提取酵母细胞壁中_D_葡聚糖的新方法

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酵母β葡聚糖结构

酵母β葡聚糖结构

酵母β葡聚糖结构一、酵母β葡聚糖的概述酵母β葡聚糖是一种具有广泛生物活性的多糖,主要存在于酵母细胞壁中。

它是由β-1,3-葡萄糖键组成的长链多糖,分子量庞大,具有多种生物功能。

近年来,随着科研技术的不断发展,酵母β葡聚糖的生理活性及其应用研究受到了广泛关注。

二、酵母β葡聚糖的结构特点酵母β葡聚糖的结构特点主要表现为长链状、分支状或螺旋状,这种独特的空间结构使其具有较高的稳定性。

在酵母细胞壁中,β葡聚糖与蛋白质紧密结合,形成一种坚固的保护层,有助于酵母细胞抵抗外部压力和恶劣环境。

三、酵母β葡聚糖的生物活性酵母β葡聚糖具有多种生物活性,包括抗肿瘤、免疫调节、降血脂、抗疲劳等。

这些生物活性与β葡聚糖的结构、溶解性、分子量分布等因素密切相关。

四、酵母β葡聚糖的应用领域酵母β葡聚糖在食品、饲料、医药等领域具有广泛应用。

作为食品添加剂,它可以提高食品的口感、外观和营养价值;在饲料领域,酵母β葡聚糖可作为抗营养因子,提高饲料的营养价值;在医药领域,酵母β葡聚糖作为生物活性物质,可用于治疗肿瘤、免疫性疾病等。

