花组培快繁技术在实际生产中的应用

合集下载

植物组织培养技术及其在生产上的应用

浙江大学农业与生物技术学院 ( 310029) 刘永立浙江省玉环县文旦实验场 ( 317600) 林 19 世纪 30 年代, 德国植物学家施莱登和动物学家施旺提出了细胞学说。该学说的基本内容是: 一切生物是由细胞构成的 , 细胞是生物体的基本功能单位, 细胞只能由细胞分裂而来。德国的植物生理学家 G H aberlandt根据细胞学说的理论提出了细胞全能性理论 : 高等植物的器官和组织, 可以不断分割 , 直至单个细胞 , 这种单个细胞是具有潜在的全能性功能单位, 即植物细胞具有全能性。为了证实这一理论 , 他将野芝麻、凤眼兰、鸭趾草、虎眼万年青等植物叶片的栅栏组织、表皮细胞、表皮毛等加入克诺普 ( Knop) 培养液中进行了培养 , 并于 1902 年发表了植物组织培养的第一篇论文。可是在他的培养中并没有观察到细胞的分裂 , 其主要原因在于当时人们并不了解植物细胞培养所需的基本条件。然而他的研究具有十分重要的意义, 他的工作为人类开辟了一个崭新的植物组织培养的研究领域。之后科学家们进行了大量的研究工作, 其中在 1926 年, 植物生理学家 F W W ent首先发现了可以促进子叶鞘生长的物质, 1930 年证实了这种物质是生长素吲哚乙酸, 这一发现对植物组织培养极其重要。在 1933 年李继侗和沈同报道了利用添加有银杏胚乳提取物的培养基, 成功地培养了银杏的胚 ; 1934年植物生理学家 P R W h ite 利用无机盐、酵母提取液和蔗糖组成的培养基, 对番茄根进行了离体培养 , 建立了第一个能继代增殖的无性颖繁殖系。W hite于 1937年发现了 B 族维生素和吲哚乙酸 ( I AA )对植物根离体生长的作用, 并用 3种已知化合物吡哆醇 - VB6 、硫胺素 - VB1及烟酸 - VB5取代酵母提取液获得成功。 1948 年美国学者 F Skoog 和中国学者崔瀓在烟草茎段培养中发现腺嘌呤有促进愈伤组织生长, 解除培养基中吲哚乙酸 ( I AA )对芽形成的抑制作用并能够诱导茎段形成芽。 1956 年 M iller从鲱鱼类精子中分离出细胞分裂素激动素, 其生物活性比腺嘌呤高 3 万倍。 1957 年 Skoog 和 M iller 提出植物激素控制器官形成的概念, 即生长素和细胞分裂素比率高时促进生根、低时促进茎芽分化、相等时倾向于无结构方式生长。这一学说为植物组织培养中的植株再生奠定了理论基础。 1958 年英国学者 F C Ste w ard 和 J Reinert 在胡萝卜根的韧皮部单细胞悬浮培养中, 成功地诱导出胚状体, 并长成完整植株, 这一研究证实了 H aberlandt的细胞全能性理论。由此可见, 科学家们经过半个多世纪的努力 , 在细胞全能性理论的指导下 , 植物组织培养技术也逐渐走向成熟。所谓植物组织培养是指在无菌和人工控制的环境条件下 , 利用适当的培养基, 对离体的植物器官、组织、细胞及原生质体等进行培养 , 使其再生细胞、愈伤组织或分化成完整植株的方法。由于培养的植物材料已脱离了母体 , 又称新农村 2011. 6

绿萝组培快繁技术研究

绿萝组培快繁技术研究绿萝（学名：Epipremnum aureum）是一种常见的观赏植物，因其叶片翠绿，形态优美，且易于栽培而备受喜爱。

随着人们对绿化环境和美化家居的需求不断增加，绿萝的市场需求也逐渐扩大。

传统的绿萝繁殖方式存在种苗数量不足、繁殖速度慢等问题。

如何利用组织培养技术实现快速繁殖绿萝，成为当前研究的热点之一。

组织培养技术是一种通过离体培养植物组织、细胞和器官实现植物快速繁殖的生物技术手段。

这种技术不仅可以大大缩短绿萝繁殖周期，提高繁殖效率，还可以保持种苗良好的遗传性状和病虫害的洁净性，从而生产出质量更加稳定的绿萝苗。

对绿萝组培快繁技术进行深入研究，不仅有助于满足市场对绿萝数量的需求，还可以促进绿化产业的快速发展。

一、绿萝生物学特性及繁殖方式绿萝属于天南星科绿萝属，是一种多年生蔓性草本植物。

其茎细长，有气根，叶子厚而肉质，呈心脏形，叶色翠绿，具有观赏价值。

一般来说，绿萝的繁殖方式主要有扦插、分株和叶片扦插等几种方法。

1. 扦插：通常采用嫩枝或成熟枝条作为扦插材料，插入泥炭腐殖土或珍珠岩中生根，生根后即可成活。

这种繁殖方式简单易行，但生根时间较长，繁殖速度比较慢。

2. 分株：绿萝在生长过程中会产生侧芽，可以通过分株的方式繁殖。

将侧芽切割下来，直接插入生长基质中即可生根成苗。

这种方法虽然能够保持良好的遗传性状，但繁殖速度仍然较慢。

3. 叶片扦插：将绿萝叶片切割成小段，插入适当的基质中，经过一段时间后便能生根成苗。

这种方式繁殖速度较慢，且成活率不高，不太适合大规模生产。

二、组培快繁技术原理组织培养技术是通过植物的离体培养实现植物繁殖的一种高效、快速的方法。

具体来说，绿萝组培快繁技术主要包括以下步骤：1. 选材切割：选择健康的绿萝茎、叶等植物材料，进行无菌处理后，通过无菌操作技术将其切割成小段，以便于后续培养操作。

2. 培养基配制：根据绿萝生长的需要，配置适合其生长的培养基，包括植物生长激素、无机盐等营养物质。

蝴蝶兰的组培快繁技术

蝴蝶兰的组培快繁技术作者：李小东郑林刘爱凤来源：《农业与技术》2016年第14期摘要：本文详述了蝴蝶兰组培快繁过程，包括取材、消毒、诱导、增殖、壮苗、生根培养等过程的方法、最佳培养基和培养条件。

