TEM制样磷钨酸负染
脂质体及其在化妆品体系中的表征
脂质体的水合粒径表征，应根据具体的样品体系选择合适的表示方法
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41
包封率
.
42
方法
原理
特点与适用范围
缺点
HPLC法
参照磷脂含量测定
适用范围广，
/
可同时用于磷脂含量和包封率测定
透析法
利用半透膜分子大小差别，通过及时更换 简单，稳定性好，可处理大量样品，
外相达到分离的目的
适合小粒径，稳定性好的脂质体
Eric Betzig
Stefan W. Hell 2014诺贝尔化学奖
W. E. Moerner
STORM 技术的开创者庄小威
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35
低分辨荧光显微镜和超高分辨荧光显微镜图片的对比
优点：突破光学极限的分辨率： 1nm 左右， 具有专属性，可作为通用的方法
局限性：外部资源少
北大工学院席鹏课题组 上海交大李小卫课题组
耗时较长，所耗介质较多
微柱离心法
凝胶柱层析 法
利用游离药物与含药脂质体的重力差异进 行分离，计算包封率
利用脂质体与游离药物分子质量和粒径大 小的差异进行分离
常规SEM
1. 将含有脂质体的样品滴在干净的硅片上面 2. 晾干或者烘干 3. 对其进行喷金处理（增强样品的导电性）
缺点局限性 1.脂质体干燥过程中会发生结构变化。 2. 对小颗粒分辨率不高。100nm左右。
1.只能看表面结构，不能区分脂质体和其它纳米颗粒 2.脂质体不导电，需要喷金处理。
AFM
1.把样品稀释为浓度1Wt%左右 2. 样品滴在云母片上 3. 放置待溶剂挥发干后进行测试
二、对于一些特例。比如低倍的Cyro-TEM或者切片法观测不到脂质体,不确 定是否稳定存在于体系中，可以尝试使用荧光法。该方法对样品纯度没有 要求。如果在共聚焦显微镜不能看到完整的脂质体形状，说明脂质体极大 可能已经被破坏，那么这样的脂质体在体系中发挥不了增溶的作用，已经 没有太大的实用价值。
负染色样品制备实习教程
负染色样品制备实习教程负染色样品制备实习教程(Xiaojun H uang)每位演示及带领学员实习负染色操作的老师的材料清单：1）5个超薄碳膜－微栅支持膜载网，5个连续碳膜载网。
2）UA染液为饱和UA水溶液（不是2%UA），开启使用前建议使用0.2um滤膜过滤，并稀释一倍使用，避光保存。
1盒（每盒10支，1ml/支）3）2％磷钨酸（pH 6.5），可开启后直接使用，避光4℃保存。
1支，1ml/支4）滤纸（whatman #1），清华与IBP各一盒，由两位老师共用。
5）镊子（未给老师准备，请借用学员的，每位学员有一把）6）Parafilm （由清华和IBP自出）7）一次性手套，2包8）0.2um滤器、一次性针管和2ml管，共5套9）1--‐10ul移液器，2把（移液器吸头由清华和IBP自出）10）负染样品RNA p olymerase11）负染样品Ferritin老师演示或带领学员实习前的准备工作：1）开启UA染液为饱和UA水溶液安剖瓶，建议使用0.2um滤膜过滤，并稀释一倍使用，避光保存。
2）开启2％磷钨酸（pH 6.5）安剖瓶，避光4℃保存。
3）熟悉清华或IBP的辉光放电仪器操作4）给学员讲解安全要点：乙酸铀有微量放射性。
操作时应戴手套避免溶液与皮肤直接接触，所有沾染乙酸铀溶液的滤纸、Parafilm、枪头等都应集中收集并在实验结束后抛弃至特定的垃圾桶中。
