植物组织水势的测定 ( 小液流法 )
植物组织水势的测定(小液流法)
实验4 植物组织水势的测定（小液流法）一、原理当植物组织与外液接触时，如果植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水、重量增大而使外液浓度变大；反之，则组织失水、重量减小而外液浓度变小；若两者相等，则水分交换保持动态平衡，组织重量及外液浓度保持不变。
根据组织重量或外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度，然后根据公式计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
溶液渗透势的计算：Ψs = - iCRT （ 6 – 1 ）式中：Ψs ——溶液的渗透势，以 MPa 为单位。
R ——气体常数，为 0.008314 MPa · L/ （ mol · K ）。
T ——绝对温度，即 273 + t ℃。
C ——溶液的质量摩尔浓度，以 mol/kg 为单位。
i ——为解离系数， CaCl 2 为 2.6 。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料植物叶片或洋葱鳞茎。
（二）试剂1 ．甲烯蓝粉末。
2 ． CaCl 2 溶液：包括 0.10 、 0.15 、 0.20 、 0.25 、 0.30 、 0.35 、 0.40 、 0.45 mol/kg 8 种不同质量摩尔浓度的溶液。
（三）仪器设备大试管 8 支 , 小试管 8 支，青霉素小瓶 8 支，移液管（ 5mL ），毛细吸管 8 支，培养皿，打孔器，剪刀 l 把，镊子 1 把，解剖针 1 支。
三、实验步骤1. 编号贴标签取干燥洁净的大试管 8 支，小试管 8 支，青霉素小瓶 8 支，毛细吸管 8 支，编号贴标签，按序号排好。
2. 打取、浸泡叶片取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约 60 片，放在培养皿中，混合均匀。
用镊子分别把 5 ～ 8 个小圆片放到盛有 4 mL 不同质量摩尔浓度 CaCl 2 溶液的青霉素小瓶中，浸没叶片，盖紧瓶塞，放置 30 min ，并不断轻摇小瓶，以加速水分平衡（如温度低时可延长放置时间）。
小液流法测定植物组织水势
小液流法测定植物组织水势一、原理将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。
因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）（waterpotential）。
ψw＝ψπ＝－P＝－CRT（大气压）二、材料、仪器设备及试剂（一）材料：小白菜、菠菜、油菜或其它作物叶片（二）仪器设备：1.带塞青霉素小瓶12个；2.带有橡皮管的注射针头；3.镊子；4.打孔器5.培养皿。
（三）试剂：1.0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30mol/L 蔗糖溶液；2.甲烯蓝粉末。
三、实验步骤（一）取干燥洁净的青霉素瓶6个为甲组，各瓶中分别加入0.05～0.30mol/L蔗糖溶液约4ml（约为青霉素瓶的2／3处），另取6个干燥洁净的青霉素瓶为乙组，各瓶中分别加入0.05～0.30mol/L 蔗糖溶液1ml和微量甲烯蓝粉末着色，上述各瓶加标签注明浓度。
（二）取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约50片，放至培养皿中，混合均匀。
用镊子分别夹入5～8个小圆片到盛有不同浓度的甲烯蓝蔗糖溶液的青霉素瓶中（乙组）。
盖上瓶塞，并使叶圆片全部浸没于溶液中。
放置约30～60min，为加速水分平衡，应经常摇动小瓶。
（三）经一定时间后，用注射针头吸取乙组各瓶蓝色糖液少许，将针头插入对应浓度甲组青霉素瓶溶液中部，小心地放出少量液流，观察蓝色液流的升降动向。
（每次测定均要用待测浓度的甲烯蓝蔗糖溶液清洗几次注射针头）。
如此方法检查各瓶中液流的升降动向。
若液流上升，说明浸过小圆片的蔗糖溶液浓度变小（即植物组织失水）；表明叶片组织的水势高于该浓度糖溶液的渗透势；如果蓝色液流下降则说明叶片组织的水势低于该糖溶液的渗透势，若蓝色液流静止不动，则说明叶片组织的水势等于该糖溶液的渗透势，此糖溶液的浓度即为叶片组织的等渗浓度四、结果计算将求得的等渗浓度值代入如下公式：ψw＝ψπ＝－CRTi×1.013×0.1。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
一、目的
学会用小液流法测定植物组织的水势
二、材料用具及仪器药品
花生叶片、试管、移液管（10ml，0.1ml）、洗耳球、镊子、小方块、钻孔器、牙签、玻璃棒、蔗糖、次甲基蓝
三、方法步骤
1、将1mol/L蔗糖溶液的母液分别配成0.1、0.
2、0.
3、0.
4、0.