探讨了蝴蝶兰组培中经常遇到的褐化、培养基改良方法等问题。

关键词：蝴蝶兰；组织培养；快繁；移栽；褐化中图分类号：S682.31 文献标识码：A DOI：10.11974/nyyjs.20160733011以丛生芽的方式增殖快繁，可以有效地保持母本的优良性状，变异率最低。

笔者经过近几年的研究实践，总结了蝴蝶兰组织培养整个过程的技术，并用于花卉公司规模化生产。

1 材料与方法1.1 预处理选择生长健壮、无病虫害、无病毒斑、不变异、无严重机械损伤、无严重脱水的蝴蝶兰母本单独隔离培养，栽培环境要经常杀菌。

选取花型均一、花色符合本品种特性、花朵排序整齐的花梗，使用消毒过的剪刀从花梗底端剪下。

将取回的花梗用75%的酒精棉花擦干净表面的灰尘、残留的农药、肥料、菌类等。

将花梗每节剪成一段，腋芽上端留2cm左右，下端留3cm 左右。

如果要存放1d以上，需先将花梗两端用石蜡封住，防止花梗失水，放入冰箱8℃冷藏。

1.2 外植体消毒根据花梗成熟老化程度进行分组，在超净工作台上用0.1%升汞溶液消毒15～20min，然后用无菌水清洗5～6次。

一般老化花梗消毒20min左右，绿色嫩花梗消毒15min左右[1]。

将花梗顶端小芽和带潜伏芽的花梗，用镊子仔细剥去包叶，尽量不产生伤痕，用于初代培养。

2 结果与分析2.1 初代诱导培养将上述准备好的花梗作为外植体，接种于诱导培养基，芽体向上，花梗倾斜45°。

经筛选最佳培养基为改良MS+5 mg/L6-BA+NAA0.5mg/L+蛋白胨1g/L+酸水解酪蛋白0.2g/L+椰汁10%+蔗糖20g/L+葡萄糖10g/L+琼脂5g/L，PH5.8～6.1，培养条件，温度为28℃，先暗培养1周能显著降低褐化率，然后每日光照12h，光照强度1200～2000Lx。

植物工厂系列谈_十_高新技术在植物工厂中的应用

养成分的浓度，才能及时调节营养液组成，使营养液始终保持养分 ● 减少激素和生长调节物质的应用；
均衡，满足作物生长需要。
● 利于大型培养容器的应用并减少生物污染；
目前尚不能检测所有的营养元素，只能检测营养液的几个主 ● 简化生根、驯化程序；
要指标：氮（ＮＯ－）、磷（ＨＰＯ２－，ＰＯ３－）、钾（Ｋ＋）、钙（Ｃａ２＋）、
法、程序等方面制定出国际化标准。标准化的内容重要的是指环境的是，这些技术不仅会杀死微生物，处理不当对植物本身也有杀伤
调节方法、施肥方法等方面的技术规程。
作用。
● 利于实现自动化控制、计算机管理和省力化作业
当然，在特定条件下，苗的生长过程中存在一种促进其生长的
● 利于技术保密和排除外界干扰。除特殊情况外，植物苗工厂内的微生物，比如共生菌的存在。也有防止、阻碍病原菌侵入与繁殖的
泛应用。在组培快繁方面，许多重要的园艺作物（如兰花、草莓、猛。植物苗的工厂化生产已经成为世界性趋势。
甘薯等）、药用植物以及造林用树木等种苗的大量快繁基本上都植物苗工厂的特征
实现了组织培养。自２０世纪８０年代以来，以商品化为目的的组
植物苗工厂就是生产种苗的植物工厂。这里所指的“种苗”是
Hale Waihona Puke 培苗生产以２０％～３０％的速度逐年递增。整个西欧１９９６年生产特指“苗”，不包含“种子”。所以也可称之为“苗工厂”。植物苗工
植物工厂系列谈（十）
——高新技术在植物工厂中的应用
■ 杨其长张成波
植物工厂作为设施园艺的最高级发展阶段，集中应用了现代生特定波长的光均衡地照射作物，不仅可以调节作物开花与结实，而
物技术、新型材料、环境控制和信息技术的最新科技成果，是现代且还能控制株高和植物的营养成分。

利用组培快繁技术大规模生产文心兰种苗

１Ｍ＋２ｍｇ一Ａ．ｇＬＮＡ－２／Ｓ．／６Ｂ＋０ｍ／Ａ４％蔗糖，附加２０Ｌ２－
时注意防治病虫害，保持通风透光。管理４个月以后～６
就可以出圃移栽。圜参考文献
【陈心启，占和，波．１】吉罗毅中国野生兰科植物彩色图谱［．京Ｍ】北７２
的侧芽消毒后成活率会比较高。对于花梗，一般是在花
梗长至２３ｃ０～０ｍ，花苞还没有形成时采集。采芽时，用消毒后的手术刀将侧芽从基部切下，在母株切的伤口
和３％香蕉泥的培养基中，５ｄ０后会发现在小芽的底部长出圆球茎。再将其小芽的顶端除去，与圆球茎一起转入
滴的吐温。
现将文心兰组织培养的规模化生产分为外植体的采取、
消毒，圆球茎的诱导、分化，壮苗培养，小苗的生根培
养，以及各阶段（增殖、壮苗、生根、驯化４阶段）个苗株的光照和温度的控制进行论述。各阶段见图１。１外植体采集文心兰组织培养的外植体材料主要是侧芽与花芽。侧芽的采集在３月比较合适，花芽采取的时间主 —５要是４月和１—１月。该阶段是海南文心兰侧芽和花 —６０２
采集的侧芽要选自健康优良母株，选取侧芽的标准
为长７ｃ～８ｍ，叶鞘未张开，侧芽健壮无病虫害。这样
３ｄ，观察到有小芽长出时，将其转入１ＭＳ．ｇ０后／＋２ｍ／２０Ｌ６Ｂ－Ａ＋０２ｇＡ．ｍ／ＮＡ＋２Ｌ％蔗糖，附加物为１％椰乳０
ＣｈｉＴｒｎａｏｐｉａＡｇｉｕｌｕｒｃｌｒｃｔｅ