老师演示分为三部分：第一部分载网亲水处理第二部分按RNA p olymerase的流程使用乙酸铀（UA）制备负染样品。
第三部分按Ferritin的流程使用2%磷钨酸（pH 6.5）制备负染样品。
每位学员自带材料清单：1）三个负染用载网，分别为：载网盒A1号位为连续碳膜载网，供学员进行预练习使用。
如练习载网夹持、用纯水模拟负染色过程练习等。
载网盒A2号位为超薄碳膜－微栅支持膜载网，供学员按RNA polymerase的流程使用workshop提供的乙酸铀（UA）制备负染样品。
TEM电镜样品制作程序(新)
TEM电镜样品制作程序一、试剂1．磷酸缓冲液（Milloning p buffer）A液：2.53％NaH2PO4.2H2O水溶液41.5mlB液：2.52％NaOH水溶液8.5ml （0.3M, 50ml, pH7.3）2. 固定液1). 戊二醛（4％）：25％戊二醛原液16ml＋DDW 50ml，摇匀后加p buffer 50ml，终pH7.0~7.42).锇酸（四氧化锇）：配原液：1g＋50ml DDW 2％配固定液：2％原液/p buffer＝1/13.4. 染色液1).醋酸铀饱和乙醇溶液：醋酸铀5g,乙醇50ml2).柠檬酸铅染液：硝酸铅1.33g，柠檬酸钠1.76g，DDW 30ml二、常规操作步骤【第一天】取材取各组小白鼠♀♂各一只，处死后立即取小肠（消化管取材不应斜切，剪开管腔使之成片状，平铺，黏膜面朝上，最好将其四边固定，用生理盐水漂洗黏膜表面『注意：快，准，轻，小，冷』固定（前固定）戊二醛固定3～4h(可在戊二醛中长期保存--几周甚至1~2个月)『注意：固定液的酸碱度必须与被固定的组织的酸碱度基本保持一致，大多数动物组织酸碱度的平均值是7.4』用p buffer洗一次，共3次，后过夜【第二天】固定（后固定）向样品中加入0.2ml p buffer和0.2ml锇酸(共0.4ml,可事先在通风厨内配好)，2h后用p buffer清洗样品(在通风厨内操作)『样品可在p buffer中保存』配包埋剂(大约需1h，每加入一种试剂需搅拌15min)脱水（丙酮系列）30％，50％，70％，80％，90％（各一次，15min/次），无水丙酮（2次，10min/次）『注意：脱水要彻底；若当天不能完成浸透、包埋操作，应将样品停留在4℃，70％乙醇或丙酮中过夜；脱水动作尽量要快，特别是100％脱水剂，更要注意样品块不要在空气中停留时间过长，否则会造成样品干燥』配下一步浸透用的丙酮/树脂(1/1,1/2)浸透（丙酮－树脂）丙酮/树脂＝1/1，浸透1h（0.2ml,0.2ml）丙酮/树脂＝1/2，浸透1h（0.2ml,0.2ml+0.2ml）纯树脂，浸透（2h后即可包埋，也可隔夜再包埋）包埋树脂加满样品槽，呈凸面，标签纸放中间，样品放两边『注意：包埋剂用前不能搅拌，以免产生气泡。
负染色操作步骤-概述说明以及解释
负染色操作步骤-概述说明以及解释1. 引言概述部分的内容可以按如下方式编写：1.1 概述负染色是一种常用的细胞和组织样品处理技术，它常被应用于生物学和医学研究中，用于观察细胞和组织内部的结构和特征。
相比于传统的正染色方法，负染色操作具有一些独特的优势和特点。
在负染色过程中，样本被浸泡在一种特定的染料溶液中，这种染料溶液往往是一种与样品的成分不相溶的物质。
