小鼠糖尿病模型血糖标准
鹰嘴豆降血糖有效部位的药效学筛选
鹰嘴豆降血糖有效部位的药效学筛选摘要目的:对鹰嘴豆4个提取部位对正常和高血糖模型小鼠血糖值的影响进行研究,并筛选出其中的有效部位,为进一步研究奠定基础。
方法:分别对正常小鼠、肾上腺素高血糖小鼠和四氧嘧啶糖尿病小鼠灌胃4个提取部位,一周后测定血糖值和肝糖原含量。
结果:鹰嘴豆提取部位Ⅲ可显著性降低正常小鼠和肾上腺素高血糖小鼠的血糖值,对四氧嘧啶糖尿病小鼠血糖无作用。
结论:鹰嘴豆提取部位Ⅲ在降血糖筛选实验中作用最显著,故将其做为有效部位进行进一步研究。
标签：鹰嘴豆有效部位血糖肝糖原维药鹰嘴豆(Cicer arietinum L.)作为新疆药用植物已有2500多年历史,已收载于《中华人民共和国卫生部药品标准-维吾尔药分册》和《维吾尔药志》[1]。
其主要化学成分为:蛋白质、脂肪油、淀粉等[2]。
在维药中被广泛用于治疗糖尿病、高脂血症等疾病。
新疆民族医院及民间用鹰嘴豆粉来治疗糖尿病、阳萎、肾虚、营养不良,也有一些鹰嘴豆的保健食品。
为进一步研究其药用价值,本实验从不同提取部位着手对鹰嘴豆降糖的有效部位进行了筛选,选用正常和高血糖小鼠模型,从整体水平进行降糖作用的药效学比较,初步确定了鹰嘴豆降血糖的有效部位,为进一步研究鹰嘴豆的有效成分,阐明其降糖机制提供参考。
1 实验材料1.1 实验药物:市售奇台产鹰嘴豆,鉴定人是新疆药物研究所张彦福研究员;用系统溶剂分离法,从鹰嘴豆中提取分离到提取部位Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、和Ⅳ,进行降糖作用试验;消渴丸,广州中一药业有限公司产品,批号500268号。
1.2 实验动物:清洁级ICR小鼠,雄性,18～22 g之间,购自新疆医学实验动物中心(SCXK(新)2003-0002)。
1.3 主要试剂:四氧嘧啶(Alloxan)购自北京拜尔迪生物公司,批号sigmaA7413号，临用时以生理盐水配成2%水溶液,使用剂量为200 mg·kg-1;盐酸肾上腺素天津金耀氨基酸有限公司产品,批号0607221号,临用时用生理盐水配成1%水溶液,使用剂量为300μg·kg-1;葡萄糖试剂盒,中生北控生物科技股份有限公司产品,批号060551号;肝糖原试剂盒,南京建成生物工程研究所产品,批号20070905号。
糖尿病肾病动物模型成模标准
糖尿病肾病动物模型成模标准
糖尿病肾病动物模型的成模标准主要依赖于动物的血糖水平、尿白蛋白排泄率（UAE）和肾功能等多个因素。
1. 血糖水平：模型成功的动物应长期处于高血糖状态，通常血糖水平高于正常值的2倍以上。
2. 尿白蛋白排泄率：模型成功的动物应出现尿白蛋白排泄率增高，这是糖尿病肾病的早期标志。
3. 肾功能：模型成功的动物应出现肾功能损伤的指标，如血清肌酐（Scr）和血尿素氮（BUN）水平升高。
4. 病理学检查：模型成功的动物应出现肾组织学改变，如肾小球硬化、肾小动脉硬化、肾间质纤维化等。
以上标准并非一成不变，不同的实验可能需要不同的成模标准。
例如，一些研究可能需要使用更先进的成像技术来评估肾功能的损伤程度。
STZ诱导的小鼠糖尿病模型
STZ诱导的小鼠糖尿病模型STZ诱导的小鼠糖尿病模型糖尿病（diabetes mellitus，DM）是胰岛素抵抗和胰岛素缺乏导致的以高血糖为主要特征表现的代谢紊乱综合征，易发生心、脑、肾等并发症。
糖尿病状态下血浆游离脂肪酸异常增高，心肌耗能增加，葡萄糖代谢下降，脂肪酸代谢增加，心脏内过量的脂肪酸摄取和氧化导致心肌内脂肪代谢产物的积聚引起心脏脂质毒性，并在此基袖上出现氧化应激，导致细胞调亡、内皮功能紊乱、炎症反应增加，同时出现心肌的损伤，心肌的结构和功能均发生改变，最后导致糖尿病患者的死亡。
1.实验动物SPF级Balb/C小鼠，雄性，周龄为4w~6w，体重为20g~22g。
2.实验分组：实验分六组：正常对照组、模型组、阳性药组、受试药组三个剂量组，每组15只动物。
3.模型周期24W4.主要试剂及配制方法柠檬酸、柠檬酸三钠、链脲佐霉素(Streptozocin,STZ)1.柠檬酸钠缓冲液配制：将2.10g柠檬酸加入双蒸水100ml配成柠檬酸母液，称为A液；将2.94g柠檬酸三钠加入双蒸水100ml配成柠檬酸钠母液，称为B液；将A、B液按1:1.32比例混合，pH计测定pH值，调定溶液pH=4.0，即是所需配制STZ的0.1mol/L柠檬酸钠缓冲液。
2.STZ溶液的配制：将STZ溶于0.1mol/L柠檬酸钠缓冲液中，新鲜配制成10mg/mL浓度的STZ溶液，并用0.22μm滤菌器过滤除菌。
注意避光配制，现用现配。
5.建模方法1.术前12h禁食2.模型组小鼠按照120mg/kg剂量的STZ进行腹腔注射，对照组给予给予相同剂量的柠檬酸钠缓冲液。
3.STZ注射3d后，测空腹血糖，选择血糖高于16.7mmol/L纳入正式实验。
4.STZ注射后，每周测血糖，称体重，观察体重血糖变化。
5.第12周检测各组小鼠的体重和空腹血糖值后，摘眼球采血，室温静置2h 后于4℃3000r离心10分钟提取血清，放入-80冰箱冻存。
2型糖尿病模型小鼠造模时间的选择
２型糖尿病模型小鼠造模时间的选择杨张良＋，童海玲＋，孙梦蝶，袁 杰，胡 莺，王旭焘，齐敏友△（浙江工业大学药学院药理研究所，杭州３１００１４）【摘要】 目的：分析不同时期的２型糖尿病小鼠血生化指标及心肌和肾脏的病理变化情况，为选择２型糖尿病模型小鼠造模时间提供依据。
方法：３２只健康雄性ＩＣＲ小鼠高脂饲料喂养６周后，腹腔注射链脲佐菌素（ＳＴＺ，３０ｍｇ／ｋｇ），连续５ｄ，制备糖尿病模型。
９ｄ后测空腹血糖（ＦＢＧ），高于１１．１ｍｍｏｌ／Ｌ视为糖尿病模型。
分别于成模后第４、６、８周处死一组小鼠。
另取８只雄性ＩＣＲ小鼠作为对照组，常规饲料喂养，于糖尿病组小鼠成模后第８周处死。
分析小鼠生化及病理情况：①心脏、肾脏脏器系数计算；②血清乳酸脱氢酶（ＬＤＨ）、肌酸激酶（ＣＫ）、肌酐（Ｃｒ）和尿素氮（ＢＵＮ）含量测定；③ＨＥ染色观察心肌和肾脏组织病变的整体情况；Ｍａｓｓｏｎ染色观察心肌组织纤维化情况；ＰＡＳ染色观察肾脏组织病理变化。
结果：与对照组小鼠进行比较，第４、６、８周的糖尿病小鼠心脏器系数升高，血清ＬＤＨ、ＣＫ升高，病理组织学见心肌细胞肥大，纤维化；肾脏脏器系数升高，肾功能肌酐（Ｃｒ）、尿素氮（ＢＵＮ）显著升高，病理组织学见肾小球肥大，肾小管基底膜增厚，管腔萎缩。
结论：第６周糖尿病小鼠相关生化病理指标改变相对明显且饲养时间相对较短，故２型糖尿病模型小鼠造模后第６周是进行药物干预和病理、生理、生化等研究的最佳时间。
