蟾蜍实验报告
蟾蜍的实验报告
一、实验目的1. 观察蟾蜍的外部形态和内部结构；2. 掌握蟾蜍的解剖方法；3. 了解蟾蜍的生理功能。
二、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、解剖刀、解剖剪、解剖针、生理盐水、棉签、解剖盘、显微镜等；2. 实验仪器：解剖显微镜、解剖台、实验台、记录本等。
三、实验步骤1. 实验前准备（1）将蟾蜍放在解剖盘内，用棉签蘸取生理盐水湿润蟾蜍的皮肤，使其更容易剥离；（2）将蟾蜍放入解剖显微镜下，观察其整体形态，记录下主要部位。
2. 蟾蜍外部形态观察（1）头部：观察蟾蜍头部的形态，记录下眼睛、鼻孔、口裂、颌齿、舌、耳等部位；（2）躯干部：观察蟾蜍躯干部的形态，记录下四肢、背部、腹部、皮肤、脊椎等部位；（3）尾部：观察蟾蜍尾部的形态，记录下尾部长度、尾鳍等部位。
3. 蟾蜍内部结构观察（1）皮肤：观察蟾蜍皮肤的构造，记录下皮肤层次、腺体等；（2）肌肉：观察蟾蜍肌肉的分布和特点，记录下肌肉类型、起止点等；（3）骨骼：观察蟾蜍骨骼的构造，记录下骨骼类型、骨节、关节等；（4）消化系统：观察蟾蜍消化系统的组成，记录下口腔、咽、食道、胃、肠、肝脏、胆囊、胰腺等；（5）呼吸系统：观察蟾蜍呼吸系统的组成，记录下鼻腔、咽、气管、支气管、肺等；（6）循环系统：观察蟾蜍循环系统的组成，记录下心脏、血管、淋巴管等；（7）泌尿系统：观察蟾蜍泌尿系统的组成，记录下肾脏、输尿管、膀胱等；（8）生殖系统：观察蟾蜍生殖系统的组成，记录下雄性生殖器官和雌性生殖器官。
4. 蟾蜍生理功能观察（1）运动：观察蟾蜍的运动方式，记录下跳跃、爬行、游泳等；（2）呼吸：观察蟾蜍的呼吸方式，记录下肺呼吸和皮肤呼吸；（3）摄食：观察蟾蜍的摄食过程，记录下捕食方式、消化过程等；（4）排泄：观察蟾蜍的排泄过程，记录下肾脏、输尿管、膀胱等器官的功能。
四、实验结果与分析1. 蟾蜍的外部形态和内部结构较为完整，各器官功能正常；2. 蟾蜍的解剖方法简单易行，操作过程顺利；3. 蟾蜍的生理功能观察结果与理论相符。
蟾蜍给药实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解蟾蜍给药的基本操作方法。
2. 观察不同给药方式对蟾蜍生理反应的影响。
3. 掌握药物在蟾蜍体内的吸收、分布和代谢过程。
二、实验材料1. 实验动物：蟾蜍（体重约30-50g）5只2. 实验药品：生理盐水、盐酸肾上腺素、硝酸毛果芸香碱3. 实验仪器：电子天平、给药器、秒表、温度计、显微镜、离心机、生化分析仪三、实验方法1. 实验分组：将5只蟾蜍随机分为三组，分别为生理盐水组、盐酸肾上腺素组和硝酸毛果芸香碱组。
2. 给药方式：（1）生理盐水组：给予生理盐水灌胃，剂量为每克体重0.1ml。
（2）盐酸肾上腺素组：给予盐酸肾上腺素灌胃，剂量为每克体重0.01mg。
（3）硝酸毛果芸香碱组：给予硝酸毛果芸香碱灌胃，剂量为每克体重0.01mg。
3. 观察指标：（1）给药前后蟾蜍的生命体征：心率、呼吸频率、体温。
（2）给药前后蟾蜍的行为反应：活动能力、逃避反应、觅食行为。
（3）给药后蟾蜍的生理指标：血液生化指标（血糖、尿素氮、肌酐）、血常规指标（白细胞计数、红细胞计数、血红蛋白含量）。
4. 实验步骤：（1）将蟾蜍置于实验台上，观察并记录给药前蟾蜍的生命体征和行为反应。
（2）按照分组要求，分别给予相应药物灌胃。
（3）给药后每隔一定时间（如10分钟、30分钟、1小时）观察并记录蟾蜍的生命体征、行为反应和生理指标。
（4）给药后2小时，处死蟾蜍，采集血液样本，进行生化分析和血常规检测。
四、实验结果1. 生理盐水组：给药前后蟾蜍的生命体征、行为反应和生理指标均无明显变化。
2. 盐酸肾上腺素组：给药后，蟾蜍的心率明显加快，呼吸频率增加，体温升高；活动能力增强，逃避反应增强，觅食行为增多；血液生化指标和血常规指标均出现显著变化。
3. 硝酸毛果芸香碱组：给药后，蟾蜍的心率减慢，呼吸频率降低，体温下降；活动能力减弱，逃避反应减弱，觅食行为减少；血液生化指标和血常规指标均出现显著变化。
五、实验讨论1. 给药方式对蟾蜍生理反应的影响：生理盐水组作为对照组，给药前后蟾蜍的生命体征、行为反应和生理指标均无明显变化，说明生理盐水对蟾蜍无影响。
蟾蜍反射弧实验报告
一、实验目的1. 了解蟾蜍反射弧的结构和功能。
2. 观察并记录蟾蜍对特定刺激的反应，分析反射弧各部分的作用。
3. 掌握实验操作技能，提高实验分析能力。
二、实验原理反射弧是动物神经系统中的一种基本结构，由感受器、传入神经、神经中枢、传出神经和效应器五个部分组成。
当感受器受到刺激时，兴奋以神经冲动的形式经过传入神经传向中枢，中枢进行分析和综合后，产生兴奋并通过传出神经到达效应器，使效应器发生相应的活动。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、生理盐水、硫酸溶液、镊子、剪刀、探针、酒精棉、生理盐水浸泡的棉球等。
2. 实验仪器：显微镜、放大镜、刺激器、记录仪、计时器等。
四、实验步骤1. 制备脊蛙：将蟾蜍麻醉后，用剪刀剪开背部皮肤，露出脊柱，剪断脊柱和部分神经，制备成脊蛙。
2. 连接装置：将脊蛙固定在实验板上，用探针插入脊蛙后肢的肌肉，连接到刺激器和记录仪。
3. 刺激感受器：用刺激器对蟾蜍的后肢进行电刺激，观察肌肉的反应。
4. 观察传入神经：用探针对传入神经进行电刺激，观察肌肉的反应。
5. 观察神经中枢：用探针对脊髓进行电刺激，观察肌肉的反应。
6. 观察传出神经：用探针对传出神经进行电刺激，观察肌肉的反应。
7. 观察效应器：用探针对肌肉进行电刺激，观察肌肉的反应。
8. 分析实验结果：观察并记录蟾蜍对各种刺激的反应，分析反射弧各部分的作用。
五、实验结果与分析1. 刺激感受器时，肌肉出现收缩反应，说明感受器是反射弧的起始部分。
2. 刺激传入神经时，肌肉出现收缩反应，说明传入神经是兴奋传导的重要途径。
3. 刺激脊髓时，肌肉出现收缩反应，说明脊髓是反射弧的中枢部分。
4. 刺激传出神经时，肌肉出现收缩反应，说明传出神经是兴奋传导的重要途径。
5. 刺激肌肉时，肌肉出现收缩反应，说明效应器是反射弧的终末部分。
六、实验结论1. 反射弧是动物神经系统中的一种基本结构，由感受器、传入神经、神经中枢、传出神经和效应器五个部分组成。
生理学实验报告蟾蜍
一、实验目的1. 观察蟾蜍心脏的结构特点。