负染色的关键在于利用染料的物理和化学性质，使其与样品发生作用，从而使样品的细节和特征得以显示。
负染色的操作步骤相对简单，但需要一定的技巧和经验。
本文将详细介绍负染色的操作步骤要点，旨在帮助读者快速掌握负染色技术并正确应用于实验中。
负染色的具体步骤将在接下来的章节中进行介绍，主要包括：样品制备、染料选择、染色操作、观察和分析等环节。
通过正确的操作步骤，可以获得清晰、可靠的负染色结果，从而进一步推进相关研究领域的发展。
总之，负染色作为一种常用的细胞和组织样品处理技术，具有独特的优势和特点。
本文将深入介绍负染色的操作步骤要点，希望能够为读者提供一份实用的参考，帮助其在实验中正确应用负染色技术。
文章结构部分的内容应该是关于整篇文章的组织结构和章节安排的介绍。
可以按照以下方式编写：文章结构：本文将按照以下结构进行叙述：1. 引言1.1 概述1.2 文章结构1.3 目的2. 正文2.1 负染色操作步骤要点12.2 负染色操作步骤要点23. 结论3.1 总结3.2 展望在引言部分，我们将简要说明本文的主题和目的，以及为什么负染色操作步骤的了解对于某些特定应用领域的重要性。
接下来的正文部分将分为两个要点，分别介绍负染色操作的具体步骤，包括所需材料、实验条件等重要信息。
通过对每个步骤要点的详细描述，读者将能够理解负染色操作的基本原理和实施方法。
最后，在结论部分，我们将对整篇文章进行总结，回顾负染色操作的关键步骤和要点，并展望未来在该领域的进一步研究和应用方向。
通过以上的文章结构安排，读者将能够清晰地了解整篇文章的内容组织和章节间的逻辑关系，从而更好地理解和掌握负染色操作步骤的相关知识。
电镜样品的基本制备技术之负染色技术
（二）直接取样法
对于某些皮肤病毒性疱疹（如天花、 水痘及疱疹等）可用毛细吸管直接刺入疱 疹中取样，再将吸管中的泡液滴在带有支 持膜的铜网上，待稍干后立即染色观察。 此法主要用于临床快速诊断．
对于生长在固体培养基上的微生物， 可用白金环刮取，再用缓冲生理盐水稀释 成悬液，即可滴样，待稍干后染色观察。 对于生长在琼脂板上的噬菌体斑，也可采 用直接取样法。
负染色又称阴性反差染色，它是利用 高密度的、且在透射电镜下又显示结构的 重金属盐（如磷钨酸、醋酸铀等），把生 物标本包围起来、在黑暗的背景上显示出 呈现阴性反差样品的微细结构。所以负染 色所显示的电镜图像，正好与超薄切片正 染色相反，其样品结构为透明浅色，而背 底则为无结构的灰色或黑色。对于负染色 的机制，目前还不够清楚。
负染色技术首先，由Ha11（1955）、 Hux1ey（1957）等人所采用，在后来的生 物学研究中得到了越来越广泛的应用。负 染色样品不需经过固定、脱水、包埋和超 薄切片等复杂操作，而是直接对沉降的样 品匀浆悬浮液进行染色。与超薄切片技术 相比，该技术具有操作简便、用药量极少、 省时快速及分辨力高等优点，现广泛用于 细菌、病毒、大分子结构、亚细胞碎片及 分离的细胞器等研究工作。
2．低渗释放法 从培养瓶中刮下所 培养的腺病毒或疱疹病毒，低速离心，弁 上清液，于沉淀物中加入培养液与蒸馏水 的混合液（比例为1：4），使细胞因低渗 破裂而释放出病毒，然后快速冻融数次， 再将冻融后的悬液低速离心，取其上清液 滴膜染色。
3．抗体 病毒凝集沉淀法 某些病毒 如鼻病毒、风疹病毒、小儿腹泻轮状病毒 及甲、乙型肝炎抗原等，可于相应的抗体 形成病ห้องสมุดไป่ตู้一抗体复合物，经离心沉淀而浓 缩，而后取浓缩的沉淀物滴膜染色，可找 到较多的病毒。目前这一技术已广泛用于 病毒疾病的快速诊断。
