胡萝卜肉质根细胞的悬浮培养和不定芽的诱导(实验报告)
小新家里有些品相很好的胡萝卜,想大量繁殖,设计实验
小新家里有些品相很好的胡萝卜,想大量繁殖,设计
实验
一.实验设计
实验序号实验一实验名称胡萝卜肉质根愈伤组织诱导、继代增殖、细胞悬
浮及体细胞胚胎发生培养实验
实验时间20XX年X月到X月实验室325
实验内容:
实验1—1MS培养基母液的配制与保存
实验1—2MS固体培养基配制
实验1—3胡萝卜肉质根愈伤组织诱导培养(初代培养)
实验1—4胡萝卜愈伤组织培养
实验1—5胡萝卜愈伤组织继代增殖培养
实验1—6胡萝卜细胞悬浮培养
实验1—7胡萝卜愈伤组织器官分化培养
一.实验目的
(1):使学生能熟练准确配制MS培养基母液和组培室常用的化学试剂,巩固相关理论基础知识。
(2):通过MS固体培养基的配制,掌握配制培养基的基本技能。
(3):使同学能够熟练掌握外植体的表面消毒技术和无菌操作技术,并且基本掌握愈伤组织的诱导培养。
(4):使同学熟练掌握愈伤组织培养的基本操作技术,进一步熟悉、规范无菌操作技术。
(5):使同学熟练掌握愈伤组织继代增殖培养的基本操作技术,进一步熟悉、规范无菌操作技术。
(6):使同学熟练掌握胡萝卜细胞悬浮培养的基本操作技术,进一步熟悉、规范无菌操作技术。
(7):使同学了解胡萝卜愈伤组织器官分化培养的基本操作技术。
红萝卜接种实验报告
一、实验目的1. 了解红萝卜组织培养的基本原理和方法。
2. 掌握红萝卜愈伤组织的诱导、继代培养和细胞悬浮培养技术。
3. 学习红萝卜体细胞胚胎发生培养的方法,为后续的遗传转化和育种研究奠定基础。
二、实验材料与试剂1. 红萝卜:选用新鲜、健康、无病虫害的胡萝卜肉质根。
2. 培养基:MS培养基、1/2MS培养基、胡萝卜培养基母液。
3. 试剂:70%乙醇、氯化汞、无菌水、滤纸、镊子、剪刀、培养皿、培养箱等。
三、实验步骤1. 红萝卜外植体消毒与切割- 将红萝卜肉质根表面消毒后,用剪刀切成1cm×1cm的小块。
- 将消毒后的外植体放入70%乙醇中浸泡30秒,然后用氯化汞溶液消毒5分钟,最后用无菌水冲洗3次。
2. 愈伤组织诱导- 将消毒后的外植体接种于诱导培养基(MS培养基+6-BA 1.0mg/L+NAA0.5mg/L)中。
- 将培养皿放入培养箱中,在25℃、光照12小时/天条件下培养。
3. 继代培养- 当愈伤组织形成后,将其转移到继代培养基(1/2MS培养基+6-BA0.5mg/L+NAA 0.1mg/L)中。
- 每20天更换一次培养基,以保持愈伤组织的生长和增殖。
4. 细胞悬浮培养- 将继代培养的愈伤组织转移到细胞悬浮培养基(MS培养基+6-BA0.5mg/L+NAA 0.1mg/L)中。
- 在摇床上培养,转速为100r/min,光照条件同继代培养。
5. 体细胞胚胎发生培养- 将细胞悬浮培养的愈伤组织转移到体细胞胚胎发生培养基(MS培养基+2,4-D 0.5mg/L+KT 1.0mg/L)中。
- 在光照条件下培养,待愈伤组织形成胚胎后,将其转移到固体培养基上培养。
四、实验结果与分析1. 愈伤组织诱导- 在诱导培养基中,红萝卜外植体在5-7天内开始产生愈伤组织,愈伤组织呈白色、半透明状。
2. 继代培养- 在继代培养基中,愈伤组织增殖速度较快,每20天可增殖1倍。
3. 细胞悬浮培养- 在细胞悬浮培养基中,愈伤组织逐渐形成细胞悬浮液,细胞悬浮液呈白色、半透明状。
组织培养实验报告
目录实验一MS培养基母液的配制 (2)一.实验目的 (2)二.实验原理 (2)三.实验材料 (2)四、实验步骤 (2)五.总结分析 (3)实验二MS培养基的配制与灭菌 (4)一.实验目的 (4)二.实验原理 (4)三.实验材料 (4)四.实验步骤 (4)实验三胡萝卜愈伤组织的诱导 (5)一.实验目的 (5)二.实验原理 (6)三.实验材料 (6)四.实验步骤 (6)五.实验结果 (7)六.分析讨论 (8)实验四激素的过滤添加法及MS诱导芽培养基的制作 (8)一.实验目的 (8)二.实验原理 (9)三.实验步骤 (9)实验五栀子花茎段的侧芽快繁诱导 (10)一.实验目的 (10)二.实验原理 (10)三.实验材料 (10)四、实验步骤 (10)五、实验结果 (11)六、分析讨论 (11)实验综合总结 (12)(一)实验注意事项总结 (12)(二)实验结果总结 (13)实验一MS培养基母液的配制一.实验目的(一)掌握培养基的化学组成;掌握MS培养基的配方组成;(二)熟练掌握常用培养基母液的制备方法。
二.实验原理在植物组织培养中,配制培养基是经常性的工作。
为了准确称量和快速移取,以及便于贮藏,通常是把培养基先配制成一系列浓缩液,即母液。
母液的浓缩倍数一般为10~100倍,可分为大量元素母液、微量元素母液、有机物质母液(维生素、氨基酸等)、铁盐母液和激素类母液五种。
培养基的种类非常之多,比如White ,Heller,MS,ER,B5,Nitsch,N6等培养基。
MS培养基是使用最为普遍的培养基配,其具有较高的无机盐浓度,能够保证组织生长所需的矿质营养还能加速愈伤组织的生长。
当培养物久不转移时仍可维持其生存。
三.实验材料配制MS培养基所需药品;电子天平1台;500 ml烧杯;100 ml烧杯;量筒(100 ml);定容瓶(1000ml);蒸馏水;95%酒精;0.1mol∕LNaOH;0.1mol∕L HCL;棕色细口母液瓶;玻璃棒;标签纸等。
胡萝卜的植物学实验报告
一、实验目的1. 了解胡萝卜的植物学特征,包括根、茎、叶等器官的结构和功能。
2. 学习植物组织培养技术,掌握胡萝卜愈伤组织的诱导、继代增殖和细胞悬浮培养方法。
3. 了解胡萝卜细胞悬浮培养的遗传转化和抗性筛选技术。
二、实验材料与仪器1. 实验材料:胡萝卜种子、MS培养基、植物激素、抗生素等。
2. 实验仪器:超净工作台、显微镜、高压蒸汽灭菌器、培养箱、移液器、剪刀、镊子等。
三、实验方法1. 胡萝卜种子萌发实验(1)将胡萝卜种子用70%乙醇消毒30秒,再用无菌水清洗3次。
(2)将消毒后的种子播种于含有1/2MS培养基的发芽盒中,置于培养箱中,保持25℃、光照/黑暗各12小时。