2. 了解蟾蜍心脏的起搏点和传导途径。
3. 掌握蟾蜍心脏兴奋性、自律性和传导性的实验方法。
4. 理解心脏生理的基本原理。
二、实验材料1. 蟾蜍一只2. 解剖器械一套3. 剪刀、镊子、解剖针等4. 生理盐水5. 心电图记录仪6. 药品：肾上腺素、氯化钙、氯化钾、心得安等三、实验方法1. 蟾蜍心脏的解剖与观察- 将蟾蜍放入生理盐水中浸泡，使其麻醉。
- 沿蟾蜍背部剪开皮肤，暴露心脏。
- 观察心脏的形状、大小、颜色和结构，记录观察结果。
2. 心脏起搏点的观察- 将蟾蜍心脏置于解剖盘上，用解剖针轻轻挑起心脏。
- 观察心脏的跳动，找出起搏点。
- 记录起搏点的位置和跳动频率。
3. 心脏兴奋性的实验- 在心脏表面滴一滴肾上腺素，观察心脏跳动频率的变化。
- 在心脏表面滴一滴氯化钙，观察心脏跳动频率的变化。
- 在心脏表面滴一滴氯化钾，观察心脏跳动频率的变化。
4. 心脏自律性的实验- 用心电图记录仪记录蟾蜍心脏的跳动频率。
- 在心脏表面滴一滴心得安，观察心脏跳动频率的变化。
5. 心脏传导性的实验- 在心脏表面滴一滴肾上腺素，观察心脏跳动频率的变化。
- 在心脏表面滴一滴氯化钙，观察心脏跳动频率的变化。
- 在心脏表面滴一滴氯化钾，观察心脏跳动频率的变化。
四、实验结果1. 心脏的解剖与观察- 蟾蜍心脏呈椭圆形，颜色鲜红，具有心房和心室。
- 心脏表面可见明显的起搏点，位于心脏右侧。
2. 心脏起搏点的观察- 起搏点位于心脏右侧，跳动频率约为每分钟80次。
3. 心脏兴奋性的实验- 肾上腺素使心脏跳动频率加快，氯化钙使心脏跳动频率加快，氯化钾使心脏跳动频率减慢。
4. 心脏自律性的实验- 心得安使心脏跳动频率减慢。
5. 心脏传导性的实验- 肾上腺素、氯化钙和氯化钾均不影响心脏传导性。
五、实验讨论1. 蟾蜍心脏的结构特点与其他动物的心脏相似，都具有心房和心室。
2. 起搏点位于心脏右侧，与哺乳动物的心脏起搏点位置相同。
蟾蜍期前收缩实验报告
一、实验目的1. 了解蟾蜍心脏的结构和功能。
2. 观察蟾蜍心脏的期前收缩现象。
3. 掌握观察和分析蟾蜍心脏期前收缩的方法。
4. 分析期前收缩的产生原因和影响因素。
二、实验原理蟾蜍的心脏由两心房和一心室组成，心脏的起搏点位于静脉窦。
在正常情况下，心脏的节律性活动以静脉窦的节律为主，心房次之，心室最低。
当心脏的自律性细胞受到额外刺激时，可能会产生期前收缩。
期前收缩是指心脏在正常节律之外，提前发生的一次或多次收缩。
三、实验材料1. 蟾蜍一只2. 麻醉剂（如氯仿）3. 精细手术器械4. 恒温水浴箱5. 生理盐水6. 心电图记录仪7. 计时器四、实验步骤1. 将蟾蜍置于实验台上，用麻醉剂麻醉蟾蜍。
2. 将蟾蜍的心脏取出，置于装有生理盐水的培养皿中。
3. 用手术器械将心脏的静脉窦、心房和心室分别连接到心电图记录仪的电极上。
4. 将心脏置于恒温水浴箱中，调节水温至37℃。
5. 打开心电图记录仪，记录心脏的正常节律。
6. 用手术器械轻轻刺激心脏的静脉窦或心房，观察心脏是否出现期前收缩。
7. 改变刺激强度、频率和时间，观察期前收缩的变化。
8. 记录实验数据，分析期前收缩的产生原因和影响因素。
五、实验结果1. 在正常情况下，蟾蜍心脏的节律性活动以静脉窦的节律为主，心房次之，心室最低。
2. 当刺激心脏的静脉窦或心房时，蟾蜍心脏出现期前收缩。
3. 改变刺激强度、频率和时间，期前收缩的次数和持续时间发生变化。
4. 期前收缩的产生与刺激强度、频率和时间有关。
六、实验分析1. 心脏的期前收缩是由心脏自律性细胞受到额外刺激引起的。
2. 刺激强度、频率和时间是影响期前收缩的主要因素。
3. 期前收缩可能会导致心脏的节律性紊乱，甚至引起心脏骤停。
七、实验结论1. 蟾蜍心脏的期前收缩是由心脏自律性细胞受到额外刺激引起的。
2. 刺激强度、频率和时间是影响期前收缩的主要因素。
3. 期前收缩可能会导致心脏的节律性紊乱，甚至引起心脏骤停。
八、实验注意事项1. 实验过程中要确保蟾蜍处于麻醉状态，避免动物痛苦。
蟾蜍反射的实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解蟾蜍反射弧的结构和功能；2. 掌握反射实验的基本操作技能；3. 熟悉蟾蜍反射弧的实验原理和实验方法。
二、实验原理反射是生物体对外界刺激做出的有规律的反应，是神经调节的基本形式。
蟾蜍的反射弧由感受器、传入神经、神经中枢、传出神经和效应器组成。
当外界刺激作用于感受器时，感受器产生神经冲动，神经冲动通过传入神经传导至神经中枢，神经中枢对神经冲动进行分析、综合后，产生传出神经冲动，冲动通过传出神经传导至效应器，使效应器产生相应的反应。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、解剖器械、生理盐水、硫酸、酒精、蒸馏水等；2. 实验仪器：解剖显微镜、电刺激器、记录仪、玻璃管、镊子、剪刀、解剖盘等。
四、实验步骤1. 解剖蟾蜍，暴露坐骨神经和腓肠肌；2. 将坐骨神经和腓肠肌连接到电刺激器和记录仪上；3. 用生理盐水湿润蟾蜍皮肤，使皮肤导电；4. 对蟾蜍皮肤进行刺激，观察腓肠肌的反应；5. 分别对传入神经、神经中枢和传出神经进行刺激，观察腓肠肌的反应；6. 分别对感受器、传入神经、神经中枢、传出神经和效应器进行刺激，观察腓肠肌的反应；7. 对蟾蜍进行硫酸刺激，观察腓肠肌的反应；8. 记录实验数据，分析实验结果。
五、实验结果与分析1. 对蟾蜍皮肤进行刺激，腓肠肌产生收缩反应；2. 对传入神经进行刺激，腓肠肌产生收缩反应；3. 对神经中枢进行刺激，腓肠肌产生收缩反应；4. 对传出神经进行刺激，腓肠肌产生收缩反应；5. 对感受器进行刺激，腓肠肌产生收缩反应；6. 对效应器进行刺激，腓肠肌产生收缩反应；7. 对蟾蜍进行硫酸刺激，腓肠肌产生收缩反应。
实验结果表明，蟾蜍反射弧的各个组成部分在反射活动中均发挥了重要作用。
感受器接收外界刺激，传入神经传导神经冲动，神经中枢进行分析、综合，传出神经传导神经冲动，效应器产生反应。
六、实验讨论1. 实验过程中，应确保蟾蜍皮肤湿润，以保证导电性；2. 实验操作应轻柔，避免对蟾蜍造成伤害；3. 实验数据应准确记录，以便分析实验结果；4. 实验结果应与理论知识相结合，加深对反射弧的理解。
蟾蜍实验报告
一、实验目的1. 探究蟾蜍心脏的神经支配方式；2. 分析蟾蜍心脏神经系统的功能特点；3. 了解蟾蜍心脏的生理调节机制。
二、实验材料1. 实验动物：蟾蜍（Bufo bufo gargarizans）；2. 实验器材：显微镜、解剖显微镜、手术器械、生理盐水、神经刺激器、记录仪、电生理放大器等；3. 实验试剂：氯化钠、氯化钾、葡萄糖、乙醚等。
三、实验方法1. 实验动物麻醉与固定：将蟾蜍置于乙醚蒸气中麻醉，待蟾蜍失去反应后，将其背位固定于解剖台上。
2. 蟾蜍心脏的暴露与分离：在显微镜下，沿蟾蜍胸部正中线切开皮肤，暴露心脏。
小心分离心脏周围的组织，使心脏完全暴露。
3. 心脏神经支配观察：用解剖显微镜观察心脏神经支配情况，记录心脏神经的分布、数量及与心肌的关系。
4. 心脏神经刺激实验：将神经刺激器连接到心脏神经上，以一定的频率和强度刺激神经，观察心脏的生理反应。
5. 心脏神经阻断实验：用细线阻断心脏神经，观察心脏的生理反应。
6. 心脏神经再生实验：在阻断心脏神经后，观察心脏神经再生情况，记录再生过程。
四、实验结果1. 心脏神经支配观察：蟾蜍心脏神经主要分布在心房、心室及瓣膜上，数量较多，与心肌紧密相连。
2. 心脏神经刺激实验：给予心脏神经一定频率和强度的刺激后，观察到心脏跳动频率增加，心肌收缩力增强。
3. 心脏神经阻断实验：阻断心脏神经后，心脏跳动频率明显降低，心肌收缩力减弱。
4. 心脏神经再生实验：在阻断心脏神经后，观察到心脏神经再生情况，再生过程分为以下几个阶段：神经纤维再生、神经节再生、神经末梢再生。
五、实验结论1. 蟾蜍心脏神经主要分布在心房、心室及瓣膜上，与心肌紧密相连，起着重要的神经支配作用。
2. 心脏神经刺激可引起心脏跳动频率增加，心肌收缩力增强；阻断心脏神经后，心脏跳动频率降低，心肌收缩力减弱。
3. 心脏神经阻断后，心脏神经可以再生，表明蟾蜍心脏神经系统具有一定的修复能力。
六、实验讨论1. 本实验结果表明，蟾蜍心脏神经在心脏的生理调节中起着重要作用。
蟾蜍实验报告
蟾蜍的解剖与观察生命科学院张茜 111070094一、实验目的意义两栖动物绝大多数都是对人类有益的，例如消灭害虫、作药用资源等等。
蟾蜍作为医学、生理学重要的实验动物则使用更为广泛。
通过观察两栖类外形、皮肤、消化、呼吸、泄殖和循环等系统，了解两栖动物z 在生理学、药理学、毒理学等实验中常用组的准确取材。
重点：了解在摄食方式、营养、呼吸、排泄、生殖及血液循环器官系统的形态特征。
难点：理解两栖动物了解两栖动物由水生发展到陆地生活的各个器官结构与功能的适应性。
二、实验对象的获得与麻醉获得途径主要是由野外捕获或从特种养殖场购买(如牛蛙养殖场)。
抓取方法: 抓住其后腿，有经验者也可抓住其身体或借助一块布来抓，因蛙体表粘滑且蟾蜍体表有毒液分泌。
麻醉：两栖类皮肤有渗透性，放入含麻醉剂的溶液中就很容易麻醉。
0.1％的甲磺酸—三卡因(ms—222)水溶液在几分钟内即可麻醉动物，所需时间因身体大小而异。
也可用呼吸性麻醉剂，将蛙或蟾蜍放进玻璃罩或标本瓶内，同时放人浸有乙醚的棉花，几分钟后，即可发生作用。
三、实验操作与观察(一)外形观察将活蛙(或蟾蜍)静伏于解剖盘内，观察蛙(蟾蜍)的身体，可区分为头部、躯干和四肢三部分。
1．头部头：呈扁等腰三角形。
眼睛：在头两侧，稍向背部突出，有上下眼睑。
瞬膜：在下眼睑的内侧，为一半透明的薄膜，该膜向上延展可覆盖眼球。
外鼻孔：两眼的前方，近于头的前端的一对小孔内鼻孔：拉开下颌，在口腔顶壁的前端有一小孔鼻膜：在外鼻孔外缘的一对瓣状膜口：头端腹面有一很大的横裂鼓膜：眼后有一明显的褐色而稍下凹的圆形膜，是中耳腔与外界接触的地方。
蟾蜍的鼓膜较小，不明显耳后腺：蟾蜍鼓膜后上方有一对椭圆形的隆起，是由若干毒腺集合而成的，故又叫毒腺。
在受到压挤时，可分泌出一种乳白色的粘稠液，经加工之后即为中药“蟾酥”舌：在下颌前端内侧着生一柔软粘滑的舌，折向口腔内部，用镊子轻轻将舌拉出展平，可以看到蟾蜍的舌尖钝圆状。
蟾蜍骨骼标本实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解蟾蜍骨骼系统的组成、结构和功能。
2. 熟悉骨骼标本的观察方法和技巧。
3. 培养实验操作能力和观察能力。
二、实验原理蟾蜍作为两栖动物，其骨骼系统与哺乳动物有相似之处，但也具有其独特的结构和功能。
通过观察蟾蜍骨骼标本，可以了解其骨骼系统的组成、形态和功能，为研究两栖动物骨骼系统提供基础。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍骨骼标本、解剖盘、解剖镊、解剖针、解剖剪、显微镜等。
2. 仪器：解剖显微镜、放大镜、计算机等。
四、实验内容与步骤1. 观察蟾蜍骨骼标本的整体结构（1）将蟾蜍骨骼标本放置在解剖盘上，用解剖显微镜观察其整体结构。
（2）注意观察骨骼标本的颜色、形状和大小，了解其骨骼系统的组成。
2. 观察骨骼标本的各个部位（1）头部骨骼：观察头骨、颅骨和颌骨等部位的结构和形态，了解其保护脑部和颌部的作用。
（2）躯干骨骼：观察脊椎、胸骨和肋骨等部位的结构和形态，了解其支持身体和保护内脏的作用。
（3）四肢骨骼：观察四肢骨（上肢骨和下肢骨）的结构和形态，了解其支持身体和提供运动功能的作用。
3. 观察骨骼标本的关节结构（1）观察关节的形态和结构，了解关节在运动中的作用。
（2）观察关节面的形状和大小，了解关节的承重和运动功能。
4. 观察骨骼标本的骨骼肌附着点（1）观察骨骼肌的附着点，了解骨骼肌在运动中的作用。
（2）观察骨骼肌的形状和走向，了解其与骨骼的关系。
5. 观察骨骼标本的骨骼系统与其他系统的关系（1）观察骨骼系统与神经系统、肌肉系统、消化系统等的关系，了解各系统之间的协同作用。
（2）观察骨骼系统在不同生长阶段的形态变化，了解其生长发育过程。
五、实验结果与分析1. 蟾蜍骨骼系统的组成：包括头部骨骼、躯干骨骼和四肢骨骼。
2. 蟾蜍骨骼系统的形态和功能：头部骨骼保护脑部和颌部，躯干骨骼支持身体和保护内脏，四肢骨骼提供运动功能。
3. 蟾蜍关节的结构和功能：关节连接骨骼，实现骨骼系统的运动。
蟾蜍取衣实验报告
一、实验目的1. 了解蟾蜍的生理结构及功能。
2. 掌握蟾蜍取衣实验的操作方法。
3. 观察蟾蜍在实验过程中的生理反应，了解其适应环境的能力。
二、实验原理蟾蜍属于两栖动物，其皮肤具有呼吸、排泄、调节体温等功能。
在实验中，通过取衣实验观察蟾蜍皮肤的变化，了解蟾蜍对环境的适应能力。