【关键词】糖尿病模型； 病理； 生理； 糖尿病心肌病； 糖尿病肾病； 小鼠【中图分类号】Ｒ２８５．５ 【文献标识码】Ａ 【文章编号】１０００ ６８３４（２０１９）０２ １５５ ００５【ＤＯＩ】１０．１２０４７／ｊ．ｃｊａｐ．５７２８．２０１９．０３４Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎｏｆｍｏｄｅｌｉｎｇｔｉｍｅｆｏｒｔｙｐｅ２ｄｉａｂｅｔｅｓｍｅｌｌｉｔｕｓｍｏｕｓｅＹＡＮＧＺｈａｎｇ ｌｉａｎｇ＋，ＴＯＮＧＨａｉ ｌｉｎｇ＋，ＳＵＮＭｅｎｇ ｄｉｅ，ＹＵＡＮＪｉｅ，ＨＵＹｉｎｇ，ＷＡＮＧＸｕ ｔａｏ，ＱＩＭｉｎ ｙｏｕ△（ＩｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎｏｆＰｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ，ＣｏｌｌｅｇｅｏｆＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ，ＺｈｅｊｉａｎｇＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｈａｎｇｚｈｏｕ３１００１４，Ｃｈｉｎａ）【ＡＢＳＴＲＡＣＴ】Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ：Ｔｏａｎａｌｙｚｅｔｈｅｃｈａｎｇｅｓｏｆｂｌｏｏｄｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｉｎｄｅｘａｎｄｔｈｅｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌｃｈａｎｇｅｓｏｆｍｙｏｃａｒｄｉｕｍａｎｄｋｉｄｎｅｙｉｎｔｙｐｅ２ｄｉａｂｅｔｉｃｍｏｕｓｅａｔｄｉｆｆｅｒｅｎｔｔｉｍｅｐｏｉｎｔｓ，ｗｈｉｃｈｃａｎｐｒｏｖｉｄｅｔｈｅｂａｓｉｓｆｏｒｔｈｅｓｅｌｅｃｔｉｏｎｏｆｔｙｐｅ２ｄｉａｂｅｔｉｃｍｏｄｅｌｉｎｇｔｉｍｅｆｏｒｌａｔｅｒｒｅｓｅａｒｃｈ．Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ａｆｔｅｒ６ｗｅｅｋｓｏｆｆｅｅｄｉｎｇｗｉｔｈｈｉｇｈ ｆａｔｄｉｅｔ，２４ｈｅａｌｔｈｙｍａｌｅＩＣＲｍｉｃｅｗｅｒｅｉｎｊｅｃｔｅｄｗｉｔｈｓｔｒｅｐｔｏｚｏｃｉｎ（ＳＴＺ，３０ｍｇ／ｋｇ）ｉｎｔｒａｐｅｒｉｔｏｎｅａｌｌｙｆｏｒ５ｄａｙｓｔｏｅｓｔａｂｌｉｓｈｄｉａｂｅｔｉｃｍｏｄｅｌｓ．Ａｆｔｅｒ９ｄａｙｓ，ａｒａｎｄｏｍｂｌｏｏｄｇｌｕｃｏｓｅ≥１１．１ｍｍｏｌ／Ｌｗａｓｍｅａｓ ｕｒｅｄａｓｄｉａｂｅｔｉｃｍｉｃｅ．４，６ａｎｄ８ｗｅｅｋｓａｆｔｅｒｓｕｃｃｅｓｓｆｕｌｌｙｐｒｅｐａｒｉｎｇｔｈｅｄｉａｂｅｔｉｃｍｏｕｓｅ，８ｄｉａｂｅｔｉｃｍｉｃｅ（ａｇｒｏｕｐ）ｗｏｕｌｄｂｅｓａｃｒｉｆｉｃｅｄｅａｃｈｔｉｍｅ．Ｔｈｅｎｔｈｅｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌａｎｄｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓｗｅｒｅａｎａｌｙｚｅｄ：①ｔｈｅｉｎｄｅｘｅｓｏｆｈｅａｒｔａｎｄｋｉｄｎｅｙｗｅｒｅｃａｌｃｕｌａｔｅｄ．②ｔｈｅｓｅｒｕｍｌｅｖｅｌｓｏｆｃｒｅａｔｉｎｅｋｉｎａｓｅ（ＣＫ），ｌａｃｔａｔｅｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ（ＬＤＨ），ｃｒｅａｔｉｎｉｎｅ（Ｃｒ）ａｎｄｂｌｏｏｄｕｒｉｎｅｎｉｔｒｏｇｅｎ（ＢＵＮ）ｗｅｒｅｄｅｔｅｒ ｍｉｎｅｄ．③Ｈｉｓｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌｃｈａｎｇｅｓｏｆｍｙｏｃａｒｄｉｕｍａｎｄｒｅｎａｌｔｉｓｓｕｅｓｗｅｒｅｏｂｓｅｒｖｅｄｂｙｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎａｎｄｅｏｓｉｎ（ＨＥ）ｓｔａｉｎｉｎｇ．Ｍａｓｓｏｎｓｔａｉｎｉｎｇｗａｓｕｓｅｄｔｏｏｂｓｅｒｖｅｔｈｅｆｉｂｒｏｓｉｓｏｆｍｙｏｃａｒｄｉｕｍ．ＰＡＳｓｔａｉｎｉｎｇｗａｓａｄｏｐｔｅｄｔｏｏｂｓｅｒｖｅｔｈｅｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌｃｈａｎｇｅｓｏｆｒｅｎａｌｔｉｓｓｕｅ．Ｉｎａｄｄｉｔｉｏｎ，８ＩＣＲｍａｌｅｍｉｃｅｗｅｒｅｔａｋｅｎａｓｔｈｅｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ．Ｒｅｓｕｌｔｓ：Ａｔｔｈｅ４ｔｈ，６ｔｈａｎｄ８ｔｈｗｅｅｋ，ｃａｒｄｉａｃｏｒｇａｎｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ，ｔｈｅｖａｌｕｅｓｏｆＬＤＨａｎｄＣＫｗｅｒｅａｌｌｉｎｃｒｅａｓｅｄｃｏｍｐａｒｅｄｗｉｔｈｔｈｅｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ．Ｃａｒｄｉｏｍｙｏｃｙｔｅｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｙａｎｄｍｙｏｃａｒｄｉａｌｆｉｂｒｏｓｉｓｃｏｕｌｄｂｅｏｂｓｅｒｖｅｄ．Ｒｅｎａｌｏｒｇａｎｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ，ｔｈｅｖａｌｕｅｓｏｆＣｒａｎｄＢＵＮｗｅｒｅｉｎｃｒｅａｓｅｄ．Ｇｌｏｍｅｒｕｌａｒｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｙ，ｂａｓｅｍｅｎｔｍｅｍｂｒａｎｅｔｈｉｃｋｅｎｉｎｇａｎｄａｔｒｏｐｈｙｃｏｕｌｄｂｅｐｅｒｃｅｉｖｅｄ．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ：Ａｔｔｈｅ６ｔｈｗｅｅｋ，ｒｅｌａｔｅｄｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌａｎｄｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌｃｈａｎｇｅｓｉｎｄｉａｂｅｔｉｃｍｉｃｅｗｅｒｅｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅｌｙｏｂｖｉｏｕｓａｎｄｂｒｅｅｄｉｎｇｔｉｍｅｗａｓｒｅｌａｔｉｖｅｌｙｓｈｏｒｔ．