长寿花组培快繁实验设计

潍坊市职业学院项目课程实验设计项目名称：植物的组培快繁实训地点：学院组培中心实验设计者：王珏（0903199）09级园林工程系生物技术及应用专业设计时间：2010年12月26日—2011年7月9日指导教师：丁雪珍一实验名称：长寿花的组培快繁二实验目的：1、通过对长寿花进行组培快繁从而进一步了解植物组培快繁的原理；2、熟悉并掌握植物组配快繁的工艺流程；3、更熟练的掌握组培快繁的多项技术；4、对植物的组织培养的方法及有关知识拥有更深的了解；三实验原理植物的组织培养是指在无菌条件下，将植物的离体器官、组织、细胞以及原生质体，应用人工培养基，创造适宜的培养条件，使其长成完整小植株的过程。

植物的组织培养也就是根据植物细胞的全能性（每个具有完整细胞核的细胞都具有该植物的全部遗传信息和产生完整植物体的能力）利用外植体（从植物体上切取下的根、茎、叶、花、果实、种子、器官以及各种组织和细胞）进行了转接、继代培养以及驯化的过程，虽然此过程投资少、成本低而且历时短但是植物组织培养拥有很多优点。

如：1、研究材料单一，无性系遗传信息相同；进而保证了遗传性状的一致性，避免了误差，实验材料的纯度高，可以减少实验的重复而不影响实验的精度。

2、经济方便，效率高；进行实验时投资少、成本低但是利润高从而节约了人力和物力。

3、培养条件了可控，可周年实验或生产；避免了由于节气带来的影响。

4、生长快，周期短，重复性强；5、管理方便，利于自动化控制；通过仪器来提供试管苗的培养环境，大大节省了人力、物力及土地，也有利于工厂化生产。

本次实训以植物花月为对象用其幼叶作外植体进行组织培养（无菌短枝型），来领悟植物组织培养的原理。

四实验仪器及其他用具1、玻璃器具玻璃棒；烧杯；量筒；三角瓶；试剂瓶；胶头滴管；果酱瓶；酒精灯；漏斗；2、所需的实验仪器酒精灯；电子天平；磁力搅拌器；冰箱；超净工作台；接种器具消毒器；立式高压蒸汽灭菌锅；电炉；培养架；空调；3、实验药剂蒸馏水；葡萄糖；琼脂粉；MS母液（大量元素、微量元素、铁盐、维生素）；6-BA；2,4-D；IBA；IAAF；活性炭；95%酒精；氯化汞溶液；洗洁精；高锰酸钾；4、其他用具纱布；喷壶；搁置架；打火机；弯刀剪；麻线；牛皮纸；封口膜；剪刀；试管刷；洗耳球；引流器；PH试纸；周转箱；胶皮手套；秒表；废空箱子；马铃薯；刀；案板；铁架台；铝锅；麦麸；穴盘等五设计方案1、实验研究对象植物长寿花拉丁名：winter pot kalanchoe科属：景天科，蔷薇属别名：寿星花原产地：东非马达加斯加岛长寿花（Kalanchoe blossfeldiana cv tom Thumb）别名寿星花、假川莲、圣诞伽1.1植物简介长寿花是一种多肉植物，由肥大、光亮的叶片形成的低矮株丛终年翠绿。

植物组织培养在实际生活中的应用

植物组织培养在实际当中的应用摘要：植物细胞要表现出全能性，须经过脱分化、再分化等一系列过程。

在实际应用中可用胚状体作为特定的优良基因型个体的无性繁殖手段，同时在研究胚胎发育中也有很重要的理论意义。

随着科学技术的不断进步，植物组织培养这门崭新的技术将日益普及和深入，成为现代农业生产中重要的技术手段关键字：脱分化,愈伤组织,原生质体,脱毒苗,培养基形成芽的培养基条件常有不同，可以同时在组织培养中形成，一般说，培养物中形成的芽如胡萝卜悬浮培养，油菜愈伤组织等。

在组织培养中通过根、芽诱导再生植株方式有三种：一种在芽产生之后，于芽形成的基部长根而形成小植株，一种是在根上生长出芽来，另一种即在愈伤组织的不同部位分别形成芽和根，然后两者结合起来形成一株植物。

除营养芽之外，在组织培养中有时也有花芽的形成，如烟草、花生等。

也有变态器官的形成，如百合鳞片切块分化出的芽，形成小鳞茎，唐菖蒲茎端可诱导形成小球茎，马铃薯的茎切段可以形成块茎。

在很多禾谷类作物的组织培养中发现，用较高浓度的生长素（2，4-D）诱导形成的愈伤组织，当培养在除去生长素，或适当浓度的活性较低的生长素中时，就可以诱导芽的形成。

Nitsch等用Linsmaier(LM)培养基附加10-5摩尔2，4-D 培养水稻愈伤组织可以生根，一旦转入无生长素的培养基时就能产生芽。

Rangan 将小米愈伤组织从含生长素的培养基转移到无生长素的培养基，一个星期内就形成了芽。

但在另一些例子中激素比例控制器官分化的问题则出现完全相反的情况。

苜蓿在有2，4-D和细胞分裂素的培养基中，可以形成愈伤组织，转入不加以上两种激素的培养基中能分化，但分化的情况与原来的激素比例有关。

如果愈伤组织是在高细胞分裂素/生长素比例的培养基中形成的，易于生根，而在高生长素/细胞分裂素比例的培养基中形成的，易于生根，而在高生长素/细胞分裂素比例的培养基中形成的愈伤组织，则易生芽。

