柴胡皂苷合成途径中三个关键酶基因片段的克隆与序列分析

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堕噬童隆
利用Trizol试剂提取的北柴胡根尖的总RNA为
模板,经RT—PCR后,凝胶电泳显示得到470bp、 530bp及460bp左右的PCR产物(图2)。PCR片段纯 化后,连接到PMDl9一T载体上,蓝白斑筛选获得阳 性转化子,进一步提取质粒,用原引物进行PCR扩 增,再用位于克隆位点两侧的限制酶切出插入片段, 与PCR扩增产物作电泳比较,结果初步证明这些 PCR扩增片段已被成功克隆。将此阳性克隆测序,结
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[World Science and Technology/Modernization of Traditional Chinese胁妣妇and Materia Medica] 58
2008第十卷第五期
V01.10 No.5
果显示插入的HMGR、IPPI、FPS基因cDNA片段大
小分别为470bp、532bp、466bp。 3.HMGR、IPPI、FPS基因cDNA片断的序列分析
hydroxy一3一methylglutaryl coenzyme A reductase.HM— GR)是MVA途径的一个关键酶,它在NADPH存在
diphosphate,IPP)虽是萜类化合物的共同前体,但在 生物合成过程中IPP自身并不能通过自身缩合来实 现碳链延伸,而是首先通过异构反应形成甲基丙稀
研究方向:药用植物学,Tel:010-62337855,E-mail:yjhubio@163.com。
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[‰枷Sc/enee and Technology/Modernization of Traditional Chinese Medicine and Materia Medica】56
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世界科学技术一中医药现代化★基础研究
0.51xL AMV逆转录酶(5U/trL),用DEPC水补齐至 10L体系。42℃温育40min后于一20℃存放。
(2)PCR扩增。 PCR扩增总的反应体系为251山L,其中10xEx Tag buffer(含M92+)2.51xL,2.5mmol/L dNTPs 2恤L,10 mol/L上、下游引物各llxL,模板cDNA第一链2斗L, 5U/“L Ex Taq DNA聚合酶0.2斗L,重蒸超纯水
16.3斗L。
三、结果与分析
1.总RM△握壑 北柴胡总RNA的琼脂糖凝胶电泳检测结果见 图1。可以清晰地看出3条rRNA条带(28S rRNA、 18S rRNA和5S rRNA),其中28S rRNA条带的亮度 大约为18S rRNA的2倍,说明了总RNA良好的完
泳道1:HMGR;泳道2:IPPI;泳道3:FPS;M:DNA Marker 图2北柴胡来自百度文库HMGR、IPPI、FPS基因的RT—PCR产物
整性。进一步通过紫外分光光度法测得吸光度(A) 值,A260/A280比值介于1.8~2.0,表明总RNA纯度 较高,酚类、多糖、蛋白质和无机盐等杂质已基本去 除干净。此提取方法提取时间仅为1.5d左右,大大提 高了提取效率,降低了mRNA降解的风险。
2.皇垦錾翅丛丛Q照,!£堕,£堕基因璺旦盟△塑!兰筮