五、酵母β葡聚糖的提取与制备方法酵母β葡聚糖的提取方法主要有物理法、化学法和生物法。

物理法包括热水提取、酸碱提取等;化学法包括酸解、碱解、酶解等;生物法主要是利用微生物发酵生产β葡聚糖。

制备方法有溶胶-凝胶法、溶液法、干燥法等。

六、酵母β葡聚糖的摄入与健康益处适量摄入酵母β葡聚糖有助于提高人体免疫力、降低胆固醇、预防心血管疾病等。

此外,酵母β葡聚糖还具有抗衰老、抗疲劳、促进消化等作用。

七、总结与展望酵母β葡聚糖作为一种具有广泛生物活性的多糖,其研究价值和应用前景十分广阔。

随着科研技术的不断发展,未来酵母β葡聚糖在食品、饲料、医药等领域的应用将更加广泛,为人类健康和生态环境带来更多益处。

贝塔葡聚糖提取

贝塔葡聚糖提取

贝塔葡聚糖提取全文共四篇示例,供读者参考第一篇示例:贝塔葡聚糖是一种天然多糖,广泛存在于海藻、菌类和植物细胞壁中。

它具有多种生物活性,如抗炎、抗氧化、抗肿瘤等,因此受到了越来越多的关注。

贝塔葡聚糖的提取方法有很多种,其中以酶法和酸碱法为主要方法。

本文将介绍贝塔葡聚糖的基本信息、提取方法以及在医药、食品和化妆品等领域的应用。

一、贝塔葡聚糖的基本信息贝塔葡聚糖(Beta-glucan)是一种异聚体,由β-D-葡萄糖单元通过1,3和1,4的糖苷键连接而成。

它主要存在于植物细胞壁、真菌、酵母和海藻等中,并且具有多种结构和性质。

根据β-葡聚糖分子链中1,3和1,4键的数量和排列方式的不同,可以分成不同种类,如线型β-葡聚糖、支链β-葡聚糖等。

贝塔葡聚糖具有多种生物活性,包括免疫调节、抗氧化、抗肿瘤、降血脂、降血糖等。

其中最为突出的是其免疫调节作用,能够增强机体的免疫力,抗病毒、抗菌和抗炎等。

贝塔葡聚糖被广泛应用于医药、食品、化妆品等领域。

二、贝塔葡聚糖的提取方法1. 酶法提取:酶法是目前贝塔葡聚糖提取的主要方法之一。

主要步骤包括原料处理、酶解、分离和纯化等。

首先将含有贝塔葡聚糖的原料(如海藻、菌类等)进行粉碎和提取,然后加入适量的酶(如纤维素酶)进行酶解,使贝塔葡聚糖释放出来。

接着通过分离和纯化步骤获得纯净的贝塔葡聚糖。

2. 酸碱法提取:酸碱法是另一种常用的贝塔葡聚糖提取方法。

该方法主要是利用酸碱对贝塔葡聚糖原料进行溶解和分离。

首先将原料进行预处理,然后通过酸碱处理使贝塔葡聚糖溶解到溶液中,再通过沉淀、洗涤等步骤得到纯净的贝塔葡聚糖。

以上两种提取方法各有优缺点,选择适合的提取方法取决于原料的性质、成本和对产品纯度的要求等因素。

1. 医药领域:贝塔葡聚糖在医药领域有着广泛的应用。

其免疫调节、抗炎、抗氧化等生物活性使其成为一种重要的免疫增强剂和抗肿瘤药物。

近年来,贝塔葡聚糖也被发现对心血管疾病、糖尿病、肥胖等具有一定的预防和治疗效果,因此备受关注。

酵母中的葡聚糖试剂

酵母中的葡聚糖试剂

酵母中葡聚糖试剂通常用于检测酵母细胞壁中的葡聚糖含量。

葡聚糖是酵母细胞壁的主要成分之一,其含量与酵母细胞的生理状态、品种、培养条件等因素有关。

使用葡聚糖试剂进行检测的方法通常包括以下步骤:
1.准备试剂:按照试剂盒说明书准备试剂,通常包括葡聚糖标准品、葡聚糖
酶、底物等。

2.样本处理:将待测酵母样本进行处理,如破碎细胞壁,提取葡聚糖等。

3.反应:将样本与试剂混合,在适宜的温度和pH条件下反应一定时间,使葡
聚糖酶与底物充分反应。

4.检测:通过比色法或荧光法等方法检测反应产物的吸光度或荧光强度,从
而计算出样本中的葡聚糖含量。

需要注意的是,不同品牌和批次的葡聚糖试剂可能存在差异,因此在使用时应遵循试剂盒说明书上的操作步骤和注意事项。

同时,为了获得准确的结果,样本处理和实验操作都应严格按照要求进行。

碱-酶法提取啤酒酵母粉中β-(1,3)-D-葡聚糖

碱-酶法提取啤酒酵母粉中β-(1,3)-D-葡聚糖

剂 ( R ) 它 能够 通过 刺 激 免 疫 系 统 而提 高 机 体 的 B M ,
免疫 能力 , 肿瘤 、 炎 、 尿国华 电器 有 限公 司 ; N一4 KD 0 B凯 氏定 氮仪 : 海 新嘉 上 电子有 限公 司 ;C 90 C水 分 快速 测定 仪 : S 6—2 上海 精 密 科学 仪器 有 限公 司 ;0 A 3电热鼓 风 干燥 箱 : 骅 市 11 一 黄 卸 甲综合 电器厂 ; R 3 0色差 仪 : C 一0 美能 达公 司 。
涤 , 0 / n离 心 1 n 将 沉 淀 物 重 复 洗 涤 、 48 0rmi 0mi, 离
心至 洗涤 液 澄 清 为 止 。沉 淀 物 中加 入 4 的 Na OH 溶 液 1 0mL,0 5 8 ℃水 浴 提取 2h后 于 48 0r mi 0 / n离
心 1 n 沉 淀 物 加 入 1 0 mL水 充 分 洗 涤 , 在 0 mi , 0 再
8 . 7、 3 0 n值 2 1 、 . 2 b值 8 8 。 . 6
关键 词 啤 酒 酵 母 粉 , 酶 法提 取 ,p( ,)D 一 聚糖 , 取 工 艺 碱一 一 13 - 葡 提
口( , )D 葡 聚 糖 是 一 种 良好 的生 物 效应 调 节 一13 一 -
分析 天平 : T E ME TL R TOL D 电子 恒 温 水 浴 锅 : E O;
糖 , 占酵 母 细 胞 壁 干 重 的 2 , 主链 是 t( , ) 约 9 其 ? 1 3 - 键 , 链 为 f( , ) , 侧 } 1 6 键 且具 有 独特 的 3重超 微 螺旋 结 _ 构 。从 废 酵母 中提 取 p( , )D 一 聚糖 具 有 较好 的 一13 一 葡 经济 和社 会效 益[ 。 5 j 实验 以干燥 的啤酒 酵母 粉 为原 料 , 前期 对 比酸 在 法 、 法、 碱 酸碱法 、 声波 法等 方 法 的 基础 上 , 用 碱一 超 采 酶提取 方法 。优 化 提取方 案 后得 到 了纯 度较 高 、 品质 较好 的葡 聚糖产 品 。