电镜样品的基本制备技术之负染色技术
（三）样品的纯度和浓度
样品的纯度和浓度对负染均有明显影响，如 果负染样品含杂质太多（如大量的细胞碎片、培 养基残渣及盐类结晶等），会对负染色效果产生 干扰，因此，样品在负染前要适当纯化。此外， 悬液中的样品浓度要适当，浓度太稀时，会造成 电镜下找不到样品或寻找困难；样品太浓时，会 造成样品堆积而影响观察。因此，要求滴样时应 做各种稀释度的对比观察。
（二）直接取样法
对于某些皮肤病毒性疱疹（如天花、 水痘及疱疹等）可用毛细吸管直接刺入疱 疹中取样，再将吸管中的泡液滴在带有支 持膜的铜网上，待稍干后立即染色观察。 此法主要用于临床快速诊断．
对于生长在固体培养基上的微生物， 可用白金环刮取，再用缓冲生理盐水稀释 成悬液，即可滴样，待稍干后染色观察。 对于生长在琼脂板上的噬菌体斑，也可采 用直接取样法。
负染色又称阴性反差染色，它是利用 高密度的、且在透射电镜下又显示结构的 重金属盐（如磷钨酸、醋酸铀等），把生 物标本包围起来、在黑暗的背景上显示出 呈现阴性反差样品的微细结构。所以负染 色所显示的电镜图像，正好与超薄切片正 染色相反，其样品结构为透明浅色，而背 底则为无结构的灰色或黑色。对于负染色 的机制，目前还不够清楚。
１N的氢氧化钠或氢氧化钾将pH值调到 6.4－7.0。醋酸铀则用0.2～0.5％水液．pH 为4.5～5.5，染液在用前新鲜配制，盐溶解 需20～30分钟。钼酸铵配制成2～3％溶液， 使用时用醋酸铵将pH调至7.0～7.4之间。
作为负染色剂的条件： （l）具有较高的电子密度和较强的电子 散射能力； （2）耐受电子束的轰击、在电子束照射 下不升华； （3）在电镜下不呈现染色剂本身的结构； （4）化学稳定性好，不析出沉淀，与样 品不发生化学反应，易在不规则样品表面 渗透。
水解法制备纳米二氧化硅和表征_庞久寅
一般来讲， 制备纳米二氧化硅主要有气相法 和水解法两种办法。气相法的主要特点是产品表 面整洁、纯度高、成本高， 而水解法无须特殊仪器 设备， 容易操作［１￣３］。
用氨作为原硅酸四乙酯（ ＴＥＯＳ） 的水解催化 剂可制备小粒径的 ＳｉＯ２ 粒子， 但反应条件较高、 难以控制， 有很大的局限性。我们在乙醇的氨水 溶液中 不 断 滴 加 ＴＥＯＳ， 通 过 调 整 介 质 ｐＨ、加 料 和搅拌速度等制备了不同粒径的二氧化硅。用 ＴＥＭ、动态光散射、红外和电子能谱分析， 对制得 的纳 米 二 氧 化 硅 颗 粒 组 成 、粒 径 大 小 、规 整 度 及 分布均匀性等进行表征 。 ［４￣６］
Ａｂｓｔｒ ａｃｔ Ｔｈｅ ｐａｐｅｒ ｓｔｕｄｙ ｔｈｅ ａｌｋａｌｉｎｅ ｈｙｄｒｏｌｙｓｉｓ ｏｆ ＴＥＯＳ， ｔｈｅ ｃｒｅａｔｉｏｎ ｏｆ ｎａｎｏ－ｓｉｌｉｃａ． Ｃｏｎｔｒｏｌｌｉｎｇ ｔｈｅ ｐＨ、ｄｒｉｐｐｉｎｇ ｒａｔｅ、ａｇｉｔａｔｉｎｇ ｒａｔｅ ａｎｄ ｔｈｅ ｒａｔｉｏ ｏｆ ＴＥＯＳ ａｎｄ ｅｔｈａｎｏｌ， ｗｅ ｃａｎ ａｃｑｕｉｒｅ ｔｈｅ ｎａｎｏ－ｓｉｌｉｃａ ｗｈｏｓｅ ｓｉｚｅ ｉｓ ｂｅｌｏｗ １００ｎｍ． Ａｎｄ ｄｉｓｃｕｓｓ ｔｈｅ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｏｆ ｎａｎｏ－ｓｉｌｉｃａ ａｎｄ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ， ａｎｄ ａｃｑｕｉｒｅ ｔｈｅ ４０ｎｍ ｎａｎｏ－ｍａｔｅｒｉａｌ ｂｙ ｃｏｎｔｒｏｌｌｉｎｇ ｔｈｅ ａｂｏｖｅ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ． Ｗｅ ｃａｎ ａｎａｌｙｚｅ ｔｈｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｇｒｏｕｐ ｃｏｎｆｉｇｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｉｌｉｃａ ｂｙ ｉｎｆｒａｒｅｄ ｓｐｅｃｔｒｕｍ ａｎｄ ｏｂｓｅｒｖｅ ｔｈｅ ｍｉｃｒｏｃｏｓｍｉｃ ｃｏｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｉｌｉｃａ， ａｔ ｌａｓｔ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｔｈｅ ａｐｐｏｓｉｔｅ ｈｙｄｒｏｌｙｓｉｓ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ ｏｆ ｓｉｌｉｃａ． Ｔｈｅ ｐｒｏｐｏｒｔｉｏｎ ｏｆ Ｓｉ ａｎｄ ｏｘｙｇｅｎ ｉｓ １：２ ｂｙ ｔｈｅ Ｂｉｎｄｉｎｇ Ｅｎｅｒｇｙ ｍｅａ－ ｓｕｒｅｍｅｎｔ．
电镜样品基本制备方法第二节负染色技术
（四）样品的均匀分散性 在进行负染时，经 常发生颗粒悬浮样品的凝集现像。此时，染色剂 与样品形成电子不能穿过的团块，致使无法看清 样品的微细结构。造成上述现象的主要原因，是 悬浮样品不易在铜网上展开而形成的一种团聚现 象。
电镜样品的基本制备方法
第二节 负染色技术
负染色又称阴性反差染色，它是利用高密度 的、且在透射电镜下又显示结构的重金属盐（如 磷钨酸、醋酸铀等），把生物标本包围起来、在 黑暗的背景上显示出呈现阴性反差样品的微细结 构。所以负染色所显示的电镜图像，正好与超薄 切片正染色相反，其样品结构为透明浅色，而背 底则为无结构的灰色或黑色。对于负染色的机制， 目前还不够清楚。
（二）漂浮法
先将样品悬浮液滴在干燥的载玻片上，再把 带滤纸吸干铜网上的多余悬液， 再将铜网在染液滴珠上漂浮，时间１－2分钟，最 后再用滤纸将染液吸干即可观察。
四、影响负染效果的有关因素
（—）掌握染色时机 染色应在铜网上的悬液将 要干燥而又没完全干燥时进行，如果铜网上的悬 液残留较多或完全干燥后染色，则严重影响染色 效果，便得不到理想的负染电镜图像。
（三）离心提纯法
用于细菌、病毒、噬菌体等微生物或细胞匀 浆中线粒体、微管等细胞器的提纯。先用低速离 心（3000转／分），弃去较大杂质和细胞碎 片．再用适当孔径的滤膜过滤，其滤液再经低温 超速离心，最后取沉淀物制成悬液滴样染色。
二、染液的配制
一般均由重金属盐配制。最常用的有磷钨酸 （PTA）、磷钨酸钾（KPT）、磷钨酸钠（NaPT）、 醋酸钠、甲酸钠和钼酸铵等。当使用磷钨酸或磷 钨酸盐时，可用蒸馏水或磷酸缓冲液配制成0.5 ％～3％的溶液，染色前应用：
（二）直接取样法
对于某些皮肤病毒性疱疹（如天花、水痘及 疱疹等）可用毛细吸管直接刺入疱疹中取样，再 将吸管中的泡液滴在带有支持膜的铜网上，待稍 干后立即染色观察。此法主要用于临床快速诊 断．
tem负染操作流程