由此看来，分化与激素的关系同植物的遗传性有着密切的关系，用五个品种的烟草做实验，用相同的生长素/细胞分裂素比例，结果有的品种形成很多芽，有的形成很少芽，有的完全不生芽。

秋海棠的组培快繁

加强环境因素调控
在组培过程中，加强对环境因素的调控，如精确控制光照、温度、湿度等，以提高秋海棠的繁殖效率。
加强病虫害防治
在组培过程中加强对病虫害的防治，以提高秋海棠的繁殖效率和质量。
THANKS
谢谢您的观看
控制适宜的培养温度、光照、湿度等条件，促进秋海棠组培苗的诱导和生长。
秋海棠组培苗的增殖
继代培养
将诱导出的秋海棠愈伤组织或细胞团转移到新的培养基上，进行继代培养，以实现种苗的快速增殖。
培养基选择
选择适宜的增殖培养基，添加适量的植物生长调节剂，促进细胞分裂和增殖。
培养条件
控制适宜的培养温度、光照、湿度等条件，促进秋海棠组培苗的增殖和生长。
秋海棠组培苗的生根
01
02
03
生根诱导
将增殖后的秋海棠组培苗转移到生根培养基上，进行生根诱导，以促进根系的发育。
培养基选择
选择适宜的生根培养基，添加适量的植物生长调节剂和营养物质，以满足根系生长的需求。
培养条件
控制适宜的培养温度、光照、湿度等条件，促进秋海棠组培苗根系的发育和生长。
03
秋海棠组培快繁的影响因素
激素对秋海棠组培快繁的影响
细胞分裂素
促进细胞分裂和增殖，常用如激动素（Kinetin）和玉米素（
Zymosterone）。
生长素
促进细胞生长和伸长，常用如吲哚乙酸（IAA）和吲哚丁酸（ IBA）。
赤霉素
促进细胞生长和伸长，常用如赤霉素（GA3）。
乙烯和脱落酸
调节细胞生长和分化，常用如乙烯（ETH）和脱落酸（ABA
果实
秋海棠的果实为蒴果，内含多个种子。
秋海棠的生态习性

长寿花组织培养快繁技术

长寿花为景天科伽蓝菜属中一种草本植物，又名圣诞伽蓝菜等，是一种常见草本花卉，可露地栽植及盆栽，观赏价值非常好。

长寿花观赏效果、开花时节及观赏期极具特点，是园林绿化、室内美化应用中非常好的花材。

长寿花常用繁殖方法为扦插繁殖和组培繁殖。

扦插繁殖应用较早，技术比较成熟，组培繁殖技术应用较晚，还有开发空间，结合花卉生产实践介绍组织培养快繁技术。

1长寿花组培外植体的处理长寿花的茎顶、叶、茎、花芽和花均可以作为外植体，在作者实践中，以茎段做为外植体的效果最好。

采集长寿花茎段，带回组培实验室，清水洗净截小段，装进广口瓶，无菌纱布封瓶口，流水冲洗15分钟，沥干水分将截成小段嫩枝再进一步截成2~3厘米长短段，在0.1%升汞（HgCl 2）溶液中浸泡3分钟，再用无菌水冲洗4~5次，沥干水分，带入接种室中，放入已经消过毒的超净工作台上。

在接种前，外植体还需在75%的酒精溶液中浸泡30分钟，用无菌水冲4~5次后，再用无菌的药棉拭干水分，放在培养皿（垫上无菌滤纸）中。

茎段用酒精灯灼烧过的手术刀切割成0.5厘米的小段后再接种，首次接种每瓶只接1块原材料，这样可以降低它的污染率。

接种时使茎段保持横卧状态会有较好的效果，保持横卧时，茎段侧面两个切口都能够生成愈伤组织，最后会连到一起，保证产生较大面积的愈伤组织块，为形成大量不定芽做好基础。

2长寿花组培培养基配方选取长寿花整个室内组培过程分为初代培养、增殖培养和生根培养三个阶段。

前两个阶段基本培养基选取MS ，生根培养阶段基本培养基选取1/2MS ，然后往基本培养基中添加不同种类和浓度的激素。

各配方的培养基均采用固体培养基，添加琼脂量为6g/L ，蔗糖量为30g/L ，各配方pH 值均调整为5.8。

所有培养基都要用高压灭菌锅高压灭菌，条件为121℃、131kPa 、30分钟。

初代培养主要以诱导为目的，可选用MS+6-BA1.0毫克/升+NAA0.1毫克/升配方，在实践中发现该配方除了污染之外，每个组培瓶中均能够100%的形成愈伤组织，而且愈伤组织能够较好地诱导出不定芽。

植物组织培养有什么应用[详细讲解]

植物组织培养有什么应用一、农业上的应用1. 快速繁殖种苗(rapid propagation)用组织培养的方法进行快速繁殖是生产上最有潜力的应用，包括花卉观赏植物、蔬菜、果树、大田作物及其他经济作物。

快繁技术不受季节等条件的限制，生长周期短，而且能使不能或很难繁殖的植物进行增殖。

快速繁殖可用下列手段进行：⑴通过茎尖、茎段、鳞茎盘等产生大量腋芽；⑵通过根、叶等器官直接诱导产生不定芽；⑶通过愈伤组织培养诱导产生不定芽。

试管快速繁殖应用在下列生产或研究中：(1)繁殖杂交育种中得到的少量杂交种，以及保存自交系、不育系等。

(2)繁殖脱毒培养得到的少量无病毒苗。

(3)繁殖生产上急需的或种源较少的种苗。

由于组织培养周期短，增殖率高及能全年生产等特点，加上培养材料和试管苗的小型化，这就可使有限的空间培养出大量的植物，在短期内培养出大量的幼苗。

2.无病毒苗(virus free)的培养植物在生长过程中几乎都要遭受到病毒病不同程度的危害，有的种类甚至同时受到数种病毒病的危害，尤其是很多园艺植物靠无性方法来增殖，若蒙受病毒病，代代相传，越染越重，甚至会造成极严重的后果。

