ProteinA亲和层析介质

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Protein A亲和介质说明书

Protein A亲和介质说明书

国家生化工程技术研究中心(北京)地址:北京市海淀区中关村北二条1号中国科学院过程工程研究所西区 电话/传真:010- 82544957 邮编:100190Protein A 亲和介质(Protein A QZT 4FF )产品说明书1. 产品简介Protein A 能特异性地与抗体的Fc 区结合,所以Protein A 亲和介质可用于抗体(单抗和多抗)的分离纯化,经过一步亲和层析,即可从腹水、血清和培养液等样品中得到高纯度的抗体。

Protein A QZT 4FF 亲和介质以自制的琼脂糖凝胶为基质,以重组Protein A 为配基,具有很高的物理化学稳定性,配基不易脱落,寿命长,使用方便,应用广泛。

2. 产品特性3. 使用方法Protein A QZT 4FF 广泛用于各种抗体的分离纯化。

层析操作通常包括装柱、平衡、进料、淋洗、洗脱、再生等步骤。

平衡:用5~10CV 的平衡缓冲液(20 mM PB+0.15M NaCl ,pH 7.0,添加适当浓度的NaCl 抑制非特异性吸附)平衡层析柱,至流出液电导和pH 不变(与平衡液一致)。

进料:样品缓冲液应尽可能与平衡液一致。

固体样品可用平衡液溶解配制;低浓National Engineering Research Center forBiotechnology (Beijing)Add :No.1 Bei er tiao, Zhongguancun, Haidian District, Beijing, ChinaTel/Fax : 010- 82544957 Post code :100190度样品溶液可用平衡液透析;高浓度样品溶液可用平衡液稀释。

为了避免堵塞层析柱,样品应经离心或微滤(0.45μm )处理。

进料量根据介质的载量和料液中目标蛋白的含量计算。

淋洗:上样完毕后继续用平衡缓冲液淋洗至基线。

洗脱:用洗脱缓冲液(20 mM 柠檬酸,pH 3.0-4.0;或0.1M 甘氨酸,pH 3.0;或20 mM 乙酸钠,pH 3.0-4.0;具体洗脱条件与抗体的结合强度和稳定性密切相关,效果不好时应进行洗脱缓冲液(种类和pH 或添加剂)的优化)洗脱,收集流出液。

Protein-A-、Protein-G-与抗体的结合

Protein-A-、Protein-G-与抗体的结合

Protein A 、Protein G 与抗体的结合1 Protein A Sepharose 、rProtein A Sepharose 亲和层析介质与抗体的结合目前,约70-80%的抗体纯化使用Protein A、Protein G 亲和层析。

蛋白A (Protein A) 来源于金黄色葡萄球菌的一个株系,它含有5个可以和抗体IgG分子的Fc段特异性结合的结构域。

蛋白A作为亲和配基被偶联到琼脂糖基质上,可以特异性的和样品中的抗体分子结合,而使其他杂蛋白流穿,具有极高的选择性,一步亲和层析就可达到超过95%的纯度。

1个蛋白A分子至少可以结合2个IgG。

蛋白A也可以结合另一些免疫球蛋白,如用于某些种属的IgA、IgM的纯化。

天然(Native Protein A) 和重组的蛋白A (rProtein A) 对于IgG的Fc段有着相似的特异结合。

重组的蛋白A经改造后含有一个C末端半胱氨酸,可以单一位点偶联于琼脂糖上,降低了空间位阻,增加了与IgG 的结合能力。

蛋白A 与IgG的结合强度很大成度上依赖于该抗体的种属和亚型,而其动态结合能力则决定于结合强度(解离常数) 及传质阻力等多种因素(例如上样时样品在柱内的停留时间)。

2 Protein G Sepharose 亲和层析介质与抗体的结合蛋白G是一种源自链球菌G族的细胞表面蛋白,为三型Fc受体。

其通过类似于蛋白A 的非免疫机制与抗体的Fc段结合。

像蛋白A 一样,蛋白G可以与IgG的Fc 区域特异性结合,不同的是,Protein G Sepharose 可以广泛、更强地结合更多类型的IgG, 多克隆IgG及人IgG,同时血清蛋白结合水平更低,纯度更高,配基脱落也相对更低。

此外,蛋白G还可以和某些抗体的Fab 和F (ab’)2 段结合。

Protein G是从G类Streptococci细菌中分离出来的胞壁蛋白,与多数哺乳动物的IgG Fc段结合(包括:人、山羊、绵羊、兔、豚鼠、马、猪、猴、小鼠等),分子量:25kDa。

蛋白A亲和层析介质

蛋白A亲和层析介质

蛋白A亲和层析介质(征求意见稿)编制说明《蛋白A亲和层析介质》国家标准起草工作小组二〇一九年一月《蛋白A亲和层析介质》国家标准编制说明(征求意见稿)一、任务来源本国家标准的制定任务列入国家标准化管理委员会专项《国家质量基础的共性技术研究与应用》项目《生物产业共性技术标准研究》中课题《海洋生物产品质量控制与检测技术标准研究》,项目编号“2016YFF0202304”。

本项任务由中国标准化研究院提出并归口,定于2019年完成。

本标准起草工作组由中国科学院过程工程研究所等单位共同组成。

二、目的和意义单抗药物对生产制造纯化工艺的效能和成本要求非常高,单抗分离纯化成本占其生产总成本的50-70%,其中蛋白A亲和层析介质是其生产的关键原材料之一,其性质和成本将决定单抗产品的最终生产成本、纯度和收率。