北柴胡(Bupleurum ehinense DC.)为伞形科柴胡 属植物,是药用柴胡的主要来源之一,其中所含的 主要有效成分柴胡皂苷类具有抗炎、保肝利胆、抗 菌、抗病毒、抗肿瘤、降低血压等作用”引。柴胡皂苷 是一种齐墩果烷类型的i萜化合物,虽然其生物合 成途径到目前为止并不清楚,但Kim等141通过三岛 柴胡毛状根研究HMGR、IPPI和FPS基因表达水平 与柴胡皂苷含量的关系时发现在用3倍的毛状根 培养基培养时,HMGR、IPPI、FPS基因的表达水平与 柴胡皂苷的含量都迅速提高。除此之外,关于柴胡 皂苷合成途径的研究还很不深入,这些关键酶基因 在柴胡植株内的表达及功能尚不清楚。到目前为 止,还未见关于从北柴胡中克隆HMGR、IPPI和FPS 基因的报道。本文采用RT—PCR方法首次从北柴胡 植株中克隆了HMGR、IPPI和FPS基因核心cDNA 片段,并进行了初步的序列分析,对从分子水平上 探讨三萜皂苷生物合成机制具有重要意义,为进一 步研究关键酶基因的表达特征和柴胡皂苷的代谢 调控打下了基础。
司,AMV reverse transcriptase购自日本博日公司,内 切酶为美国NEB产品。
二、方法
1.北柴胡根总RNA提取 由于北柴胡根中含的多糖及次生物质较多,因 此北柴胡总RNA的提取采用本实验室改进的trizol 方法。(1)取lOOmg北柴胡的幼嫩根,液氮速冻后研 磨成粉末,移入1.5mL预先冷却的离心管。(2)力11人 lmL trizol试剂,轻轻摇匀,室温放置5min。(3)再次 混匀后于12000xg、4。C离心10min。(4)取上清液,加 入lOOmL 5mol/L Nacl,轻轻摇匀,再加300mL的酚一 氯仿一异戊醇(25:24:1),混匀后于12000xg、40C离心 lOmin。(5)将上层水相转移至另一离心管中,加入 300mL的酚一氯仿一异戊醇(25:24:1),重复抽提一次。 (6)取上清液,加两倍体积的无水乙醇,混匀,室温放 置lOmin。(7)12000xg、4。C离心10min。(7)弃去上清 液,沉淀用70%乙醇洗两次,室温下干燥10min。(8) 沉淀溶于201xL DEPC水中,取31xL用于1%的琼脂 糖凝胶电泳检测,其余一80℃冰箱中保存备用。 2.引物设计与合成 引物的设计依据其它植物的HMGR、IPPI、FPS 基因的保守序列,并参照Kim等【41发表的引物序列设 计。HMGR基因上游引物H1为:5’一GGTGATG— CAATGGGAATGAAcATG一3’.下游弓I物H2为:5 7一 G7ITI’CCACCACCAACAG7I'ACCAACCT一3’;IPPI基因上 游引物11为:5 7一CAAATATAATFGTCATCTGATGGA A一3’,下游引物12为:5’一CCACCACrllWAWCAA— GAAATYGTC一3’;FPS基因上游引物Fl为:5 7一 CTYGGTYGGTGYATrGAATGGCT一3’,下游引物·F2 为:5 7一CATCCTGAACTrGAAAGTAGRTTCCCA一3 7。 引物的合成由北京博迈德科技发展有限公司完成。 3.RT—PCR反应体系及扩增条件 (1)cDNA第一链的合成。 将2斗L RNA和基因(HMGR/IPPI/FPS)下游引物 1斗L(10斗mol,L)于70。C水浴10 min打开其二级结构, 立即插入冰中10 min,依次加入4/xL dNTP(2.5retool/ L),1¨L10 xAMV Buffer,0.25斗L RNasin(40U/斗L),
本文经编委遴选,英文版将通过ScienceDirect全球发行。
摘要:本文以北柴胡幼嫩根的总RNA为模板,通过RT—PCR方法,克隆出3一羟基一3甲基戊二 酰辅酶A还原酶(3-hydroxy一3一methylglutaryl coenzyme A reductase,HMGR)、异戊烯基焦磷酸异构酶 (isopentenyl diphosphate isomerase,IPPI)和法尼基焦磷酸合酶(farnesyl diphosphate synthase,FPS)基因 的cDNA片断,大小分别为470bp、532bp、466bp,分别编码157、177、155个氨基酸多肽。提交到Gen— Bank上,得到登陆号分别为:HMGR(EU400217)、IPPI(EU400218)、FPS(EU400219)。NCBI在线blast 结果表明,推断的北柴胡HMGR、IPPI和FPS基因的氨基酸序列分别与杜仲、三岛柴胡和雷公藤的一 致性最高,分别为93%、99%、97%。