自从Morel l952年发现采用微茎尖培养方法可得到无病毒苗后，微茎尖培养就成为解决病毒病危害的重要途径之一。

若再与热处理相结合，则可提高脱毒培养的效果。

对于木本植物，茎尖培养得到的植株难以发根生长，则可采用茎尖微体嫁接的方法来培育无病毒苗。

组织培养无病毒苗的方法已在很多作物的常规生产上得到应用。

如马铃薯，甘薯，草莓，苹果，香石竹，菊花等。

而且已有不少地区建立了无病毒苗的生产中心，这对于无病毒苗的培养、鉴定、繁殖、保存、利用和研究，形成了一个规范的系统程序，从而达到了保持园艺植物的优良种性和经济性状的目的。

3. 在育种上的应用(breeding)植物组培技术为育种提供了许多手段和方法，使育种工作在新的条件下更有效的进行。

⑴倍性育种，缩短育种年限，杂种优势明显。

植物组织培养在现代农业中的具体应用

从而培育新品种。
三、植物新品种培育
3、细胞融合通过原生质的融合可部分客服有性杂交不亲和，从而获得体细
胞杂种，创造新物种或优良品种。
三、植物新品种培育
4、选择细胞突变体离体培养过程中会发生变异，从中可以筛选出对人们有用的突
变体，进而育成新品种。
四、生产植物次生代谢物
利用植物组培技术生产一些价格高、产量低、需求量大的次生代谢产物，其具有一些特定的功能，对人类有重要的影响和作用。
五、植物种质资源离体保存
1、常规的植物种植资源保存方法耗资巨大，种质资源流失的情况时有发生。
2、通过抑制生长或超低温贮存的方法离体保存植物种质资源，可节约大量的人力、物力和财力，还可挽救那些濒危物种。
3、离体保存还可避免病虫害侵染和外界不利气候及栽培因素的影响，可长期保存，有利于种质资源材料的远距离交换。
江西野生金线莲
六、人工种子
1、人工种子是利用人工种皮包被植物组织培养中得到的体细胞胚。 2、人工种子可为某些珍稀物种的繁殖、转基因植物、自交不亲和植物、远缘杂种的繁殖提供有效的手段。
任务二植物组织培养在农业生产中应用
目录
01
植物离体快速繁殖
02
植物种苗脱毒
03
植物新品种培育
04
植物次生代谢物生产
05
Hale Waihona Puke 植物种植资源保存06人工种子
一、植物离体快速繁殖
1、植物快繁是植物组织培养在生产中应用最广泛，产生较大经济效益的一项技术。
2、植物快繁具有不受季节和气候等条件限制、可周年生产、生长周期短、繁殖速度快、种苗整齐一致等优点。
4、植物组培种苗脱毒广泛应用于花卉、果树、蔬菜、苗木等植物。

一种啤酒花组培ms培养基母液配方及快繁技术

一种啤酒花组培ms培养基母液配方及
快繁技术
啤酒花组培MS培养基母液配方及快繁技术
啤酒花，作为一种重要的酿造原料，其品质与产量直接关系到啤酒的口感与生产成本。

