大黄中大黄素的提取工艺研究

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大黄中药材及其醇、水提取物中大黄素成分分析标准物质研究

大黄中药材及其醇、水提取物中大黄素成分分析标准物质研究

大黄中药材及其醇、水提取物中大黄素成分分析标准物质研究采用“单一化学成分→复杂成分体系”的量值传递技术路线,完成了大黄、大黄95%乙醇提取物、大黄水提取物中大黄素成分分析系列标准物质的研制。

使用大黄素国家一级纯度标准物质进行量值传递,利用高效液相色谱协作标定法,确定了不同基质中大黄素成分的标准值;建立不确定度评估数学模型并计算各不确定度分量,最终获得不确定度值。

完成大黄、大黄95%乙醇提取物、大黄水提取物中大黄素成分分析标准物质,其大黄素成分分别为0.40%±0.03%,1.15%±0.18%,0.16%±0.08%(k=2,P=0.95)。

建立的量值传递技术路线成功解决了中药复杂体系中化学成分量值溯源的技术难题,研制的标准物质属国家级计量有证标准物质,为大黄中药材及其提取物中大黄素的定量质量控制提供了准确可靠的标准物质、物质标准、标准方法。

标签:大黄;大黄95%乙醇提取物;大黄水提取物;大黄素;标准物质;不确定度[Abstract]The certified reference materials (CRMs)of emodin in rhubarb and its alcohol extract,water extract were developed by using quantity transfer technology from single chemical composition to the complex systems. The CRM of emodin was used for quantity transfer,and high performance liquid chromatography (HPLC)method was used to determine the contents of emodin in different matrix composition. By establishing mathematical model and calculating the parts of uncertainty,the uncertainty values were finally gotten. CRMs of emodin in rhubarb,alcohol extract and water extract were accomplished. The content values of emodin were 0.40% ±0.03%,1.15%±0.18%,0.16%±0.08% (k=2,P=0.95),respectively. The established method for quantity transfer has successfully solved the technical problems that the value of active ingredient of traditional Chinese med icine can′t be traced to SI units. The series of CRMs are assigned as grade primary reference materials,which are useful for quality control of the emodin content,also provide the accurate and reliable CRM,materials standard and standard methods.[Key words]rhubarb;alcohol extract;water extract;emodin;CRM;uncertainty中药历史悠久,其用药特点是多成分复杂体系协同起效,因此如何进行中药的质量控制成为研究重点与难点,这也成为了制约中药国际化与现代化进程的主要原因。

大黄中大黄素的提取工艺研究

大黄中大黄素的提取工艺研究
学报 , 1996, 22 ( 2) : 27.
复方双黄连分散片的研制
刘 郁 1, 2 , 尹寿玉 1 , 刘连新 2
(1. 延边大学医学院 ,吉林 延吉 133000; 2. 徐州工业职业技术学院 ,江苏 徐州 221000)
摘要 :目的 制备复方双黄连分散片 。方法 以崩解时间为指标 ,采用正交设计试验 ,对复方双黄连分散片处方进行筛选 。
干燥根及根茎 。具有泻热通肠 、凉血解毒 、逐瘀通经之功效 ,在临 薄层板上 ,以石油醚 2乙酸乙酯 2冰醋酸 (15∶2∶1)为展开剂展开
床上应用很广泛 。大黄的化学成分有蒽醌类衍生物 ,其中游离蒽 12 cm ,取出 ,晾干 ,置紫外灯 (365 nm )下观察 ,大黄素斑点显淡黄
醌衍生物有大黄酸 、大黄素 、大黄酚 、芦荟大黄素 、大黄素甲醚等 , 色 。对硅胶薄层板进行扫描 ,结果在 290 nm 波长处有最大吸收 ,
块硅胶薄层板上 ,分别用正己烷 2乙酸乙酯 2甲醇 2甲酸 2水 ( 3∶1∶ 2. 3. 5 精密度实验 在同一硅胶薄层板上点 6个相同量的对照
2∶0. 1∶2) 、石油醚 2乙酸乙酯 2甲醇 ( 15 ∶5 ∶1 ) 、石油醚 - 乙酸 品溶液 ,按标准曲线项下的方法测定 。结果见表 3。
乙酯 2冰醋酸 (15∶2∶1) 、苯 2乙酸乙酯 2甲醇 ( 5∶3. 5∶1. 5) 4种 展开系统展开 ,展距为 12cm ,结果表明 :石油醚 2乙酸乙酯 2冰醋酸 (15∶2∶1)展开效果最好 ,荧光灯下清楚可见到 5 个淡黄色斑 点。
时珍国医国药 2006年第 17卷第 3期
L ISH IZHEN MED IC INE AND MATER IA MED ICA RESEARCH 2006 VOL. 17 NO. 3

大黄中大黄素和芦荟大黄素提取工艺研究

大黄中大黄素和芦荟大黄素提取工艺研究

60
130
0. 0430
0. 0092
K1
0. 0096
0. 0073
0. 0065
K2
0. 0056
0. 0043
0. 0170
K3
0. 0192
0. 0223
0. 0104
大黄素
R
0. 0136
0. 0180
0. 0105
K1
0. 0128
0. 0109
0. 0170
K2
0. 0107
0. 0135
(编辑 申嫣平)
·41·
将 25 g 大黄于 5 % NaHCO3 溶液中煎熬 30 分钟后,降至室温,滤去药渣,得黑红色溶液,浓缩后得浓缩 液. 再加入乙醚,液体颜色变浅. 再加入盐酸酸化,余下各步同上. 2. 2 结果与分析(见表 1)
产品 溶剂 大黄素
芦荟大黄素
环己烷 0. 0076 g 0. 0490 g
表 1 四种溶剂提取结果 乙醇/环己烷 0. 0329 g 0. 0867 g
表 2 因素水平表
水平 level 1 2 3
因素 Factor
A/hBiblioteka B(0C)C(mL)0. 5
100
150
1. 0
80
130
1. 5
60
110
2. 3. 2 醇提正交实验方法及结果(见表 3) 2. 3. 2. 1 确定三因素的主次
对于大黄素:B>A>C,即温度>时间>碳酸钠;对于芦荟大黄素:C>B>A,即碳酸钠>温度>时间. 2. 3. 2. 2 最佳提取条件
·39·
韩小见
大黄中大黄素和芦荟大黄素提取工艺研究
表 3 醇提正交实验设计表及结果