对HMGR基因和FPS基因进行特征性保守域分析,结果显示,推 断的HMGR氨基酸序列存在两个NADPH结合基序,FPS存在三个特征性保守序列:DDIMD、GQMID 和KL。构建的植物IPPl的分子进化树表明,北柴胡IPPI基因与伞形科植物(胡萝卜和三岛柴胡)亲缘 关系最近,与单子叶植物(玉米和水稻)亲缘关系较远。本文首次分离报道了北柴胡柴胡皂苷合成途径 中三个关键酶基因(HMGR、IPPI和FPS)cDNA的克隆,新获得的基因片段序列为进一步克隆全序列 和了解调控柴胡皂苷的生物合成奠定了基础。
一、材料与试剂
1.丝盘 本试验所用材料采自中国医学科学院药用植物 研究所试验田中栽种的北柴胡品种“中柴I号”。采 集一年生北柴胡盛花期的幼嫩根,用锡箔纸迅速包 好后,冻存于液氮中。 2.达 型 Tfizol试剂购自Invitrogen公司,B型小量胶回收 纯化试剂盒购自北京博大泰克生物基因技术有限责 任公司,Ex Taq酶、pMDl9一T Vector购自TaKaRa公
关键词:北柴胡 柴胡皂苷3一羟基一3甲基戊二酰辅酶A还原酶(HMGR) 异戊烯基焦磷酸异 构酶(IPPI) 法尼基焦磷酸合酶(FPS)
甲羟戊酸(MVA)途径是植物体内合成萜类的主 的条件下可催化3一羟基一3甲基戊二酰辅酶A生成
要途径。3一羟基一3甲基戊二酰辅酶A还原酶(3一 MVA。由MVA形成的异戊烯焦磷酸(isopentenyl
IPP,从而形成不同长度的碳链,因此IPP异构反应速 度的快慢直接决定了萜类物质形成的速度。所以异 戊烯基焦磷酸异构酶(isopentenyl diphosphate iso— merase,IPPI)可能对萜类的生物合成具有重要意义。 法尼基焦磷酸合酶(farnesyl diphosphate synthase, FPS)催化两分子IPP和DMAPP头尾相接缩合为法 尼基焦磷酸(famesyl diphosphate,FPP),继而形成萜 类化合物。
收稿日期:2008_07一14
基焦磷酸酯(DMAPP),然后向DMAPP上逐个添加
修回日期:2008--09—15

国家科技支撑计划重点项目(2006BAl09BO!):生物技术与中药材优良品种选育研究,负责人:魏建和;国家中医药管理局科技专项
(2004ZX06-3):北柴胡、丹参、川贝母种子种苗质量标准化、规范化示范研究,负责人:陈士林。 ★★ 联系人:魏建和,研究员,主要研究方向:药用植物基因资源及分子育种研究。Tel:010-62818841,E-mail:wjianh@263.net;刘玉军,教授,主要
(3)PCR反应条件。 95℃预变性5min;然后94℃变性30s。退火30s (HMGR、IPPI、FPs基因的退火温度分别为57℃、 55.8℃、45.8℃),72℃延伸2min,35个循环;最后72℃ 延伸10min。PCR产物用l%的琼脂糖凝胶电泳检测。 (4)PCR产物回收、克隆及序列测定。 PCR产物经l%琼脂糖凝胶电泳后,切下目的片 段,用胶回收试剂盒经回收纯化后与PMDl9一T载体 在16℃下连接过夜,将连接产物转化入E.coli DH5et 感受态细胞中。在LB/AMP/IPrG/X—Gal平板上筛选 阳性克隆,然后随机挑选5个白斑菌落和一个蓝斑 菌落,抽提质粒DNA,对质粒DNA进行双酶切鉴定、 PCR鉴定和蓝白斑质粒DNA比较鉴定。鉴定结果为 阳性克隆的用于测序,测序工作由北京三博远志生 物技术有限责任公司完成。 (5)序列分析。 将所测定的序列结果通过BLAST搜索National Center for Biotechnology Information(NCBI)的蛋白质 和核苷酸数据库,将所测序列通过DNAMAN软件寻 找最大读码框,翻译成氨基酸序列并与其他植物的 HMGR、IPPI、FPS基因的氨基酸序列进行多重比较。 特征序列查找及分子系统进化分析也是通过DNA— MAN软件完成。
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