为了满足日益增长的市场需求，科研人员通过不断的实验与研究，开发出了啤酒花的组织培养技术，特别是MS培养基母液配方及快繁技术，为啤酒花的规模化生产提供了有力支持。

MS培养基母液配方是组织培养中的关键，它直接影响到细胞的分裂与生长。

该配方通常包含无机盐、有机物、维生素和生长调节剂等成分。

其中，无机盐为细胞提供必需的矿物质元素；有机物如氨基酸、糖类等，是细胞生长的能量来源；维生素则参与细胞内的多种生化反应；生长调节剂则调控细胞的分裂与分化。

快繁技术则是利用组织培养技术，将啤酒花的优良品种进行快速繁殖。

通过选取健壮的母株，取其嫩叶或茎尖作为外植体，经过消毒处理后，接种到MS培养基上。

在适宜的温度、湿度和光照条件下，外植体将快速生长，形成愈伤组织，进而分化出小植株。

这些小植株经过一段时间的培养与驯化，便可移植到大田中，从而实现啤酒花的快速繁殖。

综上所述，啤酒花的组培MS培养基母液配方及快繁技术，为啤酒花的规模化生产提供了有力支持。

通过这一技术，不仅可以快速繁殖出大量的优良品种，还可以保持品种的纯度和优良性状，为啤酒产业的持续发展奠定坚实基础。

绿萝组培快繁技术研究

绿萝组培快繁技术研究一、绿萝组培快繁技术的原理绿萝组培快繁技术是利用植物体细胞的分裂和再生能力，在无菌条件下培养出植物组织和器官的繁殖方法。

通过在不含植物生长调节剂的培养基上培养植物组织，可以促进绿萝植株的快速生长和繁殖，达到大规模快速繁殖的目的。

组培快繁技术的原理主要包括以下几个方面：1. 选择优良组织通过从健康的母株中选择茎尖、叶片等细胞分裂能力较强的组织，作为组培快繁的外植体。

外植体的选择对于后续的培养和再生能力具有重要的影响。

2. 建立无菌培养体系将外植体进行表面消毒处理，然后在无菌条件下进行培养。

通过消毒剂的处理和无菌技术的应用，可以防止外源微生物的感染，保证培养基和外植体的无菌状态，为后续的培养提供良好的环境。

3. 植物激素的应用在培养基中添加适当浓度的植物生长调节剂，如激素和生长素等，可以促进外植体的分裂和再生，使其快速生长和繁殖。

植物激素的类型和浓度是影响组培快繁效果的关键因素之一。

4. 生长条件的控制在培养箱中控制温度、湿度和光照等环境因素，促进外植体的生长和再生。

合理控制生长条件可以提高组培快繁的效率和成功率。

绿萝组培快繁技术的方法主要包括以下几个步骤：2. 筛选培养基选择适当的培养基配方，包括基本培养基和添加植物激素的培养基，满足外植体生长和再生的需要。

培养基的配方和pH值的调控对于组培快繁的效果具有重要的影响。

3. 面向培养将处理好的外植体移入含有适当浓度植物激素的培养基中进行培养，控制生长条件，促进外植体的分裂和再生。

4. 增殖和移栽当外植体的再生达到一定程度时，可以将再生苗移入含有生长调节剂较低的培养基中进行增殖。

当增殖苗的数量和质量达到一定要求时，可以进行移栽，转入土壤中进行生长。

5. 生长管理对于移栽后的绿萝植株，可采取适当的生长管理措施，包括施肥、浇水、修剪等，促进植株的生长和繁殖。

1. 快速大规模繁殖通过组培快繁技术，可以在较短的时间内大规模繁殖绿萝植株，满足市场需求，提高绿萝的生产效率。

单头切花菊‘白扇’组培快繁技术

单头切花菊‘白扇’组培快繁技术【摘要】本文介绍了单头切花菊‘白扇’组培快繁技术的相关研究。

文章首先从背景介绍和研究意义入手，引出了本研究的重要性。

接着介绍了菊花品种‘白扇’及其特点，详细介绍了组织培养技术和快繁技术的探索过程。

同时深入分析了繁殖机制，探讨了该技术的优势和应用前景。

结论部分指出了单头切花菊‘白扇’组培快繁技术的未来发展前景，同时提出了技术应用推广方向和未来研究展望。

该研究对于推动菊花产业的发展具有重要意义，也为相关领域的研究提供了有益参考。

【关键词】单头切花菊‘白扇’、组培快繁技术、菊花品种介绍、组织培养技术、快繁技术探索、繁殖机制分析、优势及应用前景、发展前景、技术应用推广方向、未来研究展望。

1. 引言1.1 背景介绍单头切花菊‘白扇’是一种具有优美花形和花色的菊花品种，广泛应用于花卉装饰和观赏用途。

随着人们对花卉品质和数量需求的提高，传统的种植方式已经不能满足市场需求，因此寻找一种高效的快繁技术进行繁殖变得尤为重要。

传统的菊花繁殖方式主要是通过播种或分株的方式，这种方式存在着繁殖速度慢、繁殖效率低的问题，无法满足市场对大量高质量菊花的需求。

研究单头切花菊‘白扇’组培快繁技术具有重要意义，可以提高菊花的繁殖速度和繁殖效率，满足市场需求，推动菊花产业的发展。

本文旨在探讨单头切花菊‘白扇’组培快繁技术的研究现状和展望，为菊花生产和应用提供理论支持和技术指导。

通过对菊花繁殖机制的深入分析和技术优势的挖掘，为推动菊花产业的持续发展和优化提供参考。

1.2 研究意义单头切花菊‘白扇’组培快繁技术的研究意义在于提高菊花产量和质量，促进菊花产业的发展。

菊花作为重要的花卉种类之一，具有观赏和药用价值，市场需求量大。

传统繁殖方式繁琐耗时，效率低，限制了菊花产业的发展。

开展单头切花菊‘白扇’组培快繁技术的研究具有重要意义。

通过引入组织培养技术和快繁技术，可以实现菊花生产的规模化、产业化，并且提高种苗质量和繁殖速度，缩短生长周期，降低生产成本。

牡丹组培快繁技术的研究

牡丹组培快繁技术的研究牡丹组培快繁技术的研究植物组培技术是一种在人工条件下培养植物细胞、组织和器官的方法，可以用于研究植物生长发育、病虫害防治、育种改良等方面。

牡丹是我国传统的名贵花卉之一，其花形优美、花色丰富，被誉为“花中之王”。

然而，牡丹的繁殖速度较慢，而且传统的繁殖方法如种子繁殖和分株繁殖的成功率较低。

为了解决这个问题，研究人员开始探索牡丹组培快繁技术，以提高牡丹的繁殖速度和繁殖成功率。

牡丹组培快繁技术主要包括组织培养、激素诱导和快繁周期的调控。

首先，研究人员采集牡丹的茎尖、叶片等组织，将其切割成小块，并培养在含有富含营养元素的基本培养基中。

培养基中的营养元素和激素成分可以通过调节来满足不同生长阶段的需求。

其次，研究人员使用培养基中含有的激素，如生长素、细胞分裂素等来诱导牡丹细胞的分化和再生。

通过对组织培养条件和激素浓度的优化，可以促进牡丹细胞的分裂和分化，加快牡丹的生长速度和繁殖能力。

除了组织培养和激素诱导外，快繁周期的调控也是牡丹组培快繁技术的重要环节。

牡丹的生长和发育过程受到光周期和温度的影响较大，因此控制环境条件可以加快牡丹的生长和发育。

研究人员通过调节光照时间、光照强度和温度等因素，使牡丹处于适宜的生长环境中。

在高温和光照充足的条件下，牡丹的生长速度明显加快，繁殖能力也得到了提高。

牡丹组培快繁技术的研究在牡丹繁殖上取得了一定的进展。

通过组织培养和激素诱导等方法，研究人员已经成功地培养出了大量的牡丹幼苗。

在控制生长环境的条件下，这些幼苗可以在短时间内迅速生长，并具备较高的成活率。

此外，牡丹组培快繁技术还可以用于牡丹的育种改良。

通过选择生长快、抗病虫害的牡丹幼苗进行繁殖，可以加快育种进程，提高育种效率。

然而，牡丹组培快繁技术还存在一些问题和挑战。

首先，组培过程中容易出现细菌和真菌的感染，导致牡丹组织的腐烂和死亡。

因此，如何控制组培过程中的病原微生物是一个需要解决的难题。

其次，牡丹组织培养和激素诱导需要大量的实验设备和培养基材料，成本较高。

植物组织培养技术应用及进展

植物组织培养综述植物组织培养技术应用及进展摘要：本文综述了植物组织培养理论的发展，重点论述其再脱毒、快繁、育种与有机化合物工业生产以及种质资源的保存等方面的应用，本文还对植物组织培养过程中所采用的新技术进行了综述, 介绍了这些新技术的应用现状,并对应用的前景作简单的展望。