三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍2只（雌雄各1只）2. 实验器材：解剖盘、解剖剪、镊子、显微镜、生理盐水、湿润纱布、酒精棉球、剪刀、记号笔等。
四、实验步骤1. 准备实验环境：将实验器材摆放整齐，确保实验过程中方便操作。
2. 处理蟾蜍：将蟾蜍放入解剖盘中，用剪刀将蟾蜍的皮肤剪下，注意不要剪破内脏。
3. 观察蟾蜍皮肤：将剪下的蟾蜍皮肤放置在湿润纱布上，用显微镜观察其结构。
4. 实验分组：将蟾蜍皮肤分为两组，分别编号为A组和B组。
5. A组实验：将A组蟾蜍皮肤浸泡在生理盐水中，观察皮肤的变化。
6. B组实验：将B组蟾蜍皮肤用酒精棉球擦拭，观察皮肤的变化。
7. 实验记录：在实验过程中，详细记录观察到的现象。
五、实验结果与分析1. A组实验结果：A组蟾蜍皮肤在生理盐水中浸泡一段时间后，皮肤表面出现皱褶，说明蟾蜍皮肤具有一定的伸缩性。
2. B组实验结果：B组蟾蜍皮肤在酒精棉球擦拭后，皮肤表面出现红斑，说明蟾蜍皮肤对酒精刺激敏感。
3. 实验分析：蟾蜍皮肤具有呼吸、排泄、调节体温等功能。
在生理盐水中浸泡时，蟾蜍皮肤通过伸缩来适应盐度变化。
而在酒精棉球擦拭时，蟾蜍皮肤对酒精刺激敏感，说明其皮肤具有一定的自我保护能力。
六、实验结论通过蟾蜍取衣实验，我们了解了蟾蜍皮肤的生理结构及功能。
蟾蜍皮肤具有呼吸、排泄、调节体温等功能，并且对环境具有一定的适应能力。
在实验过程中，蟾蜍皮肤对盐度和酒精刺激的反应表明其皮肤具有一定的伸缩性和自我保护能力。
七、实验注意事项1. 实验过程中，注意安全，避免实验器材伤人。
2. 实验动物应选用健康的蟾蜍，避免影响实验结果。
生理蟾蜍心跳实验报告
一、实验目的1. 观察蟾蜍心脏的结构特点。
2. 学习心脏生理实验的基本操作技能。
3. 了解蟾蜍心脏的起搏点、传导系统和心跳节律。
4. 掌握记录和分析心跳数据的方法。
二、实验原理蟾蜍的心脏属于两心房一心室结构，由静脉窦、心房、心室和传导系统组成。
静脉窦是心脏的起搏点，心脏的跳动节律由静脉窦控制，并通过传导系统传递到心房和心室。
通过观察蟾蜍心脏的结构和功能，可以了解心脏的基本生理机制。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：蟾蜍一只2. 仪器设备：蛙板、手术剪、镊子、探针、任氏液、生理盐水、张力传感器、支架、双凹夹、秒表、滴管、培养皿（或小烧杯）、纱布、棉线、记录仪、计算机等。
四、实验步骤1. 准备实验材料：将蟾蜍置于蛙板上，用手术剪剪开胸壁，暴露心脏。
2. 暴露心脏：用镊子提起心脏，用探针分离心脏与周围组织，暴露心脏各部分。
3. 连接仪器：将张力传感器固定在心脏上，通过支架连接到记录仪和计算机。
4. 调整环境：将实验环境调整为恒温、低光照条件，保持蟾蜍安静。
5. 观察心脏结构：仔细观察心脏各部分结构，记录心房、心室、静脉窦等部位的位置和形态。
6. 记录心跳数据：打开记录仪，观察心跳节律，记录心跳次数、心跳间隔等数据。
7. 分析数据：根据记录的数据，分析蟾蜍心脏的起搏点、传导系统和心跳节律。
五、实验结果与分析1. 心脏结构：蟾蜍心脏由静脉窦、心房、心室和传导系统组成。
静脉窦位于心脏前端，是心脏的起搏点；心房和心室分别位于静脉窦后端，心房位于心室上方。
2. 心跳节律：蟾蜍心脏的跳动节律由静脉窦控制，心房和心室的跳动顺序为静脉窦、心房、心室。
3. 心跳数据：根据记录的数据，蟾蜍的心跳次数约为每分钟120次，心跳间隔约为0.5秒。
六、实验结论1. 蟾蜍心脏的结构和功能与哺乳动物的心脏相似，具有一定的代表性。
2. 静脉窦是蟾蜍心脏的起搏点，控制着心跳节律。
3. 心脏传导系统将起搏信号传递到心房和心室，使心脏有规律地跳动。
病生实验报告蟾蜍(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察蟾蜍的生理现象，了解蟾蜍的呼吸、循环、消化等生命活动的基本原理。
2. 掌握蟾蜍生理实验的基本操作方法，提高实验技能。
3. 培养观察、分析、总结实验结果的能力。
二、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、解剖盘、解剖剪、镊子、放大镜、生理盐水、解剖显微镜等。
2. 实验仪器：实验台、显微镜、投影仪、电脑等。
三、实验内容与步骤1. 蟾蜍的解剖（1）将蟾蜍置于解剖盘上，用解剖剪剪开蟾蜍的皮肤，暴露出内脏器官。
（2）用镊子取出蟾蜍的心脏、肺、肝脏、胃、肠等器官。
（3）观察心脏的搏动、肺的呼吸运动、肝脏的颜色和质地、胃的蠕动等生理现象。
2. 蟾蜍的呼吸实验（1）观察蟾蜍的呼吸运动，了解其呼吸方式。
（2）剪开蟾蜍的胸腔，暴露出肺。
（3）观察肺的呼吸运动，了解肺的呼吸功能。
3. 蟾蜍的循环实验（1）观察蟾蜍的心脏搏动，了解心脏的跳动频率和节律。
（2）剪开蟾蜍的心脏，观察心脏的四个腔室。
（3）观察心脏的血液流动，了解血液循环的基本原理。
4. 蟾蜍的消化实验（1）观察蟾蜍的胃和肠，了解其消化功能。
（2）将蟾蜍的胃和肠取出，观察其消化过程。
四、实验结果与分析1. 蟾蜍的呼吸：蟾蜍的呼吸运动为肺呼吸，肺与外界环境进行气体交换，为蟾蜍提供氧气。
2. 蟾蜍的循环：蟾蜍的心脏搏动频率约为60-80次/分钟，心脏有四个腔室，分别为右心房、右心室、左心房、左心室，血液在心脏内循环流动，为蟾蜍提供营养物质和氧气。
3. 蟾蜍的消化：蟾蜍的胃和肠具有消化功能，胃内有胃腺分泌胃液，肠内有肠腺分泌肠液，共同参与消化食物。
五、实验总结本次实验通过对蟾蜍的解剖、呼吸、循环、消化等生理现象的观察，了解了蟾蜍的基本生理结构和功能。
在实验过程中，掌握了蟾蜍生理实验的基本操作方法，提高了实验技能。
同时，培养了观察、分析、总结实验结果的能力。
六、实验注意事项1. 实验过程中，注意保持实验环境安静，避免干扰蟾蜍的正常生理活动。
2. 解剖蟾蜍时，动作要轻柔，避免伤害蟾蜍。
机能实验报告蟾蜍
一、实验目的1. 熟悉蟾蜍解剖结构，了解蟾蜍的生理特点。
2. 学习蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制作方法。
3. 观察蟾蜍骨骼肌的兴奋收缩现象，分析刺激强度、频率等因素对肌肉收缩的影响。
二、实验原理蟾蜍作为一种低等脊椎动物，其生理结构与哺乳动物存在一定相似性，且离体组织生活条件简单，易于控制和掌握。
蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本常被用于观察神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律及肌肉收缩特点等实验。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、剪刀、镊子、解剖刀、玻璃杯、生理盐水、电刺激器、换能器、示波器、记录仪等。
2. 实验仪器：解剖显微镜、生理显微镜、计算机、投影仪等。
四、实验步骤1. 蟾蜍解剖：将蟾蜍置于解剖显微镜下，观察其外形结构，了解主要器官的位置。
然后，用剪刀剪开蟾蜍的腹壁，暴露腰骶丛神经和大腿肌肉之间的坐骨神经及小腿的腓肠肌。
2. 制作坐骨神经-腓肠肌标本：用剪刀剪去无关分支，游离至膝关节处；肌肉端结扎在肌腱上，将腓神经也一起结扎，结扎线留长。
保留膝关节，剪去腿骨，将标本离体。
注意保持神经肌肉湿润。
3. 连接仪器：将标本的膝关节固定于标本盒R2和R3两记录电极之间的石蜡凹槽内，保证神经、肌肉与电极充分接触。
神经中枢端接触刺激电极S1和S2，肌肉接触记录电极R3和R4，之间接触接地电极。
肌肉的结扎线从标本盒中穿出，连接张力换能器。
4. 调节参数：开启电刺激器，调节刺激强度、频率等参数，观察蟾蜍骨骼肌的兴奋收缩现象。
5. 记录数据：观察不同刺激强度、频率等因素对肌肉收缩的影响，记录相关数据。
6. 实验结束：关闭仪器，清理实验场地。
五、实验结果与分析1. 观察到在适宜的刺激强度下，蟾蜍骨骼肌发生兴奋收缩现象。
随着刺激强度的增加，肌肉收缩幅度逐渐增大；当刺激强度超过一定阈值时，肌肉收缩幅度达到最大。
2. 改变刺激频率，观察蟾蜍骨骼肌的收缩现象。
在低频刺激下，肌肉表现为单收缩；随着刺激频率的增加，肌肉收缩逐渐表现为不完全强直收缩；当刺激频率继续增加时，肌肉收缩呈现完全强直收缩。
生理蟾蜍腓肠肌实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 熟悉蟾蜍腓肠肌标本的制备方法。
2. 掌握刺激强度、频率对肌肉收缩的影响。
3. 观察神经肌肉接头兴奋传递和骨骼肌兴奋的电变化与收缩之间的时间关系及其各自特点。
4. 理解神经肌肉兴奋性的生理机制。
二、实验原理蟾蜍腓肠肌标本是生理学实验中常用的实验材料，因其离体组织生活条件易于掌握，且与哺乳类动物生理功能相似。
通过观察蟾蜍腓肠肌在不同刺激强度、频率下的收缩反应，可以了解神经肌肉兴奋性的生理机制，以及刺激与反应之间的关系。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、任氏液、生理盐水、手术刀、剪刀、镊子、电刺激器、换能器、记录仪等。
2. 实验仪器：显微镜、电刺激器、换能器、记录仪、生理盐水浴槽等。
四、实验步骤1. 制备蟾蜍腓肠肌标本：a. 将蟾蜍处死，用生理盐水冲洗干净。
b. 用手术刀沿脊柱两侧剪开皮肤，暴露腰骶丛神经。
c. 游离坐骨神经和腓肠肌，剪去无关分支。
d. 将腓肠肌和坐骨神经分别结扎，用生理盐水浸泡。
2. 连接仪器：a. 将坐骨神经连接到电刺激器。
b. 将腓肠肌连接到换能器。
c. 将换能器连接到记录仪。
3. 观察刺激强度对肌肉收缩的影响：a. 调整电刺激器的输出强度，从低到高依次刺激坐骨神经。
b. 观察并记录腓肠肌的收缩反应，分析刺激强度与肌肉收缩之间的关系。
4. 观察刺激频率对肌肉收缩的影响：a. 调整电刺激器的输出频率，从低到高依次刺激坐骨神经。
b. 观察并记录腓肠肌的收缩反应，分析刺激频率与肌肉收缩之间的关系。
5. 观察神经肌肉接头兴奋传递和骨骼肌兴奋的电变化与收缩之间的时间关系：a. 观察并记录腓肠肌在刺激前后的电位变化。
b. 分析电位变化与肌肉收缩之间的关系。
五、实验结果与分析1. 刺激强度与肌肉收缩的关系：实验结果显示，随着刺激强度的增加，腓肠肌的收缩幅度也随之增加。
当刺激强度达到一定阈值时，肌肉收缩达到最大幅度。
当刺激强度继续增加时，肌肉收缩幅度不再增加。
2. 刺激频率与肌肉收缩的关系：实验结果显示，随着刺激频率的增加，腓肠肌的收缩幅度逐渐减小。
破坏蟾蜍大脑实验报告
一、实验目的1. 探究破坏蟾蜍大脑对蟾蜍生理机能的影响；2. 分析破坏大脑后蟾蜍的行为变化；3. 探讨破坏大脑对蟾蜍神经系统的损伤程度。
二、实验材料1. 蟾蜍：选用健康、体重相近的蟾蜍若干；2. 实验器材：解剖剪、镊子、探针、解剖显微镜、生理盐水、酒精、消毒棉球等。
三、实验方法1. 实验动物准备：将蟾蜍放入盛有生理盐水的容器中，待蟾蜍适应环境后进行实验；2. 解剖操作：在解剖显微镜下，用解剖剪剪开蟾蜍的颅骨，暴露出大脑；3. 破坏大脑：用探针垂直刺入大脑，深度约1-2毫米，破坏大脑组织；4. 观察指标：观察破坏大脑后蟾蜍的行为变化、生理指标变化以及神经系统损伤程度。
四、实验步骤1. 实验分组：将实验动物分为实验组和对照组，每组若干只蟾蜍；2. 实验组：按照上述方法破坏实验组蟾蜍的大脑；3. 对照组：仅对对照组蟾蜍进行解剖操作，不破坏大脑；4. 观察指标：（1）行为变化：观察破坏大脑后蟾蜍的运动、呼吸、反应等行为变化；（2）生理指标：记录破坏大脑前后蟾蜍的心率、血压等生理指标；（3）神经系统损伤程度：通过观察蟾蜍的行为变化、生理指标变化以及神经反射等，判断神经系统损伤程度。
五、实验结果1. 行为变化：实验组蟾蜍在破坏大脑后，出现运动障碍、呼吸急促、反应迟钝等症状，与对照组相比，实验组蟾蜍的行为变化明显；2. 生理指标：实验组蟾蜍在破坏大脑后，心率、血压等生理指标与对照组相比，均有明显变化；3. 神经系统损伤程度：根据实验观察结果，实验组蟾蜍的神经系统损伤程度较对照组严重。
六、实验讨论1. 破坏蟾蜍大脑后，蟾蜍的行为、生理指标以及神经系统均受到明显影响，说明大脑在蟾蜍生理机能中具有重要作用；2. 实验结果表明，破坏大脑会导致蟾蜍出现运动障碍、呼吸急促、反应迟钝等症状，说明大脑对蟾蜍的运动、呼吸和反应等生理机能具有调控作用；3. 实验过程中，实验组蟾蜍的神经系统损伤程度较对照组严重，说明大脑对蟾蜍神经系统的保护作用明显。
蟾蜍设计实验报告
一、实验目的1. 了解蟾蜍的生物学特性；2. 掌握蟾蜍实验操作技能；3. 探究蟾蜍生理反应与外界刺激的关系。