5、0.6mol/L的蔗糖溶液各10ml分别注入6支大试管中，摇匀
2、从上述的大试管中各取2ml溶液，分别放到另6支小试管中，各试管塞上软木塞
3、用钻孔器钻取叶圆片（花生叶、菠菜均可），依次分别在小试管的蔗糖溶液中各放入叶圆片40片（钻孔器的直径为6mm），叶圆片要全部浸在溶液中，塞上木塞，每隔5分钟摇动一次
4、30分钟后，用牙签取次甲基蓝结晶少许，分别投入小试管中，摇匀
5、用0.1ml的移液管从小试管中吸取溶液约0.1ml，然后将之插入相对应浓度的大试管中的中部，慢慢放出蓝色液，并观察记录小液流的流向，从中找出小液流停止不动的该溶液的浓度（每一浓度配备0.1ml移液管一支）
6、量出该蔗糖溶液的温度
7、根据公式φs=-CiRT，求出组织的水势
四、实验报告
i：渗透系数R：气体常数C：溶液的摩尔浓度
计算所测材料的水势φn（φs）
五、思考
在干旱地方生长的植物的水势较高还是较低？为什么？。
植物生理学 实验报告--实验1 植物组织水势的测定
实验一植物组织水势的测定（小液流法）1、实验目的了解植物组织中水分状况的一种表示方法及用于测定的方法及其优缺点。
2、实验原理植物组织的水分状况可用水势来表示。
植物体细胞之间、组织之间以及植物体与环境之间的水分移动方向都由水势差决定。
将植物组织放在已知水势的一系列溶液中，如果植物组织的水势（Ψcell）小于某一溶液的水势（Ψout），则组织吸水，反之组织失水。
若两者相等，水分交换保持动态平衡。
组织的吸水或失水会使溶液的浓度、密度、电导率以及组织本身的体积与质量发生变化。
根据这些参数的变化情况可确定与植物组织等水势的溶液。
液体交换法测定水势的方法有很多种，本实验练习用小液流法测定植物组织的水势，并初步观察其变化情况。
小液流法测定水势的原理判据△Ψ=Ψout-Ψcell组织的水分得失外液的密度变化△Ψ>0吸水升高△Ψ<0失水降低△Ψ=0平衡不变使用器材用滴管测定外液的密度变化适用的材料叶片或碎的组织3、仪器和试剂试管，试管架，移液管，滴管，打孔机或单面刀片，镊子，解剖针，棉花，吸水纸；0.05-0.4mol/L CaCl2溶液，甲烯蓝；土豆4、实验步骤①将16支试管清洗干净，分为两组（实验组和对照组）按编号顺序倒置于试管架上，控净水分。
②配制一系列不同浓度的氯化钙溶液（0.05、0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4mol/L），分别注入八支实验组试管中，各10ml左右（体积约为试管的2/3处）。
再将实验组各试管溶液的2/3倒入对应编号的对照组试管中。
两组试管均加盖棉塞。
③将土豆用单面刀片切成0.5cm见方的小块。
将植物组织混匀，分成八份，放入实验组各试管中。
放置20min以上，期间多次摇动实验组试管，以促进水分平衡。
④用解剖针沾取甲烯蓝粉末给实验组各试管染色，摇匀，用滴管由低浓度向高难度顺序吸取实验组的染色液滴移入对照组对应浓度试管内，观察液滴升降变化并记录。
⑤水势计算Ψcell=Ψout=-icRT式中：为植物细胞水势；为外界溶液渗透势；i为解离系数，氯化钙为2.6；c为溶液浓度，单位mol/L；R为摩尔气体常数，0.0083 (L·MPa)/(mol·K)；T为热力学温度，单位为K，即273+t，t为试验温度。
小液流法
小液流法测定植物组织的水势
实验原理
当植物组织浸入一系列递增的不同浓度的蔗糖溶液 中时，如果植物组织的水势小于溶液的渗透势，则 组织吸水而使蔗糖溶液的浓度增高；反之，则降低； 若二者相等，则水分保持动态平衡，蔗糖溶液浓度 不变。溶液浓度发生变化，比重随之变化。 取浸过植物组织的溶液一小滴，放在原来浓度相同 而未浸植物组织的溶液中，比重减小的液流往上浮； 比重加大的液流往下沉；如液流停止不动，则说明 溶液浸过植物组织后浓度未变。可把这个溶液的渗 透势看作组织的水势，根据公式计算其渗透势。
实验目的
掌握植物组织水势的测定方法,并了解渗透系统中水 势大小是水分移动方向的决定因素.
实验器材和试剂
植物材料:菠菜
实验器材:吸水纸、容量管、试管、带盖青霉素小瓶、 胶头细玻璃弯管、移液管、打孔器、软木塞、试管 架、温度计、镊子 实验试剂:1mol/L蔗糖溶液、甲烯蓝粉末
实验步骤
1. 用1mol/L的蔗糖溶液配制一系列浓度递增的蔗糖溶液如，0.1 、 0.2 、0.3 、0.4 、0.5 、0.6 、 0.7 、 0.8mol/L各十毫升，注入编 号的试管中，各管都要加塞子，并按编号顺序放在试管架上，作 为对照组。 2. 另取8个已编号的小瓶，按编号顺序排列，作为实验组。然后由对 照组的各个试管中用移液管分取4毫升溶液移入相同比编号的试验 组小瓶中。 3. 选取生长势一致的叶子，在其下面垫以橡皮塞，用打孔器钻取叶 圆片，迅速投入小瓶的蔗糖溶液中并盖紧，每瓶投入30片，数量 以占蔗糖溶液的1/4为宜。叶片应全部进入蔗糖溶液中。塞紧，定 时摇动。 4. 在室温下30分钟（等待时间内不断依次摇动有叶片的小瓶）。用 针挑起极少量甲烯兰粉末，投入各试验组小瓶中依次吸取着色的 液体少许，并用吸水纸吸掉吸管外壁的溶液；然后小心地伸入对 照组的相同编号试管内的液体的中部，缓慢地放出一滴蓝色试验 溶液。然后轻轻取出玻璃管，并观察小液滴流动的方向。 5. 按公式ψs=-iCRT计算出植物组织的水势
植物水势的测定方法
实验题目：植物组织水势的测定(小液流法)教师：XXX实验类型：基础学时：4 (参考)内容：一、实验目的1.学习用小液流法测定植物组织水势的方法2.了解不同组织的水势的大小。