关键词:植物组织培养；应用；进展1.理论起源19世纪30年代，德国植物学家施莱登和德国动物学家施旺创立了细胞学说，根据这一学说，如果给细胞提供和生物体内一样的条件，每个细胞都应该能够独立生活。

1902年，德国植物学家哈伯兰特在细胞全能性的理论是植物组织培养的理论基础。

1958年，一个振奋人心的消息从美国传向世界各地，美国植物学家斯蒂瓦特等人，用胡萝卜韧皮部的细胞进行培养，终于得到了完整植株，并且这一植株能够开花结果，证实了哈伯兰特在五十多年前关于细胞全能的预言。

植物组织培养的简单过程如下：剪接植物器官或组织——经过脱分化（也叫去分化）形成愈伤组织——再经过再分化形成组织或器官——经过培养发育成一颗完整的植株。

植物组织培养的大致过程是：在无菌条件下，将植物器官或组织（如芽、茎尖、根尖或花药）的一部分切下来，用纤维素酶与果胶酶处理用以去掉细胞壁，使之露出原生质体，然后放在适当的人工培养基上进行培养，这些器官或组织就会进行细胞分裂，形成新的组织。

不过这种组织没有发生分化，只是一团薄壁细胞，叫做愈伤组织。

在适合的光照、温度和一定的营养物质与激素等条件下，愈伤组织便开始分化，产生出植物的各种器官和组织，进而发育成一棵完整的植株。

植物组织培养即植物无菌培养技术，又称离体培养，是根据植物细胞具有全能性的理论，利用植物体离体的器官如根、茎、叶、茎尖、花、果实等）组织（如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等）或细胞（如大孢子、小孢子、体细胞等）以及原生质体,在无菌和适宜的人工培养基及光照、温度等人工条件下，能诱导出愈伤组织、不定芽、不定根，最后形成完整的植株的学科。

蝴蝶兰组培快繁技术研究(1)

方法诱导培养本项研究在本所组培室进行。
切下，转入增殖培养基中。从表１可以看出，随着
从母株上切下花梗，剪下其带芽茎段，长约２—３
ｃｍ，用自来水清洗干净，在饱和漂白粉上清液中浸泡１５ｍｉｎ，浸泡时不断搅动，浸泡后的茎段用
ＢＡ浓度的增大，蝴蝶兰花梗腋芽诱导率逐渐升高，说明在相同时间内，细胞分裂素的增大，芽诱导率也随之增高。蝴蝶兰花梗腋芽最佳诱导培养基为
１／２ＭＳ＋ＢＡ２．５ｍｇ／ｌ＋ＮＡＡ０．２ｍｇ／１。
流水冲洗干净，置于超净工作台上，先用７５％的酒精消毒３０ｓ，无菌水清洗１次，再用０．１％的升
汞浸泡１０ｍｉｎ，经无菌水洗干净，将带芽茎段接
２．２不同激素及浓度的培养基对蝴蝶兰增殖的
影响
种到不同激素组合的诱导培养基上，生长４０ｄ调查诱导率，重复３次，取平均值。１．２．２继代培养
１／２ＭＳ十ＢＡ３．５ｍｇ／１＋ＫＴＩ．０ｍｇ／１＋ＮＡＡ０．５
２．３不同激素及浓度的培养基对蝴蝶兰生根的
影响
ｍｇ／１十１０％椰汁，增殖倍数可达３．２６，且叶片健
壮；最佳生根培养基为ｌ／２ＭＳ＋ＢＡｌ．５ｒａｇ／１十
ＮＡＡ０．３
将高约２．０ｃｍ的蝴蝶兰试管苗接种到附加
８０
ｍｇ／ｌ＋８０∥ｌ香蕉泥，生根率可达ｉ００％，
［５］刘荣维，等．丛生芽一蝴蝶兰无性快速繁殖的新途径［Ｊ］．热带作物学报，１９９３．１４（２）：１０５．１０７．［６］潘学峰．等．利用丛生芽途径快速繁殖蝴堞兰的研究［Ｊ］．海南大学学报（自然科学版），２００５．２３（Ｉ）：
４７．５２．
万方数据
方法。
均根长，取平均值。
１．２．４培养基基本培养基１／２ＭＳ，增殖附加１０％的椰乳和生根培养基附加８０ｇ／１的香蕉泥。