Ｔｈｕｓ，６ｗｅｅｋｓａｆｔｅｒｔｈｅｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｏｆｔｈｅｄｉａｂｅｔｉｃｍｉｃｅｗｏｕｌｄｂｅｔｈｅｏｐ ｔｉｍａｌｔｉｍｅｆｏｒｔｙｐｅ２ｄｉａｂｅｔｅｓｍｅｌｌｉｔｕｓｍｏｄｅｌｉｎｇ，ｐｒｏｐｅｒｆｏｒｉｎｖｅｎｔｉｏｎｓｏｆｄｒｕｇｓａｎｄｏｔｈｅｒｒｅｓｅａｒｃｈｐｕｒｐｏｓｅｓｉｎｃｌｕｄｉｎｇｐａｔｈｏｌｏｇｙ，ｐｈｙｓｉ ｏｌｏｇｙ，ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，ｅｔｃ．【ＫＥＹＷＯＲＤＳ】 ｄｉａｂｅｔｅｓｍｏｄｅｌ； ｐａｔｈｏｌｏｇｙ； ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ； ｄｉａｂｅｔｉｃｃａｒｄｉｏｍｙｏｐａｔｈｙ； ｄｉａｂｅｔｉｃｎｅｐｈｒｏｐａｔｈｙ； ｍｉｃｅ 【基金项目】浙江省自然科学基金（ＬＹ１６Ｈ２８００１３）【收稿日期】２０１８ ０７ ２０【修回日期】２０１９ ０１ １１ △【通讯作者】Ｔｅｌ：０５７１ ８８３２０５３５；Ｅ ｍａｉｌ：ｑｉｍｉｎｙｏｕ＠１６３．ｃｏｍ．＋：为共同第一作者 糖尿病（ｄｉａｂｅｔｅｓｍｅｌｌｉｔｕｓ，ＤＭ）可引起多系统损害，导致心脏、肾、眼、神经和血管等组织器官的慢性进行性病变，功能减退及衰竭，严重影响患者的生活质量，对其病因病理及治疗亟待研究，故建立合适的糖尿病模型至关重要［１ ３］。
巴拿巴对糖尿病模型小鼠血糖的影响
【 关键词 】 巴拿 巴；糖尿病 ；四氧嘧啶 ；小鼠
【 中图分类号 】Ｒ ５ ８ ７ ． １ 【 文献标识码】Ａ ｄ ｏ ｉ ：１ ０ ． ３ ９ ６ ９ ／ ｊ ． ｉ ｓ ｓ ｎ ． １ ０ ０ ７ — ９ ５ ７ ２ ． ２ ０ １ ３ ． ０ ２ ． ０ ９ ０
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糖尿病小鼠模型的构建
糖尿病小鼠模型的构建I型糖尿病模型方法：模型的诱导采用多次小剂量链脲佐菌素（STZ）给药法（MLDSTZ）,雄性BALB/c小鼠，随机分为3组：模型组、阴性对照组、阳性对照组。
模型组小鼠连续5天腹腔注射STZ溶液（60mg/kg），注射前禁食8h，不禁水。
注射时将STZ溶于0.1mol/L柠檬酸钠缓冲液（pH4.5），避光冰上配置，溶解后尽量在30min完成注射。
阴性对照组腹腔注射柠檬酸缓冲液，正常对照组不作处理。
II型糖尿病模型目前，构建II型糖尿病动物模型的方法有很多种，其中自发性糖尿病动物模型、转基因/基因敲除糖尿病动物模型、单纯应用STZ所致糖尿病模型、STZ 与饮食协同作用所致II型糖尿病动物模型等应用较多。
1、自发性糖尿病动物模型自发性II型糖尿病动物模型主要是啮齿类，其最大优点是疾病的发生、发展与人类的很相似，因此在研究II型糖尿病的生理、病理及有关临床药物研发等方面有重要价值。
此类动物模型包括小鼠、大鼠、地鼠，其中小鼠包括KK-Ay、ob/ob、db/db等单基因突变鼠、新西兰肥胖小鼠和NSY小鼠：大鼠包括GK大鼠、Zucker大鼠和OLETF大鼠等；地鼠则以中国地鼠为主。
2、转基因构建糖尿病模型以实验方法敲入外源基因或敲除内源基因，在染色体组内稳定整合并能遗传给后代的一类动物称为转基因动物。
转基因糖尿病动物模型主要是通过基因技术，按照自己的意愿，控制实验动物的特定基因及其表达，使动物表现为一定的遗传性状。
主要利用基因定位与基因转移，由于转基因为随机整合，所以在子代观察到得效果取决于成功整合发生的位点和拷贝的数量，转基因的表达效果也因动物体系不同而有所差异。
3、单纯应用STZ所致糖尿病模型使用不同剂量（60mg/kg\45mg/kg）的STZ静脉注射，注射前禁食8h，不禁水。
注射时将STZ溶于0.1mol/L柠檬酸钠缓冲液（pH4.5），避光冰上配置，溶解后尽量在30min完成注射。
玉米须蚕茧提取物对糖尿病模型小鼠血糖的影响
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文 章 编 号 ：０ ９４ ２ （０ ０ ０ － ４ －３ １０ －８２ ２ １ ） １ ０ ６０ ０
血糖测定小鼠实验报告
一、实验目的1. 掌握血糖测定的原理和方法。
2. 学习使用血糖测定仪进行血糖检测。
3. 探讨不同处理方式对小鼠血糖水平的影响。
二、实验原理血糖测定主要基于葡萄糖氧化酶法。
该法利用葡萄糖氧化酶催化葡萄糖与氧反应生成葡萄糖酸和过氧化氢，过氧化氢在过氧化物酶的作用下分解产生水和氧气，氧气与色原在特定波长下产生颜色变化，通过比色法测定氧气的生成量，从而计算出血糖浓度。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康小鼠10只，体重约为20g。
2. 试剂：葡萄糖标准溶液、生理盐水、肝素钠、葡萄糖氧化酶试剂盒。
3. 仪器：血糖测定仪、微量移液器、离心机、电子天平、恒温水浴箱。
四、实验方法1. 将小鼠随机分为两组，每组5只，分别标记为实验组和对照组。
2. 实验组小鼠给予高糖饲料喂养，对照组小鼠给予普通饲料喂养。
3. 每日定时对两组小鼠进行血糖测定，连续测定7天。
4. 测定方法：取小鼠尾静脉血，加入肝素钠抗凝，使用血糖测定仪测定血糖浓度。
五、实验结果1. 实验组小鼠血糖水平明显高于对照组，差异具有统计学意义（P<0.05）。
2. 随着实验时间的推移，实验组小鼠血糖水平逐渐升高，对照组小鼠血糖水平相对稳定。
六、实验讨论1. 本实验结果表明，高糖饲料喂养可导致小鼠血糖水平升高，说明高糖饮食与糖尿病的发生密切相关。
2. 血糖测定仪操作简便，结果准确，是临床和科研中常用的血糖检测方法。
3. 实验过程中，应注意小鼠的饲养环境和饲料质量，以保证实验结果的可靠性。
七、实验结论1. 高糖饲料喂养可导致小鼠血糖水平升高，提示高糖饮食与糖尿病的发生密切相关。
2. 血糖测定仪是临床和科研中常用的血糖检测方法，具有操作简便、结果准确等优点。
八、实验建议1. 在实验过程中，应注意小鼠的饲养环境和饲料质量，以保证实验结果的可靠性。
2. 可进一步研究不同类型高糖饲料对小鼠血糖水平的影响，以及降低血糖的方法。
3. 可结合其他实验方法，如基因敲除、药物治疗等，探讨糖尿病的发生机制和治疗方法。
小鼠血糖评定实验报告(3篇)
第1篇一、实验背景糖尿病是一种常见的慢性代谢性疾病，其特征是血糖水平持续高于正常值。
为了研究糖尿病的发病机制、评估治疗效果以及开发新的治疗方法，动物模型实验在糖尿病研究中扮演着重要角色。
小鼠作为常见的实验动物，其血糖评定实验是研究糖尿病的基础。
二、实验目的1. 建立稳定的小鼠糖尿病模型。
2. 评估不同治疗方法对小鼠血糖的影响。
3. 探讨糖尿病的发病机制。
三、实验材料1. 实验动物：雄性C57BL/6小鼠，体重18-22g。
2. 试剂与仪器：链脲佐菌素（STZ）、胰岛素、葡萄糖、血糖测定仪、胰岛素注射器等。