二、实验原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。
植物体细胞之间、组织之间以及植物体和环境之间的水分移动方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势，则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡。
当植物材料浸入不同浓度的溶液中时，由于细胞与溶液之间发生水分交换，使原来的溶液浓度发生改变，浓度的改变又引起了溶液比重的改变。
若将已浸过植物材料的溶液用毛细管吸入一部分，然后移入与原来浓度相同的溶液时，由于其溶液比重的改变。
就会使移入的小液流向上或向下移动或者不移动。
这样，就可以根据小液流的移动情况，求出植物组织的水势。
三、试剂与器材1.材料：菠菜叶片或马铃薯2.试剂：1mol／L蔗糖溶液、甲烯蓝。
3.器材：试管、移液管、毛细滴管(出口处弯成直角)、打孔器。
四、操作方法1.配制不同浓度的蔗糖溶液。
2.试验组8支试管，对照组8支试管,分别编好号。
3.选取实验材料进行实验。
4.观察现象，记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度。
5.计算水势：фW =-RTiC式中фW为细胞水势，R为气体常数0．083×105L·Pa／mol·K，T为绝对温度即273℃+ t(t为实验温度)，i为解离系数(蔗糖为1)，C为等渗溶液的浓度。
五、关键步骤与注意事项1.毛细管尖端弯成直角，试验时从尖端缓慢地横向放出一滴蓝色试验溶液，这样才能观察小液滴上下移动的方向，否则有时小液滴无法从直的毛细滴管尖端放出。
2.不同浓度的溶液都要使用不同的移液管和毛细滴管，微小的浓度变化都会对实验结果造成严重影响。
小液流法测定植物水势实验综述报告8篇
小液流法测定植物水势实验综述报告8篇篇1一、引言植物水势的测定是植物生理学研究中的重要内容之一。
水势作为植物体内水分状况的重要指标，对于了解植物的生理状态、生长环境以及抗逆性等方面都具有重要的意义。
小液流法作为一种常用的植物水势测定方法，具有操作简便、快速准确等优点。
本文将对小液流法测定植物水势的实验进行综述，旨在为相关研究人员提供一定的参考和借鉴。
二、实验原理小液流法测定植物水势的实验原理是基于植物细胞膜的半透性原理。
通过在植物组织上施加一定的压力，使细胞内的水分通过细胞膜上的微孔扩散到组织外部，从而形成液流。
液流的大小与植物组织的水势密切相关，因此可以通过测量液流的大小来推算出植物组织的水势。
三、实验材料与方法1. 实验材料：本实验选用健康的植物叶片作为实验材料，以避免叶片衰老、病虫害等因素对实验结果的影响。
2. 实验方法：首先，将植物叶片清洗干净，并用干净的滤纸吸干表面水分。
然后，将叶片放置在特制的液流室中，通过施加一定的压力，使叶片细胞内的水分通过细胞膜上的微孔扩散到液流室中。
最后，通过测量液流室中液流的大小，可以推算出植物叶片的水势。
四、实验结果与分析通过小液流法测定植物水势的实验，我们可以得到植物组织的水势值。
这些水势值可以反映植物体内的水分状况，从而为研究植物的生理状态、生长环境以及抗逆性等方面提供重要的参考依据。
在实验过程中，我们还需要对实验结果进行分析和讨论。
例如，我们可以探讨不同植物组织的水势差异、同一植物不同部位的水势变化以及环境因素对植物水势的影响等。
这些分析讨论可以帮助我们更深入地了解植物的生理特性和适应性机制。
五、结论与展望通过小液流法测定植物水势的实验，我们可以得到植物组织的水势值，这些水势值对于了解植物的生理状态、生长环境以及抗逆性等方面都具有重要的意义。
然而，在实验过程中，我们还需要注意一些影响因素，如叶片的选取、实验环境的控制等。
这些因素可能会对实验结果产生一定的影响，因此需要在实验过程中加以注意和控制。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告实验一、植物组织水势测定（小液流法）一、实验原理水总是从水势高的系统流向水势低的系统。
将植物叶片分别与一系列不同浓度的蔗糖溶液接触，蔗糖溶液浓度从小到大，开始时，植物叶片水势低于蔗糖溶液，溶液中水分向叶片转移，蔗糖溶液浓缩，蔗糖溶液密度较原始浓度升高；蔗糖溶液高到一定浓度后，蔗糖溶液水势低于植物叶片，叶片水分向溶液中转移，蔗糖溶液稀释，密度较原始浓度降低。
如果植物组织的水势等于蔗糖溶液的水势，水分不发生净移动，外液浓度较原浓度不发生变化上述浸泡过植物组织、浓度发生改变的蔗糖溶液为乙组。
原始浓度的蔗糖溶液为甲组。
将乙组溶液染色后，取乙组溶液一小滴（小液流），放入对应浓度的甲组溶液中，观察小液流因密度不同而下降、上升或不动的情况，记录与之相对应的甲组溶液的浓度。
二、材料与设备1.材料：植物叶片；2.仪器设备：试管、试管架、打孔器、尖头镊子、尖头针、移液管、毛细滴管；3.试剂：1M蔗糖液、甲烯蓝粉。
三、实验步骤1.蔗糖溶液配制：l)取干燥洁净试管5支，贴标签标记，用1M蔗糖母液配制蔗糖溶液，浓度由小到大分别为0.1、0.25、0.5、0.75、1M，每个浓度均配8m1，放入对应标记的试管中，作为甲组（一定要混匀）2）另取干燥洁净的指形管5支，标明0.1、0.25、0.5、0.75、1M浓度的蔗糖溶液，分别从甲组取相应浓度蔗糖溶液1m1置于指形管，作为乙组。
2.取样及测定1)选取生长一致的叶片，用打孔器钻取小圆片4-6片/管，将小圆片全部浸入乙组指形管溶液中，摇动20分钟；2）用针尖蘸取少许甲烯蓝粉末，分别放入乙组各指形管中，摇匀，可看见乙组指形管中溶液颜色变蓝：3）用毛细滴管吸取蓝色溶液，轻轻插入相应浓度的甲组溶液中部，用吸耳球轻柔吹气，以帮助蓝色溶液从毛细滴管中流出。