(3)观察胡萝卜种子发芽过程,记录发芽率、发芽时间等数据。
2. 胡萝卜根、茎、叶结构观察实验(1)取胡萝卜根、茎、叶样本,用FAA固定液固定。
(2)制作切片,进行染色。
(3)观察显微镜下的胡萝卜根、茎、叶结构,记录观察结果。
3. 胡萝卜愈伤组织诱导实验(1)将胡萝卜根切成小块,用70%乙醇消毒30秒,再用无菌水清洗3次。
(2)将消毒后的胡萝卜根块接种于含有植物激素(如NAA、IBA)的MS培养基中。
(3)将培养皿置于培养箱中,保持25℃、光照/黑暗各12小时。
(4)观察愈伤组织形成过程,记录愈伤组织形成时间、愈伤组织颜色等数据。
4. 胡萝卜细胞悬浮培养实验(1)将愈伤组织剪碎,接种于含有植物激素(如NAA、IBA)的MS培养基中。
(2)将培养皿置于培养箱中,保持25℃、光照/黑暗各12小时。
(3)观察细胞悬浮培养过程,记录细胞悬浮培养时间、细胞悬浮培养密度等数据。
5. 胡萝卜遗传转化实验(1)将细胞悬浮培养物接种于含有遗传转化质粒的培养基中。
(2)将培养皿置于培养箱中,保持25℃、光照/黑暗各12小时。
(3)观察转化细胞生长情况,记录转化率。
6. 胡萝卜抗性筛选实验(1)将转化细胞接种于含有抗生素的培养基中。
(2)观察转化细胞在抗生素培养基中的生长情况,筛选出抗性细胞。
悬浮培养
本次实验在细胞的悬浮培养时很成功,实验材料没被污染,但是单细胞数不时很多,这可能是由于培养的时间还不够。
在胚状体的诱导时,实验结果中长出了许多细胞团,新长出来的颜色较浅(淡黄色),并且没被污染,但是没有找到胚状体结构。这可能是因为培养的时间不足,以及实验条件出差错导致的。
教师评语及评分:
签名:年月日
5.6王小菁,李玲编,《植物生长调节剂在植物组织培养中的应用》,2002-9-1,化学工业出版社;
二.实验报告
1.实验现象与结果
(1)胡萝卜细胞的悬浮培养
(2)胚状体诱导培养
液体培养基中新长出了许多细胞团,新长出来的颜色较浅(淡黄色),比较疏松,质轻,悬浮于液体培养基的中上层的少,沉底的较多,瓶壁上也有,但是无胚状体长出。
5.2李胜,李唯主编,《植物组织培养原理与技术》,2008年01月,化学工业出版社;
5.3程家胜编,《植物组织培养与工厂化育苗技术》,2003年1月1日,金盾出版社;
5.4潘瑞炽编,《植物组织培养》,2003-8-1,广东高等教育出版社;
5.5 孙静三,桂耀林主编,《植物细胞工程实验技术》北京:科学出版社,1995;
3.实验设备及材料
3.1实验设备
普通天平,分析天平,各种型号的试剂瓶(棕色和白色)、移液管、量筒、烧杯、容量瓶,搪瓷杯,pH试纸(pH5.4~7.0),药勺,称量纸,玻棒,标签纸,电炉、镊子、打孔器、培养皿、无菌尼龙滤网、细胞筛等。
3.2实验试剂
硝酸铵、硝酸钾、氯化钙、硫酸镁、磷酸二氢钾、碘化钾、硫酸锰、硫酸锌、钼酸钠、硫酸铜、氯化钴、乙二胺四乙酸二钠、硫酸亚铁、甘氨酸、盐酸硫胺素、盐酸吡哆素、烟酸、肌醇、2,4-D(2,4-二氯苯氧乙酸)、NAA(α-萘乙酸)、6-BA(6-苄基腺嘌呤)、浓盐酸、氢氧化钠、95%酒精、蒸馏水、MS培养基母液、琼脂、蔗糖、生长调节物质、1mol·L-1HCl、1mol·L-1NaOH、苔酚蓝等。
胡萝卜悬浮培养
实验名称:胡萝卜细胞悬浮培养和体细胞胚胎发生实验时间:2010-5一、实验预习1、实验目的:1.1、过本次实验,使同学熟练掌握愈伤组织继代培养的基本操作技术,进一步熟悉、规范无菌操作技术。
1.2、设计和配制胡萝卜细胞悬浮培养的培养基。
1.3、胚状体的诱导发生。
2、实验设备及材料:2.1、主要实验用具和仪器冰箱、普通天平、分析天平、各种型号的试剂瓶、移液管、量筒、烧杯、容量瓶、搪瓷杯。
PH试纸、药勺、称量纸、灭菌锅、摇床等。
2.2药瓶和试剂硝酸铵、硝酸钾、氯化钙、硫酸镁、磷酸二氢钾、碘化钾、硫酸锰、硫酸锌、钼酸钠、硫酸铜、氯化钴、乙二胺四乙酸二钠、硫酸亚铁、甘氨酸、盐酸硫胺素、盐酸吡哆素、烟酸、肌醇、2、4-D、NAA(a-萘乙酸)、6-BA(6-苄基腺嘌呤)、弄盐酸、氢氧化钠、95%酒精、蒸馏水、水解酪蛋白、氯化汞等。
2.3、实验材料:胡萝卜愈伤组织3、实验原理及实验流程或装置示意图:3.1、实验原理胚状体方式:指由培养细胞诱导分化出具胚芽、胚根、胚轴的胚状结构,进而长成完整植株。
胚状体形成在植物有性生殖中,精子和卵结合形成合子,合子进一步发育成胚。
但在组织培养条件下胚状体的发育过程是:细胞经脱分化后,发生持续细胞分裂增殖,并依次经过原胚期、球形胚期、心形胚期、鱼雷形胚期和子叶期,进而成为成熟的有机体。
我们把由愈伤组织的类似薄壁组织细胞不经有性过程而直接产生类似胚的这一结构,称为胚状体。
在生长素比细胞分裂素比值高的时候使细胞进行增殖。
水解酪蛋白属于铵态氮,对胚状体诱导起重要作用。
3.2、实验流程3.3、装置示意图4、实验方法步骤及注意事项:4.1、培养基的配制(1)、继代培养基MS基本培养基+0.1mg/L 6-BA+2mg/L NAA + 200mg/L水解酪蛋白+ 3%蔗糖(2)、诱导培养基MS基本培养基+200mg/L水解酪蛋白+3%蔗糖4.2、在无菌条件下,用镊子夹取胡萝卜根的愈伤组织,置于一个无菌培养苗当中,将愈伤组织切成适当大小,同样也可以将愈伤组织捏碎,用解剖刀挑取愈伤组织接种于细胞悬浮培养基中。
胡萝卜愈伤组织的诱导及细胞悬浮培养研究
胡萝卜愈伤组织的诱导及细胞悬浮培养研究
尹文兵;李丽娟;黄勤妮;李艳红
【期刊名称】《山西师范大学学报(自然科学版)》
【年(卷),期】2004(018)002
【摘要】分别以胡萝卜子叶、下胚轴和直根形成层为外植体诱导出愈伤组织,并建立细胞悬浮系.实验结果表明:胡萝卜下胚轴是诱导愈伤组织和进行细胞悬浮培养的理想外植体;诱导松散型愈伤组织的最佳激素浓度配比是1.0mg/L 2,4-D+0.5mg/L KT;细胞悬浮培养细胞最佳起始密度为1.125×104个/mL~2.325×104个/50mL 时,7d~9d为对数生长期;继代培养4代~5代时,可得到稳定的悬浮细胞系.