四、实验方法1. 糖尿病模型的建立：- 将小鼠随机分为对照组、模型组、胰岛素治疗组、桑叶提取液治疗组。
- 模型组：用STZ溶液（50mg/kg体重）一次性腹腔注射，建立糖尿病模型。
- 对照组：给予等量生理盐水腹腔注射。
- 胰岛素治疗组：模型建立后，给予胰岛素（0.5U/kg体重）腹腔注射，每日一次，连续7天。
- 桑叶提取液治疗组：模型建立后，给予桑叶提取液（50mg/kg体重）灌胃，每日一次，连续7天。
2. 血糖测定：- 实验开始前及实验期间，分别测定各组小鼠的空腹血糖。
- 在实验结束时，对所有小鼠进行麻醉，断头处死，采集血液，测定血糖浓度。
3. 病理学检查：- 对小鼠的肝脏、肾脏、胰腺进行病理学检查。
五、实验结果1. 血糖测定结果：- 模型组小鼠血糖水平显著高于对照组（P<0.05）。
- 胰岛素治疗组及桑叶提取液治疗组小鼠血糖水平较模型组显著降低（P<0.05）。
2. 病理学检查结果：- 模型组小鼠肝脏、肾脏、胰腺存在不同程度的病理学改变，如脂肪变性、炎症等。
- 胰岛素治疗组及桑叶提取液治疗组小鼠病理学改变较模型组明显减轻。
六、实验结论1. STZ诱导的小鼠糖尿病模型建立成功。
2. 胰岛素和桑叶提取液对糖尿病小鼠具有降低血糖的作用。
3. 胰岛素和桑叶提取液可能通过改善胰岛功能、调节血糖稳态等途径减轻糖尿病小鼠的病理学改变。
小鼠糖尿病诊断标准
小鼠糖尿病诊断标准
小鼠糖尿病是一种常见的实验动物模型，被广泛用于糖尿病相关研究。
糖尿病是一种代谢紊乱性疾病，主要特征是血糖升高。
小鼠糖尿病的诊断标准主要是通过测量小鼠的血糖水平来确定，以下是小鼠糖尿病的诊断标准：
1. 空腹血糖水平≥11.1 mmol/L，小鼠需要进行多次测量，以
确保诊断的准确性。
2. 随机血糖水平≥16.7 mmol/L，小鼠需要进行多次测量，以
确保诊断的准确性。
3. 葡萄糖耐量试验（OGTT）：小鼠需要在空腹状态下喂食葡
萄糖水溶液，然后在2小时内测量血糖水平。
如果小鼠2小时后的血糖水平≥11.1 mmol/L，则诊断为糖尿病。
4. 糖化血红蛋白（HbA1c）：HbA1c水平≥6.5%时，小鼠被
诊断为糖尿病。
需要注意的是，不同实验室和不同研究者对于小鼠糖尿病的诊断标准可能会有所差异。
因此，在进行小鼠糖尿病相关实验时，需要根据具体实验目的和方法来确定适合的诊断标准，并进行多次测量以确保诊断结果的准确性。
t2dm小鼠造模成功标准
t2dm小鼠造模成功标准
T2DM是指2型糖尿病，是一种慢性代谢性疾病。
造模成功的标准可以从多个角度来考虑：
1. 生理指标，造模成功的小鼠应该表现出类似人类2型糖尿病的生理特征，包括高血糖、胰岛素抵抗、胰岛素分泌不足等。
血糖水平、胰岛素水平以及葡萄糖耐量测试等生理指标可以用来评估模型的成功程度。
2. 病理学特征，2型糖尿病通常伴随着胰岛素抵抗和胰岛素分泌不足，造模成功的小鼠模型应该呈现出胰岛素抵抗、胰岛素分泌减少以及胰岛细胞变性等病理学特征。
3. 行为学特征，2型糖尿病也会导致一系列行为学改变，如多饮、多尿、体重下降等。
观察小鼠的饮水量、尿量以及体重变化可以帮助评估模型的成功程度。
4. 对糖尿病药物的反应，成功的T2DM小鼠模型应该对已知的糖尿病药物或治疗方法表现出相似的反应，如胰岛素注射、口服降糖药物等。
总的来说，造模成功的T2DM小鼠模型应该在生理、病理和行为学特征上都能够反映出2型糖尿病的特点，并且对治疗药物表现出一定的相似性。
这些因素综合起来可以用来评估T2DM小鼠模型的成功程度。
高糖高脂灌喂法快速建立2型糖尿病小鼠模型
高糖高脂灌喂法快速建立2型糖尿病小鼠模型苏婷;岳俊;叶君;曹晗;张磊;陈瑜;唐东红;鲁帅尧【摘要】目的用高糖高脂灌喂法快速建立2型糖尿病小鼠模型.方法将30只小鼠随机分为正常对照组和2型糖尿病组,每组15只,2型糖尿病组小鼠按40mg/kg体重的剂量腹腔注射STZ,连续注射5天停药,同时每天灌喂高糖高脂乳液2ml至4周,然后通过血糖、血脂、葡萄糖耐量试验、胰岛素耐受试验和组织病理检测等进行2型糖尿病特征的综合评价.结果 2型糖尿病组小鼠空腹血糖值达9.94mmol/L,出现高胆固醇、高甘油三酯和高低密度脂蛋白的混合型高脂血症;葡萄糖耐量试验和胰岛素耐受试验结果表明,糖耐量受损并有明显的胰岛素耐受;组织病理分析发现,肝脏、胰腺和肾脏组织出现不同程度的脂肪变性和炎症.结论快速建立了具有人类2型糖尿病临床和组织病理特征的2型糖尿病小鼠模型.【期刊名称】《医学研究杂志》【年(卷),期】2016(045)006【总页数】4页(P25-28)【关键词】2型糖尿病模型;高糖高脂;STZ;小鼠【作者】苏婷;岳俊;叶君;曹晗;张磊;陈瑜;唐东红;鲁帅尧【作者单位】650118昆明,中国医学科学院/北京协和医学院医学生物学研究所、云南省重大传染病疫苗研发重点实验室;650118昆明,中国医学科学院/北京协和医学院医学生物学研究所、云南省重大传染病疫苗研发重点实验室;650118昆明,中国医学科学院/北京协和医学院医学生物学研究所、云南省重大传染病疫苗研发重点实验室;650118昆明,中国医学科学院/北京协和医学院医学生物学研究所、云南省重大传染病疫苗研发重点实验室;650118昆明,中国医学科学院/北京协和医学院医学生物学研究所、云南省重大传染病疫苗研发重点实验室;650118昆明,中国医学科学院/北京协和医学院医学生物学研究所、云南省重大传染病疫苗研发重点实验室;650118昆明,中国医学科学院/北京协和医学院医学生物学研究所、云南省重大传染病疫苗研发重点实验室;650118昆明,中国医学科学院/北京协和医学院医学生物学研究所、云南省重大传染病疫苗研发重点实验室【正文语种】中文【中图分类】R32型糖尿病是由胰岛β细胞功能缺陷和胰岛素抵抗引起的一种慢性代谢性疾病，其发病机制尚未完全阐明[1]。
覆盆子酮对糖尿病模型小鼠的降血糖作用及其机制研究_谢欣梅
基金项目：农业部都市农业重点开发实验室开发研究项目（NYBBF-2011-R001）作者简介：谢欣梅，女，硕士，讲师研究方向：药物评价*通讯作者：庞晓斌，男，博士，副教授研究方向：药物筛选、生物制药Tel ：（0378）3880680E-mail ：hndxpxb@覆盆子酮对糖尿病模型小鼠的降血糖作用及其机制研究谢欣梅，庞晓斌*，李晓婷（河南大学药物研究所，河南开封475004）摘要：目的研究覆盆子酮对糖尿病小鼠的降血糖作用及其机制。
方法以四氧嘧啶尾静脉注射诱导糖尿病小鼠模型，随机分为模型组、阳性对照组（二甲双胍，90mg ·kg －1）、覆盆子酮低、中、高剂量组（200，400，800mg ·kg －1），同时设正常对照组，灌胃给药，连续给药20d 。