在流出的一瞬间观察并记录液滴的升降情况；4）若液滴下降，说明组织吸水使溶液变浓，比重变大；若液滴上升，说明组织失水使溶液变稀，比重变小；若液滴静置不动，说明此溶液的溶质势与叶圆片组织的水势相等，水分交换平衡，溶液比重不变，根据溶液的浓度可计算水势：若前一浓度溶液小液流下沉，而后一浓度溶液中上浮，则组织的水势值介于两蔗糖溶液水势之间，可取平均值计算。
小液流法测定植物水势实验综述报告5篇
小液流法测定植物水势实验综述报告5篇第1篇示例：植物水势是指植物细胞内外部水分压力的平衡状态，是植物体维持正常生长和发育所必需的重要因素。
小液流法是一种常用的测定植物水势的方法，通过观察植物细胞在不同浓度溶液中的液流情况，来推断细胞内外部水势的差异。
本文将就小液流法测定植物水势的实验原理、步骤与结果进行综述。
一、实验原理小液流法是一种基于渗透压差原理的测定植物水势的方法。
植物细胞内含有大量的胞液，当胞液的渗透压高于外部环境时，水分会向胞液内部移动，细胞会吸水膨胀；反之，当胞液的渗透压低于外部环境时，水分会向外部环境移动，细胞会失水而萎缩。
利用这一原理，可以通过观察细胞在不同浓度溶液中的液流情况，推断细胞内外部水势的大小及方向。
二、实验步骤1. 准备材料：实验所需材料包括植物切片、各种浓度的蔗糖溶液、显微镜、载玻片和盖玻片等。
2. 制备植物切片：从植物茎叶中取得新鲜的细胞切片，保持切片的完整性和生理活性。
3. 实验操作：将植物切片置于不同浓度的蔗糖溶液中，利用显微镜观察切片中细胞的液流情况。
4. 记录结果：观察细胞在不同溶液浓度下的液流方向和速度，记录实验结果。
5. 分析数据：根据实验结果分析细胞内外部水势的差异，推断植物水势的大小和方向。
三、实验结果与讨论小液流法是一种简单而有效的测定植物水势的方法，通过观察细胞在不同浓度溶液中的液流情况，可以快速了解植物细胞的水分状况和水势变化。
在实际应用中，小液流法可以帮助研究人员研究植物的生长发育、耐旱抗寒等生理特性，为植物生态学和农业生产提供重要参考。
小液流法测定植物水势是一种简单而有效的方法，通过观察细胞在不同浓度溶液中的液流情况，可以推断植物细胞的水势大小和方向。
该方法具有广泛的应用前景，对于研究植物水分调节机制和解决相关问题具有积极的意义。
希望通过本文的介绍和讨论，可以更全面地了解小液流法测定植物水势实验的原理和意义。
第2篇示例：小液流法测定植物水势实验综述植物的水势是指植物体内部的水的活动性，是衡量植物细胞内外水分梯度的重要指标。
实验二植物组织水势的测定(小液流法)
实验二植物组织水势的测定(小液流法)本实验主要是采用小液流法，测定植物组织的水势变化。
水势是植物体内水分分布和转运的重要指标，能够反映植物的水分状态。
实验所需材料：1. 水压传感器2. 水分压力平衡仪3. 测压管4. 接头5. 试管6. 植物组织（如茎片）实验步骤：1. 准备实验材料，组装实验装置。
将水压传感器与水分平衡仪相连接，然后使用接头连接测压管。
2. 准备植物组织。
选择一片新鲜的植物茎片，用刀片将其切成5mm*5mm大小的块，一边切去树皮，并且保持其在水中5分钟，让其吸水。
3. 用细小的刀片将块的表面切成一段长度为约1mm的平面，使其减少压力下的机械性损伤。
同样处理它们对立面的中央一小段，将其口服、用勺子将其取下，直接将其放入小试管中，并迅速加上2ml的浸透液。
4. 手持试管，用尺度计测定柳树片与水之间的高度差，在水分压力平衡仪中设置对应值来调节水平衡仪。
然后将试管放入测压管中，并在水平衡仪中恢复平衡。
5. 记录水压传感器显示的数值，这相当于植物组织的水势大小。
然后将试管拿出，将茎片拿出，称重，测算其相对水分含量。
将茎片重新放回封装好的试管中，并加入2ml 浸透液溶液，重复以上步骤，直至植物组织水势的测定值变化不大。
实验注意事项：1. 选择新鲜的植物组织，避免机械性损伤和水分损失。
2. 手持试管时应迅速测定高度差，避免高度差变化导致的误差。
3. 测量需重复多次来确定准确的水势值。
实验结果：通过实验可以得到植物组织的初始水势变化值，并通过多次测量，得到稳定的水势值。
这可以反映植物的水分状态，比较不同植物组织的水分含量和水势变化，可以进一步研究植物的生长发育和环境适应性。
植生实验水势测定
Ψw = -RTiC
R：摩尔气体常数，0.083×105 L·pa/mol·k T：热力学温L
试剂 1 mol/L蔗糖溶液；超纯水； 10%次甲基蓝（或甲烯蓝）
材料 马铃薯；白萝卜；胡萝卜；南瓜；植物叶片 毛细吸管8支；吸水纸；标签
R：摩尔气体常数，0.083×105 L·pa/mol·k T：热力学温度，单位k i：解离系数，蔗糖等于1 C：等水势浓度，单位mol／L
将植物组织置于外界溶液中，将出现3种情况：
大小 （1）组织水势 > 溶液水势 （2）组织水势 < 溶液水势 （3）组织水势 = 溶液水势
溶液比重 减小 增大 不变
分别用毛细吸管吸取各试验组试管中的溶液 约2/3长度。
用食指按紧毛细吸管管口，将毛细吸管从试 验组试管中取出。
用吸水纸吸掉毛细吸管下端悬挂的液滴。 将毛细吸管移入到对应对照组试管中，使下 管口位于溶液的中部。 稍微放开食指使流出少许溶液后迅速按紧管 口，将毛细吸管从试管中取出。 认真观察着色液滴的移动方向， 找出等水势 浓度C。
实验一 植物组织水势的测定(小液流法)
一、实验原理 将植物组织处于外界溶液中，若Ψw（组织）< Ψw（溶液），则组织