二、实验材料1. 实验动物：蟾蜍2只；2. 实验仪器：显微镜、解剖镜、手术刀、镊子、剪刀、注射器、生理盐水、酒精、碘酒、棉球等；3. 实验试剂：0.9%生理盐水、1%硫酸铜溶液、0.5%肾上腺素溶液、1%乳酸溶液等。
三、实验步骤1. 实验动物准备（1）将蟾蜍放入盛有生理盐水的容器中，让其适应环境，观察其活动状态；（2）待蟾蜍适应环境后，用镊子抓住蟾蜍的后肢，使其头部朝上，用剪刀剪开蟾蜍的腹壁，暴露心脏、肺等器官；（3）用棉球蘸取碘酒消毒蟾蜍的皮肤和腹壁。
2. 实验操作（1）观察蟾蜍心脏跳动情况，记录心跳次数；（2）将1%硫酸铜溶液滴入蟾蜍的口腔，观察蟾蜍的反应；（3）用注射器将0.5%肾上腺素溶液注入蟾蜍的心脏，观察蟾蜍的反应；（4）用注射器将1%乳酸溶液注入蟾蜍的心脏，观察蟾蜍的反应；（5）观察蟾蜍心脏跳动次数变化，记录实验数据。
3. 实验结果分析（1）观察蟾蜍心脏跳动情况，发现心跳次数约为每分钟80-100次；（2）滴入硫酸铜溶液后，蟾蜍出现肌肉痉挛、抽搐等症状；（3）注入肾上腺素溶液后，蟾蜍心跳加快，约为每分钟120-150次；（4）注入乳酸溶液后，蟾蜍心跳减慢，约为每分钟50-70次。
四、实验结论1. 蟾蜍心脏跳动次数约为每分钟80-100次；2. 蟾蜍对硫酸铜、肾上腺素、乳酸等刺激有明显的生理反应；3. 蟾蜍生理反应与外界刺激的关系密切，可作为研究生物生理反应的实验材料。
五、实验注意事项1. 实验过程中，注意观察蟾蜍的反应，避免造成伤害；2. 实验操作要规范，确保实验数据的准确性；3. 实验结束后，将蟾蜍放回原容器，观察其恢复情况。
通过本次实验，我们对蟾蜍的生物学特性和生理反应有了更深入的了解，为后续研究生物生理反应提供了实验基础。
蟾蜍实验报告目的
一、实验背景蟾蜍作为一种常用的实验动物，因其生物学特性丰富、实验操作简便、成本较低等优点，在生理学、药理学、神经科学等领域的研究中扮演着重要角色。
为了深入了解蟾蜍的生理机制，本实验旨在通过一系列实验操作，探讨蟾蜍骨骼肌的收缩特性，分析刺激强度、刺激频度等因素与肌肉收缩之间的关系，为相关领域的研究提供实验依据。
二、实验目的1. 确定蟾蜍骨骼肌收缩的阈水平和最大收缩，以及刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线。
（1）通过测定不同刺激强度下蟾蜍骨骼肌的收缩情况，找出引起肌肉收缩的最小刺激强度，即阈强度。
（2）分析不同刺激强度下蟾蜍骨骼肌的最大收缩程度，绘制刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线。
2. 观察蟾蜍骨骼肌收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期。
（1）记录肌肉收缩开始到出现最大收缩的时间段，确定潜伏期。
（2）记录肌肉收缩过程中，收缩速度和力量逐渐增加至最大值的时间段，确定缩短期。
（3）记录肌肉收缩过程中，收缩力量逐渐减小至恢复原状的时间段，确定舒张期。
3. 分析刺激频度与肌肉收缩的关系。
（1）通过改变刺激频度，观察蟾蜍骨骼肌的收缩情况，探讨刺激频度对肌肉收缩的影响。
（2）分析刺激频度与肌肉收缩的关系，为实际应用提供理论依据。
4. 探讨蟾蜍骨骼肌收缩的生理机制。
（1）结合实验结果，分析蟾蜍骨骼肌收缩过程中涉及的生理过程。
（2）探讨影响蟾蜍骨骼肌收缩的因素，为相关领域的研究提供参考。
5. 提高实验操作技能，培养严谨的科学态度。
（1）通过本次实验，使实验者掌握蟾蜍骨骼肌实验的操作方法。
（2）培养实验者严谨、细致的科学态度，提高实验操作的准确性。
三、实验方法1. 实验材料：蟾蜍、刺激器、肌电图仪、电极、剪刀、镊子、生理盐水等。
2. 实验步骤：（1）蟾蜍处死，取出后肢，去除肌肉表面的脂肪和结缔组织。
（2）将肌肉固定在肌电图仪上，连接电极。
（3）调整刺激器，进行不同刺激强度、刺激频度的实验。
（4）观察并记录肌肉收缩的三个时期。
蟾蜍的内部解剖实验报告
实验报告一、实验目的通过对蟾蜍内部结构的解剖观察，了解蟾蜍的消化系统、呼吸系统、循环系统、排泄系统、生殖系统、神经系统等器官系统的结构特点，掌握蟾蜍内部解剖方法。
二、实验材料1.蟾蜍1只2.解剖盘1个3.解剖剪1把4.解剖镊子1把5.解剖针1根6.解剖刀1把7.生理盐水适量8.棉球若干9.解剖显微镜1台三、实验步骤1.蟾蜍的麻醉和处死将蟾蜍放入装有乙醚棉球的标本瓶中，观察蟾蜍呼吸减慢，直至完全停止。
用解剖剪剪断蟾蜍的头部，处死蟾蜍。
2.蟾蜍的体表解剖（1）观察蟾蜍的体表特征，如皮肤、眼睛、四肢等。
（2）剪开蟾蜍的腹面皮肤，暴露内脏器官。
3.蟾蜍的消化系统解剖（1）观察蟾蜍的口腔，了解其牙齿和舌的分布。
（2）剪开蟾蜍的咽部，观察咽壁和食道。
（3）剪开蟾蜍的胃，观察胃的形态和胃壁的皱襞。
（4）剪开蟾蜍的小肠，观察小肠的形态和绒毛。
（5）剪开蟾蜍的大肠，观察大肠的形态和盲肠。
4.蟾蜍的呼吸系统解剖（1）观察蟾蜍的鼻孔，了解其呼吸方式。
（2）剪开蟾蜍的喉头，观察喉头和气管的连接。
（3）剪开蟾蜍的肺，观察肺的形态和支气管的分布。
5.蟾蜍的循环系统解剖（1）观察蟾蜍的心脏，了解心脏的形态和心房、心室的分布。
（2）剪开心脏，观察心脏内部的瓣膜和血管。
（3）观察蟾蜍的动脉和静脉，了解其分布和功能。
6.蟾蜍的排泄系统解剖（1）观察蟾蜍的肾脏，了解肾脏的形态和肾单位的分布。
（2）剪开肾脏，观察肾小球、肾小管和集合管。
（3）观察蟾蜍的输尿管和膀胱，了解其形态和功能。
7.蟾蜍的生殖系统解剖（1）观察蟾蜍的生殖器官，了解其形态和功能。
（2）剪开生殖器官，观察生殖细胞和生殖管道。
8.蟾蜍的神经系统解剖（1）观察蟾蜍的大脑、小脑和脑干，了解其形态和功能。
（2）剪开大脑，观察大脑的内部结构和神经纤维的分布。
（3）剪开小脑和脑干，观察其内部结构和神经纤维的分布。
四、实验结果与分析1.蟾蜍的消化系统：蟾蜍的消化系统包括口腔、咽、食道、胃、小肠、大肠和盲肠。
蟾蜍心跳测试实验报告
一、实验目的1. 了解蟾蜍心脏的结构与功能。
2. 学习使用生理学实验仪器测量蟾蜍心跳。
3. 掌握蟾蜍心跳的生理变化规律。
二、实验原理蟾蜍心脏由心房、心室和心耳组成，通过心脏的收缩和舒张，将血液泵送到全身。
本实验通过测量蟾蜍的心跳次数，了解蟾蜍心脏的生理功能。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍一只，生理盐水，玻璃注射器，手术剪，镊子，解剖显微镜，电子计时器等。