从酵母细胞壁提取β-1,3-D-葡聚糖的研究

从酵母细胞壁提取β-1,3-D-葡聚糖的研究
Ab ta t T eB一1 3一D —G1c nwa xrce rm ecl w lo atb cd meh n laime d e sr c: h , u a se t tdfo t el a fYes y ai to a d ak l a h l d t ho r—
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c nta o tie ooh rc ro y rtsa d p tis T eh doyi c a im a ic se . T e df rn e b — a h t nan d n te ab h dae n r en . h y rlssme h s W dsu sd c o n s h iee c e f
法和红外光谱法分析多糖 成分。结果发现 :经酸法 ( 酸溶液浓 度为 0 5 o L 提取 的 1—1 醋 .m l ) / 3 ,3一D一葡 聚 糖产品 中除含有 葡聚糖 外 ,还含 有一 定量 的甘 露聚糖 和蛋 白质成 分 ;而 用碱 法 ( 氧化 钠溶 液浓 度 为 10 氢 .
m V )提取时 , 品为高 纯度 的 1 1 3 D一 oL 产 3 , 一 葡聚糖 。本文从其 水解机理上探讨 了产生 上述两种 不同结果 — 的原 因,指出碱法提 取是 从酵母 中提取 B 1 一 葡聚糖的高效方法。 一 ,3 D一

酵母β-1,3-D-葡聚糖提取酶解工艺的研究

酵母β-1,3-D-葡聚糖提取酶解工艺的研究
h dr y i wi alal e y olss t h c as 2.L wa a 4 s dde b d v 1 0 U p grm y a t el 01 6 er a e s c f waf a c t u l nd oni ed n

纯 度 不 高 , 要 进 一 步 纯 化 。本 实 验 采 用 自溶 后 的 酵 需 母 残 渣 ,外 加 蛋 白 酶 水 解 除 去 大 量 的 蛋 白 质 及 其 它 杂 质 , 低 后 续 碱 处 理 工 序 中 碱 液 浓 度 和 用 量 。 便 降 以
抗肿 瘤 等 的临 床应 用上 受 到 限制外 , 高度 的粘性 、 其 持 水 性 和 热 稳 定 性 以及 制 备 工 艺 简 单 等 优 点 ,在 食
品 、 药 、 妆 品 、 业 、 纸 和 建 筑 材 料 等 行 业 中 广 医 化 农 造
泛 应 用 。 从 酵 母 细 胞 中 提 取 B 1 3) 葡 聚 糖 就 是 要 一( , 一
中 图分 类 号 : 2 1 文 献 标 识 码 : 0. 3 A 文 章 编 号 :10 — 3 5 20 )5 0 O L 4 0 2 0 0 (0 70 — 2OI o
提供 ; 制剂 酶
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维普资讯
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食 景 加 刑
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啤酒酵母细胞壁中β-(1,3)-d-葡聚糖提取与应用

啤酒酵母细胞壁中β-(1,3)-d-葡聚糖提取与应用

啤酒酵母细胞壁中β-(1,3)-d-葡聚糖
提取与应用,请详细给出过程提取啤酒酵母细胞壁中的β-(1,3)-d-葡聚糖通常可以分为以下步骤:
1. 收集啤酒酵母细胞壁材料:可以通过培养啤酒酵母菌株并在合适的时期收集细胞,或者购买已经分离好的酵母细胞壁材料。