大黄素的提取工艺进展,

大黄素的提取工艺进展,

中药制剂中大黄素提取工艺的进展摘要:本实验主要详细介绍了大黄素的几种常见的提取工艺,论述了提取工艺的进展,大黄素常见的提取方法有反相高效液相色谱法,葡聚糖凝胶分子筛及重结晶法,超声波-微波协同萃提取测定大黄素含量且获得较为满意的结果,实验证明该方法分离能力强、干扰少,具有广泛的应用性。

1 常用的大黄素提取方法1.1方法一:准确称取烘至恒重的本品粉末5 g,加硫酸液(2.5ml/1)30 ml,加热回流2h,冷却,加氯仿50ml,水浴回流1h,分取氯仿层,酸液再加氯仿40ml,继续回流,冷却后分取氯仿层,合并氯仿层,水洗三次,回收氯仿,残渣加甲醇溶解定容至5ml[1]。

1.2方法二:(双相水解提取法)精密称取样品粉末5g,加入60m1氯仿浓度为2.5M硫酸溶液,水浴回流4h,转至分液漏斗中静置,分出氯仿层再用氯仿60、50、40m1,萃取酸水层,合并回收氯仿液,残渣加甲醇溶解、定容至5m1,[1]1.3方法三:准确称取烘至干燥恒重的本品粉末5g,置圆底烧瓶内,加甲醇40m1,加热回流提取1h,过滤,滤液蒸干,残渣加2.5M硫酸液10m1,沸水浴中水解30 min,放冷后用乙醚萃取三次(20m1,15m1,15m1分取乙醚层,合并,回收乙醚,残渣加甲醇溶解、定容至5ml)。

将三种方法制得的样品液10m1点于同一块薄层板上,展开后观察。

[1]2 超声波-微波协同萃提取将萃取物先用硅胶层析板点样,初步确定萃取效果。

展开剂为石油醚∶乙酸乙酯∶甲酸= 15∶ 5∶ 1的上层清夜。

然后将萃取物样品测试条件进行HPLC分析,萃取液中保留时间为8.288 min 的峰和对照品中大黄素(保留时间8.354 min)的出峰时间基本一致,且峰型对称,结合薄层层析分析结果可确定该组分为大黄素[2]。

实验表明,超声波功率内置为50W的仪器条件下,影响超声波-微波协同萃取大黄素的因素依次为: 乙醇浓度、提取时间、乙醇用量、微波功率。

实验二 大黄中大黄素的提取

实验二 大黄中大黄素的提取

滤渣பைடு நூலகம்
③水洗至中性,干燥
水洗:有H2SO4 留在滤渣中,若不 除去,干燥过程水分减少, H2SO4 浓度增高,造成药材碳化。
滤饼



二、总羟基蒽醌苷元的提取
1. 实验仪器: 平底烧瓶、索氏提取器、冷凝管、滤纸 2. 实验试剂: 干燥滤饼、乙醚
3. 实验方法 干燥滤饼
①置索氏提取器中,加150 (100+50)乙醚,提取1.5h
实验二 大黄中大黄素的提 取、分离和鉴定
一、大黄的酸水解
1. 实验仪器: 圆底烧瓶、冷凝管、电炉、滤布 2. 实验试剂: 大黄粉、20%H2SO4
3. 实验方法 15g大黄粉
回流:防止水分蒸发使硫酸浓度增 加造成药粉碳化。
①120ml 20%H2SO4,直火回流加热1h, ②滤布抽滤
酸水提取:大黄的蒽醌类化合物多 以苷的形式存在,用酸水解可得总 蒽醌苷元,苷原极性弱,留在滤渣 中。
乙醚提取:苷元极性弱,用弱极性 乙醚提取。
乙醚提取液(总蒽醌苷元)
温度需控制在溶剂蒸汽至冷凝管 第二个球处:防止乙醚蒸汽逸出 造成污染且影响提取效率。
玻璃仪器必须干燥,若平底烧瓶 中有水,水将会改变提取试剂的 极性,影响提取效率,且可能与 乙醚混溶后改变溶剂沸点。
三、pH梯度萃取
1. 实验仪器: 锥形瓶、布氏漏斗、滤纸、pH试纸 2. 实验试剂: 乙醚提取液、NaHCO3 、Na2CO3、NaOH


④ ③
四、柱色谱分离大黄素
1. 实验仪器: 色谱柱、烧杯、烧杯 2. 实验试剂: 硅胶、脱脂棉、丙酮、石油醚-乙酸乙酯
3. 实验方法
用洗脱剂检漏,留2cm洗脱剂缓冲 且排除脱脂棉的气体

大黄中大黄素的提取

大黄中大黄素的提取

• 提取分离流程图
大黄粉30g
先用90ml 95%乙醇浸润再用 95%乙醇150~175ml回流1.5-2小时 乙醇浓缩液,回收乙醇余30ml 400ml乙醚分别按150,100,100,50分4次萃取 合并乙醚液 乙醇液 400ml5%NaHCO3分别按150,100,100,50萃取4次 NaHCO3合并液 乙醚液 HCl酸化至pH3左右 400ml 5%Na2CO3如上萃取 沉淀 Na2CO3合并液 乙醚液 重结晶 酸化PH3左右 400ml 1%NaOH如上萃 取 大黄酸 沉淀 重结晶 大黄素 • • NaOH合并液 酸化至PH3左右 沉淀 重结晶 芦荟大黄素 沉淀 乙醚液 5%NaOH萃取 乙醚回收
NaOH合并液
酸化至PH3左右


重结晶
大黄酚+大黄素ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ醚
大黄中大黄素的提取,分离和鉴定
• 实验目的 1.从大黄中提取总蒽醌类化合物 2.用酸碱梯度法分离游离苷元 3.用TLC薄层层析法鉴定游离苷元 • 实验原理 1.利用乙醇为提取溶剂,可把不同类型互异的蒽醌类成分提取出来故回收乙 醇后得总提取物 2.总蒽醌苷元在乙醚中有一定的溶解度,可用乙醚提取总苷元 3.根据蒽醌衍生物的酸性强弱,可用不同的碱液进行萃取得到不同的蒽醌苷 元

大黄中大黄素的提取

大黄中大黄素的提取

大黄中大黄素的提取、分离和鉴定一、实验目的与要求1.熟悉蒽醌类成分的提取分离方法。

2.掌握PH梯度提取法的原理和操作技术。

3.学习用硅胶柱色谱法分离精制大黄素。

4.学习羟基恩醌类化合物的鉴定方法。

二、实验方法(一)、基本原理大黄中羟基葸醌类化合物多数以苷的形式存在,故先用稀硫酸溶液把蒽醌苷水解成苷元,利用游离葸醌可溶于热氯仿的性质,用氯仿将它们提取出来。

由于各羟基葸醌结构上的不同所表现的酸性不同,用pH梯度萃取法分离它们;大黄酚和大黄素甲醚酸性相近,利用其极性的差别,用柱色谱分离之。

(二)操作步骤实验步骤实验操作实验现象和结果总羟基蒽醌苷元的提取1 称取大黄粉3.5g,用滤纸包裹,置索氏提取器中,圆底烧瓶中加入乙醚150ml,回流提取2h,得乙醚提取液。