吸水，溶液的比重增大；反之组织的水分渗出，溶液的比重变小；若Ψw （组织）= Ψw（溶液），则二者水分处于动态平衡，溶液的比重不变。 通过检查实验前后溶液比重是否变化，可以找到溶液Ψw与组织Ψw相当的 溶液，利用该溶液的浓度C，参照公式Ψw = -RTiC，可以求出组织的水势。 二、器材与试剂
着色液滴的移动方向
↑ ↓
0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8(mol/L)
下周实验
植物细胞渗透势的测定(质壁分离法) P5-6
植物组织水势的测定（小液流法）
实验2 植物组织水势的测定(小液流法)一实验目的1、用小液流法测定植物组织水势；2、理解小液流法测定植物组织水势的原理及注意事项。
二实验原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。
植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，所以外部溶液浓度不变，此溶液的渗透势即等于所测植物的水势．可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的原理来测定试验前后溶液浓度的变化，然后根据公式计算渗透势．三仪器药品试管、毛细滴管、烧杯、移液管、刀片、打孔器、镊子土豆、甲烯蓝、蔗糖溶液(1mol/L)四操作步骤1、配制一系列不同浓度的蔗糖溶液：0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4、0.45、0.5 mol/l 各10ml，注入9支试管，并编号，按编号顺序在试管架上排成一列，作为对照组。
2、另取9支试管，编好号,按顺序放在试管架上，作为试验组。
然后从对照组的各试管中分别取溶液4ml移入相同编号的试验组试管中。
3、用打孔器在马铃薯上打孔，然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的小块若干片。
向试验组的每一试管中加20片马铃薯小块，放置30分钟，在这段时间内摇动数次，到时间后，向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许，并振荡，此时溶液变成蓝色。
4、用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部，缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，观察小液滴移动的方向。
如果小液滴向上移动，说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了；如果有色液滴向下移动，则说明细胞从溶液中吸了水，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动(扩散均匀)，则说明试验溶液的密度等于对照溶液，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
植物生理学实验6（1）
植物组织水势的测定（小液流法）一、原理将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中。
当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。
因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出溶液的渗透势，即代表植物相应的水= - P = -icRT。
势(Ψw)。
Ψw=Ψ∏二、材料、仪器设备及试剂(一)材料：菠菜等植物叶片(二)仪器设备：青霉素小瓶5个、试管5支、毛细管1支、打孔器等。
(三)试剂：1.0mol/L蔗糖溶液、甲烯蓝粉末。
三、实验步骤1、按下表配制一系列浓度的蔗糖溶液溶液配置一览表2、另取5个青霉素小瓶与试管对应编号，并在试管中各取2ml溶液放入能应的青霉素小瓶中。
3、将叶片表面浮土擦干净，用打孔器打50个小圆片，然后在每个小瓶内放入10片，使叶圆片全部浸没于溶液中。
放置30分钟，中间摇动数次。
4、在每个小瓶中加入稍许甲烯蓝粉沫，振荡。
5、用毛细管分别从小瓶中依次吸取少量小瓶中的蓝色溶液少许，插入相对应编号的试管液层中部，小心地挤入一滴，并迅速将吸管拔出，观察蓝色小液流的升降情，并记录。
观察结果记录表四、结果计算将求得的等渗浓度值代入如下公式：Ψw=Ψ=-iCRT ×1.013 ×0.1式中：Ψw=植物组织的水势（单位：MPa）、Ψ∏=溶液的渗透势（单位：MPa）、C = 等渗溶液(mol/kg)、R = 气体常数、T = 绝对温度、i= 等渗系数（蔗糖=1）、1大气压=1.013巴，1巴=0.1MPa、注：实验中一点点甲烯蓝粉末即可，加入太多会影响溶液浓度。
根系活力的测定--甲烯蓝法一、实验目的植物根系是活跃的吸收器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部分的生长、营养状况及产量水平。
本实验练习测定根系活力的方法，为植物营养研究提供依据。
二、实验原理根据沙比宁等人理论，植物对溶质的最初吸收具有吸附的特性，并假定这时在根系表面均匀地覆盖了一层被吸附物质的单分子层，而后在根系表面产生吸附饱和，继之根系的活跃部分将原来吸附着的物质解吸附到细胞中去，继续产生吸附作用。
植物组织水势的测定(小液流法)
2.用打孔器在灰莉叶的不同部位打120片，混匀，每个青霉素瓶各放入