tem负染操作流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成，希望大家下载以后，能够帮助大家解决实际的问题。
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水解法制备纳米二氧化硅和表征_庞久寅
摘 要 通过 ＴＥＯＳ 在碱性条件下水解生成纳米二氧化硅。通过控制 ｐＨ、滴加速度、搅拌速度以及 ＴＥＯＳ 与乙 醇的配比， 得到小于 １００ｎｍ 的二氧化硅， 通过控制以上条件得到了粒径 ４０ｎｍ 的纳米材料。用红外光谱分析所 得二氧化硅的官能团结构、ＴＥＭ 观察到二氧化硅的微观形态， 通过电子能谱测定了硅和氧的比例为 １∶２。 关键词 纳米二氧化硅； 制备； 表征； ＴＥＭ； 水解
在 带 电 磁 搅 拌 的 锥 型 瓶 中 加 入 ５０ｇ 无 水 乙 醇、１～５ｇ 氨水， 然后用不同配比的乙醇 ＴＥＯＳ 溶 液从恒流泵中滴加到锥型瓶中， 控制滴加速度 ０．０２５～０．１５ｍｌ／ｍｉｎ 和搅拌转速 ５０～４００ｒ／ｍｉｎ， 使 ＴＥＯＳ 水解生成纳米二氧化硅。用动态光散射法、 ＴＥＭ 测定其粒径大小。然后将含有纳米二氧化硅 的醇溶液在真空烘箱内干燥， 分离最后得到固态 纳米二氧化硅。实验的基本条件为 ｐＨ 值 ８．２、搅 拌速度为 ５０ｒ／ｍｉｎ、滴加速度为 ０．０２５ｍｌ／ｍｉｎ、滴加 时间为 ４００ｍｉｎ。 １．３ 纳米二氧化硅的表征
２ 结果与讨论
２．１ 反应条件对纳米二氧化硅制备的影响
ｐＨ 值
图 １ ｐＨ 值对粒子大小的影响 对纳米粒子大小生成具有决定性作用的是
ｐＨ 值、搅拌速度和滴加速率等因素， 实验结果如 图 １、图 ２、图 ３ 所示。图 １ 为 ｐＨ 值对粒径变化的 影响， 实验结果表明， 随着 ｐＨ 值的持续升高， 粒 径呈现单调增长的趋势。
图 ６ｂ。 ２．４ 元素分析
通过图 ７ 可以看出， 通过对二氧化硅粉末的 ＸＰＳ 测定可以看出图中只有硅和氧的吸收峰， 且 两 者 的 面 积 比 为 １ ∶２， 因 而 断 定 其 分 子 式 为 ＳｉＯ２。
负染色技术
负染色技术负染色又称阴性染色，是相对于普通染色(称正染色)而言的。
负染色首先由Hall在1955年提出。
Hall在病毒研究中用磷钨酸染色后，发现图像的背景很暗，而病毒象一个亮晶的"空洞"被清楚地显示出来。
在超薄切片的染色中，染色后的样品电子密度因染色而被加强，在图像中呈现黑色。
而背景因未被染色而呈光亮，这种染色称为正染色。
而负染色则相反，由于染液中某些电子密度高的物质(如重金属盐等)"包埋"低电子密度的样品，结果在图像中背景是黑暗的，而样品像"透明"地光亮。
两者之间的反差正好相反，故称为负染色。
对于负染色的机制目前还不十分了解。
对颗粒状的生物材料的研究而言，负染色技术与超薄切片方法相比具有分辨率高(可达15Å)，简单快速等优点。
因此，在生物学研究中得到越来越广泛的应用。
它可以显示生物大分子、细菌、病毒、分离的细胞器以及蛋白质晶体等样品的形状、结构、大小以及表面结构的特征。
尤其在病毒学中，负染色技术成为不可取代的实验技术。
[编辑]负染色液的制备用作负染色的负染色剂应具有：较强的电子散射能力以产生足够的图像反差；熔点高，在电子束的轰击下不会升华；溶解度大，不易析出沉淀；在电镜下不呈现出可观察到的结构；分子小，容易渗入不规则表面的凹陷处；与样品不起化学反应等。
