血细胞分析室内质控

➢ 各参数均值与定值的差异大于表中第二列数值时，需请维 修人员核查原因并进行处理。
➢ 各参数均值与定值的差异在表中第一列与第二列数值之间 时，需对仪器进行调整，将定值除以所测均值,求出校准系 数，乘以仪器原来的系数即为校准后系数，将校准后的系 数输入仪器更换原来的系数。
校准后系均 定 数值 值校准前系数
➢ 仪器校准完毕后，应填写仪器 性能评价及校准记录，保存相 关的原始资料。
➢ 校准记录
应用配套校准物和新鲜全血 联合校准血细胞分析仪的优点
➢ 满足了血细胞分析仪溯源性的要求。
➢ 由于新鲜抗凝血与病人标本完全相同，有效避免了 基质效应，能够真实评价不同仪器的检测水平，有效 提高了血细胞分析仪检测结果的可比性、一致性。 ➢ 经济实用，来源广泛。 ➢ 在参考仪器性能良好的状态下，科内其他仪器急需 校准时，由于校准物容易获得，可及时进行校准 。
控制规则
根据中华人民共和国国家标准： 临床实验室定量测定室内质量控制指南 的要求，全血细胞计数质控规则至少应 包含如下规则：
12s为警告规则 13s、 22S为失控规则
控制规则
➢ 警告（ 12S ）：1个质控物测定值落在±2s以外，
但仍在±3s内，该批病人结果仍然有效，即“在控 ”，但需引起注意。
质控品的测定
每个工作日开机后，在仪器自 检背景计数符合要求的前提下测定质控标 本。测试完毕后，注意将质控物瓶内盖上 残留血液擦拭干净，以免干枯,产生红细 胞碎片,影响PLT计数。
Levey-Jennings质控图的制作
➢ 靶值的设定 ➢ CV值和标准差的设定 ➢ 控制规则
靶值的设定
准确的说应该是设定质控图的中心线（均值），为便于区 分和理解，将其称之为靶值。
血细胞分析仪室内质控方法 ➢Levey-Jennings质控图法
质控频度 不超过24小时测定一次质控品，一般
每天开机后样本检测之前测定一次质控品。 质控流程
质控物准备→测定质控标本→制作 质控图→分析质控结果→失控情况处理→每 月数据汇总与评价。
质控物的选择及测定前的处理
➢质控品的选择：临床血液检验质控品一般为液 体，且质控品稳定期较短。不同公司生产的质控 物有不同的特性，考虑质控连续性，应尽可能长 地使用同一公司、相同批号质控物。 ➢质控品测定前的处理：从冰箱取出全血质控物， 在室温条件下静置15分钟，然后按要求将全血质 控物连续混匀5～10分钟，使质控物充分混匀。
L-J质量控制图的制作
现在仪器使用软件中都 有质控功能，避免了手工画 图。当然也可使用其他软件 制作室内质控图。
L-J质量控制图的制作
不管使用何种制图方法， 质控 图都应包括中心线、±1s、±2s、 ±3s控制限。
L-J质控图的应用
每天所测结果根据软件的功能直接 输入 或提取到对应项目的位置。图表曲线将自 动显示此次结果在质控图中的落点位置及 质控趋势。
建立完善的室内质控系统，以减少随机误差造成的 影响来保障；
二、准确度高，即测定结果正确，接近真值，主 要是消除或减少系统误差的影响，这可以通过选用 好的测定方法、进行正确校准、比对试验及参加室 间质评活动来保证。
➢ 精密是准确的基础，没有高精密度的测定结
果，就没有准确度的保证。
➢ 室内质量控制就是监测方法或者检测系统稳
校准流程
➢ 仪器准备（性能评价） ➢ 校准物准备 ➢ 检测校准物 ➢ 比较校准物检测均值与定值 ➢ 调整校准系数 ➢ 校准验证。
仪器准备
使用仪器配套清洗剂对仪器进行清 洗，确认仪器的背景计数（Background Counts ）、精密度及携带污染率在说明书规定的范围 内时，方可进行校准，否则须查找原因，必要 时请维修人员进行检修。
采集健康人新鲜抗凝静脉全血适量，每ml血中含 EDTA-K2抗凝剂的浓度为1.5-2.2mg。WBC、Hb、RBC、Hct、 Plt检测结果均在正常参考范围内，并无任何异常报警提示 。将所有新鲜血混匀后分装（其分装的试管数量根据需要而 定，至少3管），每管的血量约为2~3ml。取其中一管用经配 套校准物校准合格的血细胞分析仪作为规范操作的检测系统 连续检测11次，计算第2－11次检测结果的均值，以此均值 为新鲜血的定值。余下新鲜血作为定值的校准物用于其他仪 器的校准及验证。
➢ 失控： 13S 指一个质控结果超出了均值±3s界限后，须
采取措施。
22S 指在同一批检测的两个质控结果同时同方向
超出均值±2s的界限，或者连续两次不同批的质控 结果同方向超出均值±2s的界限。
失控原因分析
在检验工作中的误差有随机误差、系 统误差和过失误差三种类型，它们有各自不同的 特点、规律和来源，对它们的处理方法也不同。 对随机误差要严密监测和控制，使其限制在临床 允许的范围之内，并逐步使之缩小；对系统误差 则要求尽快发现，及时校正；对过失误差要尽量 杜绝。因此，在质量控制工作中，一个核心的问 误差的主要特征是具有抵偿性。原则上，