20片，（打孔要迅速，避开叶脉，选边缘整齐无破损的叶片）
3.从配制好的试管中各取2ml（量准确？）到相应的青霉素瓶中（用一
只移液管由低
高，不要润洗）。放置20—30min，期间摇动数
次，以加速水分平衡。
植物组织水势的测定
4. 染色：用接种针沾入微量甲烯蓝粉末加入青霉素瓶 中，摇匀，溶液变蓝。（干燥针头先用蒸馏水湿润 ，加入的甲烯蓝量一定少，使各瓶中颜色基本一致 ）
外液浓度保持不变； ψ植物＝ψS
植物组织水势的测定
2、同一种物质浓度不同时其比重不一样， 浓度大的比重大，把高浓度的溶液一小液滴放 到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。
3、根据外液浓度的变化情况即可确定与 植物组织相同水势的溶液浓度。根据以下公式 计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
【实验原理】
《植物生理实验》 安排及综合性实验方案
第一轮需要完成的实验内容： 实验 小液流法测定植物组织 水势 实验 缺素培养 实验 膜透性鉴定
第二轮需要完成的实验内容：综合性实验
(一) 目的要求： 利用《植物生理学》课堂理论—植物的矿质营养、植物的 光合作用、植物的逆境生理等相关知识综合分析“玉米或 烟草等植株完全液培养和缺素培养苗的生理差异”。 (二) 需要完成的实验内容： 实验四 植物水溶液和缺素培养症状观察,TTC法测根系活
植物组织水势的测定实验原理植物材料浸入不同浓度溶液中植物材料水势低于溶液水势植物材料水势等于溶液水势植物材料水势高于溶液水势材料吸水外界溶液浓度变大比重变大外界溶液浓度不变比重不变材料失水外界溶液浓度变小比重变小植物组织水势的测定浸过材料的溶液同一浓度而未浸过材料的溶液中比重小的液流上浮比重不变的液流静止比重大的液流下沉此溶液的水势即等于所测材料的水势溶液的渗透势以mpa为单位
小液流法测定植物组织水势原理
小液流法测定植物组织水势原理植物水势是指植物体内水分与外界介质之间的水分势差。
水势差是植物体内水分流动的动力来源，对于植物的生长和发育至关重要。
因此，准确测定植物组织的水势是研究植物生理学和生态学的重要基础。
小液流法是一种常用于测定植物组织水势的方法。
该方法基于液体在毛细管中的上升高度与水势之间的关系，通过测定植物组织中的毛细管上升高度来间接推算植物组织的水势。
以下将详细介绍小液流法测定植物组织水势的原理。
小液流法的原理是基于植物组织中水分的毛细上升现象。
当将毛细管插入植物组织中时，由于毛细现象的作用，液体会被毛细管吸上一定的高度。
这个高度与植物组织内水势的大小成反比。
根据毛细现象的原理，液体上升的高度与液体表面张力、毛细管半径以及液体密度有关。
在小液流法中，首先需要选取合适的毛细管。
毛细管的直径越小，液体上升的高度越大，测得的水势值越接近真实值。
然后，将毛细管插入植物组织中，并用胶管连接到一个装有水的储液器上，以保持毛细管内液体的稳定。
接下来，观察毛细管中液体的上升高度。
当液面上升到一定高度时，液体受到重力的影响，上升速度减慢并最终达到平衡状态。
此时，可以测量液面的高度，并通过相应的公式计算出植物组织的水势。
小液流法测定植物组织水势的关键是准确测量液体的上升高度。
为了提高测量的准确性，可以采取以下操作技巧：1. 确保毛细管插入植物组织的深度适当，避免插入过深或过浅。
插入过深会导致液体上升受到阻碍，影响测量结果；插入过浅则会导致液体上升不稳定，难以准确测量。
2. 确保毛细管内无气泡。
气泡会影响液体的上升高度，导致测量结果不准确。
在操作前，可以轻轻敲击毛细管以排除气泡。
3. 控制好实验环境的温度和湿度。
温度和湿度的变化会影响液体的表面张力和蒸发速率，从而影响液体的上升高度。
因此，在进行实验时应尽量保持恒温恒湿的条件。
小液流法是一种简单、经济且有效的测定植物组织水势的方法。
它不仅可以应用于研究植物的生理生态过程，还可以用于评估植物耐旱性和抗逆性。
小液流法测定植物组织水势
小液流法测定植物组织水势何宗财（化学生物学09-1 20096747）【实验意义】作物水分状况的表现指标中，生理指标的变化先于形态指标的出现。
形态指标的出现时之后的，当植物出现缺水的形态指标时，植物已经收到伤害。
小液流法测定植物组织水势可以测定一个科的一种植物，通过测定结果可以预知整个科属植物的水势，从而有力农肥的合理使用。
【实验原理】测定植物组织水势的方法较多，小液流法是其中一种。
本法是将植物组织置于不同浓度（也即不同水势）的蔗糖溶液中，寻找到一种浓度的蔗糖溶液，其水势与植物组织的水势相等，然后计算该浓度蔗糖溶液的水势，从而知道植物组织的水势。
表1 小液流法原理表Ψ测定蔗糖溶液比重的变化，可采用如下简便的方法：即利用毛细管吸取已浸过植物组织的蔗糖溶液（为便于观察，可用甲烯蓝先染上颜色），放一小滴到与其对应的相同浓度的蔗糖溶液中，然后观察滴出的小液滴（蓝色）的移动方向，即可知道浸过植物组织的蔗糖溶液比重的变化（“小液流法”即由此而来）。
【实验材料】：女贞叶片【仪器设备】：试管架、6支带盖小药瓶（容积不大于5mL）、10mL带塞试管6 支、毛细管1支、叶模、镊子、移液管、吸球等、温度计.【试剂药品】0.5mol/L 蔗糖溶液，亚甲烯蓝粉溶液【实验步骤】1．标准梯度浓度蔗糖溶液的配置将0.5mol/L蔗糖溶液的母液分别配成0.05、0.1、0.2、0.3、0 4、0.5mol/L的蔗糖溶液各10ml.从上述的大试管中各取2ml溶液，分别放到另6支编号带盖小药瓶中，盖上盖子。