目前最常用的负染液是磷钨酸、磷钨酸钾和磷钨酸钠(分别简称为PTA、KPT、NaPT)。
此外醋酸铀、甲酸铀、硅钨酸、钼酸铵等也常作负染色剂用。
它们的配制方法如下：磷钨酸、磷钨酸钠、磷钨酸钾溶液通常用双蒸水或磷酸缓冲液配制成1％～3％的溶液，使用时应用1 mol／L氢氧化钠溶液将负染色液的pH值调至6.4～7.0或实验所需的值。
醋酸铀：通常使用双蒸水配制成0.2％～0.5％水溶液(pH4.5)。
醋酸铀染色液应是新鲜的，最好使用前配制。
醋酸铀溶解需15～30分钟，在黑暗中能稳定几小时，使用前用1mol／L的氢氧化钠溶液将pH值调至4.5。
TEM测试流程
TEM测试流程
1.配制磷钨酸的浓度为2%，此时Ph大约为1~2
2.配制NaOH的浓度为2%
3.将两者中和得到的磷钨酸Ph大约为6~7（十毫升磷钨酸大约需要十五滴左右
的NaOH），此即为染色液
4.将PUD稀释到固含大约为0.05~0.08%之间并使稀释液混合均匀（40%固含
就稀释大约500~800倍）
5.取3~5滴配制好的磷钨酸与稀释后的PUD进行等体积混合均匀，震荡大约
一分钟后即可进行染色
6.在紫外灯光下先滴一滴混合液到铜网上，放置一段时间后其会慢慢变干
（5~10分钟），然后在铜网另外一面也滴一滴混合液并让之干燥（在这个过程中千万要防止混合液顺着缝隙吸附到镊子上面去了），染色即告完成
7.在进行电镜观察的时候先在小倍数的情况下看个整体的染色状况，寻找合适
的孔进行观察拍照。
8.先进行宏观拍照此时标准是200nm（放大倍数一般在4800~9300之间），然
后进行微观拍照此时标准是0.5µm（放大倍数一般在13000~22000之间），这个过程中不论是宏观还是微观最好在确定了放大倍数后就不要改变以进行对比，因此最好从粒径小的开始。
TEM制样-磷钨酸负染
磷钨酸用水或磷酸缓冲液配制成1％左右的溶液，用滴管一滴染色液在制好样品的铜网上，1～2分钟后，用剪成尖角的滤纸吸去染色液。
再滴一滴纯水在铜网上，用滤纸吸去，反复两三次，这样是为了洗去多余的磷钨酸，然后静置干燥。
然后就可以用电镜观察了。
磷钨酸中的重原子相对于有机分子中的碳氢氧氮等轻原子来说，更能阻挡（散射）电子。
所以，有磷钨酸吸附（或沉积）的地方在TEM 照片中看起来更黑，而有机物占据的地方看起来更亮。
之所以叫“负染色”，就是因为被染“黑”的是背景和外轮廓，真正感兴趣的样品部分是“白”的。
也就是说，典型的经过负染色的样品是表现为黑背景中的白区。
一般有机物并不与磷钨酸发生反应，磷钨酸只是沉积在有机物周围形成“背景”或“轮廓”。
但是不是所有的磷钨酸染色都是负染色。
有一些羟基和酰胺类会与磷钨酸作用，出现正染色的效果，即有些含有这些基团的有机物在TEM下看起来被染“黑”，最典型的是尼龙。
另外，有时候不成功的负染色，看到的结果也是“白底黑点”，其实虽然是做了染色的操作，但可能由于方法不对，或者样品本身的性质不适用负染色，结果跟没染是一样的。
如果有机颗粒足够大，不染色时就能看到“白底黑点”。
另一方面，如果染色很弱，一般只是给有机颗粒镶上一个轮廓，如果染色剂量很大，则会出现很黑的“背景”。
因此，对于很小的有机颗粒，如果染色很弱，只是一个轮廓圈，电镜放大倍数不够的时候，看起来就是一个小黑点了。
就好像一个纸上画一个空心圈，站远了看也可能
成一个小黑点。
如有侵权请联系告知删除，感谢你们的配合！。
电镜样品的基本制备技术之负染色技术PPT课件