卡特兰组培快繁技术实例 · 含配方

卡特兰兰科卡特兰属多年生草本。

原产于中南美洲，多数种类为附生兰，是洋兰中花朵最大、花形奇特、色彩艳丽的一个属，有的品种还能散发出芳香，被称为洋兰中的皇后，有很高的观赏价值与经济价值。

卡特兰的种子大多数不具子叶和胚乳，在自然条件下极难萌发。

常规繁殖方法为分株法，此法繁殖率低。

采用组培扩繁方法，一个茎尖每年可以繁殖上万棵植株。

近年来国内引进了包括卡特兰在内的许多极有价值的洋兰，用于商业切花、盆花生产，受到人们的广泛喜爱。

为了满足市场的需要，有必要对卡特兰的组织培养进行研究并应用于快速繁殖生产。

1、无菌培养物的建立1.1 外植体选择所用外植体有叶片、茎尖、茎段、腋芽等。

茎段、腋芽一般直接诱导原球茎，按照常规的原球茎途径培养。

茎尖、叶片等可以先诱导愈伤组织，然后通过愈伤组织诱导原球茎，最后也是按照常规的原球茎途径进行繁殖。

1.2 原球茎的诱导培养从茎尖、茎段、叶片、腋芽诱导原球茎受激素的影响很大。

细胞分裂素在诱导原球茎中起主导作用，而细胞分裂素种类不同，诱导原球茎的效果也不同。

6-BA与NAA组合的效果优于KT与NAA组合，诱导率高出约30％。

如果浓度适宜，6-BA和NAA的组合不仅诱导率高，而且每个外植体产生的平均原球茎都在5个以上。

6-BA和IBA则有利于芽丛的形成，不利于诱导原球茎。

高浓度激素组合易引起植株变异。

在细胞分裂素含量相同的情况下，随着生长素浓度的增高，所形成的原球茎平均数量减少。

在继代培养中，原球茎分化形成苗的发育情况也有差异。

随着生长素浓度的增高，芽苗渐趋健壮、矮化；在生长素绝对浓度很低的情况下，原球茎致密无分化，呈愈伤组织状。

适合叶片诱导原球茎的培养基为MS+6-BA5.0～6.0mg/L+NAA1.0mg/L，适合茎段诱导原球茎的培养基为MS+6-BA5.0～6.0mg/L+NAA0.5mg/L，适合茎尖、腋芽诱导原球茎的培养基为MS+6-BA0.5～1.0mg/L+NAA0.1mg/L。

园艺植物组培快繁育苗技术的特点

园艺植物组培快繁育苗技术的特点园艺植物组培快繁育苗技术是一种通过离体培养的方法，将植物的组织或细胞培养在无菌条件下，以实现快速繁殖植物的目的。

这种技术具有以下几个特点。

1. 高效快速：园艺植物组培快繁育苗技术能够在短时间内快速繁殖大量的植株。

相比传统的种子繁殖或扦插繁殖，组培技术的繁殖速度更快。

一些植物甚至可以在几个月内繁殖成千上万的苗木。

2. 繁殖途径多样：通过园艺植物组培快繁育苗技术，可以繁殖各种植物，包括花卉、果树、蔬菜等。

同时，不同的组织和细胞也可以用于组培快繁，如茎尖、叶片、花器官等。

3. 技术可行性强：园艺植物组培快繁育苗技术已经被广泛应用于实际生产中，取得了良好的效果。

无论是在大规模的苗木生产还是在新品种选育中，组培快繁技术都发挥了重要的作用。

4. 遗传稳定性高：通过园艺植物组培快繁育苗技术繁殖的植株，其遗传稳定性较高。

这是因为组培快繁过程中，通过无性繁殖产生的植株与母本植株具有相同的基因组成，不会出现遗传变异。

这一特点使得组培快繁技术在保持良种纯度和繁殖优良品种方面具有重要意义。

5. 空间利用率高：园艺植物组培快繁育苗技术可以在较小的空间内进行，节省了种植面积。

这对于城市园林、植物工厂等空间有限的场所具有重要意义。

6. 病虫害传播风险低：园艺植物组培快繁育苗技术在无菌条件下进行，能够有效避免病虫害的传播。

这对于一些易感病虫害的植物来说，是一种有效的繁殖方式。

7. 提供良种资源：通过园艺植物组培快繁育苗技术，可以快速繁殖优良品种，为农业生产和园林绿化提供了大量的良种资源。

这有助于提高作物的产量和品质，丰富园林植物的品种。

8. 可持续发展：园艺植物组培快繁育苗技术具有可持续发展的潜力。

通过合理利用植物的组织和细胞，可以实现长期的繁殖和利用，减少对自然资源的消耗。

园艺植物组培快繁育苗技术具有高效快速、繁殖途径多样、技术可行性强、遗传稳定性高、空间利用率高、病虫害传播风险低、提供良种资源和可持续发展等特点。

兰花的组织培养技术

兰花组织培养技术安徽科技学院农学院种子科学与工程杨立平 1119120224摘要：在适宜的条件下，将兰花植株的外植体在无菌环境中应用人工培养基，通过外植体的采集与处理、培养基的制作、外植体的接种、继代增殖以及驯化移栽等操作技术，可在短期内获得大量幼小的无病毒植株，从而达到增殖扩繁的目的。

组织培养技术是经济有效快速繁殖优良品种的方法，也是产生脱毒苗的重要途径。

关键词：组织培养兰花外植体试管苗花属兰科多年生草本植物，中国兰花为兰科属中的地生兰。

其香味怡人，花色淡雅，品种丰富，素有“花中君子”之称。

具有很强的观赏价值和经济价值，深受人们的喜爱。

此外，其也是目前世界上栽培较广的切花材料之一，兰花的切花生产，需要大批量的种苗，要获得优质高产，兰花种苗必须具备种性一致，生长齐一，长势旺盛的特点。

在种苗生产上运用最广泛的是组培快繁和分株。

生产实践证明，运用组织培养快繁技术生产种苗，其长势旺盛，品种复壮，抗病性强，切花质量好，对加快优良品种的培育，挽救珍惜濒危种类等起到十分重要的作用[1]。

兰科(Orchidaceae) 是有花植物中最大的一个科, 约有800 属, 25 000～30 000 种, 广泛分布于全球各地。

兰花是整个兰科植物的总称, 常见的有春兰、蕙兰、建兰、蝴蝶兰、石斛、卡特兰, 文心等, 其花具有极高的欣赏价值和经济价值。

有些种类如天麻等则具有极高的药用价值。

兰花的组织培养始于20世纪60 年代。

Morel[1]采用大花蕙兰的茎尖, 在含有细胞分裂素的KC 培养基上进行培养, 茎尖分生组织膨大形成原球茎, 并分化出根和叶, 首次获得兰花无病毒小植株。

目前大约已有60 余属数百种兰花可以用组织培养的方法进行繁殖。

兰花在植物分类学上属于单子叶植物中的一个科，为多年生草本植物，附生、地生或腐生。

兰花根呈圆柱状，属肉质组织，茎很短，高度约为2～3cm，兰叶大多叶边全缘，有的略有锯齿。

其花属于不整齐花范畴，总状花序。