IGH基因断裂检测试剂盒(荧光原位杂交法)

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探针
观测值
目 预期值
点估计百分比
IGH 红色 240
240
100
IGH 绿色 240
240
100
探针
IGH 红色 IGH 绿色
表 2 特异性分析 具有预期荧光信号中期分裂相
非 特 异 性 杂 特异性杂中期细 预 期
交中期细胞


0
120
120
0
120
120
灵敏度 点估计百分 比 100 100
【注意事项】 1、供体外检测使用。 2、本试剂盒实验操作过程中,需戴乳胶手套操作,避免试剂接触肌肤。如不
片)。
对于灵敏度评估,IGH 橙色和 IGH 绿色荧光探针的信号,计数每个间期分
裂相的染色体(正常为 2 个信号),每张片子计数 20 个中期细胞,每种探针的
预期信号值为 240(参见表 1)。对于特异性评估,具有预期荧光信号的中期分
裂相数目总共 120,(参见表 2)。
表 1 灵敏度分析
中期分裂相染色体荧光信号数 灵敏度
滤光片:建议客户处客使用探针前向滤片组供应商了解所使用的滤片组的 详细情况,以便选择与标记荧光染料相适应的滤片组。
绿色荧光:激发波长为 496nm,发散波长为 520nm 橘红色荧光:激发波长为 551nm,发散波长为 572nm 【样本要求】 骨髓(2-3ml)或外周血(3-5ml),肝素钠抗凝,标本量依病人具体情况而 定,如再障的病人白细胞较少应加大采集。 标本保存及运输: 收集后 2 小时内处理,标本运送及保存建议 2-8℃,不超过 72h。 【检验方法】 一、样本收集: 1、取外周血或骨髓2~3ml(肝素钠抗凝)2000rpm离心5分钟,弃上清; 2、取1ml细胞加入10ml的0.075mol/L KCl 吹打混匀,静置2分钟; 3、恒温水浴锅37±1℃低渗20分钟; 4、加入固定液1ml,吹打混匀,室温欲固定10分钟; 5、吹打混匀,2000rpm离心5分钟; 6、弃上清,沉淀加入10ml固定液,吹打混匀,-20℃沉淀30分钟; 7、2000rpm离心5分钟,弃上清; 8、可重复以上洗涤步骤,直至细胞沉淀洗白洗干净为止(重复洗涤则无需静 置30分钟)。 二、 制片: 1、取一张干净的载玻片; 2、重悬细胞后取3μl,悬液滴加到载玻片上,室温下晾干; 3、用10×物镜在相差显微镜下观察细胞密度,要求细胞无重叠,且单视野细胞 数量在100~200个为宜; 3.1如果细胞密度及数目合适,继续步骤3 3.2如果细胞有重叠,则加入适当新鲜固定液稀释细胞悬浮 3.3如果细胞密度低,则2000rpm离心5分钟,小心吸去适量上清液,混匀后另 取3μl悬液制片,晾片,观察 4、在相差显微镜下观察,如果细胞碎片太多,则需要预处理并且选择合适的 杂交区域。 注意:每个病例至少要多制一张片子,细胞滴片刻放置于有无水乙醇的密闭容
核形态:细胞核的边界通常是清晰的,并且细胞核呈完整的形态; 背景状态:背景不应该含有影响计数的颗粒物质存在; 荧光信号强度:信号应该是亮的、明显的和易计算的。信号应该存在于亮 光、椭圆形的。避免过分分散的信号。 10、目标区域的荧光信号观察 使用 40×或 100×的物镜和适合的滤光片观察 IGH 信号。调节聚焦观察目标 信号和噪音(非目标杂交信号)的大小和形状。确保背景不具有强烈的荧光干 扰信号。 扫描整张片子,观察细胞的整体荧光信号分布状态,选择较具代表性的区 域进行计数。 12、在目标区域内选择细胞并计数 选择细胞核分布较好的区域(如能区分单个细胞核的区域),并保证所选的 区域能够代表观察到的信号分布特征;开始分析细胞并记录每个细胞的荧光信 号特征;重复上述操作,直到技计数满 100 个细胞为止; 13、信号计数规则 13.1 调节聚焦数深度,找到细胞核中的信号所在部位。对所选择的具有明显界 限的细胞进行分析。 13.2 以下情况细胞为阴性(IGH 基因非重排): 细胞核存在两个融合信号,即红绿信号连在一起。 13.3 以下情况细胞为阳性(IGH 基因重排):
体延伸区域,在所有 8 个中期分裂相,而且不会与其他位置杂交。
2 灵敏度和特异性
分析灵敏度定义为具有预期正常信号模式的染色体目标百分比。分析特异
性定义为结合到正确位置的信号百分比。
分析 IGH 橙色和 IGH 绿色荧光探针的特异性和分析灵敏度通过间期染色
体进行评价,从 5 个正常捐献者的外周血细胞培养物,共 6 分标本(6 个载玻
请联系显微镜制造商。
玻 片
标本制作前玻片 清洗不够干净
将玻片浸入无水乙醇中,滴片前用无绒纸巾擦干。