目前,80%以上的抗体纯化使用蛋白A 亲和层析。

蛋白A亲和层析介质的载量、稳定性等是单抗纯化选择介质时的首要考虑。

蛋白A来源于金黄色葡萄球菌的一个株系,它含有5个可以和抗体分子Fc段特异性结合的结构域。

将蛋白A偶联至基质上(以琼脂糖基质为主)制成蛋白A亲和层析介质,可以与抗体特异性结合,选择性极高,一步亲和层析可达到95%以上的纯度。

蛋白A 亲和层析因特异性强、操作简单、处理量大等优势,已成为抗体药物研发和生产阶段的核心纯化步骤。

蛋白A亲和层析介质作为单抗药物生产过程的关键分离材料之一,其性质和成本决定单抗产品的最终纯度、收率和生产成本。

我国当前尚未建立相应的国家及行业标准,国内市场上的蛋白A亲和层析介质产品质量良莠不齐,缺乏产品生产、检验和质量规范。

这在一定程度上限制了我国蛋白A亲和层析介质的发展及相关层析技术的应用,更阻碍了国内单抗产业的发展水平。

因此建立蛋白A亲和层析分离介质的国家标准,对于规范蛋白A亲和介质行业,推进层析技术应用,以及促进单抗产业发展,均具有重要的理论和现实意义。

目前,蛋白A亲和层析介质的性能参数测定方法多种多样,以动态载量测定方法为例,一种是将介质装柱并连在层析仪上,平衡,上样抗体,待流出液浓度与上样浓度相等时上样结束,依次经淋洗、洗脱,收集洗脱液,测定洗脱液体积及洗脱液浓度,计算洗脱载量。

Protein A Resin纯化抗血清

Protein A Resin纯化抗血清

Protein A Resin(Cat.No.L00210)纯化抗血清操作程序1实验原理Protein A亲和层析介质是纯化和分离IgG常用手段。

Protein A是一种分离自金黄色葡萄球菌的细胞壁蛋白,主要通过Fc片段结合哺乳动物IgG。

天然Protein A有5个IgG结合域和许多其它的未知功能域。

重组Protein A包含5个高IgG结合域(Ka=108/M),并去除了其它非主要结合域以降低非特异性结合。

目前,Protein A亲和层析介质已经广泛用于从生物流体或细胞培液中分离纯化各种类型的IgG或者IgG片段。

实验已经证明,Protein A和IgG的相互作用仅涉及Fc区域,而不影响Fab片段和抗原的结合。

Protein A Resin(Cat.No.L00210)的特性Resin 体积5ml(10ml含5ml浆液)配体 E.coli表达的重组链球菌Protein A每个配体结合IgG位点的数目 5配体的分子量约34kDa配体的PI 5.17配体密度≈2mg重组蛋白A/mlresin静态结合能力大于20mg猪IgG/ml Resin基质4%琼脂糖凝胶颗粒大小90µm(45-165µm)储存液含20%乙醇的1XPBS储存条件4-8℃有效期未开封前可保存12个月2实验试剂和器材2.1实验试剂Na2HPO4、NaCl、甘氨酸、浓盐酸、Tris、蒸馏水、20%乙醇2.2实验器材Protein A Resin(金斯瑞生物科技L00210)、4℃冰箱、PH计或PH试纸、锥形瓶、量筒、漏斗、移液器、tip头、试剂瓶、0.22µm滤膜、注射器、纯化柱(约10ml)2.3样品抗血清2.5ml(约20mg IgG/ml Resin,根据血清中IgG含量正常范围 7.6~16.6g/L,每mlResin可以纯化至少1.2ml血清,本实验按2mlProteinA纯化抗血清2.5ml进行试验。

Protein At Beads 4FF 预装柱说明书

Protein At Beads 4FF 预装柱说明书

ProteinAt Beads 4FF 的预装柱说明书货号:YA2471规格:1*1mL /1*5mL /5*1mL /3*1mL+1*5mL /5*5mL保存:2-8℃产品说明:Protein At Beads 4FF 是用于分离和纯化单克隆抗体、多克隆抗体或Fc-融合蛋白的亲和层析介质。

Protein A 是一种分离自金黄色葡萄球菌的细胞壁蛋白,主要通过Fc 片段结合哺乳动物IgG 。

Protein At Beads 4FF 的配体蛋白Protein At 是在天然蛋白A 的基础上进行生物工程突变得到的一种耐碱蛋白A(Alkaline tolerate ,故缩写为At)。

Protein At Beads 4FF 是以高度交联的4%琼脂糖凝胶为基质,可以在相对较高的流速下进行单克隆抗体和多克隆抗体的纯化。

表1:介质性能参数介质高度交联的4%琼脂糖平均粒径~90μm配体耐碱性Protein A结合载量>40mg 人lgG/ml 介质化学稳定性可耐受抗体纯化过程中的所有试剂工作pH 3-12在线清洗0.1-0.5M NaOH 线性流速50-300cm/h 保存20%乙醇纯化流程:1、Buffer 的准备所用水和缓冲液在使用之前建议用0.22μm 或0.45μm 滤膜过滤。

平衡/洗杂液:0.15M NaCl 、20mM Na 2HPO 4,pH7.0洗脱液:0.1M 甘氨酸,pH 3.0中和液:1M Tris-HCl ,pH 8.5。

2、样品准备上柱之前要确保样品溶液有合适的离子强度和pH 值,可以用平衡/洗杂液对血清样品、腹水或细胞培养液稀释,或者样品用平衡/洗杂液透析。

样品在上样前建议离心或用0.22μm 或0.45μm 滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。