2. 细胞壁材料的处理:将收集到的细胞壁材料洗涤干净,去除残留的细胞核、蛋白质和其他杂质。

一般可以使用缓冲液、表面活性剂、盐类等物质进行洗涤。

3. 酸水解:将经过洗涤的细胞壁材料置于酸性溶液中进行水解处理。

在此过程中,β-(1,3)-d-葡聚糖会从细胞壁中溶解出来。

可以使用硫酸、盐酸等强酸进行水解处理。

4. 中和处理:将酸性水解液加入适量的碱液中进行中和处理,使其达到中性或碱性。

这样可以防止酸性条件对后续的处理产生干扰。

5. 沉淀处理:使用有机溶剂或离子交换树脂等物质将溶液中的杂质和非目标成分去除,从而获得较纯的β-(1,3)-d-葡聚糖沉淀。

6. 干燥处理:将β-(1,3)-d-葡聚糖沉淀在低温条件下干燥,制备成粉末状的β-(1,3)-d-葡聚糖。

应用方面,β-(1,3)-d-葡聚糖具有多种生物学和医学应用,例如增强机体免疫力、抗肿瘤、抗炎症等。

在生产和应用中,可以将提取到的β-(1,3)-d-葡聚糖加入到口服保健品、化妆品、医疗器械、药物等制品中,以增强其功效和疗效。

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酵母β-1,3-葡聚糖提取方法及生物活性

酵母β-1,3-葡聚糖提取方法及生物活性

酵母β-1,3-葡聚糖提取方法及生物活性
王玥玮
【期刊名称】《食品研究与开发》
【年(卷),期】2012(033)008
【摘要】对酵母β-1,3-葡聚糖的提取方法进行综述,对各种方法的特点进行比较.简述酵母β-1,3-葡聚糖具有提高免疫力、抗肿瘤、抗辐射、降低胆固醇等生物活性.【总页数】3页(P230-232)
【作者】王玥玮
【作者单位】天津市食品研究所有限公司,天津301609
【正文语种】中文
【相关文献】
1.3种啤酒酵母细胞壁中β-(1,3)-D-葡聚糖提取方法的比较 [J], 蔺红苹;陈春红;杨淞
2.微波辅助碱—酶法提取酵母β-1,3-葡聚糖工艺优化 [J], 杨锡洪;高学丽;解万翠;李子琪
3.源于Paecilomyces sp. FLH30内切β-1,3(4)葡聚糖酶基因在毕赤酵母中的表达[J], 胡玮;张慧玲;魏欢;付婷婷;陈勇;武运
4.酵母β-葡聚糖的提取方法及其生物活性与应用研究进展 [J], 于明秀;王凤山
5.基因突变提高毕赤酵母表达内切β-1,3-葡聚糖酶活性 [J], 金树霞;王力;朱莉;李菲菲;刘丽萍;詹晓北;郑志永;高敏杰
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从活化酵母中提取β-葡聚糖的工艺研究

从活化酵母中提取β-葡聚糖的工艺研究
应 用
在 国 内外 相 关 研 究 报 道 中 , 于 B 葡 聚 糖 的 制 备 , 酸 法 , 法 , 对 一 有 碱 以及 酸 碱 、 机 溶 剂 和 酶 相 结 合 的 方 法 。 其 中 , 法 由 于其 浸 提 工 艺简 有 碱
恒重 , 记录结果并分析。 1 . 聚 糖 含 量 测 定 . 6葡 2
科技信息
高校 理科 研 究
从 活 化 酵 母 巾 提取 p一葡 聚糖 的 工 艺研 穷
颜世 磊 1 孙 _

