植物多倍体的诱发和鉴定
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2 讨论: ① 选择合适的材料是实验成功的首要因素, 请问该实验选材时注意什么问题? ② 酶解时酶液的组成及浓度如何确定? ③ 研究原生质体的意义是什么?
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药品:蒸馏水、卡诺氏固定液、45%醋酸、秋 水仙素、改良苯酚品红染液等。
实验步骤:
1 培养根尖:将大蒜瓣放在盛有清水的培养皿
中,让根部接触水,在20~25℃光照下培养,待根 尖长到0.5~1cm时备用。
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2 多倍体诱导:将水换成0.1%的秋水仙素溶液, 在阴暗处培养2天左右。
3 固定:11:30左右将剪取根尖1~2cm冲洗后 转移至卡诺氏固定液中,室温下处理3~8小时。
用高温、低温、射线照射、等物理化学方法人工诱
发多倍体植物。其中,以应用化学试剂更为有效和
方便,如秋水仙素、异生长素、富民农等,使用最
广泛、效果最好的是秋可水编辑仙ppt素。
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实验材料:
洋葱、大蒜等。本实验选用大蒜。
实验用品:
用具:显微镜、剪刀、镊子、解剖针、载玻片、 盖玻片、酒精灯、铅笔、吸水纸等。
和果胶酶分离原生质体可。编辑ppt
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实验材料:
菠菜、油菜等。
实验用品:
用具:显微镜、离心机、载玻片、盖玻片、尼 龙过滤网、离心管、剪刀、镊子、吸水纸等。
药品:70%乙醇、甘露醇、CPW缓冲液、纤维素 酶、果胶酶、20%蔗糖溶液等。
实验步骤:
1 选取叶片:选取充分伸展的幼嫩叶片,自来 水清洗后,用吸水纸吸干水分。
请注意比较该实验结果与 有丝分裂实验结果有何不 同?
实验报告:
1 说明秋水仙素诱发多倍体的原理是什么? 2 画出在显微镜下看到的多倍体细胞的图像;
3 了解诱发多倍体在育种方面的意义。
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实验9 植物原生质体的分离 与纯化
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实验目的:
1 学习植物原生质体的分离和纯化技术; 2 了解原生质体在细胞工程中的应用。
4 解离:将冲洗后的根尖放入1mol/L的盐酸中, 室温下处理10~15min。
5 染色:切取1~2mm的分生区,用改良苯酚品 红染液染色10~20min。
6 压片:盖上盖玻片,在酒精灯上烤片。然后 固定盖玻片,用铅笔垂直、用力敲击盖片几下,将 材料压成一层细胞。
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8 镜检:先在低倍镜下找到细胞,再换成高倍 镜仔细观察。
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过滤后的混合液,500rpm,3min离心
吸出上清液,沉淀用2ml8%甘露醇盐溶液悬浮
在新的离心管中加入约8ml20%蔗糖盐溶液,将上 面的原生质体悬浮液用滴管轻轻地加载蔗糖溶液上
1000rpm,3min离心后,原生质体漂浮在蔗糖溶液 上,吸取原生质体于一新的离心管中
加入8ml8%甘露醇盐溶液,500rpm,3min离心后, 弃上清,用甘露醇盐溶液悬浮沉淀。
实验11 植物多倍体的诱发和 鉴定
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实验目的:
1 了解人工诱导植物多倍体的原理、方法及其 在植物育种上的意义;
2 鉴定诱导后染色体数目的变化。
实验原理:
各种生物染色体的数目、形态和结构都是恒定
的。绝大多数的生物是二倍体,在植物界多倍体普
遍存在,已知被子植物中有1/3或更多的物种是多
倍体。除了自然界存在的多倍体物种以外,可以采
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6 镜检:将原生质体悬浮液滴在载玻片上,轻 轻盖上盖玻片,先在低倍镜下找到原生质体,再换 成高倍镜仔细观察。
实验报告:
1 画出在显微镜下看到的原生质体的图像;
2 在整个实验操作过程中需要注意哪些问题?
结果与讨论:
1 预期结果:完整的原生质体形态上是圆球状 的,颜色鲜艳,富含细胞质。
实验原理:
原生质体是指去除了细胞壁的植物细胞。原生
质体是植物体细胞遗传学研究的一重要实验系统,
无论在理论方面还是在实践方面都有重要的研究价
值。去除细胞壁一般通过酶解的方法,植物细胞壁
是由纤维素、半纤维素、果胶质和少量的蛋白质和脂类组成的。由于这些不同物质的化 Nhomakorabea键,必须使
用混合酶液以降解细胞壁。通常混合使用纤维素酶
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2 撕下表皮:用钟表镊子将叶子的下表皮撕掉, 注意不要损伤叶肉细胞。
3 酶解:在培养皿中放入混合酶液,将去掉下 表皮的叶片剪成小块,去下表皮面向下铺于酶液中, 充分接触酶液。25~30℃,酶解2~3小时。
4 过滤:酶解后的混合物用双层漏斗进行过滤, 只允许单细胞和原生质体通过。
5 纯化:用比原生质体比重大的20%蔗糖溶液, 离心后原生质体漂浮在溶液的表面。