凡失去抵偿性即误差之和与零有明显偏离的就 不是纯随机误差。 ➢ 纯随机误差分布呈典型的正态分布。凡在质控 图中出现不符合正态分布的情形，即应考虑是 否存在非随机误差因素，并努力探索其出现规 律及原因，及时采取措施，予以纠正。
计算公式：
表1 仪器校准的判别标准
参数
WBC RBC Hb HCT
百分数差异
一列
二列
1.5%
10%
1.0%
10%
1.0%
10%
2.0%
10%
相差百 均 分 定 值 定 数 值 值 10 % 0
MCV PLT
1.0% 3.0%
10% 15%
校准系数的计算
➢ 各参数均值与定值的差异全部等于或小于表中第一列数值 时，仪器不需进行调整，记录测定数据即可。
背
WBC≤0.5×109/L
景 值 要
RBC≤0.05×1012/L Hb≤1.0g/L
求
Plt≤10×109/L
配套校准物的准备
制造商提供的配套校准物2瓶，检查 校准物是否超出效期，是否有变质或污染。将 校准物从冰箱内（2℃~8℃）取出后，在室温 （18℃~25℃）下放置15分钟，使其温度恢复 至室温；然后将校准物按要求连续混匀15分钟 ，使校准物充分混匀；打开瓶塞时，应垫上纱 布或软纸，使溅出的血液被吸收；最后将两瓶 校准物合在一起，混匀后再分装于两个瓶内。
质量控制要素
➢ 设施与环境 ➢ 检验方法、仪器及外部供应品 ➢ 操作手册 ➢ 方法性能规格的建立和确认 ➢ 仪器和检测系统的维护和功能检查 ➢ 校准和校准验证 ➢ 室内质量控制 ➢ 室间质量评价 ➢ 纠正措施 ➢ 质控记录
测定结果的可靠性包括两方面： 一 、精密度高，测定结果的重复性好，主要依靠
血细胞分析 室内质量控制
任力 松滋市人民医院检验科
前言
血细胞分析是每一位病人必查的常规检验项 目，其质量水平影响范围最广、涉及疾病最多，是临 床最常用的实验室检测指标，其结果的准确性和精密 度直接影响到对患者的诊断和治疗。血细胞分析仪代 替传统的手工法在血细胞分析工作中已经得到了广泛 的应用，准确性和精密度不容忽视，在长期的实践工 作中，已经形成了较为完善的质量保证体系。
校准结果的验证
将第2管未用的校准物充分混匀，在仪 器上重复检测11次，去除第1次结果，计算第2－ 11次检测结果的均值及各参数的均值与定值相差 的百分数，再次与表1中的标准进行对照。如各 参数均值与定值的差异全部等于或小于表中第一 列数值时，证明校准合格。如达不到要求，须请 维修人员进行检修。
利用定值新鲜血作为校准物进行校准
校准物的检测
取一瓶校准物在血细胞分析仪上连 续检测11次，第1次检测结果不用，以防止携 带污染。将结果记录于相应工作表格中，计 算第2－11次检测结果的均值，均值的小数点 后数字保留位数较日常报告结果多一位。
比较校准物检测均值与定值
计算各参数均值与定 值相差的百分数（不 计正负号），所得结 果与表1中的标准进行 比较，判别是否需要 调整仪器。
失控原因分析
➢ 系统误差是由实验系统中不同环节出现失误而 造成的，因此，只要实验中各个环节都不出现 差错，就不会出现系统误差，所以系统误差是 可以克服的。
➢ 过失误差实质上系统误差中的一种特殊形式， 引起此类误差的原因主要是人为因素，多属主 观责任性差错。
失控原因分析
各种类型的误差在实际工作中绝不是以单一 的、典型的形式存在的，因为每一个检测结果中都不 可避免地含有随机误差，而其他类型的误差总是在随 机误差存在的前提下存在的，常常容易被随机误差掩 盖。因此，质控图形分析的主要任务和基本思想就在 于在分析随机误差大小及其变化的同时，想方设法减 少随机误差的掩蔽作用，及时发现非随机误差，并进 一步分析其发生的原因，采取有效措施进行排除，使 单纯的回顾性质量控制发挥更积极的预测和指导作用 ，将实验结果控制在随机误差（固有误差）的范围内 ，而不能出现系统误差。
第一部分 血细胞分析仪的规范化校准
血细胞分析仪的校准
做好血细胞分析仪室内质控，其前提是血细胞 分析仪必须是经过校准的。根据国际血液学标准化 委员会（ICSH）颁布文件的要求，血细胞分析的检 测结果只有直接或间接地溯源至参考方法，才能保 证检测结果的准确性和不同实验室检测结果的可比 性。这就要求我们对血细胞分析检测系统使用配套 校准物或经准确定值的健康人新鲜全血进行校准。
➢ 系统误差：它是由实验系统中不同环节出现 失误造成的，只要实验中各个环节都不出现 差错，就不会出现系统误差，所以系统误差 是可以克服的。
何谓室内质量控制
室内质量控制，就是利用质控品测 定的数据制作质量控制图等手段，将实验结果 的误差控制在随机误差（固有误差）的范围内 ，同时避免系统误差的发生以及减少对实验结 果准确性的影响，确保仪器和实验方法的稳定 性。室内质量控制主要是针对个体实验室而言 ，是实验室内部技术管理的一类方法。