来自百度文库
确保洗脱液按说明书配制;

杂交后洗脱不充 确保按说明书操作;


确保洗脱液温度正确;

移去盖玻片,重复洗脱步骤。
问 可能的原因

推荐的解决方案
洗脱液使用时间 太长或不正确储 存
确保洗脱液2-8℃储存,配制7天后或者经常使用的洗脱液应丢弃。
在自然状态下可以观察到 IGH 基因区域会成为融合的红色和绿色信号。 反之,若 14q32 IGH 基因区域发生断裂:红色和绿色信号分开。
本试剂盒包含两组 IGH 探针 (红色/绿色)及 DAPI 复染液。
【储存条件及有效期】 IGH 基因扩增检测试剂盒于-20℃±3℃密封避光储存; 自生产之日起有效期为一年。
玻片,用指甲油涂抹盖玻片边缘,暗处-20℃孵育10-20 min。 7、镜检:于暗处保存切片。长期保存应放于-20℃,荧光显微镜下计数。 【结果阳性判断及参考区间】 结果分析注意事项: 1、样本需随机计数细胞。 2、计数细胞必须是各通道信号均清晰可辨的细胞。 3、杂交不均匀的区域不要分析。 4、细胞核轮廓不清或有重叠的不要分析。 5、背景深影响信号判断的区域不要分析。 6、计数结果需有两个参与人员独立完成,结果一致方可认定。 7、如果超过 25%的细胞核内信号太弱,则该区域不要进行分析。 8、如果超过 10%的细胞质内有信号,则该区域不要进行分析。 9、首先判定玻片杂交的充分性
备注:当样本难处理时,如杂质过多、信号较弱等,可选择方法二进行玻 片预处理。 四、样品与探针探针变性、杂交(注意避光) 1、将探针取出后混匀离心,加10ul探针加到杂交区域,盖上盖玻片同时避免产 生气泡。 2、用橡皮胶沿盖玻片边缘封片,注意封片完全以免杂交液挥发。 3、将玻片置于杂交仪上按照设定程序进行变性杂交。 五、杂交后洗涤(注意避光) 1、洗涤前30分钟,将配制好的洗液I置于水浴锅中,预热到72±1℃。 2、取出载玻片,去除橡皮胶,将载玻片置于室温的洗涤液II中孵育5min移去盖 玻片。 3、玻片放入72±1℃洗涤液I中处理2min; 4、取出玻片置于室温的洗涤液II中处理1min; 5、取出玻片后依次于在70%、85%的乙醇溶液中依次孵育切片2min。 6、DAPI染色、封片:滴加10μl DAPI复染液到切片组织上,避免气泡,盖上盖
锅中,使用前10分钟将0.1g胃蛋白酶用上述配制的胃蛋白酶溶液溶解后全部 加入50ml胃蛋白溶液中,混匀,使用一天后更换; 2、玻片放入37±1℃的1×PBS溶液中孵育5分钟; 3、取出玻片,再将其放入37±1℃胃蛋白酶溶液中消化1~5分钟(可通过预实 验确定酶效力); 4、取出玻片,将其放入1×PBS室温洗涤2~3分钟 5、取出玻片,再将其放入1%多聚甲醛/PBS室温固定10分钟。 6、取出玻片,将其放入1×PBS室温洗涤2~3分钟 7、取出玻片,再将其放入70%、90%、100%梯度乙醇中各2分钟,取出玻片, 室温晾干
件不正确
玻片浸入洗脱液前移去盖玻片。
探针或标本玻片 储存不正确
确保探针-20℃避光保存; 将未杂交玻片干燥后置于-20℃长期保存或者室温短期保存; 将杂交后玻片置于-20℃避光保存。
观察时所选用的 滤片组不合适
使用正确滤片组观察探针荧光情况。 详情请咨询河南赛诺特生物技术有限公司技术支持部门。
显微镜构造及物 镜不适宜观察 FISH标本,或者 滤片组损伤