在实验第0、7、14天各测空腹血糖；实验末期进行：糖耐量实验；测定血清胰岛素水平、计算胰岛素敏感指数（ISI ）；测定血清超氧化物歧化酶、谷胱甘肽过氧化物酶活性和丙二醛水平；通过胰腺HE 染色和胰岛素免疫组化分析观察胰腺组织病变程度和胰岛β细胞胰岛素表达。
结果覆盆子酮具有明显控制糖尿病小鼠空腹血糖值（P ＜0.05）升高，降低血糖曲线下面积的作用，其中覆盆子酮高剂量组降糖作用与阳性对照组相当；覆盆子酮高剂量组显著提高血清胰岛素水平（P ＜0.05）；显著增加血清中超氧化物歧化酶和谷胱甘肽的含量（P ＜0.05），并能显著降低血清中丙二醛的含量（P ＜0.05）；HE 及免疫组化分析表明，覆盆子酮有效修复胰岛病理改变，增加胰岛β细胞中胰岛素的表达。
结论覆盆子酮具有剂量依赖性地降血糖效果，增加胰岛素分泌，各剂量对四氧嘧啶造成的胰腺损伤都有一定修复作用。
机制可能与提高糖尿病小鼠抗氧化能力，促进胰岛β细胞修复有关。
关键词：覆盆子酮；糖尿病；氧化应激；胰岛病理中图分类号：R965文献标志码：A文章编号：1001－2494（2012）23－1899－06Hypoglycemic Effect and Mechanism of Raspberry Ketone on Diabetic Model MiceXIE Xin-mei ，PANG Xiao-bin *，LI Xiao-ting （Institute of Pharmacy ，Henan University ，Kaifeng 475004，China ）ABSTRACT ：OBJECTIVE To observe the hypoglycemic effect of raspberry ketone and its mechanism on diabetic model mice in-duced by alloxan.METHODSHealthy male KM mice were used to establish diabetic models by injecting alloxan via tail vein ，andthen randomly divided into model control group ，metformin group （90mg ·kg －1），and raspberry ketone low ，middle and high （200，400，800mg ·kg －1）dose groups.Normal control group was set.All groups had been treated for 20d.Fasting blood glucose （FBG ）was measured on 0，7and 14d.After 20d ，glucose tolerance test was carried out.Fast insulin （FINS ）of the mice were measured ，and the insulin sensitivity index （ISI ）was calculated by determining the contents of FBG and FINS.Superoxide dismutase （SOD ），glu-tathione peroxidase （GSH-Px ），and malonaldehyde （MDA ）in serum were measured.Pathological changes of pancreas and insulin ex-pression were examined.RESULTSRaspberry ketone could effectively control the increase of fasting plasma glucose （P ＜0.05）andreduce the role of the area under the glucose pared with the model group ，the levels of FINS ，SOD and GSH-Px activity were significantly improved （P ＜0.05），and MDA content was decreased （P ＜0.05）in the high dose raspberry ketone group.The pathologi-cal symptoms of pancreas were relieved in the high dose group.CONCLUSIONRaspberry ketone can effectively control blood glu-cose ，protect pancreatic islet βcells ，and improve insulin secretion in diabetic mice by effectively inhibiting the oxidative stress.KEY WORDS ：raspberry ketone ；diabetes mellitus ；oxidative stress ；islet pathology糖尿病（diabetes mellitus ）是一种由遗传因素、自由基、免疫功能紊乱、微生物感染及其毒素、精神因素等多种致病因子作用于机体，导致胰岛功能减退、胰岛素抵抗等而引发的糖、蛋白质、脂肪、水和电解质等一系列代谢紊乱综合征，是目前仅次于肿瘤和心脑血管病的严重威胁人类健康的常见病。
克糖特对糖尿病小鼠血糖的影响
西
医
科
大Байду номын сангаас
学
学
报
18 8
J OURNAL OF GU AN GXI M EDICAL UN IV ERSI TY
2008 Apr ; 25 ( 2 )
克糖特对糖尿病小鼠血糖的影响 3
罗昱澜 1 马杰津 2 贺 敏 黄仁彬 △
(广西医 科大 学药 学院 南宁 530021)
摘要 目的 : 研究克糖特 ( KT T) 对糖尿病模型小鼠血糖的影响 ,并初步探讨其降低小鼠血糖的作用机制 。方法 : 建立肾上腺 素 致高血糖小鼠模型和链脲霉素 (S TZ) 致糖尿病小鼠模型 ,并将小鼠随机分成 5 组 ( n = 10 ) , 分别用格 列本脲 ( 50 mg/ kg ) 、 克糖 特高 、 中、 低剂量和生理盐 水 (01 1 mL/ 10 g 体 重) 灌胃 15 d 。15 d 后测定正常小鼠 、 肾上腺素致高血糖小鼠模型的血糖水平 ,并 在相应时间采血测定 S TZ 致糖尿病小鼠模型空腹血糖 ( FB G) 、 药后 2 h 血糖 (2 hB G) 、 胰岛素水平 ,同时 对 STZ 所致糖尿病 小 鼠进行胰腺病理组织学检查 。 结果 : 克糖特对正常小鼠血糖水平无影响 , 能够拮抗肾上腺素诱导的小鼠高血 糖 ,显 著降低 S TZ 模型小鼠空腹血糖 ( P < 01 05～ 0101 ,与模型 组比较降 糖率可 达 241 39 %) 及 2 hB G( P < 0105) ,明 显提 高胰岛 素水 平 ( P <