【总页数】6页(P71-76)
【作者】尹文兵;李丽娟;黄勤妮;李艳红
【作者单位】首都师范大学生物系,北京,100337;首都师范大学生物系,北
京,100337;首都师范大学生物系,北京,100337;首都师范大学生物系,北京,100337【正文语种】中文
【中图分类】S631.2
【相关文献】
1.花椒愈伤组织诱导及细胞悬浮培养研究 [J], 周正君;田晶;李周岐
2.当归愈伤组织诱导及其细胞悬浮培养的研究 [J], 陶金华;江曙;杨念云;段金廒;钱大玮
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5.金银花疏松愈伤组织诱导及细胞悬浮培养研究 [J], 武丽娜
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胡萝卜愈伤组织培养及继代培养要点
本科学生综合性实验报告
学号:104120265 姓名:段昌福
学院:生命科学学院专业、班级:10应用生物教育B班实验课程名称:胡萝卜肉质根愈伤组织诱导、继代增殖、细胞悬浮及体细胞胚胎发生培养实验
教师:杨世忠
开课学期:2013 至2014 学年第二学期填报时间:2013 年 6 月日
云南师范大学教务处编印
)无菌操作流程:
二.实验报告
书中横卧着整个过去的灵魂——卡莱尔
人的影响短暂而微弱,书的影响则广泛而深远——普希金
人离开了书,如同离开空气一样不能生活——科洛廖夫
书不仅是生活,而且是现在、过去和未来文化生活的源泉——库法耶夫
书籍把我们引入最美好的社会,使我们认识各个时代的伟大智者———史美尔斯
书籍便是这种改造灵魂的工具。
人类所需要的,是富有启发性的养料。
而阅读,则正是这种养料———雨果。
胡萝卜悬浮细胞系及高效再生系统的建立(范例)
胡萝卜悬浮细胞系及高效再生系统的建立摘要:以胡萝卜块根为材料诱导愈伤组织,并建立悬浮细胞系,然后将悬浮细胞和愈伤组织分别转入分化培养基进行分化培养。
结果表明,胡萝卜块根形成层愈伤组织诱导率为100%,最佳激素种类和用量为2,4-D 0.1mg/L;根据外观可将愈伤组织大致分为4种类型, I型是直接建立悬浮细胞系的良好来源,III型经继代培养后可用于悬浮细胞系的建立;静止法是胡萝卜悬浮细胞系简单而有效的继代方法;胡萝卜愈伤组织分化的最佳培养基是MS或B5基本培养基,MS培养基上的再生苗可直接生根,而B5培养基上的再生苗在原培养基上很难生根,需要转移到MS培养基上才能生根。
关键词:胡萝卜;愈伤组织;悬浮细胞系;继代;分化胡萝卜(Daucuscarota L.)属于伞形花科植物,是世界上最重要的蔬菜作物之一,栽培面积非常广泛,占蔬菜生产总量的3%,达1350万t[1]。
胡萝卜块根营养丰富,富含糖和植物纤维等,特别是富含胡萝卜素,是一种重要的营养保健品,因此,对胡萝卜进行遗传育种研究已成为迫切需要。
植物悬浮细胞系可以用来分离原生质、制造人工种子、筛选突变体、生产次生代谢物质以及进行植物细胞代谢生理、生化特征等方面的研究。
另外,胡萝卜悬浮细胞系还是遗传转化的理想受体。
本试验通过建立一个成功的悬浮细胞系和再生体系,为胡萝卜在其他方面的研究奠定一定的基础。
1 材料与方法1.1 植物材料胡萝卜块根1.2 方法1.2.1 愈伤组织的诱导选用健康完整的胡萝卜直根清洗干净,用小刀切去底部和顶部,然后将其切成小段,浸泡于75%的乙醇中消毒5min,再用0.1%的升汞浸泡10min,然后用无菌水彻底漂洗,每次停留1~2 min。
用消毒过的小刀将已灭菌的胡萝卜块根两端和外层部分切去,再横切成厚度1mm左右的小圆片,然后将小圆片的韧皮部和木质部切除,并切成长约2mm,宽1.5mm的小长块,接种在诱导培养基上,25℃,暗培养。
植物细胞悬浮培养(组培实验报告)
3、 继代培养。 (由于时间关系以及条件有限, 本次实验只进行了一次悬浮培养) 在接种两个星期之后继代。继代方法是:先用孔径为 100um 的无菌尼龙滤筛 将培养物滤去。除去滤筛上的愈伤组织碎块和大的细胞团。
4、通过镜检查看实验结果。 用一定规格的无菌尼龙滤筛将培养物过滤,滤出含单细胞的液体盛于一洁净 的培养皿内。在倒置显微镜下观察单细胞。 (理论上还应对培养物中进行单细胞计数以及活力测定,但因条件有限,未 能完成。这是本次实验的一大遗憾。 )
罐内,再分别加入新鲜培养基继续进行培养,如此这样频繁地进行再培养。半 连续培养能够重复获得大量均匀一致的培养细胞供生化研究之用。 连续培养(continuous culture)是利用特制的培养容器进行大规模细胞培 养的一种方式。连续培养的特点是:在连续培养中由于不断注入新鲜培养基, 排掉旧的培养基,保证养分的充足供应,不会出现悬浮培养物发生营养亏缺的 现象。连续培养可在培养期间内使细胞长久地保持在对数生长期中,细胞增殖 速度快。连续培养适于大规模工厂化生产。连续培养有封闭型和开放型之分。 (4)细胞悬浮培养的培养基 从理论上讲,能形成生长快、疏松愈伤组织的培养基一般来说也同样适用于建 立该物种的悬浮培养,只是琼脂当然要从中去掉。旺盛生长的悬浮培养物中, 无机磷酸盐迅速地被利用,以致使无机磷酸盐成为了一个限制生长的因素。此 外,培养基的 pH 值和启动密度也是不容忽视的。pH 值可能随细胞生物产量的 增加而改变。