3、样品纯化1.上柱:将泵管道中注满去离子水。

去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。

再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。

蛋白a柱使用手册

蛋白a柱使用手册

蛋白a柱使用手册
蛋白A柱是一种亲和层析柱,常用于纯化含有Fc区域(浅链)
的抗体。

在使用蛋白A柱之前,需要将其活化。

活化方法:
1. 用20mM乙酰胺(pH5.0)或1M的乙酸钠(pH4.0)洗脱缓冲
液进行洗脱。

注意:洗脱缓冲液需要在使用前pH值平衡至目标 pH 值。

2. 在规定压力和流速下,将洗脱缓冲液穿过蛋白A柱。

3. 在一定的时间内保持连续流动,以确保蛋白A柱得到充分的
活化。

使用方法:
1. 使用浓盐缓冲液如2M NaCl或者制备完整抗体来预洗蛋白A 柱,以去除不特异性结合物。

2. 将条件适当的待纯化样品施加在蛋白A柱上,并以规定的压
力和流速连续流加至柱子中。

3. 使用洗脱缓冲液(例如50mM甲基胆碱(pH5.0)或50mM乙醯
丙酮(pH4.0)去除不特异性结合物,如有必要,可以多次洗脱。

4. 使用醋酸钠或氯化钠等适宜的缓冲液或乙酰胺调节pH,并用
其他相关方法如聚焦脱盐或超滤等方法对目标蛋白进行进一步的纯化
和浓缩。

注意事项:
1. 蛋白A柱床高度和采用的缓冲液类型都可能对柱子的效果有
所影响,因此,建议在第一次使用时检查各个实验条件的最佳化。

2. 在样品很少且需要高效纯化的情况下,可以使用前列腺素A2
或乳糖脱盐来洗脱蛋白A柱。

3. 需要牢记的是,使用蛋白A柱时必须要注意操作稳定,避免
各种缓冲液和样品的混合,避免浓度冲击和质量不稳定的问题,以确
保高产和高纯度的结果。

耐碱ProteinA说明书 2

耐碱ProteinA说明书 2

博格隆(上海)生物技术有限公司021-********耐碱Protein A Diamond耐碱Protein A Diamond是一种新型的由耐碱Protein A蛋白同高流速的琼脂糖基质通过环氧化学方式合成的亲和介质,填装后的层析柱可一次性纯化大量单克隆抗体。

1产品简述耐碱Protein A Diamond的配基通过大肠杆菌发酵获得,配基发酵及后续的纯化过程均无动物源产品,该配基专门用于生产具有耐碱性和高IgG载量的亲和介质。

其与传统的Protein A作用相同,都是与IgG的Fc区结合,一步纯化即可达到很好的效果。

新的耐碱Protein A配基,可用0.1-0.5M NaOH进行原位清洗,避免使用昂贵且具有腐蚀性的原位清洗试剂,可帮助企业节省成本,同时易于线性放大,这些优势使耐碱Protein A Diamond成为单克隆抗体纯化(临床应用)的理想选择。

耐碱Protein A Diamond的性质●基质高度交联琼脂糖●平均粒径75μm●配基重组耐碱Protein A(E.coli)●耦联方式环氧化学●化学稳定性Protein A介质常用的缓冲液中稳定●pH稳定性3-12●CIP稳定性0.1-0.5M NaOH●建议流速500cm/h●保存条件PBS,20%乙醇,4-8℃2推荐实验条件2.1缓冲液:结合缓冲液A:PBS洗脱缓冲液B:0.1M柠檬酸,PH2.7-3.62.2实验过程:2.2.15倍柱体积的结合缓冲液平衡柱子2.2.2上少量抗体样品2.2.33-5倍柱体积的缓冲液A清洗柱子2.2.4线性洗脱,0-100%B洗脱10倍柱体积2.2.5收集洗脱产物,用1.0M Tris-HCl(pH9.0)进行中和(Tris-HCl体积约为洗脱产物的5-10%体积)2.2.63-5倍柱体积缓冲液B再生柱子2.2.73-5倍柱体积缓冲液A清洗柱子2.2.83-5倍柱体积0.1-0.5M NaOH原位清洗2.2.9用缓冲液A再次平衡柱子,以备下次使用为防止敏感抗体在低pH条件下发生变性,需通过预实验,优化洗脱的最佳pH,达到最好的洗脱效果,生产条件下选择逐步洗脱,可得到更高浓度的目标单克隆抗体,降低缓冲液的使用量,减少循环次数。

蛋白AG层析介质(4FF)

蛋白AG层析介质(4FF)

蛋白A/G层析介质(4FF)Protein A/G Beads 4FF货号规格BDTL0021-5 5mlBDTL0021-25 25mlBDTL0021-200 200ml1.产品介绍本品是将重组蛋白A/G高密度定向偶联到琼脂糖凝胶微球表面,具有更高的抗体结合能力和较低的蛋白非特异吸附率,洗脱条件更均一,一步纯化即可从血清样品中分离出纯度大于90%的抗体。

产品性能见表1。

本品主要用于免疫沉淀(IP)以及免疫共沉淀(Co-IP)研究,也可用于抗体固定及其它相关研究。

用户可根据目标抗体的种属来源及亚型选择微球的类别,蛋白A、蛋白G和蛋白A/G与不同抗体的亲和性比较参见表2。

表1 蛋白A/G层析介质(4FF)性能指标性能基质高度交联的4%琼脂糖微球配体重组蛋白A/G载量~10mg人lgG/ml介质粒径(μm)45-165最大流速0.1 MPa, 1 barpH 稳定范围3-10储存缓冲液与层析介质等体积的1×PBS(含20%乙醇)储存温度2-8℃表2.Protein A、Protein G和Protein A/G对不同抗体的结合能力种属亚型Protein A Protein G Protein A/GHuman IgA Varible - ++ IgD - - -IgE - - - IgG1 ++++ ++++ ++++ IgG2 ++++ ++++ ++++ IgG3 - ++++ ++++ IgG4 ++++ ++++ ++++ IgM Varible - ++Avian egg yolk IgY - - - Cow ++ ++++ ++++ Dog ++++ ++ ++++ Goat - ++++ ++++Guinea pig IgG1 ++++ ++ ++++ IgG2 ++++ ++ ++++Hamster + ++Horse Total IgG ++ ++++ ++++ Koala - +Liama - +Monkey (rhesus) ++++ ++++ ++++Mouse IgG1 + ++++ ++ IgG2a ++++ ++++ ++++ IgG2b +++ +++ +++ IgG3 ++ +++ +++ IgM Variable - -Pig +++ +++ ++++ Rabbit Total IgG ++++ +++ ++++Rat IgG1 - + ++ IgG2a - ++++ ++++ IgG2b - ++ ++ IgG3 + ++ ++Sheep Total IgG +/- ++ ++ ++++ 结合能力强;++ 结合能力中等;- 结合能力弱或没有结合2.纯化流程2.1 Buffer的准备所用水和Buffer在使用之前建议用0.22μm 或0.45 μm滤膜过滤。

纳微科技NMabTM Pro Protein A 亲和层析介质使用说明书

纳微科技NMabTM Pro Protein A 亲和层析介质使用说明书

NMab TM Pro Protein A亲和层析介质产品使用说明书文件编号:NM-W-DF-0603版本号:A2NMab TMPro 层析介质使用说明产品简介Protein A 亲和层析是利用Protein A 配基与目标抗体具有专一结合力作用从而达到分离纯化抗体的目的。

