Trizol法提取RNA实验步骤及原理

Trizol法使用步骤
一、分离纯化的基本原理
研究基因的表达和调控时常常要从组织和细胞中分离和纯化RNA。

RNA质量的高低常常影响cDNA库，RT-PCR和Northern Blot等分子生物学实验的成败。

Trizol是一种新型总RNA抽提试剂，内含异硫氰酸胍等物质，能迅速破碎细胞，抑制细胞释放出的核酸酶。

二、用户需自备的试剂和材料
无水乙醇、氯仿、Glycogen（可能需要）、 Eppendorf管（RNase-free）、 Tips （RNase-free）
三、准备工作
RNase酶非常稳定，是导致RNA降解最主要的物质。

它在一些极端的条件可以暂时失活，但限制因素去除后有迅速复性。

用常规的高温高压蒸气灭菌方法和蛋白抑制剂都不能是RNase完全失活。

它广泛存在于人的皮肤上，因此，在与RNA制备有关的分子生物学实验时，必须戴手套。

RNase的又一污染源是取液器，根据取液器制造商的要求对取液器进行处理。

一般情况下采用用DEPC(焦炭酸二磷脂，一种RNase抑制剂)配制的70%乙醇擦洗取液器的内部和外部，基本达到要求。

取RNase-free的物品时必须戴手套。

1、料制品的处理
尽可能使用无菌，一次性塑料制品，已标明RNase-Free 的塑料制品，如没有开封使用过通常没有必要再次处理。

对于国产塑料制品，原则上都必须处理方可使用。

处理步骤如下：
1）在玻璃烧杯中注入去离子水，加入DEPC使DEPC的终浓度为%。

注意：DEPC为剧毒物，活性很强，小心在通风柜中使用。

2）处理的塑料制品放入一个可以高温灭菌的容器中，注入DEPC水溶液，使塑料制品
的所有部分都浸泡到溶液中。

3）在通风柜中室温处理过夜。

4）将DEPC水溶液小心倒到废液瓶中，用铝箔封住含已DEPC水处理过的塑料制品的烧杯，高温高压蒸气灭菌至少30分钟。

5）烘箱用合适的温度烘拷至干燥。

置于干净处备用。

2、璃玻和金属物品
250°C烘烤3小时以上。

四、从组织中提取总RNA
1)液氮研磨：组织块直接放入研钵中，加入少量液氮，迅速研磨，待组织变软，再加少量液氮，再研磨，如此三次，按50-100mg组织/ml Trizol加入Trizol，转入离心管进行第2步操作。