乙醚提取液为黄色澄清溶液。

2 点板,展开,展开剂为石油醚-乙酸乙酯(7:3)。

硅胶板上可见四个斑点,从上往下依次为黄色斑点、橙色斑点、黄色斑点、黄色斑点。

pH梯度萃取分离1 大黄酸的分离和提纯:将提取液用5%NaHCO₃振荡提取数次,分出水层,重复提取数次后合并水层提取液,用盐酸酸化至pH3,得黄色沉淀。

抽滤,水洗沉淀,再用丙酮洗,干燥后待测。

水层提取液为呈紫红色。

盐酸酸化时有大量气泡生成。

酸化后得到黄色沉淀。

2 大黄素的分离和纯化:碳酸氢钠溶液提取后的乙醚层以5%Na2CO₃振荡提取数次,分出水层,合并水层提取液,加盐酸至酸性(pH6左右),得黄色沉淀,抽滤,水洗沉淀,再用丙酮洗,干燥后待测。

水层提取液呈红色。

盐酸酸化后得到黄色沉淀。

3 芦荟大黄素的分离和提纯:碳酸钠溶液提取后的乙醚层,用0.25%NaOH振荡提取数次,合并水层提取液,加盐酸至pH约为6,得橙色沉淀。

抽滤,水洗沉淀,干燥后待测。

水层提取液层红色。

盐酸酸化后得到橙色沉淀。

4 大黄酚和大黄素甲醚的分离和提纯:将步骤3得到的乙醚层用5%NaOH振荡提取数次至无色,合并水层提取液,加盐酸酸化,得黄色沉淀。

大黄的提取分离的实验报告

大黄的提取分离的实验报告

大黄的提取分离的实验报告大黄的提取分离的实验报告引言:大黄,又称黄连木,是一种常见的中草药,具有清热泻火、解毒等功效。

其中的有效成分主要为大黄素,因此提取和分离大黄素成为研究的重点之一。

本实验旨在通过提取分离的方法,获得纯度较高的大黄素。

实验步骤:1. 材料准备:准备好干燥的大黄根,乙醇、水、醋酸等溶剂。

2. 粉碎大黄根:将大黄根研磨成粉末状,以增加提取效果。

3. 提取溶剂的选择:根据大黄素的溶解性,选择适合的溶剂。

在本实验中,选用乙醇为主要溶剂。

4. 提取:将粉碎后的大黄根与乙醇混合,放置一段时间,利用乙醇的溶解性,将大黄素从大黄根中提取出来。

5. 过滤:将提取液过滤,去除大黄根的残渣。

6. 浓缩:将过滤后的提取液进行浓缩,以减少体积,提高大黄素的浓度。

7. 结晶:将浓缩后的提取液进行结晶,通过控制温度和溶剂的浓度,使大黄素结晶出来。

8. 分离:将结晶后的大黄素与溶剂进行分离,得到纯度较高的大黄素。

实验结果:经过以上步骤,成功从大黄根中提取分离出了纯度较高的大黄素。

通过对提取液的浓缩和结晶,得到了结晶良好的大黄素晶体。

通过分离过程,成功去除了其他杂质,获得了纯度较高的大黄素。

实验讨论:1. 提取溶剂的选择:乙醇是一种常用的提取溶剂,对大黄素具有较好的溶解性。

但是在实际操作中,也可以根据实验需要选择其他溶剂进行提取。

2. 结晶条件的控制:结晶是将溶液中的溶质转化为晶体的过程。

在本实验中,通过控制温度和溶剂浓度,成功得到了结晶良好的大黄素晶体。

温度和溶剂浓度的选择对结晶的效果有重要影响,需要根据实际情况进行调整。

3. 分离的重要性:分离是提取分离过程中不可或缺的一步,通过分离可以去除杂质,提高目标物的纯度。

在本实验中,通过分离过程,成功去除了大黄根中的其他成分,获得了纯度较高的大黄素。

实验结论:通过本实验的提取分离过程,成功获得了纯度较高的大黄素。

实验结果表明,提取溶剂的选择、结晶条件的控制以及分离的重要性对于提高大黄素的纯度具有重要意义。

大黄素的制备方法研究

大黄素的制备方法研究

大黄素的制备方法研究【关键词】掌叶大黄;,,大黄素;,,制备方法摘要:目的寻找高效的大黄素制备方法。

方法先水解蒽醌苷,然后用pH梯度萃取法分离,最后柱层析法。

结果经波谱法鉴定所得结晶为大黄素。

结论该方法是大黄中大黄素较好的制备方法。

关键词:掌叶大黄;大黄素;制备方法Study on the Preparation Method of EmodinAbstract:ObjectiveTo select efficient method for preparing emodin.MethodsHydrolyze the anthraquinone glycoside first and then separate them by PH gradient extraction ,and purify emodin by chromatography at last.Results The crystal was determined as emodin by means of spectra.ConclusionThis is a good method to produce pure emodin from R.palmatum.Key words:R .palmatum; Emodin; Preparation大黄素是蓼科植物掌叶大黄Rheum palmatum L.,唐古特大黄R.tanguticum 等药材中的主要活性成分之一,近年来人们发现大黄素具有抑制肿瘤细胞增殖和诱导凋亡[1~3]、抗炎[4]、抗纤维化[5]、收缩平滑肌[6]等作用,对大黄素的研究越来越重视和深入。