( . 东师 范 大学 生命 科 学学 院 2山 东省 农业 科 学院植 保所 ) 1山 .
[ 摘 要] 笔者采用酸法、 法和酸碱融合法提 取酵母细胞壁 中的 p一葡聚糖 , 碱 对得 率和纯度进行对 比分析后 , 发现用碱法浸提工 艺 从 破 壁 酵 母 中提 取 碱 不 溶 性 B一 葡 聚 糖 效 率 最 高 。 通 过 正 交 试 验 得 出最 佳 提 取 条 件 为 :在 7 。 条 件 下 、.5 l 5C 07 mo/ L的 碱 液 处 理 lmi。 不 同脱 水 和 干 燥 条 件 的 对 比 实验 表 明 : 水 和 干 燥 条 件 影 响 产 品 的 色 泽 ; 剂 和 水 分 蒸 发 得 越 快 , 品 最 终 含 水 率 越 低 , S 脱 溶 产 产
1 . 法 . 3碱 2
\ 因素
实验 条件
— —
温 度 时 问 方 法 \ /C 。 / i a rn
酸法 7 0 6 -2 0 1
实 验 用 料
葡 聚糖 得 率 纯 度 , g / % / %
配 制 1 mo 1Na H 溶 液 6 mL . l O 0 / 0 ,加 入 酵 母 粉 3 ,在 7 g 0℃下 水 浴 12小 时 。 3 0 r n离 心 1ri, 淀 物 水 洗 2次 , 后 用 无 水 乙 醇 洗 — 0 0/ mi 5 n沉 a 然
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表 2
试验号 温度 / 1 2 3 4 5 6 7 8 9 k1 k2 k3 R 115 115 115 120 120 120 125 125 125 35 9 37 98 33 3 4 68 3 4 5 3 4 5 3 4 5 37 32 37 08 32 78 4 54
正交试验结果
得率 /% 70 48 62 18 60 6 61 05 59 68 64 33 56 69 63 49 60 56 1 10 1 15 1 20 1 15 1 20 1 10 1 20 1 10 1 15 35 17 34 24 37 77 3 53 34 08 35 21 38 41 41 51 38 52 33 92 36 39 37 53 26
D 葡聚糖的新方 法 , 包括高 温抽提 、 脱脂和酶解 3 部分 。 在 高温条 D 葡聚糖 得率和纯度 的影响 。 结果 表明 , 高 温提取的 最佳工 艺条 D 葡聚糖得率为 61 05% , 纯度达到 41 51 % ; 为了进一步提
件下分别考察了 Biblioteka H、 料液比 、 温 度及时间对 高
件 为 : 料液比为 1 15、 pH = 8 、 温度 120 , 时间 3 h , 78 31% 。 关键词 D 葡聚糖 , 酵母细胞 壁 , 提取
2011年第 37 卷第 1期 ( 总第 277期 )
1 材料与方法
1 1 仪器 W a ters 600 高效液相色谱仪 ( 配置 W aters 600 四 元输液泵 , 2410 示差折 光检测 器, 7725 i进 样阀, Em pow er色谱工作站 ) ; 高压灭菌锅 ( 上海 第一医疗 器械厂 ); QT 1 漩涡混合器 ( 上海琪特分析仪器有限 公司 ) ; 德国 Christ ALPHA 1 4L SC 冷冻干燥机 (北京 鑫盛鸿阳科技有限公司 ); Avanti J 26XP 系列高效离 心机 ( 贝克曼库尔特商贸 ( 中国 )有限公司 )。 1 2 试剂 酵母细胞壁 (安琪酵 母有限公司提供 ) , 蛋白酶
D 葡聚糖的纯度 , 采用了脱 脂和 酶解 的方 法去 除粗 多 糖中 的蛋 白质 、 脂 质 等杂 质 , 最 终产 品的 纯 度达 到
D 葡聚糖是一种极富生物活性的多糖 , 具有较 强的免疫及抗肿瘤活性。在酵母细胞壁中含有大量 的 D 葡聚糖。目前该资源主要是作为饲料廉价销 售, 造成资源浪费, 利用现代科技手段从酵母细胞壁 中提取 D 葡聚糖是实现其综合利 用的有效措施。 传统的提取方法有酸法、 碱法、 酸碱结合方法 , 但提取 条件都较为剧烈, 且酸碱试剂易腐蚀设备 , 环境污染 严重 , 尤其是在提取过程中部分 D 葡聚糖会降解, 造成产品得率与生物活性的降低。本文采用了一种 较为温和的提取 D 葡聚糖方法 , 包括高温抽提、 脱 脂和酶解 3 部分 , 操作过程简便、 快速, 易于大规模生 产, 更为重要的是避免了酸碱条件对产品带来的降解 作用 , 同时副产物甘露聚糖是动物营养与免疫研究和 应用中的主要功能性多糖 , 因而具有一举 两得的效 果。