需要监测和调整悬浮培养物中的 pH 值。启动低密度细胞培养时, 要条件培养基。 (5)由悬浮细胞再生植株的途径:由悬浮细胞直接形成体细胞胚:先将悬 浮细胞在半固体培养基上诱导形成愈伤组织,然后再由愈伤组织分化植株。 由愈伤组织的类似薄壁组织细胞不经有性过程而直接产生类似胚的这一结 构,称为胚状体。胚状体方式:指由培养细胞诱导分化出具胚芽、胚根、胚轴 的胚状结构,进而长成完整植株。胚状体形成在植物有性生殖中,精子和卵结 合形成合子, 合子进一步发育成胚。 但在组织培养条件下胚状体的发育过程是: 细胞经脱分化后,发生持续细胞分裂增殖,并依次经过原胚期、球形胚期、心 形胚期、鱼雷形胚期和子叶期,进而成为成熟的有机体。在生长素比细胞分裂 素比值高的时候使细胞进行增殖。水解酪蛋白属于铵态氮,对胚状体诱导起重 要作用。 (6)悬浮培养中细胞生长的测定常用方法: 细胞计数、细胞密实体积(packed cell volume,PCV)、细胞鲜重、 重、细胞有丝分裂的指数。 (7)培养细胞活力的测定常用方法: 相差显微术法、四唑盐还原法(TTC 法)、荧光素二乙酸酯法(FDA 法)、伊凡蓝 染色法。 细胞干
胡萝卜肉质根细胞的悬浮培养和不定芽的诱导(实验报告)
根愈伤组织转接到胡萝卜细胞悬浮培养基中,于 25 ℃、全黑暗、摇床上震荡培养 以分离得到单细胞[5]。 (3)胡萝卜肉质根愈伤组织再分化培养 将实验 3-1 建立的生长状态良好、色泽新鲜、结构紧密的胡萝卜肉质根愈伤组 织转接到胡萝卜不定芽分化培养基上,置于温度 25 ℃ 、光照时间 14 h/d、光照强 度 1000~2000Lx 条件下诱导胡萝卜愈伤组织再分化成苗(或丛芽)[6]。 (4)培养结果 文字描述配合图片记录培养结果 Ⅳ、镜检 用无菌尼龙滤网将培养物滤去。除去滤网上的愈伤组织碎块和大的细胞团。留 下胡萝卜细胞液,用滴管吸取一滴在培养皿上,用台盼蓝染色,然后置于倒置显微 镜下观察。也可以做成临时装片进行观察。
3)、材料:
胡萝卜肉质根愈伤组织
4.实验方法步骤及注意事项 实验步骤:
Ⅰ、胡萝卜愈伤组织的增殖培养 (1) 、准备工作 ①接种室的清洁和消毒;②超净工作台的开机和消毒;③解剖刀、镊子、已灭 菌培养皿和滤纸、待用培养基等的准备;④实验材料的准备(选择无污染、愈伤组 织生长状态良好、色泽新鲜的材料摆放于净工作台上) 。 (2) 、愈伤组织增殖培养 将实验 1 建立的生长状态良好、色泽新鲜未褐化的胡萝卜肉质根愈伤组织转接 到愈伤组织增殖培养基上,放置在 25 ℃全黑暗条件下进行愈伤组织的增值培养[4], 以获得足够数量、质地良好的愈伤组织,作为胡萝卜细胞悬浮培养的实验材料。 (3) 、培养结果 文字描述配合图片记录培养结果 Ⅱ、胡萝卜细胞悬浮培养培养基和不定芽分化培养基的配制 (1) 、胡萝卜细胞悬浮培养培养基和不定芽分化培养基的配方及体积 ①胡萝卜不定芽分化培养基 配方: MS+0.1mg/L NAA + 1mg/L 6-BA + 0.7 %琼脂+3%蔗糖,pH5.8 配制体积:每小组配制 0.5L,用 50ml 三角瓶分装成 20 瓶,每人 2 瓶。 ②胡萝卜细胞悬浮培养培养基 配方: MS+1mg/L 2,4-D + 0.5mg/L 6-BA+200mg/L 水解酪蛋白+3%蔗糖,pH5.8 配制体积:每小组配制 0.5L,用 100ml 三角瓶分装成 20 瓶,每人 2 瓶。 (2) 、胡萝卜愈伤组织增殖培养基的配制 ①药品及用具的准备;②培养基配制;③调节培养基的酸碱性至 pH5.8;④培 养基的分装;⑤培养基的灭菌。 Ⅲ、胡萝卜细胞悬浮培养和不定芽分化 (1) 、准备工作 ①接种室的清洁和消毒;②超净工作台的开机和消毒;③解剖刀、镊子、已灭 菌培养皿和滤纸、待用培养基等的准备;④实验材料的准备(选择无污染、愈伤组 织生长状态良好、色泽新鲜的材料摆放于净工作台上) (2) 、胡萝卜细胞的悬浮培养 将实验 3-1 建立的生长状态良好、色泽新鲜、结构松散、无污染的胡萝卜肉质
生物胡萝卜实验报告
一、实验目的1. 掌握植物组织培养的基本原理和方法。
2. 学习胡萝卜愈伤组织的诱导、继代培养和细胞悬浮培养技术。
3. 了解胡萝卜体细胞胚胎发生培养的过程。
二、实验原理植物组织培养技术是利用植物细胞的全能性,通过人工控制培养条件,使植物细胞或组织在体外发育成完整植株的技术。
胡萝卜愈伤组织诱导、继代培养和细胞悬浮培养是植物组织培养技术中的重要环节。
三、实验材料与仪器材料:- 胡萝卜- MS培养基- 营养液- 消毒剂- 玻璃器皿- 移液器- 高压蒸汽灭菌器- 恒温培养箱四、实验步骤1. 胡萝卜外植体消毒- 将胡萝卜洗净,切成小块,用70%酒精消毒30秒,然后用无菌水冲洗3次。
- 将消毒后的胡萝卜小块接种于MS培养基中。
2. 愈伤组织诱导- 将接种后的胡萝卜小块放入恒温培养箱中培养,温度控制在25℃左右,光照时间为12小时/天。
- 观察胡萝卜小块的愈伤组织形成情况。
3. 愈伤组织继代培养- 将形成的愈伤组织转移到新的MS培养基中进行继代培养。
- 继代培养过程中,每隔一段时间更换一次培养基。
4. 细胞悬浮培养- 将继代培养后的愈伤组织切成小块,接种于营养液中。
- 将接种后的细胞悬浮培养于恒温培养箱中,温度控制在25℃左右,光照时间为12小时/天。