但是,我们发现由于大黄素的主要来源大黄中除了大黄素以外还有大黄酚、大黄酸、大黄素甲醚和芦荟大黄素,而且这些成分在药材中主要以苷的形式存在。

很多研究者得到的大黄素样品纯度不够,这将对其研究的结果产生影响。

本文介绍一种从掌叶大黄药材中制备大黄素的方法。

大黄中大黄素的提取方法的优化研究

大黄中大黄素的提取方法的优化研究

大黄中大黄素的提取方法的优化研究大黄中的主要活性成分为大黄素,它具有抗氧化、抗肿瘤、抗炎、抗菌等多种药理作用。

由于其丰富的药用价值,大黄素的提取方法的优化研究备受关注。

本文就围绕大黄素的提取方法,从不同角度进行探讨。

一、传统提取方法传统的提取方法主要有煮水、蒸馏水和乙醇法。

其中煮水法是将大黄杆切碎后浸泡在开水中,反复煮沸几次后,收集滤液,蒸干后制成大黄素。

这种方法简单易行,但提取效率低,易出现成分发生变化的情况,并且提取出的大黄素质量也较差。

而蒸馏水法则是利用高温高压的蒸馏作用来提取大黄素,成分较纯,但提取效率低,需要高昂的设备成本和较长的提取时间。

而乙醇法则是将大黄粉末与乙醇混合,以浸提、搅拌和温度控制为主要手段进行提取。

这种方法提取效率高,成分较为纯净,容易进行量产,但该方法存在醇量的挥发和毒副作用等问题。

二、微波辅助提取法微波辅助提取法是一种新兴的大黄素提取方法。

这种方法利用微波的热性和化学性能对大黄粉末进行溶解和脱色,并能够使提取时间缩短到20分钟以内。

此外,微波加热不断变化的电磁场能够改变样品的物理、化学特性,进而不断改变大黄素与其他成分之间的相互作用和反应。

三、超临界萃取法超临界萃取法是利用超临界流体(如CO2、乙酸乙酯)对大黄中成分进行提取的一种方法。

超临界流体具有优良的传质作用、反应特性和溶解度,在低温、低压下可以得到高效、高选择性和不污染的大黄素提取物。

但是超临界萃取法设备成本高,操作要求高,需要对萃取工艺进行优化。

四、离子液体萃取法离子液体萃取法是近年来新兴的一种大黄素提取方法。

离子液体萃取法的分子设计具有很好的离子传递性,可以通过改变离子液体组分、结构和外部条件,来实现对大黄素提取效率和成分特性的优化。

离子液体萃取法相较于传统的提取方法,具有提取效率高、产品质量优、无需前处理和对环境污染小等优势。

综上所述,大黄素的提取方法有其优劣之处。

微波辅助提取法具有高效、快速和节约能源的优点;超临界萃取法具有高效、高选择性和不污染的优点,但需要高昂的设备成本和操作要求高;离子液体萃取法是一种新兴的有很好发展前景的提取方法。

大黄中大黄素的提取实验报告

大黄中大黄素的提取实验报告

⼤黄中⼤黄素的提取实验报告⼤黄中⼤黄素的提取、分离和鉴定⼀、实验⽬的2)熟悉蒽醌类成分的提取分离⽅法 2)掌握PH梯度提取法的原理和操作技术3)掌握蒽醌类化合物鉴定⽅法 4)了解液液萃取法分离混合物的实验⽅法⼆、实验原理⼤黄为蓼科植物,味苦,性寒,具有泻热通肠、凉⾎解毒、逐瘀通经等功效。

其主要有效成分为⼤黄素、芦荟⼤黄素、⼤黄素甲醚等蒽醌类化合物 ,其中⼤部分为结合的蒽醌,少量为游离的蒽醌。

结合的蒽醌类化合物由于其苷元具有酚羟基,故呈弱酸性,能溶于⽔、⼄醇、碳酸氢钠溶液,但在有机溶剂中的溶解度很⼩。

游离的蒽醌易溶于氯仿、⼄醚等有机溶剂⽽不溶于⽔。

其中,⼤黄酸具有羧基,酸性最强;⼤黄素具有β-酚羟基,酸性第⼆;芦荟⼤黄素连有羟甲基,酸性第三;⼤黄素甲醚和和⼤黄酚的酸性最弱。

根据以上化合物的酸度差异,可⽤碱性强弱不同的溶液进⾏梯度萃取分离。

⼤黄酸 R1=H R2=COOH⼤黄素 R1=CH3 R2=OH芦荟⼤黄素 R1=CH2OH R2=H⼤黄素甲醚 R1=CH3 R2=OCH3⼤黄酚 R1=CH3 R2=H本实验主要⽤薄层层析法分离纯化⼤黄素,其Rf值由⼤到⼩分别为⼤黄酚和⼤黄素甲醚、⼤黄素、芦荟⼤黄素、⼤黄酸。

三、实验器材1)试药:⼤黄粗粉、20 %硫酸溶液、5 %碳酸氢钠溶液、5 %碳酸钠溶液、盐酸、丙酮、⼄酸⼄酯、硅胶CMC-Na板、⽯油醚、⼤黄素标准品等2)仪器: 250 ml烧杯X2、200ml烧杯X2、100ml烧杯X1、10ml烧杯X3、250 ml分液漏⽃X1、100 ml量筒X1、10 ml量筒X1、索⽒提取器1套、中号铁圈X1、烧杯夹X1、250 ml上嘴抽滤瓶X1、8 cm布⽒漏⽃X1、药品匙X1、玻璃棒X1、胶头滴管X1、⾼⽅形染⾊缸X1、150 mm结晶⽫X1、硅胶管X2、洗瓶X1、⽑刷X1四、实验操作(⼀)酸⽔解⽤天平称取⼤黄粉10g,置500ml烧杯中,加20%H2SO4⽔溶液100ml,直⽕加热1⼩时,⽤布⽒漏⽃抽滤,滤饼⽔洗后于70℃左右⼲燥。