T M
磷酸盐缓冲溶液配制 ) 的条件下 , 考察料液比对粗多 糖纯度和得率的影响 , 结果如图 1。粗多糖的纯度随 着缓冲液比例的增加而升高, 得率随着缓冲液比例的 增加而下降 , 这是由于缓冲液比例的增加使得酵母细 胞壁粉末与缓冲溶液之间的抽提作用更加充分, 甘露 聚糖蛋白溶出增多, 所以粗多糖纯度升高 , 随之得率 下降。
图 2 pH 值对粗多糖得率和纯度的影响
如图 2 所示 , 在弱酸性至碱性范围内 , 粗多糖纯 度的变化主 要在 pH 值 7 5~ 8 5 有 明显下降 的趋 势, 随着 p H 值进一步增大, 纯度逐渐升高; 得率出现 先下降再上升再下降的变化趋势。因为酵母细胞壁 中含有的甘露聚糖蛋白不易溶于弱酸性环境 , 但能以 整体形式溶于碱性条件, 所以随着 p H 值从弱酸性变 化到中性 ( 5~ 7), 甘露聚糖蛋白的溶解性逐渐增大, 得率逐渐下降 ; 随着 pH 值的进一步增大 , 得率反而 上升, 这可能是因为酵母细胞壁中含有的蛋白质在等
P rota m ex 、 Savinase 、 N eutrase 、 A lca lase 2 4L ( 丹麦 No vozym es公司提供 ) , P rotex 40L ( Genencor公司提供 ), 胰蛋白酶和 CP酶 (复合蛋白酶 ) ( 无锡杰仁生物科技 公司提供 ) , 所有化学试剂均为分析纯。 1 3 D 葡聚糖的提取 高温提取: 用缓冲液配成一定质量浓度的酵母细 胞壁悬浮液于 250 mL 三角瓶中 ( 加入直径 0 5c m玻 璃珠 ) , 分别在不同 pH、 时间、 温度、 料液比下进行高 温抽提 , 离心, 沉淀用水洗涤 3 次 , 冷冻干燥, 得到水 不溶性粗多糖, 备用。 脱脂: 取 得 到的 水 不 溶 性 粗 多 糖, 按 照 1 20 ( g mL )的比例分别与不同的有机溶剂配成悬浮液, 不同有机溶剂为: V ( 正己烷 ) V ( 甲醇 ) = 4 1 、 异丙 醇、 石油醚、 无水乙醇、 正己烷等, 加热回流 5 h , 进行 脱脂处理, 反应结束后得到脱脂粗多糖, 40 真空干 燥, 备用。 酶解 : 脱脂得到的粗多糖经酶解 脱去残余蛋白 质, 采用的蛋白酶有 : 中性蛋白酶 N eutrase 、 碱性蛋白 酶 Sav in ase , A lca lase 2 4T 及 P ro tex 40L、 复合蛋白酶 P rota m ex 、 胰蛋白酶和 CP 酶等, 反应结束后 , 得到的 残渣用水洗涤 3 次 , 离心, 再加水复溶后于 100 加 热 5 m in 灭酶 , 离心, 真空干燥 , 得到淡黄色粉末即为 D 葡聚糖产品。 1 4 粉末 ( D 葡聚糖含量的测定 H 2 SO 4 水解 : 准确称取 100 m g 左 右酵母细胞壁 D 葡 聚糖产品或其 中间产物粗 多糖 ) 于 25 m L具塞试管中 , 加入 1 5 mL 72 % H 2 SO4, 漩涡混匀, 室温静置 3 h , 然后加入一定浓度阿拉伯糖溶液作为 内标物 , 再加入去 离子水使 H 2 SO 4 的最终 浓度为 1
在单因素 试验考察 的基础上 , 选择 在 pH 值 为 8 0 的条件下 , 从温度、 时间、 料液比 3 个影响因素设 计正交实验 , 考察其对得率和纯度的影响。
表 1 正交试验因素水平表
水平 1 2 3 因素 温度 / 115 120 125 提取时间 / h 3 4 5 料液比 ( g mL ) 1 10 1 15 1 20
分离与提取
提取酵母细胞壁中
1 , 2 1 1
D 葡聚糖的新方法
2 1 1 , 2
王静 , 戴军 , 陈尚卫 , 洪雁 , 朱松 , 顾正彪
2( 江南 大学食品学院 , 江苏 无锡 , 214122) 摘 要 研究了 一种从酵母细胞壁 中提取
1( 江南大学食品科 学与技术国家重点实验室 , 江苏 无锡 , 214122)
2 结果与讨论
2 1 料液比对粗多糖纯度和得率的影响 在反应 温度 120 , 时间 4h , p H 8 0 ( 0 1 m o l/L 190
2011 Vo l 37 No 1 ( To ta l 277)
分离与提取