- 观察细胞悬浮培养过程中细胞生长和繁殖情况。
5. 胡萝卜体细胞胚胎发生培养- 将细胞悬浮培养获得的细胞转移到新的培养基中进行胚胎发生培养。
- 观察胚胎发生培养过程中胚胎的形成情况。
五、实验结果与分析1. 愈伤组织诱导- 在适宜的培养条件下,胡萝卜小块逐渐形成愈伤组织。
2. 愈伤组织继代培养- 经过继代培养,愈伤组织数量增加,体积增大。
3. 细胞悬浮培养- 细胞悬浮培养过程中,细胞生长和繁殖良好,形成了大量悬浮细胞。
4. 胡萝卜体细胞胚胎发生培养- 胚胎发生培养过程中,部分细胞形成了胚胎,进一步发育成胡萝卜植株。
六、实验结论1. 通过本实验,成功诱导了胡萝卜愈伤组织。
培育胡萝卜实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解植物组织培养的基本原理和操作技术。
2. 掌握胡萝卜愈伤组织的诱导、继代增殖和细胞悬浮培养的方法。
3. 熟悉胡萝卜体细胞胚胎发生培养过程。
二、实验材料与仪器1. 实验材料:新鲜胡萝卜肉质根、MS培养基、植物激素、无菌水、75%酒精、无菌滤纸等。
2. 实验仪器:超净工作台、高压蒸汽灭菌器、电子天平、显微镜、移液枪、培养皿、培养箱等。
三、实验方法1. 胡萝卜愈伤组织的诱导- 将新鲜胡萝卜肉质根洗净,切成小块,用75%酒精消毒30秒,无菌水冲洗3次。
- 将消毒后的胡萝卜小块接种于诱导培养基(MS培养基+2,4-D 1mg/L+6-BA1mg/L)中,在无菌条件下进行培养。
- 观察胡萝卜小块的愈伤组织形成情况。
2. 胡萝卜愈伤组织的继代增殖- 将诱导出的愈伤组织切割成小块,接种于继代培养基(MS培养基+2,4-D0.5mg/L+6-BA 0.5mg/L)中。
- 在无菌条件下进行培养,观察愈伤组织的增殖情况。
3. 胡萝卜细胞悬浮培养- 将继代增殖后的愈伤组织用无菌水冲洗,剪碎,加入适量MS培养基和植物激素(2,4-D 0.1mg/L+6-BA 0.1mg/L)。
- 在无菌条件下进行搅拌,使愈伤组织细胞悬浮。
- 将悬浮细胞接种于细胞悬浮培养基(MS培养基+2,4-D 0.1mg/L+6-BA0.1mg/L)中,在无菌条件下进行培养。
- 观察细胞悬浮培养的生长情况。
4. 胡萝卜体细胞胚胎发生培养- 将细胞悬浮培养得到的愈伤组织细胞,用无菌水冲洗,剪碎,加入适量MS培养基和植物激素(NAA 0.1mg/L+KT 0.1mg/L)。
- 在无菌条件下进行搅拌,使愈伤组织细胞悬浮。
- 将悬浮细胞接种于体细胞胚胎发生培养基(MS培养基+NAA 0.1mg/L+KT0.1mg/L)中,在无菌条件下进行培养。
- 观察体细胞胚胎发生培养的生长情况。
四、实验结果与分析1. 胡萝卜愈伤组织的诱导- 经过诱导培养,胡萝卜小块表面逐渐出现愈伤组织,愈伤组织呈白色、半透明状,质地较软。
胡萝卜的实验报告
一、实验目的1. 了解植物组织培养的基本原理和方法。
2. 掌握胡萝卜组织培养的操作步骤。
3. 观察胡萝卜愈伤组织诱导、增殖、分化等过程。
4. 分析胡萝卜组织培养的实验结果,探讨影响实验效果的因素。
二、实验材料与仪器1. 实验材料:胡萝卜、无菌手术刀、镊子、剪刀、无菌滤纸、无菌水、无菌培养基等。
2. 实验仪器:超净工作台、培养箱、显微镜、电子天平、移液器、培养皿等。
三、实验方法1. 胡萝卜外植体准备:将胡萝卜洗净,用无菌手术刀将胡萝卜根切成小块,每个小块约1cm×1cm,放入75%酒精中消毒30秒,再用无菌水冲洗3次。
2. 胡萝卜愈伤组织诱导:将消毒后的胡萝卜小块接种于MS培养基中,培养温度为25℃±2℃,光照强度为2000lx,光照时间为12小时/天。
3. 胡萝卜愈伤组织增殖:待愈伤组织形成后,将其转接到增殖培养基中,继续培养。
4. 胡萝卜愈伤组织分化:将增殖后的愈伤组织转接到分化培养基中,诱导其分化成植株。
5. 观察与记录:定期观察胡萝卜愈伤组织的生长状况,记录实验数据。
四、实验结果与分析1. 胡萝卜愈伤组织诱导:在MS培养基中,胡萝卜小块经过7天培养,部分小块开始形成愈伤组织,愈伤组织呈白色、半透明状。
2. 胡萝卜愈伤组织增殖:在增殖培养基中,愈伤组织经过10天培养,体积明显增大,颜色逐渐变深。
3. 胡萝卜愈伤组织分化:在分化培养基中,愈伤组织经过15天培养,部分愈伤组织分化出芽和叶片,形成完整的植株。
4. 影响实验效果的因素分析:(1)培养基配方:MS培养基中含有丰富的营养成分,有利于胡萝卜愈伤组织的生长和分化。
(2)外植体消毒:消毒效果直接影响愈伤组织的形成和生长,消毒时间不宜过长,以免损伤外植体。
(3)光照条件:光照强度和光照时间对愈伤组织的生长和分化有重要影响,适宜的光照条件有利于愈伤组织的形成和分化。
(4)温度:温度是影响胡萝卜愈伤组织生长和分化的关键因素,适宜的温度有利于愈伤组织的生长和分化。
胡萝卜细胞的悬浮培养
本科学生综合性实验报告学号姓名学院生命科学学院专业、班级实验课程名称植物组织培养实验教师及职称开课学期2012 至2013 学年上学期填报时间2012 年 6 月18 日一、试验设计方案实验序号三实验名称胡萝卜细胞的悬浮培养实验时间2012-4-10至2012-6-15实验室1.实验目的①了解植物细胞悬浮培养的基本原理,通过实验掌握植物细胞悬浮培养的方法和技术。