高纯度大黄素的制备工艺研究

高纯度大黄素的制备工艺研究

高纯度大黄素的制备工艺研究一、引言咱们都知道,传统中药里有个大家伙——大黄,它是咱们的“救命稻草”之一,尤其是在治疗便秘、清热解毒上特别管用。

大黄的活性成分之一——大黄素,功效那是杠杠的,能帮助改善肠胃功能、抗炎消肿,甚至对抗一些癌细胞。

但是,你知道吗?大黄素的纯度可是直接影响它效果的。

如果不小心处理,纯度一低,效果就大打折扣。

今天咱们就来聊聊高纯度大黄素是怎么制备出来的,看看它背后的“神秘工艺”,是如何让这位“药王”的小兄弟,脱颖而出的。

二、制备高纯度大黄素的工艺步骤1.原料选择你得挑对“大黄”。

大黄素可不是从大黄的哪一块就能提炼出来的,得挑那些质量上乘的根茎部分。

选择这些大黄时要注意它的生长环境,土壤、气候、采摘季节,什么都得考虑进去。

就像选牛肉,肥瘦搭配、牛种挑选一样,原料的好坏直接决定了后续的提取效果。

所以,想要大黄素纯度高,第一步就得下足功夫。

2.提取方法就是提取大黄素的关键步骤。

这个过程可不简单,要想保留大黄素的活性成分,得选对溶剂,一般会用醇类溶剂,比如乙醇,这能有效溶解大黄素,同时也避免了其他杂质的溶解。

溶解后,温度控制也很重要,温度过高会把一些有益成分搞坏,温度过低,又提取不充分。

细节决定成败,调皮的小温度就是在这个环节决定着大黄素的品质。

你可得小心翼翼地调整。

3.分离与纯化大黄素提取出来了,但你还得把其他不需要的杂质给分离出去。

这时候就要用到色谱技术了。

色谱听起来高大上,但其实它就是利用不同成分的物理化学性质差异,把大黄素从一大堆杂质中筛选出来。

常用的有硅胶柱色谱,或者高效液相色谱,这种方式能够最大限度地提高大黄素的纯度,甚至达到98%以上,简直就像是给大黄素“洗个澡”,把它洗得干干净净,闪闪发亮。

三、控制纯度的关键因素1.溶剂的选择与比例我们刚才说过了溶剂的重要性,实际上溶剂的种类和比例也是影响纯度的关键因素。

比如,乙醇和水的比例不好掌握,可能导致溶解度不够高,影响大黄素的提取效率。

大黄游离蒽醌实验报告

大黄游离蒽醌实验报告

大黄游离蒽醌实验报告大黄游离蒽醌实验报告大黄游离蒽醌实验报告引言:大黄是一种常见的中药材,被广泛用于治疗便秘和胃肠道问题。

它的主要成分是蒽醌类化合物,其中最主要的成分是大黄素。

本实验旨在通过提取大黄中的大黄素,并通过游离蒽醌实验验证提取物中的有效成分。

实验步骤:1. 材料准备:我们使用的材料包括大黄粉末、乙醇和氯化钠。

2. 提取大黄素:首先,我们将大黄粉末与乙醇混合,并在常温下搅拌30分钟,以使大黄素充分溶解。

然后,用滤纸过滤混合物,收集滤液。

接下来,将滤液转移到蒸发皿中,用低温蒸发法除去乙醇,得到提取物。

3. 游离蒽醌实验:我们将提取物与氯化钠溶液混合,并用酸性醇溶液进行萃取。

然后,我们将萃取液进行离心分离,并收集上层溶液。

最后,我们用紫外可见光谱仪测量上层溶液的吸光度,以确定其中游离蒽醌的含量。

实验结果:通过游离蒽醌实验,我们测量了提取物中游离蒽醌的含量。

根据测量结果,我们发现提取物中的游离蒽醌含量为XX mg/mL。

这表明我们成功地从大黄中提取出了游离蒽醌,并且提取物中的游离蒽醌含量较高。

讨论:大黄素是一种具有抗炎、抗菌和抗氧化等多种药理作用的物质。

游离蒽醌实验是一种常用的方法,用于检测大黄素的含量。

通过本实验,我们确定了大黄提取物中游离蒽醌的含量,这为进一步研究大黄的药理作用提供了基础。

然而,本实验存在一些局限性。

首先,我们只测量了游离蒽醌的含量,而没有对其他蒽醌类化合物进行测量。

因此,提取物中可能还存在其他有效成分。

其次,我们只使用了一种提取方法,可能有其他更有效的提取方法可以提高提取物中游离蒽醌的含量。

结论:本实验成功地从大黄中提取出了游离蒽醌,并通过游离蒽醌实验测量了其含量。

提取物中游离蒽醌的含量为XX mg/mL。

这为进一步研究大黄的药理作用提供了基础。

然而,还需要进一步研究以确定提取物中其他有效成分的含量,并尝试其他更有效的提取方法。

总结:大黄游离蒽醌实验是一种常用的方法,用于检测大黄中游离蒽醌的含量。

大黄中大黄素的提取、分离和鉴定

大黄中大黄素的提取、分离和鉴定

大黄中大黄素的提取、分离与鉴定一、实验目的(1)熟悉蒽醌类成分的提取分离方法(2)掌握PH梯度提取法的原理和操作技术(3)掌握蒽醌类化合物鉴定方法(4)了解液液萃取法分离混合物的实验方法二、实验原理大黄为蓼科植物,味苦,性寒,具有泻热通肠、凉血解毒、逐瘀通经等功效。

其主要有效成分为大黄素、芦荟大黄素、大黄素甲醚等蒽醌类化合物,其中大部分为结合的蒽醌,少量为游离的蒽醌。

结合的蒽醌类化合物由于其苷元具有酚羟基,故呈弱酸性,能溶于水、乙醇、碳酸氢钠溶液,但在有机溶剂中的溶解度很小。

游离的蒽醌易溶于氯仿、乙醚等有机溶剂而不溶于水。

其中,大黄酸具有羧基,酸性最强;大黄素具有β-酚羟基,酸性第二;芦荟大黄素连有羟甲基,酸性第三;大黄素甲醚和和大黄酚的酸性最弱。

根据以上化合物的酸度差异,可用碱性强弱不同的溶液进行梯度萃取分离。

【1】本实验主要用薄层层析法分离纯化大黄素,其R f值由大到小分别为大黄酚和大黄素甲醚、大黄素、芦荟大黄素、大黄酸。

【2】大黄酸:黄色针状结晶mp.321—322℃(升华),不溶于水,能溶于吡啶、碳酸氢钠水溶液,微溶于乙醇、苯、氯仿、乙醚和石油醚。

大黄素:橙黄色针状结晶,mp.256—257℃(乙醇或冰醋酸),能升华。

其溶解度如下:四氯化碳0.01%、氯仿0.07%、二硫化碳0.009%、乙醚0.14%、苯0.041%。

易溶于乙醇,可溶于稀氨水、碳酸钠水溶液,几乎不溶于水。

【3】大黄酸R1=H R2=COOH大黄素R1=CH3R2=OH芦荟大黄素R1=CH2OH R2=H大黄素甲醚R1=CH3R2=OCH3大黄酚R1=CH3R2=H三、实验器材试药:大黄粗粉、20%硫酸溶液、5%碳酸氢钠溶液、5%碳酸钠溶液、盐酸、丙酮、乙酸乙酯、硅胶CMC-Na板、石油醚、大黄素标准品等仪器:回流装置一套、烧杯、层析槽、试管、梨形分液漏斗、水浴锅、电热套、旋转蒸发仪循环水式多用真空泵、抽滤瓶、铁架台等四、实验内容大黄素的提取、分离流程图大黄粗粉30g【4】20%H2SO4150ml加热1h,抽滤、干燥滤饼乙酸乙酯回流提取1h乙酸乙酯层5%NaHCO3萃取水层(紫红色)乙酸乙酯层5%Na2CO3水层(红色)乙酸乙酯层(弃掉)HCl黄色沉淀(粗品)水洗至中性,丙酮溶解,分离纯化大黄素结晶具体操作步骤:1.游离蒽醌的提取称取大黄粗粉30g,加20%H2SO4水溶液150mL,加热1小时,放冷,抽滤,同时滤饼水洗至近中性(除去H2SO4),于70℃干燥后,置回流装置中,加入乙酸乙酯300mL回流提取1小时,得到乙酸乙酯提取液。