2．材料处理取3片叶子重叠，用叶模分别在叶脉两侧各取5*1cm，然后把取出的五厘米长得叶分成10等分，最后得到60等分混匀，依次分别在小试管的蔗糖溶液中各放入叶圆片10片叶圆片要全部浸在溶液中，塞上塞子，每隔5分钟摇动一次。
40分钟后，用镊子取出在小药瓶中德叶片，分别向6支小药瓶中滴入2滴亚甲烯蓝粉溶液。
3、测定取干燥毛细管6支，分别从编号的带盖小药瓶中吸取蓝色溶液，当毛细管不在上升以后，用吸水纸将毛细管外壁的蓝色溶液擦干净，然后插入与编号的小药瓶相对应的10m 1 试管中，使毛细管内的液面高于试管内的液面约 1 -2cm ，然后缓慢放出蓝色溶液一小滴，保持毛细管静止不动（可将毛细管壁靠在试管口上），观察蓝色小液滴的移动方向, 然后缓慢取出毛细管插回5mL 试管中。
植物生理学实验指导
植物生理学实验指导实验一植物组织水势的测定（小液流法）一、实验目的：理解水势、渗透势的概念，掌握植物水势的测定方法。
二、实验原理：当植物组织浸在已知浓度的外液中时，如果组织水势高于外液水势，则组织失水，外液浓度降低，比重变小；如果组织水势低于外液水势，则组织吸水，外液浓度升高，比重变大；如果组织水势和外液水势相等，则外液的浓度和比重都不变，此溶液的渗透势即等于组织的水势。
三、仪器、试剂、材料：青霉素小瓶（带盖）、弯头注射器、打孔器、镊子、培养皿、滴管、甲烯蓝粉末。
0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30mol/L蔗糖溶液。
植物叶片。
四、实验步骤：1、用滴管取不同浓度（0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30mol/L）蔗糖溶液各4ml，分别注入6个青霉素小瓶中（甲组）；再另取上面6种溶液各4ml，注入另6个小瓶中（乙组），对应编号标记。
2、用打孔器从植物叶片上取下相同大小的圆叶片，分别放入甲组小瓶中（每瓶10片），加盖，轻轻摇动以使圆叶片浸泡于溶液中。
3、30分钟后，向甲组小瓶加微量甲烯蓝粉末，轻轻摇动使溶液均匀。
4、用注射器从甲组小瓶中吸取蓝色溶液，插入相同编号的乙组小瓶溶液中部，轻轻挤出一小滴，慢慢抽出注射器，观察蓝色液滴升降情况并填入下表。
五、结果计算：植物组织水势按下式计算：Ψw = - iCRT式中：Ψw —水势，i —解离系数（蔗糖为1 ）C —等渗溶液浓度（mol/L），R —气体常数（0.0083L .MPa /moL.K）T —绝对温度( K=273 + t ℃)附：蔗糖分子量：342.29实验二叶绿体色素的提取、分离和性质的观察一、实验目的：掌握叶绿体色素的提取和分离方法，加深对其性质的理解。
二、实验原理：叶绿体色素包括叶绿素a、叶绿素b、胡萝卜素和叶黄素，这四种色素均不溶于水而溶于有机溶剂，故常用丙酮或乙醇等提取。
叶绿体色素可采用纸层析法进行分离，当溶剂不断地从层析滤纸上流过时，由于混合物各成分在两相（即流动相和固定相）间具有不同的分配系数，它们的移动速度不同，因而使样品混合物分离。
实验二植物组织水势的测定(小液流法)
② 如果小液滴在各对照溶液中全部下降，说明蔗糖溶液配制得浓度过低，应重新 配制。
3、如果某一支试管内多加入或少加入一个圆片，对结果有无影响?为什么？
对结果无影响。因为本实验想要获得的是与溶液渗透势与植物组织水势相等时
的溶液浓度，进而计算出植物组织水势。如果植物组织的水势低于外液的水势，组
织吸水、重量增大而使外液浓度变大，液滴下降；反之，则组织失水、重量降低而
五、注意事项
1、试管、移液管和毛细管等要洗净烘干，移液管与毛细移液管应从低浓度到高浓 度依次吸取溶液。
2、蔗糖溶液用前一定要摇匀，时间放久了的蔗糖溶液会分层，影响结果。
3、取材以及打取圆片的过程操作要迅速，以免植物材料失水
4、甲烯蓝不宜加得过多（溶液呈稍深的蓝色即可），否则将使实验组各管中溶液
的比重均加大。 5、释放蓝色液滴时要缓慢，防止过急挤压冲力影响液滴移动。
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错误结果
溶液浓度 液滴移动 方向 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8
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四、植物组织水势的计算
ψ 植物 =ψ S=﹣iCRT
式中 —ψ S溶液的渗透势，以MPa为单位；
R＝0.008314MPa·L·mol﹣1·K﹣1 T—绝对温度，即273+t℃； C—溶液的摩尔浓度，以mol·kg－1 为单位 i－溶液的等渗系数，蔗糖=1。
据公式计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
二、实验步骤
1、配置蔗糖标准液
M 母液（ml） 0.1 1 0.2 2 0.3 3 0.4 4 0.5 5 0.6 6 0.7 7 0.8 8
小液流法测定植物组织水势
各10ml，共8管。注入试管中，各管都加上塞子并编号，按编号顺序排成一列，放
在试管架上，作为对照组。
2.
另用8支试管，与前一组试管对应编号，作为试验组，然后由对照组各试管中分别
取溶液2ml，移入相同编号组的各试管中，再将各试管加上塞子。
3.
用解剖刀土豆剪成0.2 - 0.5cm大的小块，混合均匀后，向试验组的每个试管中投入
10-15块片，加塞并经常摇动，30min后，向试验组的每支试管中加一滴甲烯兰溶液，
摇动试管，使溶液均匀着色。
4.