Protein A 亲和层析大大简化抗体下游分离纯化工艺,成为抗体分离纯化的标准。

目前市场上的Protein A 亲和层析介质主要分为以多糖(琼脂糖、葡聚糖、纤维素)为基质和以合成高分子(聚丙烯酸酯,丙烯酰胺)为基质两大类。

琼脂糖基质在溶胀状态下具有网状结构,比表面积大,因而亲和载量比较高,但机械强度不高、耐压低。

随着上游发酵技术的进步,抗体表达量越来越高,下游亲和捕获成为抗体生产瓶颈,因此对下游Protein A 亲和层析介质的载量要求越来越高。

为了因应这一需求,纳微科技以琼脂糖为基球,利用特有的微球改性技术以增强其机械强度,并结合自主产权的Protein A图1. NMab TM Pro Protein A 亲和层析介质电镜图配基技术,在NMab TM Protein A 的基础上成功开发出比其具有更高载量的NMab TM Pro Protein A 亲和层析介质。

除了高载量外,NMab TM Pro 延续了其优良的结合特异性、耐碱性以及压力-流速特性,是抗体客户降低单抗纯化成本的最佳选择。

下表1是NMab TM Pro Protein A 层析介质的基本性质参数。

相较市场同类产品有如下独特优势:(a) 载量高:一般单抗项目平均动态载量约60-80 mg/mL ;(b) 耐碱性强:0.5 M NaOH 浸泡下24小时载量只下降20%;(c) 配基脱落低:小于20 ppm ;(d) 宿主蛋白(HCP )残留低:一般在1000 ppm 以内,表现不亚于Prism A ; (e) 回收率高:大于90%;(f) 纯度高:亲和洗脱液纯度99 %以上;(g) 压力流速好:明显强于传统4FF/6FF 系列介质;表1. 纳微科技NMab TM Pro Protein A 亲和层析介质技术参数压力流速曲线测试不同流速下压力变化如下,此压力-流速特性可满足工业生产上对填料流速要求,优于传统4FF/6FF 软胶系列填料。

proteina亲和层析原理

proteina亲和层析原理

proteina亲和层析原理
蛋白质亲和层析是一种分离蛋白质的技术,它利用亲和力来分离蛋白质。

它的原理是:蛋白质与亲和层析介质之间的亲和力,使蛋白质在亲和层析介质中的分布受到控制,从而实现蛋白质的分离。

亲和层析介质是一种含有特定亲和力的物质,它可以与蛋白质结合,形成蛋白质-亲和层析介质复合物。

亲和力是一种特殊
的相互作用,它可以把蛋白质与亲和层析介质结合在一起,使蛋白质在亲和层析介质中的分布受到控制。

蛋白质亲和层析的过程可以分为三个步骤:第一步是将蛋白质溶液与亲和层析介质混合,形成蛋白质-亲和层析介质复合物;第二步是将混合物经过某种外力(如电场、离心力等)的作用,使蛋白质在亲和层析介质中的分布受到控制,从而实现蛋白质的分离;第三步是将分离的蛋白质从亲和层析介质中分离出来,从而实现蛋白质的分离。

蛋白质亲和层析是一种有效的蛋白质分离技术,它可以有效地分离出不同的蛋白质,从而为蛋白质结构和功能的研究提供了有效的工具。

ProteinA亲和层析介质

ProteinA亲和层析介质

Protein A亲和层析介质使用说明书UniMab®NanoMab使用之前请认真阅读产品使用手册苏州纳微科技有限公司Suzhou Nano-Micro Tech, Co., Ltd通用缩略术语:AC:亲和层析,文献中也有被记为AC280 nm:在指定波长的紫外吸收M:物质的量的浓度单位,mol/l的简写mM: 物质的量的浓度单位,mmol/l的简写BV:柱体积,bed volume的简写Mr:相对分子量MPa:兆帕斯卡Bar:压强单位,工程上“公斤力”的单位psi:压强单位,磅每平方英寸压强单位之间换算:1 MPa = 10 bar ≈ 145 psi索引目录1.Protein A亲和层析产品简介 (4)2.Protein A亲和纯化操作步骤 (4)2.1 层析柱装填 (5)2.2 柱效评价 (5)2.3预装柱使用方法 (6)3.产品基本特性 (6)3.1 单分散高度均匀的粒径 (6)3.2 更快的流速、更高的效率 (7)3.3超高的结合载量 (7)3.4 更卓越的耐碱性和化学稳定性 (8)3.5 更低的配基脱落风险 (9)4.细胞培养液中单克隆抗体(mAb)捕获应用 (9)5.储存 (10)6.故障排除 (11)7.订购信息 (12)1.Protein A亲和层析介质简介纳微科技提供全球领先的Protein A亲和层析介质和预装柱产品,该产品以单分散均匀多孔型聚甲基丙烯酸酯(PMMA)或聚苯乙烯/二乙烯苯(PS/DVB)微球为基质,采用领先的基因工程优化的耐碱性重组rProtein A,通过独特的表面键合技术制成,专门用于单克隆抗体以和含有Fc片段的重组蛋白类生物大分子的分离纯化。

图1.1 纳微科技Protein A亲和介质的制备示意图产品系列UniMab®介质NanoMab介质分离原理Protein A亲和捕获Protein A亲和捕获基质聚甲基丙烯酸酯(PMMA) 聚苯乙烯/二乙烯苯(PS/DVB)配基耐碱性rProtein A 耐碱性rProtein A粒径(μm)50 μm 15 μm结合载量(人IgG)> 35 mg / mL(4 min驻留时间)>30 mg / mL(4 min驻留时间)纯化阶段捕获、中度纯化捕获、精细纯化或样品制备基本特点高载量、高耐压、高分离效率、耐清洗中高载量、极高耐压、高分辨率、耐清洗最大耐受压力116 psi(8 bar,0.8MPa )870 psi ( 60bar,6MPa )pH稳定性 3 - 12 3 - 12CIP在位清洗0.1 - 0.5 M NaOH 0.1 - 0.5 M NaOH使用温度 4 ~ 40 摄氏度 4 ~ 40 摄氏度存储20%乙醇,2 – 8 摄氏度20%乙醇,2 – 8 摄氏度典型应用适合于大规模抗体和免疫球蛋白等纯化生产,比如当克隆抗体等。