（液氮既能使各种组织成分不易被破坏或降解,又能使组织变硬,脆性增加易于磨碎。

终止细胞内外一切生物反应，防止RNA酶的降解反应）
2) 匀浆：组织样品按50-100mg/mlTrizol 加入Trizol。

另外，组织体积不能超过Trizol体积的10%，否则匀浆效果会不好，用电动匀浆器充分匀浆约需1-2分钟。

五、从细胞中提取总RNA
1) 培养贴壁细胞：不须消化，可直接用Trizol进行消化、裂解，Trizol体积按10cm2/ml比例加入。

2) 悬浮细胞可直接收集、裂解，每1ml Trizol可裂解5×106动物、植物或酵母细胞，或107细菌细胞。

六、操作步骤
1、细胞或组织加Trizol后，室温放置5min，使其充分裂解。

注：此时可放入-70℃长期保持。

2、12,000rpm 离心5min，弃沉淀。

3、按200ul氯仿/ml Trizol加入氯仿，振荡混匀后室温放置15min。

注：禁用漩涡振荡器，以免基因组DNA断裂。

（氯仿为有机溶剂，有效的使有机相和无机相迅速分离。

有机相中主要是酚和蛋白结合，从而使得蛋白和RNA脱离，RNA进入水相）
4、4℃ 12,000g离心15min。

5、吸取上层水相，至另一离心管中。

注：千万不要吸取中间界面；若同时提取DNA 和蛋白质，则保留下层酚相存于4℃冰箱,若只提RNA，则弃下层酚相。

6、按异丙醇/ml Trizol 加入异丙醇（沉淀RNA）混匀，室温放置5-10min。

7、4℃ 12,000g离心10min，弃上清，RNA沉于管底。

8、按1ml 75%乙醇/ml Trizol加入75%乙醇（沉淀RNA），温和振荡离心管，悬浮沉淀。

9、 4℃ 8,000g离心5min，尽量弃上清。

10、室温晾干或真空干燥5-10min。

注：RNA样品不要过于干燥，否则很难溶解。

11、可用50ul H
2O，TE buffer或%SDS溶解RNA样品，55-60℃,5-10min。

注：H
2
O、TE
或%SDS均须用DEPC处理并高压。

（TE缓冲液由Tris和EDTA配制而成，主要用于溶解核酸，能稳定储存DNA和RNA。

用于酶切反应不能使用SDS）
12、测值定量RNA浓度。

注：此方法提取RNA A
260/A
280
值在之间；产率估计：组织标
本：（ug RNA/mg组织）1-10ug，培养细胞（ug RNA/106 Cell）：5-15ug。

注：组织或细胞量过少，可酌情减少Trizol用量；组织或细胞用量过多，会引起DNA对RNA的污染；
高蛋白、脂肪或多糖类组织，肌肉组织或块状植物组织等，组织匀浆或液氮研磨后须4℃ 12,000g离心10min去掉不溶物，再进行下面操作，若顶层有脂肪物，则也须去掉；
热天提RNA，带手套是必须的，手是RNase的主要来源；
组织块用液氮研磨，效果最好，若没有液氮或电动匀浆器，可用手动匀浆器代替，此时组织块不宜过大，且需先用眼科剪刀将组织碱碱剪碎，然后再充分研磨。

肝脏、肠道、肌肉总RNA提取方法
①使用已高温蒸汽灭菌的手术刀和镊子从鱼的腹部解剖开，从中取出完整的肝脏、肠、肌肉等组织，置于离心管后立即放入液氮中；
②组织在液氮下研磨成粉，取少量至加有1mLTrizol的离心管中，充分混合后于4℃，12,000rpm离心15min；
③取上清移至新离心管中，加入200ul氯仿，剧烈震荡直至呈乳白色，于4℃，12,000rpm离心15min；
④取上清移至新离心管中，加入500ul异丙醇，轻轻颠倒10次，冰上放置20mins，于4℃，12,000rpm离心15min；
⑤弃上清，加入1ml75%乙醇（用DEPC水现配现用），于4℃，12000rpm离心5min，重复此步骤一次；
⑥弃上清后，室温干燥5-7mins；
⑦加入适量（20-30ul）的DEPC水溶解沉淀65℃溶解，-20℃（最好-80℃）保存，检测RNA浓度，并电泳检测。

RNA浓度测定和电泳检测
取2ul提取好的RNA溶液，于Nanodrop 2000 Spectrophptpmeter测定RNA浓度及A260/A280的相对吸光度，纯净RNA的A260/A280应在之间。

电泳检测：1%琼脂糖，1×ATE缓冲液，90V电泳30min，凝胶成像系统观察，分析结果。

肝脏、肌肉、肠道样品cDNA的合成
反应按照TaKaRa公司的PrimeScript® RT re agent Kit With gDNA Eraser （Perfect Real Time) 反转录试剂盒说明书进行，合成cDNA模板。

①（残存的）基因组DNA的除去反应，在PCR管中配置如下缓冲液。

试剂用量
5×gDNA Eraser Bufferμl
gDNA Eraserμl
Total RNA X* ul
O up to 10 μl
RNase Free dH
2
（gDNA、genomic DNA、基因组DNA：是指有机体在单倍体状态下的DNA全部含量，是染色体DNA，与质粒等染色体外DNA区别。

）
X*：根据检测到的RNA浓度来配置；
混合均匀后，室温放置20-30min
②反转录反应，在PCR管中配置如下缓冲液（20ul system），反应液配制在冰上进行。

为了保证反应液配制的准确性，进行各项反应时，先按反应数+1的量配制Master Mix ，然后再分装到每个反应管中。

试剂使用量
5×PrimeScript® Buffer 2（for Real
ul
Time）
PrimeScript® RT Enzyme Mix Iμl
RT Primer Mixμl
①的反应液 ul
RNase Free dH
O up to 20 μl
2
③混合均匀后，在PCR仪上进行逆转录反应，反应条件为：
37℃ 15 min
85℃ 5 sec
然后将得到的cDNA存放于-20℃冰箱保存待用。