2. 实验仪器：生理盐水，实验台，手术器械，显微镜，电子计时器等。
四、实验步骤1. 准备实验材料，将蟾蜍放在实验台上。
2. 将蟾蜍的头部固定在实验台上，用手术剪剪开蟾蜍的腹部，暴露心脏。
3. 将心脏放入装有生理盐水的培养皿中，用生理盐水保持心脏湿润。
4. 用镊子轻轻取出心脏，放在解剖显微镜下观察。
5. 使用电子计时器，记录蟾蜍心跳次数。
6. 分别在正常情况下、心跳受到刺激、心跳停止后等情况，重复测量心跳次数。
五、实验结果与分析1. 正常情况下，蟾蜍的心跳次数为每分钟约60次。
2. 当心跳受到刺激时，心跳次数明显增加，可达每分钟120次以上。
3. 当心跳停止后，心跳次数逐渐恢复至正常水平。
通过实验结果分析，可以得出以下结论：1. 蟾蜍心脏的结构与功能与其他动物的心脏相似，通过心脏的收缩和舒张，将血液泵送到全身。
2. 心跳受到刺激时，蟾蜍的心脏会加快跳动，以满足身体对氧气和营养物质的需求。
3. 心跳停止后，蟾蜍的心脏会逐渐恢复跳动，表明蟾蜍具有心脏自主调节能力。
六、实验讨论1. 实验过程中，要注意蟾蜍的生理状态，避免因操作不当导致蟾蜍死亡。
2. 实验过程中，要保持心脏湿润，避免心脏干燥导致实验结果不准确。
3. 实验结果受多种因素影响，如温度、湿度、蟾蜍的生理状态等，实验结果可能存在一定误差。
七、实验总结本次实验通过对蟾蜍心跳的测量，了解了蟾蜍心脏的结构与功能，掌握了使用生理学实验仪器测量蟾蜍心跳的方法。
通过实验结果分析，了解了蟾蜍心跳的生理变化规律。
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蟾蜍的解剖与观察生命科学院张茜 111070094一、实验目的意义两栖动物绝大多数都是对人类有益的，例如消灭害虫、作药用资源等等。
蟾蜍作为医学、生理学重要的实验动物则使用更为广泛。
通过观察两栖类外形、皮肤、消化、呼吸、泄殖和循环等系统，了解两栖动物z 在生理学、药理学、毒理学等实验中常用组的准确取材。
重点：了解在摄食方式、营养、呼吸、排泄、生殖及血液循环器官系统的形态特征。
难点：理解两栖动物了解两栖动物由水生发展到陆地生活的各个器官结构与功能的适应性。
二、实验对象的获得与麻醉获得途径主要是由野外捕获或从特种养殖场购买(如牛蛙养殖场)。
抓取方法: 抓住其后腿，有经验者也可抓住其身体或借助一块布来抓，因蛙体表粘滑且蟾蜍体表有毒液分泌。
麻醉：两栖类皮肤有渗透性，放入含麻醉剂的溶液中就很容易麻醉。
0.1％的甲磺酸—三卡因(ms—222)水溶液在几分钟内即可麻醉动物，所需时间因身体大小而异。
也可用呼吸性麻醉剂，将蛙或蟾蜍放进玻璃罩或标本瓶内，同时放人浸有乙醚的棉花，几分钟后，即可发生作用。
三、实验操作与观察(一)外形观察将活蛙(或蟾蜍)静伏于解剖盘内，观察蛙(蟾蜍)的身体，可区分为头部、躯干和四肢三部分。
1．头部头：呈扁等腰三角形。
眼睛：在头两侧，稍向背部突出，有上下眼睑。
瞬膜：在下眼睑的内侧，为一半透明的薄膜，该膜向上延展可覆盖眼球。
外鼻孔：两眼的前方，近于头的前端的一对小孔内鼻孔：拉开下颌，在口腔顶壁的前端有一小孔鼻膜：在外鼻孔外缘的一对瓣状膜口：头端腹面有一很大的横裂鼓膜：眼后有一明显的褐色而稍下凹的圆形膜，是中耳腔与外界接触的地方。
蟾蜍的鼓膜较小，不明显耳后腺：蟾蜍鼓膜后上方有一对椭圆形的隆起，是由若干毒腺集合而成的，故又叫毒腺。
在受到压挤时，可分泌出一种乳白色的粘稠液，经加工之后即为中药“蟾酥”舌：在下颌前端内侧着生一柔软粘滑的舌，折向口腔内部，用镊子轻轻将舌拉出展平，可以看到蟾蜍的舌尖钝圆状。
舌底有淋巴间隙，分泌的淋巴液可使舌经常保持粘滑轻触其眼睑，观察上、下眼睑是否全动，瞬膜怎样活动2．躯干部蟾蜍尚无明显的颈部分化，后端腹中央处有一小孔称泄殖腔孔。
3．四肢前肢：从近体侧起，依次为上臂、前臂、腕、掌和指。
前肢有4指，观察指端形状，是否有爪，是否等长，指间是否有蹼。
婚垫：雄性的第一指(拇指)，内侧的一膨大的突起，是由粘液腺集合形成的，便于交配时拥抱雌体，故生殖季节发达。
后肢：由近体侧起，依次分为大腿(或股部)、小腿(或胫部)、跗、蹠和趾五部分。
后肢具五趾。
注意各趾的长度是否相同，趾端的形状髁状距：在第一趾(拇趾)内侧的一较硬的角质化突起4．皮肤蟾蜍背面皮肤呈暗黑色，粗糙，有若干大小不等的圆形瘰疣，但头的背部平滑无瘰疣，腹部及体侧呈浅黄色，间有黑色花纹，分布有较小的疣，故腹面较粗糙。
蟾蜍的皮肤腺有粘液腺和较多的毒腺。
粘液腺的内腔中空，毒腺的内腔呈颗粒状。
蟾蜍真皮的致密层上续海绵层，下接淋巴间隙，由于有淋巴间隙存在．皮肤除个别地方外，和肌肉联接的不紧密，很容易剥离下来。
(二)消化系统蛙的消化系统由消化道及其附属的消化腺组成，消化道包括口腔、食道、胃、肠和泄殖腔等，消化腺包括肝脏和胰脏。
1．口腔：剪开蛙的口角，使口张大，令口腔全部露出。
内鼻孔：为口腔顶壁前方外侧的一对椭圆形的孔，通过鼻腔与外鼻孔相通。
耳咽管孔：位于咽腔的后端，颌角附近有1对大孔，与中耳相通。
喉门位于下颌的后部，为口腔后方的1条纵裂缝。
食道开口：咽的最后部位是食管的开口，与咽腔之间无明显界限。
打开蟾蜍的体腔2．食道很短，开口于喉的背面，下端与胃相连。
3．胃位于体的左侧，形状稍有弯曲，前端略粗，后端较细，并有一明显的紧缩分，此即幽门，为胃与小肠的交界处。
4．肠：分小肠与大肠。
小肠又由十二指肠和回肠组成起于胃后，弯向前方的一小段为十二指肠自十二指肠向后折，经过几次回旋而达大肠的部分为回肠。
大肠膨大而陡直，开口于泄殖腔。
5．泄殖腔：较大肠短小，为汇集肛门，输尿管和输卵管(雌蛙)的管道。
6．肝脏位于胸腹腔的前端呈红褐色，由较大的左右二叶和较小的中叶组成。
肝脏背面、左右二叶之间有一绿色球形的胆囊，内贮胆汁。
7．胰脏为一不规则的淡红色或黄白色的管状腺，在胃与肠之间。
把肝、胃和十二指肠翻折过来指向前方，即可看到胰脏的背面。
(三)呼吸系统成蛙为肺皮呼吸。
肺呼吸的器官有鼻腔、口腔、喉气管室和肺。
1.喉气管室：由喉门向内的一条短粗的管子。
2.肺：为1对近似椭圆形的薄壁囊状物，内壁为蜂窝状，密布血管并具有弹性。
(四)泄殖系统1．雄性泄殖系统包括肾脏，输尿管、精巢、脂肪体各一对以及膀胱。
肾脏为1对暗红色扁平的器官，位于体腔的后部，贴近脊柱的两侧。
肾的腹面镶嵌着一排橙黄色的肾上腺，为内分泌腺体。