电点时溶解度降低 , 易沉淀析出, 导致粗多糖得率上 升的原因 ; 在 pH 值 8 5~ 10 , 甘露聚糖蛋白能以整体 溶于碱性条件 , 所以得率会下降。综合考虑到粗多糖 纯度、 得率以及过碱会造成粗多糖降解等影响因素, 最终选择 p H 7 5~ 8的范围优化提取的最佳组合。 2 3 温度对粗多糖得率和纯度的影响 按照料液比 1 10( g mL ), p H 值 8( 0 1 m o l/L 磷 酸盐缓冲液配制 ), 反应 4 h 条件下, 考察温度对粗多 糖得率和纯度的影响。如图 3 所示 , 随着温度的升高 粗多糖得率在 100~ 110 下降明显 , 随后温度升高 得率变化趋于平缓 ; 纯度随着温度的升高而增大, 考 虑到高温有可能导致多糖结构降解 , 故选择反应温度 为 115~ 125 。
图 1 料液比对粗多糖纯度和得率的影响
2 2
pH 值对粗多糖纯度和得率的影响 准确称取 5 g 左右 酵母细胞壁粉 末, 按照 1 10
( g mL )料液比 , 温度 120 , 时间 4 h , p H 值分别为 5 0 、 6 0( 用 0 1 m ol /L 柠檬 酸 柠檬 酸钠 缓冲液 配 制 )、 7 0 、 7 5 、 8 0 ( 用 0 1 m ol /L 磷 酸盐 缓 冲液 配 制 ); 8 5 、 9 0 、 9 5 、 10( 0 1 m ol /L 硼酸氯化钾 氢氧化 钠缓冲液配制 ) 的条件下 , 考察 pH 值对粗多糖纯度 和得率的影响。
第一作者 : 硕士研究生 ( 戴军 , 顾正彪为通讯作者 ) 。 收稿日期 : 2010 - 08- 29 , 改回日期 : 2010- 10- 23
189
食品与发酵工业
FOOD AND FERMENTAT ION I N DU STR IE S
m ol /L, 充氮气 , 真空封管 , 100 水解 5 h , 取出冷却至 室温 , 用 Ba( OH ) 2 中和 , 离心 , 得上清液 A, 用水洗涤 3 次, 合并 A 和所得洗涤液, 最后定容 至 100 mL, 过 滤后用 H PLC 进样检测。 色谱条件 : 色谱柱 : Sugar Pak 1 6 5 mm i d 300 mm; 流动相 : 超纯水 ; 流速: 0 4 mL /m in ; 柱温: 85 ; 检测: 示差折光检测器。 D 葡聚糖含量的计算: 称取一定量的内标物, 加入到葡萄糖中组成标准品溶液, 然后将相同量的内 标物加入到同体积的样品溶液中组成样品溶液 , 将 2 种溶液分别进样, 根据下述公式计算得到样品中葡萄 糖的含量再乘以葡聚糖的转换系数 0 9 , 得到样品中 葡聚糖的含量。 ( A i /A s ) 样品 ( C i% ) 样品 = ( A i /A s ) 标准 ( C i% ) 标准 式中 , i为葡萄糖 , s为阿拉伯糖。 1 5 总蛋白含量的测定 采用凯氏定氮方法。 1 6 脂质含量的测定 准确称取 5 g 左右干燥样品 , 按照 1 20( g mL ) 的比例与 V (正己烷 ) V (甲醇 ) = 4 1配成悬浮液 , 加 热回流 5 h , 然后将所得抽提物冷却至 40 , 蒸发得 A 1; 经抽提后所得残留物依次经正己烷、 甲醇、 丙酮溶 液洗涤, 合并 A 1 和所得洗涤液, 旋转蒸干至恒重, 准 确称重并计算脂质含量。 1 7 分子质量分布分析 高效体积排阻色谱法 ( HPSEC ) 。 仪器 : W aters 600 高效液相色谱仪 ( 配 2410示差 折光检测器和 M 32工作站 ) 。 色谱条件 : 色谱柱: U ltrahydrogel L in ear 300 mm 7 8 mm id 2 ; 流动相 : 0 1 m o l/L NaNO3; 流 速: 0 9 mL /m in ; 柱温: 45 ; 进样体积 : 10 L。 样品制备 : 样 品用二 甲亚砜 溶解、 配制 成 3 ~ 5 mg /mL 溶液, 50 超声处理 2~ 3 m in。 相对分 子 量校 正曲 线 所用 标 准 品: Dex tran T 2000 ( M W 2000 000) , Dex tranT 580 ( M W 580 000 ), Dex tran T 190 ( M w 188 000 ) , Dextran T 70 ( M W 70 000), Dex tran T 10 (M W 10 000) , Dex tran T 5 (M W 4 600) , M altopentaose (M W 828)。
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