在标本制备阶段 降低烤片机温度,延长室温下玻片干燥时间,

玻片干燥过快
室温下老化至少24小时;勿在高温下烘烤玻片。


标本变性前未充

分干燥
玻片变性前乙醇梯度脱水。

移去盖玻片, 室温下将玻片置于洗脱液0.1NP/40/2×SSC中

复染过弱
浸泡5分钟。 将玻片依次置于70%、85%和100%的乙醇
至少有一组红色和绿色荧光信号分离。 【检测方法的局限性】
本试剂盒采用荧光原位杂交技术用于血液肿瘤中IGH基因重排检测,不 能用于其他基因突变方式的检测。
1/2
【产品性能指标】
1 细胞中期染色体探针定位
IGH 探针杂交的位置经过培养的淋巴细胞滴片与 DAPI 复染技术。
IGH 橙色和 IGH 绿色荧光探针,IGH 双色分离探针显示为与 14q32 染色
淋巴瘤,发生于50% B细胞NHL中和多种其他淋巴瘤类型中,易位类型复杂。 IGH与特定基因的相互易位有助于临床进行鉴别诊断及预后判断。如MYC/IGH 融合基因可用于辅助诊断伯基特淋巴瘤(BL)(75%发生率),且可用于指导高 分级B细胞淋巴瘤的治疗;BCL1/IGH融合基因发生于75%套细胞淋巴瘤中,可 用于辅助诊断此种肿瘤;BCL2/IGH融合基因发生于85%滤泡性淋巴瘤(FL) 及1/3的弥漫性淋巴瘤(DL)。
未添加探针
探针充分解冻,短暂离心,确保移液器吸取到探针试剂。
探针添加数量不 足
确保移液器吸取准确,探针加入量到达10ul, 请不要稀释探针; 使用前确保探针解冻充分并达到室温。
玻片干燥不充分 探针滴加至玻片前,确保玻片上的乙醇溶液已经完全挥发。
探针滴加后应立即将盖玻片覆盖目标区域;
探针干燥太快
进行洗脱时,一次只能移除一张玻片上的盖玻片;
【适用仪器】 本试剂盒探针杂交需在杂交仪上进行杂交,如 ThermoBrite。 本试剂盒探针需在荧光显微镜下观察并分析结果。所需荧光显微镜的配置
包括:物镜:在 FISH 分析上,使用 100×消色差浸油类型物镜可取得满意效 果。
镜油:在浸油式物镜上使用的镜油应为低水平自发荧光配方,并专门在 荧光显微镜上使用。
本试剂盒仅供科研使用。 【检验原理】
荧光原位杂交法(Fluorescent In Situ Hybridization,FISH)能 够使细胞中特定的核苷酸片段通过荧光而清楚的呈现,FISH 试验过 程中包含了双链 DNA 的解链,荧光标记的 DNA 探针能够与目标序 列结合 [2-3]。杂交完成之后,多余的探针被清洗掉,同时,细胞核被 复染剂 4',6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)染色会发出蓝色的荧光。

并且在移除下一张之前立即将玻片浸入洗脱液中。


杂交时盖玻片下 放盖玻片时要覆盖探针表面,轻轻挤压以便挤出气泡。

有气泡形成

确保遵守杂交所规定的时间和温度;

杂交条件不合适 橡皮胶封片时勿留缝隙;

根据情况,调整杂交时间和湿度。

确保按照产品说明书要求配制洗脱液; 洗脱液或洗脱条
确保洗脱液的温度达到洗脱步骤所规定温度;
器中,在-20℃±5可以保存12个月。剩余的细胞悬液可以在2~8℃保存一个月, 以后必要时,可重新制片。 三、 玻片预处理(以下两种处理方法均可) 方法一:快速处理 1、将滴好的玻片放置于室温的2×SSC溶液中浸泡2分钟; 2、然后依次在室温70%、90%、100%的乙醇中浸泡2分钟脱水; 3、最后取出玻片,室温晾干。 方法二:胃蛋白酶消化处理法 1、胃蛋白酶溶液配置:500μl 1M HCl,加入到50ml纯水中,置于37±1℃水浴
慎接触,立即用大量水冲洗。 3、实验过程中的废弃样本及实验废弃物,需作为医疗废物统一回收处理 4、为得到理想的结果,需确保试剂按照说明书正确配制,正确储存。 5、实验过程中的常见问题及处理方法(见下表):
问 可能的原因

推荐的解决方案
标本及探针变性 不充分
确保玻片进行变性时温度在75±2℃; 将玻片变性时间延长2-4分钟。
IGH 基因断裂检测试剂盒(荧光原位杂交法) 说明书
【产品名称】 通用名称:IGH 基因断裂检测试剂盒(荧光原位杂交法) 英文名称:IGH Break Apart FISH Probe Kit
【包装规格】
10 人份/盒、20 人份/盒
【预期用途】 本产品用于定性检测血液肿瘤患者中IGH基因断裂情况。 免疫球蛋白重链(IGH)基因(14q32)发生断裂及易位常见于ALL/MM/
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