②通过实验练习和巩固无菌操作技术。
2、实验原理、实验流程或装置示意图实验原理利用固体琼脂培养基对植物的离体组织进行培养的方法在植物遗传实验中已经得到广泛的应用。
但这种方法在某些方面还存在一些缺点,比如在培养过程中,植物的愈伤组织在生长过程中的营养成分、植物组织产生的代谢物质呈现一个梯度分布,而且琼脂本身也有一些不明的物质成分可能对培养物产生影响,从而导致植物组织生长发育过程中代谢的改变而利用液体培养基则可以克服这一缺点,当植物的组织在液体培养基中生长时,我们可以通过薄层震荡培养或向培养基中通气用以改善培养基中氧气的供应。
植物细胞的悬浮培养是指将植物细胞或较小的细胞团悬浮在液体培养基中进行培养,在培养过程中能够保持良好的分散状态。
这些小的细胞聚合体通常来自植物的愈伤组织。
一般的操作过程是把未分化的愈伤组织转移到液体培养基中进行培养。
在培养过程中不断进行旋转震荡,一般可用100~12Or/min 的速度进行。
由于液体培养基的旋转和震荡,使得愈伤组织上分裂的细胞不断游离下来。
在液体培养基中的培养物是混杂的,既有游离的单个细胞,也有较大的细胞团块,还有接种物的死细胞残渣。
在液体悬浮培养过程中应注意及时进行细胞继代培养,因为当培养物生长到一定时期将进入分裂的静止期。
对于多数悬浮培养物来说,细胞在培养到第18~25d 时达到最大的密度,此时应进行第一次继代培养。
在继代培养时,应将较大的细胞团块和接种物残渣除去。
若从植物器官或组织开始建立细胞悬浮培养体系,就包括愈伤组织的诱导、继代培养、单细胞分离和悬浮培养。
胡萝卜生物实验报告
一、实验目的1. 了解植物组织培养的基本原理和操作技术。
2. 掌握胡萝卜愈伤组织的诱导、继代培养和分化技术。
3. 学习无菌操作技术,提高实验技能。
二、实验材料与试剂1. 实验材料:新鲜胡萝卜肉质根。
2. 试剂:75%酒精、无菌水、氯化汞、无菌滤纸、无菌剪刀、无菌镊子、无菌试管、无菌培养皿、MS培养基母液、琼脂、蔗糖、植物激素等。
三、实验方法1. 胡萝卜外植体的消毒- 将胡萝卜肉质根洗净,用无菌剪刀切成小块。
- 将胡萝卜小块放入装有75%酒精的无菌试管中,浸泡30秒。
- 取出胡萝卜小块,用无菌水冲洗3-5次。
- 将胡萝卜小块放入装有氯化汞的无菌试管中,浸泡5分钟。
- 取出胡萝卜小块,用无菌水冲洗3-5次。
2. 胡萝卜愈伤组织的诱导- 将消毒后的胡萝卜小块接种于诱导培养基上。
- 将接种后的培养皿放入培养箱中,在适宜温度和光照条件下培养。
3. 胡萝卜愈伤组织的继代培养- 待愈伤组织长到一定大小后,将其切割成小块。
- 将小块愈伤组织接种于继代培养基上。
- 同样在适宜条件下培养。
4. 胡萝卜愈伤组织的分化- 待愈伤组织分化出芽苗后,将其转移到分化培养基上。
- 在适宜条件下培养,直至芽苗长成植株。
四、实验结果1. 胡萝卜外植体的消毒- 消毒后的胡萝卜小块表面无残留杂质,符合无菌操作要求。
2. 胡萝卜愈伤组织的诱导- 经过诱导培养,胡萝卜小块逐渐形成愈伤组织。
3. 胡萝卜愈伤组织的继代培养- 经过继代培养,愈伤组织数量和体积逐渐增加。
4. 胡萝卜愈伤组织的分化- 经过分化培养,愈伤组织分化出芽苗,最终长成植株。
五、实验讨论1. 本实验中,胡萝卜愈伤组织的诱导、继代培养和分化均取得了成功,说明植物组织培养技术在胡萝卜组织培养中具有可行性。
2. 实验过程中,无菌操作是关键环节。
只有严格遵循无菌操作规程,才能保证实验结果的准确性。
3. 在诱导胡萝卜愈伤组织时,培养基的成分和植物激素的种类及浓度对愈伤组织的诱导效果有较大影响。
细胞悬浮培养实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握细胞悬浮培养的基本原理和方法;2. 熟悉细胞悬浮培养过程中应注意的问题;3. 通过实验了解细胞悬浮培养的应用。
二、实验原理细胞悬浮培养是指将细胞或细胞团悬浮在液体培养基中,使其在体外生长、繁殖并维持其结构和功能的一种培养技术。
细胞悬浮培养适用于研究细胞的生长、增殖、分化、遗传、凋亡等生物学特性,以及药物筛选、疫苗生产、抗体制备等。
三、实验材料1. 细胞:烟草叶片在黑暗条件下培养形成的愈伤组织;2. 培养基:MS培养基;3. 果胶酶;4. 灭菌设备;5. 三角瓶、离心管、移液器、细胞铲等。
四、实验步骤1. 培养基配置:用MS培养基配置2%的果胶酶,并用过滤灭菌器过滤;2. 液体培养基分装:将配置好的培养基分装于200ml的三角瓶中,每瓶50ml;3. 培养基配方:MS无机盐附加烟酸0.05mg/L、VB6和VB1各0.01mg/L、甘氨酸3mg/L、肌醇100mg/L、激动素0.2mg/L、2,4—D 0.1mg/L、蔗糖20g/L,pH5.8;4. 无菌操作准备:按照实验2相同的步骤,做好无菌操作准备;5. 接种:在净化工作台上,用无菌注射器将果胶酶1ml加入到已灭菌的含有液体培养基的三角瓶中,轻轻摇匀,再将复合要求的松散愈伤组织用细胞铲接种于液体培养基中。
接种量大约为培养基体积的十分之一;6. 培养条件:接种后的三角瓶用1/100的天平称取重量并记载,然后置于摇床上,在转速100rpm,25℃下培养;7. 收集培养物:培养24小时后,将培养物收集到50℃的离心管中,在800 rpm下离心5min,去除含有果胶酶的培养基,加入新鲜培养基,摇匀再离心一次,去除上清夜;8. 继代培养:按照细胞与培养基1:10的比例接种。