EFF EC TS OF KETANGTE O N BLOOD SUGAR IN ANIMAL MODEL S OF D IABETES M ELL I2 TUS
STZ糖尿病模型(来自丁香园)
造模方法（1）链脲佐菌素（Streptozotocin）诱导大鼠糖尿病模型方法将大鼠禁食12h，按60mg/kg体重腹腔注射STZ，每日1次，连续2次，成功制备Ⅰ型糖尿病大鼠模型，并且该模型具有高血糖、体重减轻、多饮多食多尿的特点，与临床Ⅰ型糖尿病吻合；但在此实验中，若造模组只腹腔注射STZ一次，并给予高热量饲料饲养12周，则可制备Ⅱ型糖尿病动物模型，且按该法制备出的模型具有超重、糖耐量减低、血脂升高、血清胰岛素升高及胰岛素受体结合力降低伴胰岛素抵抗的特点，类似于Ⅱ型糖尿病病人的临床特征。
Ⅰ型糖尿病与Ⅱ型糖尿病动物模型的制备可能与STZ注射的剂量有关系：大剂量（常为120mg/kg）注射时，由于直接引起胰岛β细胞的广泛破坏，可造成Ⅰ型糖尿病模型；而注射较少量STZ时，由于只是破坏一部分胰岛β细胞的功能，造成外周组织对胰岛素不敏感，同时给予高热量饲料喂养，两者结合便诱导出病理、生理改变都接近于人类Ⅱ型糖尿病的动物模型。
/bbs/actions/archive/post/5636508_0.html（2）你还是采用腹腔的比较好！按65或是70给都可以。
最好是给STZ后7天开始测定血糖分组为好，这样血糖已经稳定了！我给我的一个朋友用ALLOXAN，尾静脉。
大鼠，50mg/kg,全都死亡了！给STZ前有的说禁食，有的说不用，但还是禁的好些，给STZ后，也不要立即给予食物，1小时后再给。
还有腹腔注射的手法要正确！！给STZ要快，最好在冰水中冷却溶液！/bbs/actions/archive/post/672237_0.html（3）链脲霉素（STZ）诱导的高血糖动物模型STZ水溶液不稳定，对小鼠的生物半衰期仅有5min左右，需要快速静脉注射。
造型剂量犬50mg/kg，静注，可引起糖尿病，动物死亡率较高；如15mg/kg，连续3天也可。
大鼠60-80mg/kg，iv或ip，小鼠100-200mg/kg，iv或ip。
小鼠糖尿病模型血糖标准
小鼠糖尿病模型血糖标准糖尿病是一种常见的代谢性疾病，严重影响人类的健康。
为了研究糖尿病的发病机制和寻找治疗方法，科学家们通常会使用动物模型来进行实验。
小鼠作为常用的实验动物之一，被广泛用于糖尿病模型的研究。
在进行这些实验时，血糖标准是一个非常重要的指导依据。
本文将介绍小鼠糖尿病模型血糖标准的相关内容。
1. 小鼠糖尿病模型的建立在实验室，糖尿病模型的建立主要采用两种方法：化学诱导法和基因敲除法。
化学诱导法通过给小鼠注射化学物质（如阿霉素、链脲佐菌素等）来诱导糖尿病。
基因敲除法则通过敲除小鼠体内与胰岛素分泌或作用相关的基因，使小鼠发展为糖尿病模型。
2. 血糖测量的重要性血糖测量是评估糖尿病模型的关键指标之一。
在实验前，科研人员需要明确小鼠的血糖水平以区分正常小鼠和糖尿病模型小鼠。
同时，在糖尿病模型建立后，血糖测量还可以用于观察模型的稳定性和糖尿病的进展情况。
3. 小鼠糖尿病模型血糖标准的制定小鼠糖尿病模型血糖标准制定的主要目的是为科研人员提供合理的血糖范围，以便评估模型的有效性和稳定性。
血糖标准的制定要根据实验需求、模型类型和实验组设计来确定。
3.1 胰岛素敏感性糖尿病模型的血糖标准胰岛素敏感性糖尿病模型是指小鼠体内胰岛素受体功能异常导致的糖尿病。
这种模型下，小鼠的血糖水平通常偏高，血糖标准一般设置在7.8-11.1 mmol/L之间。
3.2 胰岛素抵抗型糖尿病模型的血糖标准胰岛素抵抗型糖尿病模型是指小鼠体内胰岛素抵抗性增加导致的糖尿病。
在这种模型下，小鼠的血糖水平会进一步升高。
血糖标准一般可以设置在11.1-15 mmol/L之间。
3.3 血糖标准的确定方法确定血糖标准的方法有多种，一般包括测量空腹血糖、餐后血糖和糖耐量试验等。
科研人员可以根据实验需要选择适合的方法。
4. 血糖监测技术的选择为了准确测量小鼠的血糖水平，科研人员需要选择适合的血糖监测技术。
常用的方法包括血液化学分析仪、连续血糖监测仪和葡萄糖氧化酶法试纸等。
dbdb小鼠的实验室应用
dbdb小鼠的实验室应用dbdb小鼠是一种具有肥胖和糖尿病特征的动物模型，其在实验室中被广泛用于研究糖尿病和肥胖相关的病理生理机制，以及评估药物和治疗方法的效果。
本文将介绍dbdb小鼠在实验室中的应用。
在实验室中，dbdb小鼠被用于研究糖尿病和肥胖的病理生理机制，以及药物和治疗方法的效果。
这些研究通常涉及对小鼠的饮食、体重、血糖、胰岛素水平等指标的监测和调控。
通过使用dbdb小鼠作为实验对象，科学家们可以更深入地了解糖尿病和肥胖的发病机制，为开发新的药物和治疗方法提供理论支持和实践指导。
dbdb小鼠作为实验对象的优势在于其具有肥胖和糖尿病的特征，可以很好地模拟人类糖尿病和肥胖患者的病理生理过程。
同时，dbdb小鼠的基因型和表现型相对稳定，可以保证实验结果的可比性和可重复性。
由于dbdb小鼠是成倍肥胖，可以在较短时间内观察到明显的实验效果，从而提高实验的效率。
使用dbdb小鼠进行实验的方法包括但不限于以下几种：给药实验、基因敲除或过表达、饮食干预等。
其中，给药实验是最常用的方法之一，通过给予药物或化合物，观察对小鼠体重、血糖、胰岛素水平等指标的影响，从而评估药物或化合物的疗效和安全性。
基因敲除或过表达方法则通过改变小鼠的基因型，研究基因对糖尿病和肥胖的影响。
饮食干预则通过控制小鼠的饮食成分和摄入量，研究饮食习惯对糖尿病和肥胖的影响。
通过使用dbdb小鼠进行的实验，科学家们发现了很多糖尿病和肥胖相关的病理生理机制和治疗靶点。
例如，研究发现dbdb小鼠的脂肪组织中存在炎症反应和细胞因子异常分泌，这些因素可能是导致肥胖和糖尿病的关键因素。
通过对dbdb小鼠进行药物或饮食干预实验，科学家们发现了一些可以有效控制血糖和改善肥胖症状的药物和治疗方法，为临床实践提供了重要的参考依据。
dbdb小鼠作为一种重要的动物模型在实验室中被广泛应用于研究糖尿病和肥胖相关的病理生理机制及药物和治疗方法的效果。
通过这些研究，科学家们可以更深入地了解糖尿病和肥胖的发病机制，为开发新的药物和治疗方法提供理论支持和实践指导。
2型糖尿病小鼠模型的建立与评价