蛋白a柱 质谱

蛋白a柱 质谱

蛋白a柱质谱
蛋白A柱(Protein A Chromatography)和质谱(Mass Spectrometry)是生物科学研究中常用的两种技术。

蛋白A柱:
蛋白A柱是一种亲和层析技术,用于从复杂的混合物中分离和纯化免疫球蛋白,特别是免疫球蛋白G(IgG)。

蛋白A是一种从金黄色葡萄球菌细胞壁中提取的蛋白质,具有与免疫球蛋白Fc区域特异性结合的能力。

当含有多种蛋白质的混合物通过蛋白A柱时,IgG会特异性地结合到柱子上,而其他蛋白质则会通过柱子流出。

之后,通过改变洗脱条件(如pH或离子强度),IgG可以从柱子上被洗脱下来,从而实现纯化。

质谱:
质谱是一种分析技术,用于确定样品中分子的质量、结构和组成。

在质谱分析中,样品分子首先被转化为气态离子,然后通过电场和磁场的作用,按照其质荷比(m/z)进行分离和检测。

质谱技术广泛应用于蛋白质、多肽、核酸、代谢物等生物分子的分析,以及药物研发、环境监测等领域。

将蛋白A柱与质谱结合使用,可以实现蛋白质的分离、纯化
和鉴定。

例如,在蛋白质组学研究中,首先使用蛋白A柱从复杂的生物样品中纯化IgG,然后通过质谱技术对纯化的IgG进行序列分析和结构鉴定。

这种组合技术为蛋白质研究和药物开发提供了强大的工具。

protein a填料质量评价

protein a填料质量评价

protein a填料质量评价Protein A是用于抗体第一步分离纯化,其性能影响抗体生产的效率,成本,纯度等等,因此抗体厂家对Protein A 介质的要求较高。

其关键点在Protein A 介质的载量,机械强度,耐碱性,使用寿命,纯度和回收率,配基脱落及HCP的残留及产品的质量和稳定供应等等。

介质载量:层析介质的载量是药厂选择的重要参数,载量越高,同样柱体积填料可以处理更多的抗体料液,生产效率也就越高。

但Protein A 亲和填料载量与柱保留时间有关,一般情况是柱留时间越长,测试的载量越大,也就是说流动相速度越快载量越低,这主要是因为抗体在介质微球中的扩散速度受限造成的。

抗体的纯化生产效率与流动相速度有关,速度越快生产效率越高,但速度越快载量越低,上样量越少,因此要平衡好载量和流速以达到最高生产效率。

评估亲和介质载量要看,其载量是在什么样的流速下测试的,理想的介质是在高流速条件下具有较高的载量。

这样有利于兼顾生产效率和产量;抗体回收率和纯度:一般来说Protein A亲和层析介质用于抗体分离纯化回收率都比较高(一般都高于90%以上),回收率越高,成本越低。

另外纯化后抗体的纯度也是药厂重点考虑的因素,Protein A 亲和层析往往是用于第一步捕获,一步亲和层析就可以把纯度提高到95%以上,通过第一步纯化后抗体纯度越高,后续精细分离的压力越小。

抗体回收率和纯度往往更Protein A配基种类有关系,不同厂家采用的配基不同,会影响收率和纯度。

介质寿命及耐碱性:亲和层析介质比离子交换介质价格高很多,而且使用寿命又比离子交换介质短很多,使得亲和层析介质在抗体的纯化介质中占据80%成本。

因此亲和层析介质的寿命是抗体厂家要考虑的另外一个重要参数。

高效服役时间的长短会在一定程度上影响纯化的经济性,也能从某种程度上避免更换填料带来的潜在问题;另外药物生产过程中,氢氧化钠被广泛用于层析介质及系统的清洗、消毒及存储等过程。

Protein A亲和层析柱亲和层析纯化人IgG1类嵌合抗体

Protein A亲和层析柱亲和层析纯化人IgG1类嵌合抗体

技术方法名称:Protein A sepharose 4 fast flow亲和层析柱纯化人IgG1类嵌合抗体基本原理:葡萄球菌A蛋白(staphylococcal protein A)在pH值中性或碱性条件下与多种哺乳类动物IgG分子的Fc段特异结合,而在酸性条件下可以解离,可用于纯化人和小鼠IgG及其亚类(IgG3除外)。

sepharose 4 fast flow是高度交联的4%的agarose衍生物,具有很好的动力学,在固相亲合吸附中有很好的层析质量,其刚性使其可理想地用于生产规模。

Protein A sepharose 4 fast flow是protein A 与固相基质sepharose 4 fast flow的结合,是高特异、高稳定性凝胶,当凝胶装填柱床后,能够特异性捕获目的抗体。

用途及受限因素:1、Protein A sepharose 4 fast flow的IgG高载量和允许样品通过的高流速,使其成为实验室和生产规模制备抗体的理想凝胶。

2、Protein A sepharose 4 fast flow在纯化过程中会有少量集团脱落,如需去除用离子交换Q Sepharose HP或凝胶过滤superdex 200。

3、在不同IgG亚类之内,甚至在相同亚类之内,都存在着天然的多样性,因此对于每个待纯化的单抗都必须首先优化选择结合和洗脱系统。

4、层析几批样品之后,尤其流速明显减慢之后,需重装柱子。

实验材料:1.1ml Protein A Sepharose 4 Fast Flow亲和层析柱生产厂商:pharmacia公司2.有抗体分泌的细胞上清(本实验室构建的嵌合抗体为人IgG1类嵌合抗体,宿主细胞CHO)3.柱体平衡液:0.1M PB缓冲液(PH7.0)4.抗体洗脱液:0.1mol/L柠檬酸—柠檬酸钠缓冲液(PH3.0)5.1mol/L Tris碱溶液(不调PH)6.透析液:0.01M PBS (PH7.4)7.20%乙醇8.0.45μm滤器9.真空泵(本操作流程操作程序以1ml凝胶为例)实验设计:1.样品处理:●取一定体积的有抗体分泌的细胞培养上清。

蛋白a亲和层析介质

蛋白a亲和层析介质

蛋白a亲和层析介质
蛋白A亲和层析介质是常用的一种蛋白亲和层析介质,用于
分离和纯化含有兔子IgG的样品。

该介质通常由蛋白A与固
定基质(如琼脂糖或琼脂糖凝胶)结合而成。

蛋白A是一种来自于金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的蛋白质,具有高度的特异性结合兔子IgG的能力。