大黄中大黄素的提取分离

大黄中大黄素的提取分离

大黄中大黄素的提取分离
大黄酸R1=H R2=COOH
大黄素R1=CH3R2=OH
芦荟大黄素R1=CH2OH R2=H
大黄素甲醚R1=CH3R2=OCH3
大黄酚R1=CH3R2=H
黄色沉淀(粗品)
水洗至中性,丙酮溶解,分离纯化大黄素结晶
解释:
1.大黄中羟基蒽醌类化合物多数以苷的形式存在,故先用稀硫酸溶液把蒽醌苷水解成苷元,利用游离蒽醌可溶于乙醚的性质,用乙醚将它们提取出来。

2.由于各羟基蒽醌结构上的不同所表现的酸性不同,用pH梯度萃取法分离它们。

大黄酸具有羧基,酸性最强;大黄素具有β-酚羟基,酸性第二;芦荟大黄素连有羟甲基,酸性第三;大黄素甲醚和和大黄酚的酸性最弱。

根据以上化合物的酸度差异,可用碱性强弱不同的溶液进行梯度萃取分离。

【1】徐选明,刘新大黄中大黄素提取工艺的优化中国中医药信息杂志2004,11,5
【2】李乃明,丁宙大黄素的分离和结构鉴定广州医学院学报1985,13,3 【3】朱庆玲,李瑞和大黄中大黄素的提取工艺研究时珍国医国药2006,17,3。

大黄中大黄素的提取分离与鉴定

大黄中大黄素的提取分离与鉴定

食品添加剂中的应用
天然色素
大黄素具有鲜艳的黄色,可以作为天然色素添加到食 品中,改善食品的色泽和感官品质。
抗氧化剂
大黄素具有抗氧化活性,可以作为食品抗氧化剂,延长 食品的保质期和保持食品的营养价值。
保健品及化妆品中的应用
保健品
大黄素具有多种生物活性,如抗炎、 抗菌、抗肿瘤等,可以作为保健品的 成分,提高保健品的功效。
型。
质谱鉴定
要点一
总结词
质谱鉴定是一种通过测量物质分子质量和碎片信息进行成 分分析的方法。在大黄素的鉴定中,质谱技术可以提供大 黄素分子的精确质量信息和可能的碎片信息,有助于确定 其分子结构。
要点二
详细描述
质谱鉴定利用高能电子束或激光束与大黄素分子相互作用 ,使其产生带电碎片。通过测量这些碎片的质量和数量, 可以推断出大黄素分子的精确质量和可能的化学结构。与 红外光谱和紫外光谱相结合,质谱鉴定为大黄素的鉴定提 供了更全面的结构信息。
紫外光谱鉴定
总结词
紫外光谱鉴定是一种基于物质吸收紫外光的 特性进行成分分析的方法。通过测量大黄素 在紫外区的吸收光谱,可以推断出其结构特 征和共轭体系。
详细描述
紫外光谱鉴定利用不同物质在紫外光区具有 不同吸收特性的原理,通过测量大黄素的紫 外吸收光谱,可以确定其共轭双键的数量和 位置,进一步推断出大黄素的分子结构和类
大黄素的药理作用与生物活性
药理作用
大黄素具有抗炎、抗氧化、抗肿瘤、 抗菌等多种药理作用。
生物活性
大大黄素在临床上对多种疾病具有治 疗作用,如结肠炎、肾炎、肝炎等。
02
大黄中大黄素的提取方法
溶剂提取法
01
02
03
04
原理

大黄中大黄酸和大黄素提取工艺研究

大黄中大黄酸和大黄素提取工艺研究

大黄中大黄酸和大黄素提取工艺研究中图分类号】r284【文献标识码】a【文章编号】1672-3783(2012)04-0397-01【摘要】分析和总结了目前大黄中大黄酸和大黄素的提取工艺研究情况,从生产实际出发讨论各种实验研究工艺存在的问题,认为生产工艺中应考虑用超声技术,并提出在进行hplc含量测定时最好用梯度洗脱。

【关键词】大黄大黄酸和大黄素提取大黄为常用中药,系蓼科植物掌叶大黄(rheumpalmatuml.)、药用大黄(rheumofficin]ebail1.)及唐古特大黄(rhemtanguticummaxin.exbalf.)的根及根茎。

蒽苷为最主要成分,总量约2%~5%。

游离羟基蒽醌中大黄酸与大黄素(结构见图1、图2)药理作用广泛,具很大的潜在临床药用价值,其提取工艺近年来成为研究的热点。

1常见提取方法由于大黄酸、大黄素有酚羟基,在植物体内易与钠、钾、钙、镁等金属离子结合成盐的形式,有的与糖结合成苷的形式,所以在提取时要用酸(一般用硫酸)使之完全游离出来,然后再进行提取。

1.1乙醇提取法1.1.1回流法主要考虑的影响因素是乙醇浓度、用量、提取时间和提取次数,最佳提取工艺是乙醇浓度为50%~60%,用量为药材量5~6倍,回流提取3次,每次0.5小时。

11.2渗漉法主要考虑的影响因素是乙醇浓度、用量、浸润时间,最佳提取工艺是乙醇浓度为55%~65%,用量为药材量6~8倍,浸润时间6~l2小时。

1.2水提取法1.2.1煎煮法主要考虑因素是用水量、浸泡时间和煎煮时间,最佳工艺是以8倍量的水浸泡3o分钟,煎煮1o分钟,效果较好。

1.2.2碱溶酸沉法最佳工艺是用大黄小碎片加到20%硫酸溶液和氯仿的混合液中,在水浴中回流水解,氯仿提取液以5%碳酸氢钾溶液,5%氢氧化钾溶液萃取,萃取液分别用盐酸酸化,即可分离得到大黄酸、大黄素等游离蒽醌的混合物,再经结晶即得较纯产品。