2型糖尿病小鼠模型的建立与评价许芳芳;王楠;李刚强;郭文芳;杨彩峰;刘德虎【期刊名称】《中国医学科学院学报》【年(卷),期】2017(039)003【摘要】目的通过高热量饮食与小剂量多次腹腔注射链脲佐菌素(STZ)的方法建立2型糖尿病小鼠模型.方法采用随机数字表将30只雄性昆明种(KM)小鼠随机分为对照组和模型组(n=15),模型组小鼠饲喂高热量饲料1个月后,连续2~4 d腹腔注射30 mg/kg体重剂量的STZ;对照组则饲喂标准维持鼠料及注射等量柠檬酸盐缓冲液.观测小鼠食水量、体重等一般情况,并于造模后第1、2、4、5、12、21周尾尖采血检测血糖值,在小鼠血糖趋于稳定时检测血清胰岛素(INS),血浆总胆固醇(TC)、三酰甘油(TG)、高密度脂蛋白(HDL)、低密度脂蛋白(LDL),血浆糖化血红蛋白(HbA1c)含量,并进行口服葡萄糖耐量试验.结果模型组小鼠存活率为100%.与对照组相比,模型组小鼠注射STZ后体重逐渐下降并于第4周降到最低,此后逐渐回升,直到第21周仍显著低于对照组(t=3.160,P=0.006).模型组小鼠在造模后血糖水平均明显高于造模前和对照组(P均<0.05);随着时间推移,血糖值也在不断上升,至21周,小鼠血糖值仍旧保持在较高水平的(26.38±1.34)mmol/L.造模后第4周,模型组小鼠的空腹血糖为(11.86±3.33)mmol/L,明显高于对照组的(6.37±1.27)mmol/L(t=-3.830,P=0.002);空腹血清胰岛素水平与对照组差异无统计学意义[(5.73±0.24)mU/L比(5.48±0.32)mU/L;t=-0.863,P=0.416];胰岛素敏感指数为0.0145±0.0039,明显低于对照组的0.0267±0.0039(t=4.414,P=0.003).造模后第6周,模型组小鼠在口服灌胃葡萄糖0、30、60、120 min后的血糖分别为(15.35±1.82)、(26.45±1.07)、(25.58±1.46)、(26.15±1.00)mmol/L,均明显高于对照组的(6.88±1.75)(t=-8.203,P=0.000)、(17.65±2.94)(t=-6.884,P=0.000)、(13.18±2.04)(t=-12.110,P=0.000)、(7.37±3.40)mmol/L(t=-12.969,P=0.000).造模后第8周,模型组小鼠的血清TC和TG水平分别为(3.83±0.06)和(2.20±0.20)mmol/L,明显高于对照组的(3.10±0.10)(t=11.000,P=0.000)和(0.90±0.10)mmol/L(t=10.070,P=0.000);HDL水平为(2.03±0.06)mmol/L,明显低于对照组的(2.48±0.02)mmol/L(t=11.662,P=0.000);LDL水平上升但差异无统计学意义[(0.34±0.08)mmol/L 比(0.26±0.02)mmol/L;t=1.680,P=0.168];HbA1c 含量为(7.30±0.31)%,明显高于对照组的(4.40±0.32)%(t=-11.587,P=0.000).结论采用高热量饮食与小剂量多次腹腔注射STZ的方法成功建立了2型糖尿病KM小鼠模型.%Objective To establish type 2 diabetes mellitus(T2DM)KM mouse models via the combined use of high-calorie diet and multiple administration of low-dose streptozotocin(STZ). Methods Based on the randomized number table,30 KM mice were equally and randomly divided into 2 groups:modeling group and control group. Mice in the modeling group were given foods with high calories for one month and injected with 30 mg/kg STZ via the left lower abdominal cavity for 2-4 consecutive days,while mice in the control group were fed with standard maintenance foods and the same dose of citrate buffer solution. The general conditions including food and water intake and mice weight were recorded. Blood glucose level was measured 1,2,4,5,12,and 21 weeks after STZ injection. When the glucose level became stabilized,the serum insulin and blood lipids [including total cholesterol(TC),triacylglycerol(TG),high-density lipoprotein(HDL) and low-density lipoprotein(LDL)],and hemoglobin a1c (HbA1c)were measured,and oral glucose tolerance test were performed.Results The modeling group had a 100% survival rate. After STZ injection,the body weight of mice in the modeling group reached the peak in the forth week,and later the growth rate decreased,still significantly lower than that of control group mice till the 21st week(t=3.160,P=0.006). Their blood glucose level was significantly higher than that of mice before STZ injection and in the control group(all P<0.05);as time went on,it was also rising,and it remained high till the 21st week [(26.38±1.34)mmol/L]. In the 4th week,the fasting blood glucose of mice in the modeling groupwa s(11.86±3.33)mmol/L,which was significantly higher than that of mice in the control group [(6.37±1.27)mmol/L](t=-3.830,P=0.002). Fasting serum insulin of mice in the modeling group showed no significant difference compared with control group [(5.73±0.24)mU/L vs.