在蛋白A 亲和层析中,样品中的兔子IgG与蛋白A结合,其他非特异
性蛋白和杂质则从介质中洗脱。

通过适当的洗脱条件,可以得到纯化的兔子IgG。

蛋白A亲和层析介质具有结构稳定、重复使用次数高、工艺
简单等优点。

由于其特异性结合兔子IgG的能力,因此被广
泛应用于蛋白质纯化、抗体制备等研究领域。

Protein G亲和介质说明书

Protein G亲和介质说明书

国家生化工程技术研究中心(北京)地址:北京市海淀区中关村北二条1号中国科学院过程工程研究所西区 电话/传真:010- 82544957 邮编:100190Protein A 亲和介质(Protein G QZT 4FF )产品说明书1. 产品简介Protein G 能特异性地与抗体的Fc 区结合,所以Protein G 亲和介质可用于抗体(单抗和多抗)的分离纯化,经过一步亲和层析,即可从腹水、血清和培养液等样品中得到高纯度的抗体。

Protein G QZT 4FF 亲和介质以自制的琼脂糖凝胶为基质,以重组Protein G 为配基,具有很高的物理化学稳定性,配基不易脱落,寿命长,使用方便,应用广泛。

2. 产品特性3. 使用方法Protein G QZT 4FF 广泛用于各种抗体的分离纯化。

层析操作通常包括装柱、平衡、进料、淋洗、洗脱、再生等步骤。

平衡:用5~10CV 的平衡缓冲液(20 mM PB+0.15M NaCl ,pH 7.0,添加适当浓度的NaCl 抑制非特异性吸附)平衡层析柱,至流出液电导和pH 不变(与平衡液一致)。

进料:样品缓冲液应尽可能与平衡液一致。

固体样品可用平衡液溶解配制;低浓National Engineering Research Center forBiotechnology (Beijing)Add :No.1 Bei er tiao, Zhongguancun, Haidian District, Beijing, ChinaTel/Fax : 010- 82544957 Post code :100190度样品溶液可用平衡液透析;高浓度样品溶液可用平衡液稀释。

为了避免堵塞层析柱,样品应经离心或微滤(0.45μm )处理。

进料量根据介质的载量和料液中目标蛋白的含量计算。

淋洗:上样完毕后继续用平衡缓冲液淋洗至基线。

洗脱:用洗脱缓冲液(20 mM 柠檬酸,pH 2.5-3.5;或0.1M 甘氨酸,pH 3.0;或20 mM 乙酸钠,pH 3.0;具体洗脱条件与抗体的结合强度和稳定性密切相关,效果不好时应进行洗脱缓冲液(种类和pH 或添加剂)的优化)洗脱,收集流出液。

rprotein A Beads 4FF 1030

rprotein A Beads 4FF 1030

rProtein A Beads 4FF目录1.产品介绍 (1)2.纯化流程 (2)3.填料清洗 (3)4.问题及解决方案 (4)5.订购信息及相关产品 (4)1. 产品介绍rProtein A Beads 4FF 是用于分离和纯化单克隆抗体的通用性亲和层析介质,具体性能见表1。

Protein A 是一种分离自金黄色葡萄球菌的细胞壁蛋白,主要通过Fc 片段结合哺乳动物IgG,但是不与狗lgG结合,不结合人lgM、lgD和IgA。

蛋白A与蛋白G与不同来源及亚类的免疫球蛋白结合能力不一样,具体见表2。

天然Protein A有五个IgG结合区域和一些未知功能的区域,重组protein A去除了与白蛋白及细胞表面结合位点,只含有五个IgG结合区域,减少了非特异性吸附。

rProtein A Beads 4FF 是以高度交联的4%琼脂糖凝胶为基质,可以在相对较高的流速下进行单克隆抗体和多克隆抗体的纯化,被工业客户普遍接受。

表1. rProtein A Beads 4FF产品性能指标性能基质高度交联的4%琼脂糖微球配体重组蛋白A载量>40mg 人 lgG/ml 介质粒径(μm) 45-165最大流速0.3 MPa, 3 barpH 稳定范围3-12储存缓冲液含20%乙醇的1XPBS储存温度2°C - 8°C2.纯化流程2.1 Buffer 的准备所用水和Buffer在使用之前建议用0.22μm或0.45μm滤膜过滤。

结合/ 洗杂 Buffer: 20 mM Na2HPO4, 0.15M NaCl, pH 7.0洗脱 Buffer: 0.1M甘氨酸,pH3.0中和液:1M Tris-HCl,pH8.52.2 样品准备上柱之前要确保样品溶液有合适的离子强度和pH值,可以用结合/洗涤缓冲液对血清样品、腹水或细胞培养液稀释,或者样品用结合/洗涤缓冲液透析。

样品在上样前建议离心或用0.22μm或0.45μm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。

单克隆抗体纯化工艺中Protein A层析介质的选择

单克隆抗体纯化工艺中Protein A层析介质的选择

单克隆抗体纯化工艺中Protein A层析介质的选择1.单抗分离纯化中的亲和层析介质亲和层析具有专一、高效的特性。

一般使用亲和层析纯化后,抗体的纯度一般大于95%以上,收率在95%以上;所以在抗体纯化工艺中一般使用亲和层析作为单抗纯化工艺的捕获步骤。

在单抗分离纯化中使用的亲和层析主要是有:a.嵌合抗体,人源化,全抗体一般使用Protein A 或Protein G层析介质为捕获步骤;b. FC融蛋白一般使用Protein A层析介质做捕获步骤;c. Fab片段,或scFv 单链抗体一般使用Protein L层析介质捕获, Protein L (Capto L) 对轻链kappa片段有特异吸附。

