但由于分子量太小,往往难于直接吸附于固相上。

借助于偶联物与固相载体的吸附,间接地结合到固相载体表面。

2. 抗原抗体的特异性结合:可用于以已知抗原检测未知抗体或以已知抗体检测未知抗原。

本实验采用以已知抗体检测未知抗原。

3. 抗原或抗体可通过共价键与酶连接形成酶结合物,而此种酶结合物仍能保持其免疫学和酶学活性。

结合在固相载体上的酶量与标本中待测抗原或抗体的量成正比。

(制备结合物时所用纯度较高的IgG,以免在与酶联结时其他杂蛋白的干扰。

最好用层析纯化的抗体,这样全部酶结合物均具有特异的免疫活性,可以在高稀释度进行反应,实验结果本底浅淡。

抗原必须是高纯度的。

)4. 酶结合物与相应抗原或抗体结合后,可根据加入底物的颜色反应来判定是否有免疫反应的存在,而且颜色反应的深浅是与标本中相应抗原或抗体的量成正比例的,因此,可以按底物显色的程度显示试验结果,还可通过ELISA检测仪进行定量测定,这样就将酶化学反应的敏感性和抗原抗体反应的特异性结合起来,使ELISA方法成为一种既特异又敏感的检测方法。

常用于ELISA法的酶有辣根过氧化物酶(HRP),碱性磷酸酯酶等,其中尤以辣根过氧化物酶为多。

由于酶催化的是氧化还原反应,在呈色后须立刻测定(30min内),否则空气中的氧化作用使颜色加深,无法准确地定量。

ELISA法中所用的酶要求纯度高,催化反应的转化率高,转一性强,性质稳定,继续保留它的活性部位和催化能力。

HRP的色原底物:OPD(邻苯二胺)被认为是HRP最为敏感的色原底物之一,其在HRP的作用下,由过氧化氢(H202) 氧化而聚合成2,2’—二氨基偶氮苯(DAB)。

缺点:实际工作中,用强酸尤其是盐酸终止反应后,显色并不稳定,常随时间增长而颜色加深,这是由于反应后剩余的过氧化氢继续氧化OPD而产生非酶催化的DAB的结果。

改进:在强酸反应终止液中加入还原剂如亚硫酸钠,因还原剂可迅速完全地将剩余的过氧化氢还原而阻止了OPD的非酶氧化,结果显色稳定,数十小时内不变,而且无需避光。

TMB(四甲基联苯胺)是一种优于OPD的新型HRP色原底物。

其氧化产物联苯醌在波长450nm处有最大消光系数,如果HRP量少,过氧化氢溶液和TMB过量时,则形成蓝色的阳离子根。

降低pH,即可使蓝色的阳离子根转变为黄色的联苯醌。

使用硫酸作为终止剂可使产物稳定90min,但随后本底显色就不断加深。

比较:TMB的显色反应虽与OPD一样同属氧化还原反应,但前者的反应是可逆的,如终止液中存在还原剂(维生素C及亚硫酸钠、SDS等),则可反应显色迅速消退。

TMB虽然溶解度相对较低,但由于其高检测敏感性及无致突变作用,现已基本上取代了OPD而成为HRP 最为常用的色原底物。

本次实验所使用的也是TMB。

5. 双抗体夹心ELISA基本过程:抗体包被、洗涤、封闭结合位点、结合抗原、洗涤、结合酶标抗体、洗涤,加底物反应、显色并读数。

三、实验材料1. 酶标反应板(包被有抗CEA抗体)2. CEA标准品(0ng/ml,5ng/ml,10ng/ml,20ng/ml,40ng/ml,80ng/ml)3. 样品1和样品24. 酶标抗体(酶结合物)5. 底物液A和底物液B(显色剂A和B)6. 终止液7. 洗涤液四、实验步骤1.将梯度标准品和待测样品分别加100μl于每孔,37℃(湿盒或封口)30min。

2.用洗涤液洗涤4次后,加入酶结合物100 μl于每孔,37 ℃湿盒或封口,30min。

3.洗涤4次后,分别加显色剂A和B各1滴混匀,37 ℃湿盒或封口,15min (避光)。

4.加终止液1滴,肉眼观察结果并读取OD450值。

(洗涤液的量逐渐递增)注意事项包被:样品若在几天内检测,可放在2-8℃冰箱中,若要贮存,则置于-20℃的低温冰箱内。

(常规包被2-8℃冰箱过夜)试剂盒要注意保质期。

孵育:1) 贴封片或加盖,置湿盒;2) 按说明步骤严格控制操作时间。

洗板:保证洗液注满各孔,洗完板后最好在吸水纸(选择干净、无或少尘的吸水材料)上轻轻拍干。

若用洗板机,请保持洗板针畅通。

显色:显色剂尽量在临用前配制,坚持不用过期显色剂(AB液临时混合)终止:在加终止液时应避免产生气泡。

读板:若用机器读板,应保证酶标板底部清洁。

五、实验数据处理和分析肉眼观察可以发现样品的浓度比较接近2~3管,可推测浓度在5~10之间。

标准曲线分析:两次样品是同种,结果OD值也近似,误差为(0.372-0.371)/0.372=0.27%,所以结果可靠,选择将两次样品的OD值取平均为0.3715,代入标准曲线得x值为9.512,所以所测样品的浓度为9.512ng/ml。