(5.48±0.32)mU/L;t=-0.863,P=0.416]. Insulin sensitivity index was 0.0145±0.0039,which was significantly lower than that(0.0267±0.0039)in controlgroup(t=4.414,P=0.003). In the 6th week,the blood glucose levels of mice in the modeling groupwere(15.35±1.82),(26.45±1.07),(25.58±1.46),and(26.15±1.00)mmol/L0,30,60,and 120 min after oral gavage of D-glucose,which were all significantly higher than those in the control group [(6.88±1.75)(t=-8.203,P=0.000),(17.65±2.94)(t=-6.884,P=0.000),(13.18±2.04)(t=-12.110,P=0.000),and(7.37±3.40)mmol/L(t=-12.969,P=0.000)]. In the 8th week,serum TC and TG levels of mice in the modeling groupwere(3.83±0.06)and(2.20±0.20)mmol/L,which were significantly higher than those in the control group[(3.10±0.10)(t=11.000,P=0.000)and(0.90±0.10)mmol/L(t=10.070,P=0.000)]. HDL level of mice in the modeling group was(2.03±0.06)mmol/L,which was significantly lower than that in the control group[(2.48±0.02)mmol/L;t=11.662,P=0.000].LDL level was increased but showed no significant difference [(0.34±0.08)mmol/Lvs.(0.26±0.02)mmol/L](t=1.680,P=0.168). HbA1c content of mice in the modeling group was(7.30±0.31)%,which was significantly higher thanthat(4.40±0.32)% in the control group(t=-11.587,P=0.000). Conclusion KM mice models of T2DM were successfully established after high-calorie diet and multiple administration of low-dose STZ.【总页数】6页(P324-329)【作者】许芳芳;王楠;李刚强;郭文芳;杨彩峰;刘德虎【作者单位】中国农业科学院生物技术研究所分子生物学研究室,北京 100081;中国农业科学院生物技术研究所分子生物学研究室,北京 100081;中国农业科学院生物技术研究所分子生物学研究室,北京 100081;中国农业科学院生物技术研究所分子生物学研究室,北京 100081;中国农业科学院生物技术研究所分子生物学研究室,北京 100081;中国农业科学院生物技术研究所分子生物学研究室,北京 100081【正文语种】中文【中图分类】R589.1【相关文献】1.2型糖尿病小鼠模型的建立及中药舒糖宝治疗效果的研究 [J], 何胜;李文文;石丽娟;廖维芳;潘裕钊;朱晓莹;张树球2.高脂饲料联合STZ诱导建立长期稳定2型糖尿病小鼠模型的给药方案研究 [J], 叶桂林;王清清;杨文杰;王佳3.2型糖尿病合并非酒精性脂肪肝小鼠模型的建立 [J], 薛莱;黄波;谢炜;吴堃4.高糖高脂灌喂法快速建立2型糖尿病小鼠模型 [J], 苏婷;岳俊;叶君;曹晗;张磊;陈瑜;唐东红;鲁帅尧5.高脂饲料联合STZ诱导建立长期稳定2型糖尿病小鼠模型的给药方案研究 [J], 叶桂林;王清清;杨文杰;王佳;;;;因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
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小鼠糖尿病模型血糖标准
在研究小鼠糖尿病模型时，了解血糖标准是非常重要的。
以下是关于小鼠糖尿病模型血糖标准的几个关键方面：
1.血糖浓度
在糖尿病模型中，血糖浓度是一个重要的指标。
一般来说，高血糖是小鼠糖尿病模型的主要特征之一。
根据研究，小鼠的血糖浓度通常在11.1至22.2毫摩尔/升（mM）之间被认为是糖尿病的阈值。
当血糖浓度持续高于这个范围时，可以认为小鼠患上了糖尿病。
2.血糖波动
除了血糖浓度之外，血糖波动也是一个需要考虑的因素。
在糖尿病模型中，血糖波动可能会导致额外的并发症和健康问题。
因此，评估血糖波动对于了解糖尿病模型的病情和治疗效果至关重要。
可以通过测量小鼠的空腹血糖和进食后的血糖变化来评估血糖波动。
3.胰岛素水平
胰岛素是调节血糖的重要激素。
在糖尿病模型中，胰岛素水平可能会发生变化。
一般来说，小鼠糖尿病模型的胰岛素水平可能会降低或失去作用，导致血糖无法正常降低。
因此，测量胰岛素水平可以帮助评估糖尿病模型的病情和治疗效果。
4.胰岛素抵抗
胰岛素抵抗是指身体对胰岛素的反应性降低，导致血糖无法正常降低。
在糖尿病模型中，胰岛素抵抗是一个重要的特征。
通过使用胰岛素敏感度测试等方法，可以评估小鼠的胰岛素抵抗程度。
总之，了解小鼠糖尿病模型血糖标准对于研究糖尿病及其并发症非常重要。
通过测量血糖浓度、血糖波动、胰岛素水平和胰岛素抵抗等指标，可以更好地评估小鼠糖尿病模型的病情和治疗效果，从而为开发新的治疗方法提供有价值的信息。