如果轻链的种类是Lambda,可以选择Lambda Select 特异的捕获。

d.单区域抗体sdAb一般有V H区域,也可以使用protein A,如MabSelect 作为捕获步骤。

1.1Protein A 的性质金黄色葡萄球菌A蛋白(Staphylococal Protein A,SPA)是一种从金黄色葡萄球菌细胞壁分离的蛋白质。

能特异性地与人或哺乳动物抗体(主要是IgG)的Fc区域结合。

天然的protein A SPA是十种氨基酸组成。

由于不含有胱氨酸及半胱氨酸,所以无二硫键。

紫外光谱和吸收系数为A275nm %=1.65,等电点为pH5.1。

SPA十分稳定,用4mol/L尿素、硫氰盐酸、6mol/L的盐酸胍和pH2.5的酸性条件,以及加热煮沸均不影响其活性。

分子量:全长的SPA 54KD,去掉与细胞壁结合部分的SPA 42KD。

SPA与IgG结合的亚类主要是IgG1、IgG2和IgG4。

近几年来基因工程的SPA出现,解决了天然protein A的耐碱性问题,MabSelect Sure是基因工程的SPA,去掉了天然SPA的DACE 区域,对于B区域进行了修饰,将不耐受NaOH的氨基酸去掉。

使修饰后的SPA可以耐受0.1-0.5M的NaOH;这就很好的解决了层析介质CIP的问题,同时修饰后的SPA也耐受蛋白酶。

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Protein A亲和层析介质使用说明书UniMab®NanoMab使用之前请认真阅读产品使用手册苏州纳微科技有限公司Suzhou Nano-Micro Tech, Co., Ltd通用缩略术语:AC:亲和层析,文献中也有被记为AC280 nm:在指定波长的紫外吸收M:物质的量的浓度单位,mol/l的简写mM: 物质的量的浓度单位,mmol/l的简写BV:柱体积,bed volume的简写Mr:相对分子量MPa:兆帕斯卡Bar:压强单位,工程上“公斤力”的单位psi:压强单位,磅每平方英寸压强单位之间换算:1 MPa = 10 bar ≈ 145 psi索引目录1.Protein A亲和层析产品简介 (4)2.Protein A亲和纯化操作步骤 (4)2.1 层析柱装填 (5)2.2 柱效评价 (5)2.3预装柱使用方法 (6)3.产品基本特性 (6)3.1 单分散高度均匀的粒径 (6)3.2 更快的流速、更高的效率 (7)3.3超高的结合载量 (7)3.4 更卓越的耐碱性和化学稳定性 (8)3.5 更低的配基脱落风险 (9)4.细胞培养液中单克隆抗体(mAb)捕获应用 (9)5.储存 (10)6.故障排除 (11)7.订购信息 (12)1.Protein A亲和层析介质简介纳微科技提供全球领先的Protein A亲和层析介质和预装柱产品,该产品以单分散均匀多孔型聚甲基丙烯酸酯(PMMA)或聚苯乙烯/二乙烯苯(PS/DVB)微球为基质,采用领先的基因工程优化的耐碱性重组rProtein A,通过独特的表面键合技术制成,专门用于单克隆抗体以和含有Fc片段的重组蛋白类生物大分子的分离纯化。

图1.1 纳微科技Protein A亲和介质的制备示意图产品系列UniMab®介质NanoMab介质分离原理Protein A亲和捕获Protein A亲和捕获基质聚甲基丙烯酸酯(PMMA) 聚苯乙烯/二乙烯苯(PS/DVB)配基耐碱性rProtein A 耐碱性rProtein A粒径(μm)50 μm 15 μm结合载量(人IgG)> 35 mg / mL(4 min驻留时间)>30 mg / mL(4 min驻留时间)纯化阶段捕获、中度纯化捕获、精细纯化或样品制备基本特点高载量、高耐压、高分离效率、耐清洗中高载量、极高耐压、高分辨率、耐清洗最大耐受压力116 psi(8 bar,0.8MPa )870 psi ( 60bar,6MPa )pH稳定性 3 - 12 3 - 12CIP在位清洗0.1 - 0.5 M NaOH 0.1 - 0.5 M NaOH使用温度 4 ~ 40 摄氏度 4 ~ 40 摄氏度存储20%乙醇,2 – 8 摄氏度20%乙醇,2 – 8 摄氏度典型应用适合于大规模抗体和免疫球蛋白等纯化生产,比如当克隆抗体等。

适合于中高压或超高压抗体类或免疫球蛋白等的制备和纯化参数规格UniMab®预装柱NanoMab分析柱预装柱尺寸规格(直径*高)7 mm * 25 mm16 mm * 25 mm2.1 mm * 50 mm4.6 mm * 50 mm柱材质Polypropylene (PP) 不锈钢ss人IgG 动态载量(4min驻留时间)> 35 mg / mL > 30 mg / mL 推荐流速0.25 - 1.0 mL/min 0.25 - 3.0 ml/min 最大操作压力72.5 psi(5 bar, 0.5 MPa)870 psi (60 bar,6 MPa)2.Protein A亲和纯化操作步骤2.1 层析柱装填匀浆液的浓度是指层析介质沉降至恒定体积时的体积与匀浆液的总体积的比值。