五、实验结果与分析1. 细胞生长情况:经过24小时的培养,细胞在液体培养基中生长良好,细胞数量有所增加;2. 细胞形态:细胞呈圆形,细胞质丰富,核质比大,细胞分裂旺盛;3. 细胞悬浮培养体系建立成功。
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2. 实验原理、实验流程或装置示意图 实验原理
1) 、将继代一次的胡萝卜愈伤组织选择生长状态良好、色泽新鲜未褐化的部分转接 到愈伤组织增殖培养基上培养,即可实现愈伤组织的增殖[1]。 2) 、一般情况下,适合于愈伤组织增殖的培养基也适合于细胞的悬浮培养,只是要 把琼脂去掉。 3) 、影响茎芽分化因素主要是培养基中生长素和细胞分裂素的浓度和比例。当生长 素的相对浓度较高时,有利于细胞的增殖和根的分化,若细胞分裂素的相对浓度较 高,则促进芽的分化,当这两种激素之间的比例适中时[2],则仍产生无结构的愈伤 组织。 4) 、将实验 3-1 建立的生长状态良好、色泽新鲜、结构松散的胡萝卜肉质根愈伤组 织转接到胡萝卜细胞悬浮培养基中,于 25 ℃、全黑暗、摇床上震荡培养[3],即可 分离得到单细胞,进一步可建立胡萝卜细胞悬浮培养系。 5) 、将实验 3-1 建立的生长状态良好、色泽新鲜、结构紧密的胡萝卜肉质根愈伤组 织转接到胡萝卜不定芽分化培养基上,置于温度 25 ℃ 、光照时间 14 h/d、光照强 度 1000~2000Lx 条件下即可分化再分化成苗(或丛芽) 。
9.检验是否无菌的方法: (1)将培养基置于培养室中 3 天,若没有污染现象, 说明灭菌可靠,可以使用。 (2)保存在低温条件下。常温下保存时要进行防尘和避 光处理。 (3)保存时间不可过长。
5.实验数据处理方法:
采用记录原数据以及课本资料提供数据进行配制及使用。
6.参考文献:
[1]. 李浚明,朱登云.植物组织培养(第 3 版).中国农业大学出版社.2005,2. [2]. 孙静三,桂耀林.植物细胞工程实验技术.北京:科学出版社 ,1995. [3].王连清主编.植物组织培养.北京:中国农业出版社,2002. [4].潘瑞炽主编. 植物组织培养(第三版).广州:广东高等教育出版社,2003. [5].郭勇, 崔堂兵, 谢秀帧编著. 植物细胞培养与应用.北京: 科学出版社, 2004. [6].曹孜义,刘国民主编. 实用植物组织培养技术教程.兰州:甘肃科学技术出 版社,2001.
二.实验报告 1、实验现象与结果
(1) 、胡萝卜细胞悬浮培养 1) 、实验现象 实验培养得到胡萝卜单细胞,还有部分细胞团,培养瓶内细胞松散,并且细 胞为浅黄色,未被污染。具体情况如图所示:
镜检结果如图所示:
2) 、实验结果 ①培养得到胡萝卜单细胞;但还有部分细胞团,可能是因为摇床震荡培养时间 不够。有的开始出现死细胞这与细胞生长时培养基有限和细胞不断产生代谢废物所 致。悬浮培养没有受到污染,愈伤组织增殖情况较好,呈现不规则状。颜色浅黄, 注意看会有一些小黑点,愈伤组织开始老化,部分开始分化。 ②经过台盼蓝染色后镜检,看到的细胞大部分为亮色,为活细胞,是悬浮培养 得到的比较好的细胞。还有的为暗色,是一些细胞团或者死的细胞。 (2) 、胡萝卜细胞不定芽分化 1) 、实验现象 培养瓶中有 1 瓶被污染,另外 1 瓶没有污染。但不定芽很少,取少量的培养物, 在蒸馏水中轻轻搅散,然后在显微镜下观察,只看到少量的不定芽。具体情况如下 图所示:
注意事项:
1、调节培养基时,理论上应调至 5.8 为宜,但因培养基经高温高压灭菌时, 蔗糖分解,PH 值会有所下降,因此调至 6.0 可减小误差。 2.防火。实验中要经常用酒精消毒、用酒精灯烧镊子、刀具,注意安全。 3.实验中接种过程要在操净工作台进行,接种前,实验所用的所有器械及手 均需严格消毒灭菌。 4.接种时,动作要轻,力度适中。不要把接种的切块压入培养基里面,以致 破坏培养基。 5.接种时瓶口应倾斜 45 度,以免手、镊子上的赃物容易掉到三角瓶里。 6.操作期间应经常用 70%—75%的酒精擦拭工作台和双手;接种器械应反复在 95%的酒精中浸泡和在火焰上消毒。 7.灭菌锅有很多种,实验室中常用手提式高压蒸汽灭菌锅,使用时要注意以 下几点: (1)锅中应放足量的水,以免造成空烧或干烧; (2)装锅时不要过度倾 斜,可保持内部有一定的空间,利于蒸汽流动; (3)增压前高压锅内的空气必须 排净,否则易影响灭菌效果; (4)灭菌过程中,应尽量保持压力恒定,严格遵守 灭菌时间; (5)排气降压时应缓慢进行; (6)只有待高压锅内压力表指针恢复到 零后,才能开启压力锅;(7)高压锅工作时,应有专人看守。 8.培养基的保存应注意以下几点: (1)灭菌后的培养基经冷却和凝固后即可使 用检验灭菌效果。
3、实验讨论