用毛细滴管（或小量程移液管）吸取浸有材料的兰色溶液，然后插入对照组相同编
号的试管，在液体的中部轻轻放出一滴兰色试验溶液，仔细观察液滴移动的方向，
并记录之。
溶液浓度/M 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.4 0.5
I 小液流法测定植物组织水势
【实验原理】
水总是从水势高处向水势低处流。植物组织间、细胞 间、植物体及环境间的水分移动都是由水势决定的。 如果将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中， 当我们找到某一浓度溶液与植物组织之间水分保持动 态平衡，表现出无水分的单向移动，则可以认为植物 组织的水势等于此溶液的渗透势。
【思考与作业】
植物组织切块的大小和数量对组织水 势的测定结果是否有影响？
加入甲烯兰溶液会影响实验结果吗？ 为什么？
该实验具体操作中应该注意的事项主 要有哪些？
2. 测量
（1）把样品室旋钮调至OPEN/LOAD档并打开样品室。 （2）放入样品。检查杯子的边缘，确定没有样品残留。 （3）小心关闭样品室，尤其是液体样品。 （4）按右下角按钮，观察样品与样品室间温度差异。 （5）把样品室旋钮调至READ 档，密封样品室。仪器出
植物组织水势的测定 小液流法
植物组织水势的测定小液流法植物组织的水势测定在植物生理学研究中起着重要的作用。
小液流法是一种常用的测定植物组织水势的方法。
本文将介绍小液流法的原理、操作步骤和注意事项，帮助读者了解和掌握这一方法。
小液流法是通过测量植物组织的液体流动速度，来推断组织水势的高低。
其原理基于渗透压的作用。
渗透压是物质在溶液中扩散过程中产生的压力差，植物细胞内高浓度的溶液会吸引水分进入细胞，形成渗透压差。
根据渗透压差的大小，可以推断出细胞内部的水势。
液体在细胞内的扩散速度与细胞内水势成反比，因此，测量液体扩散速度可以间接得到组织水势的大小。
进行小液流法测定前，首先需要准备好实验所需的材料和仪器。
主要包括：测量液体（一般为含有示踪剂的染液）、试管、玻璃棒、显微镜和计时器等。
接下来，按照以下步骤进行实验：1. 取一根新鲜的植物茎段，并将其放入试管中。
2. 在试管内注入适量的测量液体，确保茎段完全浸泡其中。
3. 用玻璃棒轻轻搅拌试管内的液体，使其均匀分布。
4. 使用显微镜观察试管内液体的流动情况。
5. 同时启动计时器，并记录液体从茎段内向外扩散的时间。
6. 根据液体扩散的速度和时间，计算出液体的扩散速率。
7. 根据扩散速率，推断出植物组织的水势大小。
在进行小液流法测定时，需要注意以下几点：1. 选择合适的测量液体和示踪剂，以保证实验结果的准确性和可重复性。
2. 保证试管内液体的温度和浓度稳定，避免影响液体扩散速率的因素。
3. 在观察和记录液体扩散速度时，要尽量减小误差，可以多次进行实验并取平均值。
4. 当观察的茎段比较短时，可以考虑将茎段剪成一定长度，以增加实验的精确性。
5. 在实验过程中，要保持实验环境的稳定，避免外界因素对实验结果的干扰。
小液流法是测定植物组织水势的一种有效方法，其操作相对简单，结果可靠。
通过掌握这一方法，可以更好地理解植物的生理过程，为进一步研究植物的水分平衡和调节机制提供有力的支持。
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植物组织水势的测定( 小液流法)
一、目的学会用小液流法来测定植物组织水势。
二、原理当植物组织浸入外界溶液中时，若植物的水势小于外液的水势，则细胞吸水, 使外液浓度变大；反之, 植物细胞失水，外液浓度变小，若细胞和外液的浓度相等，则外液浓度不发生变化。
溶液浓度不同其比重也不同，不同浓度的两溶液相遇，稀溶液比重小而会上升，浓溶液比重大而会下降。
根据此理, 把浸过植物组织的各浓度液滴滴回原相应浓度的各溶液中，液滴会发生上升、下降或基本不动的现象。
如果液滴不动，说明外液在浸过组织后浓度未变，那么就可根据该溶液的浓度计算出其水势。
此水势值也就是待测植物组织水势。
小液流法就根据这个原理，把植物组织浸人一系列不同浓度的煎糖液中, 由于比重发生了变化，通过观察滴出小液滴在原相应浓度中的反应而找出等渗浓度，从而就可算出溶液的水势。
三、材料指管木架、指形管( 带软木塞)、弯头毛细吸管( 带橡皮头)、小镊子、移液管、温度计、打孔器、不同浓度的蔗糖液(0.2～
0.6mol/L)、甲烯蓝( 亚甲基蓝)、叶片。
四、方法与步骤
1、配制一系列不同浓度的蔗糖溶液0.05、0.1、0.
2、0.
3、0.
4、0.
5、0.6 mol/l 各10ml 注入7支试管编号按顺序排列作为对照组。
2、另取7支试管 编号按顺序排列作为试验组。
然后从对照组的各试管中分别取溶液5ml移入相同编号的试验组试管中。
3、用打孔器在马铃薯上打孔 然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的
小块若干片。
向试验组的每一试管中加20片马铃薯小块，摇动数次放置30分钟，后向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许并振荡此时溶液变成蓝色。
4、用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取蓝色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部。
缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液 观察小液滴移动的方向。
如果小液滴向上移动说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了。
如果有色液滴向下移动则说明细胞从溶液中吸了，水溶液变浓比重变大。
如果液滴不动(扩散均匀) 则说明试验溶液的密度等于对照溶液，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
5、记录每一试管中蓝色小液滴移动的方向 并记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度
6、按-ψw=RTiC 计算水势: 其中ψw为细胞水势
R(气体常数)= 8300L*Pa/mol*K。
T 为绝对温度 单位K 即273℃+t t 为实验温度 记为25℃ 。
i 为解离系数 蔗糖为1。
C 为等渗溶液的浓度 单位为mol/L。
五注意事项
1、准确配制蔗糖梯度溶液 正确使用移液管。
2、土豆块大小厚薄均一 每管个数相同。
3、实验中多次摇动试管 使反应充分进行。
4、甲烯蓝放少许 否则会影响溶液浓度。