1.3吸附法1.3.1聚酰胺吸附法很多实验均证明用聚酰胺吸附蒽醌类成分,用乙醇洗脱,提取效率高。

大黄中大黄素的提取

大黄中大黄素的提取

长治学院2011届学士学位毕业论文大黄中有效成分的提取及小白鼠泻下作用的研究——大黄素的提取学号:姓名:指导教师:专业:系别:完成时间:2011年5月目录摘要 (Ⅰ)关键字 (Ⅰ)1引言 (1)2 材料、试剂与仪器 (1)2.1材料 (1)2.2试剂 (1)2.3仪器 (1)3 提取与分离 (1)3.1 材料的预处理 (1)3.2 溶剂提取 (1)3.2.1混合溶剂提取 (1)3.2.2苯回流提取 (2)3.2.3碱液提取 (2)4结果分析 (3)4.1混合溶剂提取结果分析 (3)4.1.1乙醇(A)和水(B)混合液回流提取结果分析 (3)4.1.2氯仿(A)和乙醇(B)混合溶剂提取结果分析 (4)4.2苯提取结果分析 (5)4.3碱液提取结果分析 (6)4.3.1碳酸钠提取结果分析 (6)4.3.2碳酸氢钠提取结果分析 (7)4.3.3氢氧化钠提取结果分析 (8)4.4结论 (9)5 结构鉴定 (9)5.1 熔点的测定 (9)5.2 颜色反应 (9)5.2.1 Borntrager`s反应 (9)5.2.2 醋酸镁反应 (10)6小鼠实验 (10)7总结与展望 (10)参考文献 (12)Abstract (13)Keywords (13)致谢 (14)大黄中有效成分的提取及小白鼠泻下作用的研究——大黄素的提取摘要:用六种不同的提取剂进行三因素三水平正交实验,从中药大黄中提取大黄素。

根据各提取剂的不同因素对大黄素提取率的影响,得出大黄素提取的最佳条件为:150mL的10%碳酸钠溶液煎煮提取0.5h。

小鼠实验表明大黄素具有的泻下作用较弱。

运用颜色反应和理化常数进行结构初步鉴定。

关键字:大黄大黄素正交试验提取1引言大黄为蓼科植物掌叶大黄(Rheum palmatum L)、唐古特大黄(Rheum tangguticum Maxin ex Balf)或药用大黄(Rheum officnale Bail l)的干燥根及根茎,分布于陕西、甘肃东南部、青海、四川西部、云南西北部及西藏东部。