(1) 、植物组织培养所需的环境条件: 与自然条件一样,组织培养中的材料的生长要受到温度、光照、湿度等各种物理 条件,不同气体、培养基的组成、PH 值和渗透压等各种化学条件,以及外植体部位、 大小、细胞密度等各种生物条件等环境条件的影响。实验中要注意考虑这些条件的 影响,并采取适当的措施控制好培养条件。 (2) 、植物组织培养所需的营养成分: 植物体内至少含有几十种化学元素,其中大部分元素在植物体的内部起到了一 定的生理作用:①组成各种化合物,参与集体的建设,成为结构物质;②构成一些 特殊的生理活性物质,参与活跃的新陈代谢; ③元素之间相互协调,以维持离子浓 度平衡、胶体稳定、电荷平衡等电化学方面的作用;④发育方面:特定的元素影响 植物的形态发生和组织、器官建成。 (3) 、不定芽发生型快繁的优点:增殖率高 (4) 、不定芽发生型快繁的缺点: ①经过愈伤组织途径或多次继代培养后,易导致细胞分裂不正常,增加变异植 株发生频率。 ②表现嵌合性状的植株通过不定芽方式再生时,往往导致嵌合性状发 生分离,而失去原有价值。
根愈伤组织转接到胡萝卜细胞悬浮培养基中,于 25 ℃、全黑暗、摇床上震荡培养 以分离得到单细胞[5]。 (3)胡萝卜肉质根愈伤组织再分化培养 将实验 3-1 建立的生长状态良好、色泽新鲜、结构紧密的胡萝卜肉质根愈伤组 织转接到胡萝卜不定芽分化培养基上,置于温度 25 ℃ 、光照时间 14 h/d、光照强 度 1000~2000Lx 条件下诱导胡萝卜愈伤组织再分化成苗(或丛芽)[6]。 (4)培养结果 文字描述配合图片记录培养结果 Ⅳ、镜检 用无菌尼龙滤网将培养物滤去。除去滤网上的愈伤组织碎块和大的细胞团。留 下胡萝卜细胞液,用滴管吸取一滴在培养皿上,用台盼蓝染色,然后置于倒置显微 镜下观察。也可以做成临时装片进行观察。
4、实验总结
(1) 、总的来说,此次实验还是较为成功的,但是,在操作过程中也出现了一些问 题,在所难免,还应注意无菌操作技术的熟练。 (2) 、本次实验只进行了一次的继代培养,所以对细胞的团块现象消除效果不是很 理想,如果条件允许的话,可以进行多几次的继代培养,使细胞团块减少,单细胞 数量增加。 (3) 、细胞悬浮培养细胞碎片太多的原因可能是摇床的速度偏大导致,所以适当降 低转速估计可以降低细胞的碎片。 (4) 、组织培养当中的无菌操作时必须条件,养成良好的习惯对实验的成败十分有 帮助。在悬浮培养当中要注意实验阶段各个环节的参数的设定,使细胞悬浮培养达 到最优的效果。 (5) 、植物组织培养实验,最重要的还是在无菌条件下对无菌的材料进行处理,因 此,无菌操作技术是实验失败与否的关键;实验的细节要把握好,才能取得实验的 成功。此次试验,让我深深体会到了严谨的科学态度的重要性。
2) 、实验结果 胡萝卜愈伤组织不定芽分化培养时,在恒温箱全黑条件下培养胡萝卜在培养过 程中的颜色变化如下:浅黄色→乳白色 ,体积数目不断增多。具体统计如下: 胡萝卜愈伤组织不定芽分化结果统计 总接种瓶数 污染瓶数 未污染瓶数 2 1 1
愈伤组织不定芽分化情 不定芽分化有一瓶未受到污染,愈伤组织增殖情况 况 较好,呈现不规则形状,颜色浅黄注意看会有小黑 点,愈伤组织部分开始老化。另外一瓶受到了霉菌 的污染,培养基颜色较深。 原因分析 未受污染的一瓶消毒灭菌到位。培养基配制适宜。 结果较好。另外一瓶可能是在操作的过程中不小心 带入了杂菌进入培养基中。
冰箱、普通天平、三角瓶、移液管、量筒、烧杯、玻璃棒、医用口杯、精密 pH 试纸(pH5.4~7.0) 、药勺、称量纸、封口膜、橡皮筋/棉线、酒精棉球、小块纱布、 已灭菌培养皿和滤纸、枪状镊子、解剖刀、酒精灯、电炉/电磁炉、高压蒸汽灭菌锅、 超净工作台等。
2) 、药品和试剂:
MS 培养 基母 液 、琼脂 、 蔗糖 、生 长 调节物 质 、蒸 馏水 、 1mol· L-1HCl 、 1mol· L-1NaOH、愈伤组织继代培养基、75%酒精、胡萝卜细胞悬浮培养基、胡萝卜 不定芽分化培养基。
实验流程
MS 培养基母液的配制与保存
胡萝卜肉质根愈伤组织诱导、继代增殖、细胞悬浮及体细胞胚胎发生培养基 的配制
胡萝卜肉质根愈伤组织诱导培养(初代培养)
胡萝卜愈伤组织培养
胡萝卜愈伤组织继代增值培养
胡萝卜愈伤组织细胞悬浮培养
胡萝卜愈伤组织器官分化培养 结果观察分析
3.实验设备及材料 1) 、实验用具和仪器
本科学生综合性实验报告
学号
114120***
姓名
@ % &
学院 生命科学学院 实验课程名称 教师及职称 开课学期 填报时间 2013 2014 至
专业、班级 11 应用生物教育#班 植物组织培养实验 龙 维 彪(讲师) 2014 年 6 学年 月 下 10 学期 日
云南师范大学教务处编印
一.实验计方案
2、对实验现象、实验结果的分析及其结论
(1) 、胡萝卜细胞悬浮培养 细胞继代悬浮培养中,无菌操作正确,得到的细胞为浅黄色,未被污染。培养 基暗淡,培养得到的胡萝卜单细胞,还有部分细胞团,可能是因为摇床震荡培养时 间不够。 过滤后的细胞悬浮培养液中有单细胞以及多个细胞组成的细胞团块,细胞呈球 状或者是有一定的立方体型,细胞较透明,其余的有一些细胞的碎屑分布在悬浮培 养液但中。 (2) 、胡萝卜细胞不定芽分化 经过培养,可以看到从愈伤组织上长出了不定芽。组织培养条件下不定芽的发 育过程是:细胞经脱分化后,发生持续细胞分裂增殖,并依次经过原胚期、球形胚 期、心形胚期、鱼雷形胚期和子叶期,进而成为成熟的有机体。在这次培养过程当 中,可以明显的看到不定芽的发生,实验是成功的。同样在观察的过程当中,可以 看到有一定的细胞碎屑,主要是在摇床培养当中产生的。