对于具有生物活性的样品，负染色技 术需要在保持样品活性的前提下进行。 因此，需要在制备过程中采取适当的 措施，如使用稳定剂或保护剂，以保 持样品的生物活性。
涂膜的均匀性与稳定性
均匀性
在负染色技术中，涂膜的均匀性对电镜观察效果至关重要。涂膜应均匀覆盖样品表面， 避免出现涂层不均、颗粒等现象。为保证涂膜的均匀性，可采用旋转涂膜、多次涂覆等
浓度控制
染色液的浓度对染色效果和样品稳定性有重要影响。在负染色技术中，应精确控制染色液的浓度，以 确保染色效果最佳且不损伤样品。同时，还应根据实际情况调整染色液的浓度，以获得最佳的观察效 果。
观察条件的选择与优化
观察条件
负染色技术的观察条件包括电镜的加速电压、工作距离、物镜光圈等参数。这些参数的选择直接影响观察效果和 样品的成像质量。在观察过程中，应根据样品的性质和特点选择适当的观察条件，并进行优化调整。
应用领域与优势
应用领域
负染色技术广泛应用于生物学、医学、环境科学等领域，如病毒、细菌、细胞、 蛋白质等生物大分子的结构和形态研究。
优势
负染色技术具有操作简便、分辨率高、样品制备时间短等优点，能够清晰地呈 现出样品的形态和结构，为科学研究提供重要的实验依据。
02
负染色技术的基本步骤
样品准备
选取适当的样品
细菌和微生物研究
在细菌和其他微生物的研究中，负染色技术也发挥了重要作用。通过负
染色，可以观察细菌的形态、排列和细胞壁等结构特征，有助于细菌鉴
定和分类。
03
蛋白质和核酸研究
负染色技术也可用于观察蛋白质和核酸等生物大分子的结构和形态。通
过负染色，可以观察到大分子的形状、大小和分布情况，有助于理解其
功能和作用机制。
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T E M制样磷钨酸负染 This model paper was revised by the Standardization Office on December 10, 2020
磷钨酸用水或磷酸缓冲液配制成1％左右的溶液，用滴管一滴染色液在制好样品的铜网上，1～2分钟后，用剪成尖角的滤纸吸去染色液。
再滴一滴纯水在铜网上，用滤纸吸去，反复两三次，这样是为了洗去多余的磷钨酸，然后静置干燥。
然后就可以用电镜观察了。
磷钨酸中的重原子相对于有机分子中的碳氢氧氮等轻原子来说，更能阻挡（散射）电子。
所以，有磷钨酸吸附（或沉积）的地方在TEM照片中看起来更黑，而有机物占据的地方看起来更亮。
之所以叫“负染色”，就是因为被染“黑”的是背景和外轮廓，真正感兴趣的样品部分是“白”的。
也就是说，典型的经过负染色的样品是表现为黑背景中的白区。
一般有机物并不与磷钨酸发生反应，磷钨酸只是沉积在有机物周围形成“背景”或“轮廓”。
但是不是所有的磷钨酸染色都是负染色。
有一些羟基和酰胺类会与磷钨酸作用，出现正染色的效果，即有些含有这些基团的有机物在TEM下看起来被染“黑”，最典型的是尼龙。
另外，有时候不成功的负染色，看到的结果也是“白底黑点”，其实虽然是做了染色的操作，但可能由于方法不对，或者样品本身的性质不适用负染色，结果跟没染是一样的。
如果有机颗粒足够大，不染色时就能看到“白底黑点”。
另一方面，如果染色很弱，一般只是给有机颗粒镶上一个轮廓，如果染色剂量很大，则会出现很黑的“背景”。
因此，对于很小的有机颗粒，如果染色很弱，只是一个轮廓圈，电镜放大倍数不够的时候，看起来就是一个小黑点了。
就好像一个纸上画一个空心圈，站远了看也可能成一个小黑点。