为了获取最佳的Protein A亲和层析介质的装柱效果,我们推荐0.5 M NaCl平衡过夜,再用0.5 M NaCl溶液进行匀浆,匀浆液浓度为65~70%。

具体装柱方法如下:1) 首先计算所装色谱柱的柱体积Vc,Vc=Ac × L,Ac=π× r2。

* Vc:色谱柱柱体积;Ac:色谱柱横截面积;L:色谱柱高度;r:色谱柱半径。

2) 在原容器中轻轻搅动Protein A亲和层析介质,使其完全分散在液体中形成匀浆液。

量取所需原液的质量或体积*。

* 一般情况下,Protein A层析介质在压力作用下都会被压紧导致体积收缩,为了获得紧密的柱床,推荐介质的体积过量一些,一般为柱体积的1.2倍左右。

3)倾出介质中20%乙醇保存液,用0.5 M NaCl溶液置换20%乙醇,平衡过夜。

4)装柱之前,用0.5 M NaCl溶液调整匀浆浓度为65 ~ 70%;将匀浆一次性倒入层析柱,沉降平衡后标注高度。

5)将分配器装入,调节高度使得压缩系数为1.05 ~ 1.10;然后启动输液泵,用1.5~2倍工作流速使柱床稳定(-2 柱体积)。

6)按照SOP进行柱效和对称性的测定,须达到预定标准。

2.2 柱效评价装好的色谱柱应使用2 BV 0.5 M NaCl溶液平衡,再用2.0 M NaCl以100 cm/h流速进行柱效测试,具体测试参数详见下表:表2.2 Protein A装填亲和柱的柱效测试方法样品: 2 M NaCl溶液上样量:1~5 % 柱体积洗脱液:0.5 M NaCl溶液线性流速:100 cm/h检测:UV @ 280 nm2 M NaCl 上样:电导检测仪2.3预装柱使用方法①使用之前用平衡缓冲液替换层析柱中20%乙醇保存液;②依次用洗脱液(如100 mM Gly, pH 3.0)和平衡液(如20 mM PBS, 150 mM NaCl, pH7.0)冲洗并平衡UniMab柱;③进样,用10 CV平衡液清洗至基线平衡;④洗脱,用15 CV洗脱液清洗至基线平衡;⑤再平衡,用15 CV平衡液清洗至基线平衡;⑥使用结束后,先用纯水替换分析柱中缓冲盐,然后用20%乙醇保存。

注意:分析过程中,所用样品及流动相均必须用孔径为0.45 μm滤膜膜过滤。

3.产品优势特性UniMab® Protein A亲和层析介质的机械强度高,反压低,化学稳定性好,耐碱性强,即使在高流速下仍然能保持较高动态吸附载量,可以满足从实验室制备、中试及工业化生产的需求。

产品特点或属性能够带给客户的益处单分散高度均匀的粒径批次重现性更好、装柱更容易高机械强度耐压更高,可装填更大尺寸规模的制备柱高流速分离效率更高高载量性价比更高高耐碱性化学稳定性更好、清洗更便捷3.1 单分散高度均匀的粒径UniMab®和NanoMab亲和层析介质采用全球领先的单分散高度均一粒径和精确的孔径的微球为基质,批次重现性好,装柱容易。

图3.1 UniMab®扫描电镜图显示其单分散均匀的粒径3.2 更快的流速、更高的效率采用聚甲基丙烯酸酯微球为基质,相比传统的琼脂糖基质,其耐反压的性能更强,可承受> 0.5 MPa压力,可实现更快的流速,帮助生产节省宝贵时间,大幅提高生产效率,同时降低抗体的生产成本。

测试条件:柱尺寸:XK 16 mm ×400 mm流动相:20 mM PB,0.15 M NaCl图3.2 UniMab®压力相对流速曲线注:UniMab匀浆装柱和柱压检测使用的缓冲液均为20 mM PB,0.15 M NaCl,压缩系数为1.1,柱床高度为250 mm。

3.3超高的结合载量在高流速情况下,纳微科技Protein A层析介质的结合载量显著高于传统琼脂糖基质,在4-6 min 驻留时间下,动态结合载量也超过了琼脂糖类介质。

图3.3 UniMab ®与国际知名厂商Protein A 亲和介质载量对比3.4 更卓越的耐碱性和化学稳定性纳微科技Protein A 亲和层析介质在pH 3-12范围内均可正常使用,在位清洗可用0.1 M-0.5 M NaOH ,用0.5 M NaOH 120次CIP (Clean-In-Place )循环清洗实验之后,IgG 动态吸附载量仍然保持不变。

测试组为UniMab 柱每次处理走20个上述循环,Control 为不做任何处理的UniMab 柱。

实验条件:Binding Buffer: 20 mM PB + 150 mM NaCl pH7.0;Elution Buffer: 20 mM Citric Acid pH3.0;CIP: 0.5M NaOH ;Size:1 mL PP 。

图3.4 UniMab ®键合耐碱性rProtein A 耐受0.5 M NaOH 清洗淋洗:10 CV Binding Buffer 洗脱:6 CV Elution Buffer 平衡:3 CV Binding Buffer CIP :0.5 M NaOH, 15 min 再平衡:6 CV Binding Buffer 流速: 1 mL/min (150cm/h)柱尺寸:1mL PP Column (7*25 mm)测试条件:柱尺寸:7 mm × 25 mm样品:Human IgG, 2 mg/mL平衡:20 mM PBS, pH 7.0, 0.15 M NaCl 洗脱:0.1 M Glycine, pH 3.0—●— Uni ®Mab—◆— Agarose Type Protein A Media3.5 更低的配基脱落风险实验采用0.5 M NaOH进行120个循环的碱处理,并未造成层析介质Protein A配基脱落的增加,未造成动态载量明显下降。

表3.5 Protein A碱洗脱落情况测定结果循环次数Control (ppm)Test (ppm)60循环0.450.4180循环0.350.36100循环0.330.415120循环0.3850.445注:Control柱与Test柱脱落Protein A配对t检验,p=0.62,无统计学差异。

4.细胞培养液单克隆抗体(mAb)捕获应用下面是纳微科技UniMab®Protein A亲和介质在捕获细胞培养液中单克隆抗体与国际某知名品牌的MabSelect SuRe介质的性能对比。

实验表明,纳微科技UniMab®具有卓越的单克隆抗体的亲和捕获能力,性能可以跟该国际品牌媲美。

实验条件:Binding Buffer: 10 mM PB,pH 6.0;Elution Buffer: 20 mM CB, pH 3.4.测试条件:仪器:AKTA purifier柱尺寸:7 mm × 25 mm样品:单克隆抗体细胞培养液上清,5 mL淋洗:15 CV Binding Buffer洗脱:10 CV Elution Buffer再平衡:15 CV Binding Buffer驻留时间:4 min图4.1 UniMab ®与MabSelect SuRe 对细胞培养液中单克隆抗体纯化分离性能对比表4.1 UniMab®与MabSelect SuRe 介质捕获mAb 的回收率情况名称驻留时间(min ) 上样体积(mL) 上样量(mg) 回收量(mg/mL) 回收率(%) UniMab0.55 33.5 23.2 69.3 2 5 33.5 26.8 79.9 4 5 33.5 31.8 94.9 MabSelect Sure0.5533.519.859.02 5 33.5 26.6 79.3 4533.531.894.9在高流速条件下(驻留时间<2 min),UniMab 的捕获效率高于MabSelect SuRe; 在低流速条件下(驻留时间>2 min),UniMab 捕获效率与MabSelect SuRe 相当。

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