本次的样品为试剂盒的质控品1:10ng/ml±15%,本次实验测出结果为9.512ng/ml,与10的误差为(10-9.512)/10=4.88%<15%,所以本试剂盒效果很好,可以使用其检测病人的CEA水平,CEA最初发现于结肠癌和胎儿肠组织中,故名癌胚抗原。

CEA升高常见于大肠癌、胰腺癌、胃癌、小细胞肺癌、乳腺癌、甲状腺髓样癌等。

但吸烟、妊娠期和心血管疾病、糖尿病、非特异性结肠炎等疾病,15%~53%的病人血清CEA也会升高,所以CEA不是恶性肿瘤的特异性标志,在诊断上只有辅助价值。

此外,血清CEA水平与大肠癌的分期有明确关系,越晚期的病变,CEA浓度越高。

六、思考题1.抗体是如何包被在固相载体上的?(本试剂盒使用的是CEA单抗)。

IgG与聚苯乙烯疏水基团之间有强吸附力,其联结发生在Fc段上,抗体结合点暴露于外,不会影响后续抗原抗体反应。

取材于抗血清或含单克隆抗体的培养液,须除去杂抗体后才能用于ELISA,以保证试验的特异性;腹水中单抗的浓度较高,特异性亦较强,因此不需要作吸收层析处理,直接包被。

在某些情况下,用多种单抗混合包被,可取得更好的效果。

2.封闭的作用?所有的ELISA固相均需封闭吗?封闭(blocking)是继包被之后用高浓度的无关蛋白质溶液再包被的过程。

封闭就是让大量不相关的蛋白质充填这些空隙,从而排斥ELISA后的步骤中干扰物质的再吸附。

常用封闭剂:0.05%-0.5%的BSA; 10%的小牛血清或1%明胶;脱脂奶粉,比较价廉,可以高浓度使用(5%)。

并非所有的ELISA固相均需封闭,封闭不当反而会使阴性本底增高。

当双抗体夹心法中,如果酶标记物是高活性的,操作时洗涤彻底,不经封闭也可得到满意的结果。

特别是用单抗腹水直接包被时,因其中大量非抗体蛋白在包被时同样也吸附在固相表面,已经起到了类似封闭剂的作用。

但在间接法测定中,封闭一般是不可少的。

所以我认为,如果经历过一次不封闭而背景并不高的话,可以考虑再次使用同一套抗原抗体的时候也不封闭,但是在用不同试剂的时候还是封闭比较稳妥。

3.抗原结合的特点?抗原抗体反应的特点主要有三性:即特异性、比例性、可逆性。

本实验利用了前两个特性——特异性是抗原抗体反应的最主要特征,这种特异性是由抗原决定簇和抗体分子的超变区之间空间结构的互补性确定的。

这种高度的特异性在传染病的诊断与防治方面得到有效的应用;比例性是指抗原与抗体发生可见反应需遵循一定的量比关系,只有当二者浓度比例适当时才出现可见反应,在抗原抗体比例相当或抗原稍过剩的情况下,反应最彻底,形成的免疫复合物沉淀最多、最大。

而当抗原抗体比例超过此范围时,反应速度和沉淀物量都会迅速降低甚至不出现抗原抗体反应。

4.为何要有洗涤步骤?抗体包被后洗涤是为了洗去未吸附的抗体;加入待检样品后洗涤是为了洗去未结合的抗原;加入已知酶标抗体后洗涤是为了洗去未结合的酶标抗体。

所有的洗涤步骤都是为了防止特异性反应背景过高,完全结合上的抗原/抗体是不会被PBST洗下来的,根据我以前实验中的经验,短时多次的洗涤效果最好。

5.颜色反应为何能反映出抗原的量?如何避免出现显色深度与抗原量成反比的情况?因为颜色反应的深浅是与底物量成正比的,而底物的量即抗原抗体结合物的量,在前带中,结合物的量是与抗原的量成正比的,所以颜色反应能反映出抗原的量。

所以在控制量的时候,应注意使抗体过量一些使其处于前带期。

而如果处于后带的位置,就会使得显色深度与抗原量成反比。

6.为何要做标准曲线进行定量?每次实验的条件和仪器状态都是不一样的,所以在测定样品的时候需要与标准品在同一个状态下,同一种条件进行实验,以作为比照。

而制定标准曲线是为了使测定结果更加精确,因为单纯用标准品和样品进行比例计算,得出来的误差是相当大的,所以多取几个点做出拟合曲线之后再在曲线上找点会使得结果更加精确。

所以每次都要有对照,而且每次都要做标准曲线。

7.封口和湿盒比较?湿盒的作用更全面一些,既有保湿的作用,又可以避光;而只封口避光效果会不太理想。

而且我认为封口后37℃时,会有一些液体蒸发后冷凝,停留在封口纸上,依然会导致反应管里液体减少,而湿盒是使得管内外湿度相当,效果会好一些。

8.洗板机的工作原理。

洗板机的工作原理是将微型空气压缩机用于洗板机中,利用空气压缩机产生的正负气压直接进入洗液瓶和废液瓶,产生瓶内压力或真空,从而通过冲洗头完成吸注液功能,残液量少,使用安全可靠。

用户在每天使用洗板工作完毕后,选择冲洗栏内的冲洗键即可进行冲洗,之后把洗板机内部的洗液转换成蒸馏水,完毕之后返回主菜单。

我认为冲洗的过程很重要,洗板机不如一次性枪头,一定要冲洗干净才能保证不污染下次实验。

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