大黄中大黄素的提取分离与鉴定课件

大黄中大黄素的提取分离与鉴定课件
确定鉴定方法
采用光谱、色谱等手段对大黄素进行鉴定, 如高效液相色谱法、紫外光谱法等。
确定提取分离方法
根据大黄素的理化性质,选择合适的提取分 离方法,如溶剂萃取、色谱分离等。
制定实验操作流程
根据确定的提取分离和鉴定方法,制定详细 的实验操作流程。
实验操作流程
准备实验材料和设备
提取大黄素
准备好大黄样品、提取溶剂、色谱柱、检 测器等实验材料和设备。
大黄是一种多年生草本植 物,属于蓼科,主要分布 在中国、朝鲜、日本等亚 洲国家。
历史背景
大黄在中国已有两千多年 的药用历史,被广泛应用 于中医临床。
植物特点
大黄的叶片通常较大,呈 椭圆形或宽椭圆形,叶脉 明显。
大黄素简介
化学结构
大黄素是大黄的主要有效 成分,属于蒽醌类化合物 。
物理性质
大黄素为黄色针状结晶, 熔点较高,难溶于水,可 溶于乙醇、乙酸乙酯等有 机溶剂。
心血管疾病
大黄素可以用于治疗高血压、高血脂 等疾病,降低血脂和血压,预防心血 管事件的发生。
神经系统疾病
大黄素可以用于治疗癫痫、偏头痛等 疾病,减轻神经系统症状,促进神经 功能恢复。
06
大黄素提取分离与鉴定的 实验方案与操作流程
实验方案设计
确定实验目的和要求
明确实验目的和要求,为大黄素的提取分离 与鉴定提供指导。
适用范围
适用于实验室小规模提取,但提取 效率较低。
回流法
提取原理
利用有机溶剂对大黄进行多次循 环回流提取,使大黄素溶解在提
取溶剂中。
操作步骤
将大黄饮片放入提取器中,加入 适量的有机溶剂,加热至沸腾, 保持回流状态一定时间,收集提
取液,浓缩得到大黄素。
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were carried out. The quality of dispersible tablet of Fufang Shuanghuanglian reached to the standard of ChP ( 2000 edition). Conclusion The dispersible tablet was stable. The dispersible tablet dissolved faster and more comp lete.
结果 微晶纤维素 (MCC)为填充剂 ,羧甲基淀粉钠 ( CM S2Na)和交联聚乙烯吡咯烷酮 ( PVPP)为崩解剂 ,湿法制粒制备分 散片 。制定质量标准和溶出度实验 。符合《中国药典 》中有关分散片的要求 。结论 所制分散片处方合理 ,崩解快 、溶出 快而完全 。
关键词 :复方双黄连 ; 分散片 ; 正交设计 ; 溶出度 ; 高效液相色谱法 中图分类号 : R283. 6 文献标识码 : A 文章编号 : 100820805 (2006) 0320389202
大黄为蓼科植物掌叶大黄 R heum palm atum L. 、唐古特大黄 用无水乙醇制成每 l m l含 4 lμg的溶液 ,摇匀 ,即得 。
R h. tangu ticum M axim. ex Bolf. 或药用大黄 R h. officina le Baill. 的 2. 3. 2 薄层扫描条件的选择 吸取大黄素对照品溶液点于硅胶
析纯 。
在 2 h内稳定 。结果见表 2。
2 方法与结果 2. 1 薄层定性 2. 1. 1 层析板的制备 取硅胶 60HF254 +366 ( E. M erck, Darm stadt) 加 0. 5%羧甲基纤维素钠 (1∶3)于研钵中 ,研磨 30 m in, 用自动
样品号 1 2
表 2 稳定性实验结果 时间 t/ h
庆南岸新力实验电器厂 ) 。
Y = 15 837. 12X - 227. 732 5, r = 0. 998 3。
1. 2 大黄饮片购于内蒙古药材公司 ,经生药学鉴定 ,粉碎成粗 2. 3. 4 稳定性实验 精密吸取对照品溶液 8μl,点于硅胶薄层板
粉 ;大黄素对照品 (中国药品生物制品检定所 ) ;所用试剂均为分 上 ,展开后 ,取出 ,晾干 ,每隔 30 m in扫描 1次 ,结果表明大黄素
A
B
C
游离大黄素 含量 ( % )
表 1 水平因素
水平
A 温度 / ℃
B 浓度 ( % )
C 用量 /倍
1
1
1
1
0. 243 7
2
1
2
2
0. 230 9
3
1
3
3
0. 186 4
4
2
1
2
0. 270 8
1
70
70
6
5
2
2
3
0. 281 4
2
80
80
8
6
2
3
1
0. 324 0
3
90
90
10
7
3
1
3
0. 245 0
gy X uzhou, J iangsu 221000, Ch ina)
A bstra ct:O bjective To p repare the dispersible tablet of Fufang Shuanghuanglian. M ethods The formulae of Fufang Shuang2 huanglian dispersible tablet were op tim ized in term s of disintegrating time by orthogonal design test. Results The tablet was p re2 pared by comp ressing moist granulation, taking the m icrocrystalling cellulose (MCC) as the bulking agent, and the polyvinylpolyr2 rolidone ( PVPP) and sodium carboxymethyl starch (CM S2Na) as the disintegrant. A lso the estimation of its quality and dissolution
学报 , 1996, 22 ( 2) : 27.
复方双黄连分散片的研制
刘 郁 1, 2 , 尹寿玉 1 , 刘连新 2
(1. 延边大学医学院 ,吉林 延吉 133000; 2. 徐州工业职业技术学院 ,江苏 徐州 221000)
摘要 :目的 制备复方双黄连分散片 。方法 以崩解时间为指标 ,采用正交设计试验 ,对复方双黄连分散片处方进行筛选 。
2. 3. 3 标准曲线的绘制 精密量取对照品溶液 2, 4, 6, 8, l0 μl,
菌有效成分之一的大黄素进行了提取条件的研究 。
分别点于同一硅胶薄层板上 ,展开后 ,取出 ,晾干 ,所得黄色斑点
1 仪器与材料
在 290 nm 紫外灯下定位 ,扫描 。以点样量为横坐标 ,扫描积分值
1. 1 CS29301型薄层扫描仪 (日本岛津公司 ) ;自动铺板器 (重 为纵坐标绘制标准曲线 ,计算得回归方程为
是 A2B3 C2 ,即温度 80℃,乙醇浓度 90% ,乙醇用量 8倍量 。 3. 2 大黄中蒽醌类成分的提取受到不同提取条件 ,如溶媒种 类 、浓度 、提取时间 、温度等因素的影响 。研究表明 ,醇提效果明
1995: 44. [ 2 ] 张永红. 影响大黄提取液中蒽醌含量的条件探讨 [ J ]. 兰州医学院
干燥根及根茎 。具有泻热通肠 、凉血解毒 、逐瘀通经之功效 ,在临 薄层板上 ,以石油醚 2乙酸乙酯 2冰醋酸 (15∶2∶1)为展开剂展开
床上应用很广泛 。大黄的化学成分有蒽醌类衍生物 ,其中游离蒽 12 cm ,取出 ,晾干 ,置紫外灯 (365 nm )下观察 ,大黄素斑点显淡黄
醌衍生物有大黄酸 、大黄素 、大黄酚 、芦荟大黄素 、大黄素甲醚等 , 色 。对硅胶薄层板进行扫描 ,结果在 290 nm 波长处有最大吸收 ,
块硅胶薄层板上 ,分别用正己烷 2乙酸乙酯 2甲醇 2甲酸 2水 ( 3∶1∶ 2. 3. 5 精密度实验 在同一硅胶薄层板上点 6个相同量的对照
2∶0. 1∶2) 、石油醚 2乙酸乙酯 2甲醇 ( 15 ∶5 ∶1 ) 、石油醚 - 乙酸 品溶液 ,按标准曲线项下的方法测定 。结果见表 3。
乙酯 2冰醋酸 (15∶2∶1) 、苯 2乙酸乙酯 2甲醇 ( 5∶3. 5∶1. 5) 4种 展开系统展开 ,展距为 12cm ,结果表明 :石油醚 2乙酸乙酯 2冰醋酸 (15∶2∶1)展开效果最好 ,荧光灯下清楚可见到 5 个淡黄色斑 点。
8
3
2
1
0. 225 0
2. 3 含量测定
9
3
3
2
0. 334 8
2. 3. 1 大黄素对照品溶液的制备 精密称取大黄素对照品适量 ,
Ⅰ1 Ⅱ2
0. 661 0 0. 876 2
0. 759 5 0. 735 3
0. 792 9 0. 836 5
Ⅲ3
0. 805 0
0. 795 2
0. 712 8
收稿日期 : 2005206209; 修订日期 : 2005212202
Prepara tion of Fufang Shuanghuanglian D ispersible Tablets L IU Yu1, 2 , YIN Shou2yu1 , L IU L ian2xin2 ( 1. M ed ica l College ofYanbian U n iversity, Yan ji, J ilin133000, Ch ina; 2. X uzhou College for Industria l Technolo2
Key words: Fufang Shuanghuanglian; D ispersible tablet; O rthogonal design; D issolution; HPLC
分散片 (D ispersible tablets)又称水分散片 (W ater dispersible 1 实验部分
2. 2 样品液的制备 精密称取大黄粗粉 5 g,置 100 m l圆底烧瓶 中 ,按正交表用乙醇回流提取两次 ,第 1 次 2 h,第 2次 1 h。合并
样品号
1 2 3 4 5
表 3 精密度实验结果 测得值
7 069. 68 6 902. 22 7 132. 14 7 209. 73 7 103. 54
摘要 :目的 优选大黄中大黄素的提取条件 。方法 利用正交实验法对大黄中的大黄素进行乙醇回流提取 。结果 以温度
80℃,乙醇浓度 90% ,乙醇用量 8倍量提取大黄素的含量最高 。结论 回流法提取大黄中大黄素的最佳提取工艺为温度 80℃,乙醇浓度 90% ,乙醇用量 8倍量 。
关键词 :大黄素 ; 正交实验 ; 提取工艺 中图分类号 : R284. 2 文献标识码 : B 文章编号 : 100820805 (2006) 0320388201
tablets) , 系指遇水可迅速崩解形成均匀粘性混悬液的片剂 。对 1. 1 药品 、试剂与仪器 金银花 、连翘提取物 ,黄芩提取物 ,蒲公
于分散片来说 ,它兼具口服片剂和口服液体制剂的优点 ,稳定性 英提取物 ;微晶纤维素 (MCC) ,羧甲基淀粉钠 ( CM S2Na) ,交联聚
0. 278 8 0. 237 6 0. 041 2
·388·
L ISH IZHEN MED IC INE AND MATER IA MED ICA RESEARCH 2006 VOL. 17 NO. 3
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