输尿管由肾的外缘近后端发出，开口于泄殖腔的背侧。
此管兼充输精管之用。
膀胱连附于泄殖腔的腹面，生于体腔后端腹面中央，为一薄壁的两叶状囊。
精巢位于肾脏的腹面内侧，近淡黄色，卵圆形，其大小常因个体与季节的不同而有差异。
白精巢发出的输精小管与输尿管相通。
脂肪体在生殖腺的前端，黄色，指状，其体积大小随季节不同变化很大。
2．雌性泄殖系统雌蛙的排泄系统与雄蛙相似，但其输尿管只作输送尿液之用。
生殖系统包括1对卵巢，1对输卵管和子宫。
卵巢位于肾脏前端背面，大小形状因季节而变化，生殖季节极度膨大，内有许多黑色球形卵。
卵巢外壁有许多皱褶。
输卵管为粗大而迂回的管子，位于卵巢的外侧。
前端开口紧靠着肺底的旁边，状似漏斗；子宫输卵管后端膨大成囊状的部分，子宫开口于泄殖腔的背面。
(五)循环系统包括心脏、动脉、静脉及淋巴系统等。
成体的心脏居锁骨稍前方，由两个心房和一个圆锥形心室组成，外被围心囊，由心室腹面右上角通出的淡色的管为动脉圆锥；心脏背面有一个三角形的腔，称静脉窦，静脉窦开口于右心房。
篇二：生理实验报告蟾蜍骨骼肌生理人体解剖及动物生理学实验报告实验名称姓学系组同组姓名号别别名蟾蜍骨骼肌生理2015年5月7日实验室温度实验日期一、实验题目蟾蜍骨骼肌生理a蟾蜍腓肠肌刺激强度与骨骼肌收缩反应的关系b蟾蜍骨骼肌单个肌肉收缩分析（潜伏期、收缩期和舒张期的确定） c蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系二、实验目的确定蟾蜍骨骼肌收缩的（1）阈水平和最大收缩以及刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线（2）收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期（3）刺激频度与肌肉收缩的关系三、实验方法1、蟾蜍坐骨神经-骨骼肌标本的制作及电路连接1)双毁髓处死蟾蜍后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的做个神经及小腿的腓肠肌，注意不要将胫神经与腓神经分离。
神经端结扎后，剪去无关分支后游离至膝关节处；肌肉端结扎在肌腱上，将腓神经也一起结扎，结扎线留长。
保留膝关节，剪去腿骨，将标本离体。
注意保持神经肌肉湿润。
2) 用大头钉将标本的膝关节固定于标本盒r2和r3两记录电极之间的石蜡凹槽内，保证神经、肌肉与电极充分接触。
神经中枢端接触刺激电极s1和s2，肌肉接触记录电极r3和r4，之间接触接地电极。
3) 肌肉的结扎线从标本盒中穿出，连接张力换能器。
注意连线尽量短，以减小阻力。
在实验过程中，注意标本的休息：将神经搭在肌肉上，用浸湿了任氏液的棉花覆盖神经肌肉，保持湿润。
但标本盒内避免有过多的液体，防止短路。
4) 换能器插头接rm6240通道1。
刺激输出线两夹子分别连接标本盒的刺激电极s1和s2，插头接刺激输出插口。
如果需要记录肌肉的动作电位，则在肌肉所搭置的记录电极上连接输入导线，注意接地，插头接通道2。
2、蟾蜍骨骼肌生理各项数据测定a蟾蜍腓肠肌刺激强度和骨骼肌收缩反应的关系1)打开信号采集软件，从“实验”菜单中选取“刺激强度对骨骼肌收缩的影响”，出现软件自动设置界面，各项参数已设置好，但需要将“采集频率”修改成“20khz”，扫描速度仍然是“1.0s/div”。
界面的采集通道默认为rm6240b面板上的通道1.刺激模式自动设置为强度递增刺激，起始强度为0.02v（可根据标本特性灵活选择） 2) 检查装置连接正确后，点击“开始记录”，屏幕下出现扫描线，软件处于记录状态。
（主义不要点击“开始示波”，在示波状态下，文件不能保存。
）扫描线如偏离零点较远，需要调零：将换能器与标本盒的棉线放松，旋转换能器的调零钮，使基线恢复零点。
3) 将换能器连接的棉线拉直，如果基线偏移零位（肌肉被牵拉的程度会影响基线位置），不必去管（不必重新调零，测量时，将偏移量减去即可）。
点击“开始刺激”，刺激器按一定时间间隔自动输出单个刺激方波，后一次比前一次强度递增。
将“刺激标注”激活，显示出每次发放的刺激的强度。
屏幕上应出现一系列由刺激触发的肌肉收缩曲线，同时可以观察到标本盒中肌肉的收缩。
注意文件的保存（不要移动标本盒与换能器的位置，即肌肉被牵拉的程度保持固定。
此要求也适用于ⅱb和ⅱc。
） 4) 当收缩幅度不再变化时，停止刺激，停止记录。
5) 应用测量工具，确定收缩的阈水平和最大收缩。
并确定最大收缩所对应的最小刺激强度（即最适刺激强度）。
记录下收缩幅度，刺激和放大器的参数设置。
（注意在测量时。
需将波形适当展开，确保测量数据更准确。
） 6) 绘制刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系曲线。
b单个肌肉收缩分析（确定潜伏期、缩短期、舒张期）1)将ⅱa实验得到的最大刺激强度对应的收缩曲线展开，应用测量工具确定收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期。
2)至少测量三次。
计算几次重复测量得到的三个时期的平均值和标准差。
c蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系1)打开信号采集软件，关闭通道3和4，保留通道1和2，分别对应肌肉收缩信号和肌肉动作电位信号。
示波状态下修改参数设置：采集频率20khz；通道1：通道模式为张力，扫描速度400ms/div，灵敏度7.5g（可根据收缩幅度合理选择），放大器时间常数设为直流，滤波频率100hz；通道2：通道模式为生物电，扫描速度400ms/div，灵活度2mv，放大器时间常数0.001s，滤波频率1khz。
刺激模式为串单单刺激，波宽1ms，延时20ms，选择一定的刺激脉冲个数（10-60个，避免让肌肉受到过多刺激）和刺激强度（阈上刺激强度即可，不必达到最大刺激强度，避免收缩幅度过大，超出换能器量程）。
2) 点击“开始记录”，软件进入记录状态。
3) 记录过程中逐渐提高刺激频率，在一定的刺激频率下，点击“开始刺激”，刺激器按此频率连续发放设定的刺激脉冲个数，肌肉出现相应的收缩。
4) 观察肌肉收缩的总和现象，确定肌肉收缩的最小融合频率，观察肌肉动作电位与收缩的关系。
5) 观察不同频率引起肌肉收缩的幅度变化。
四、实验结果a蟾蜍腓肠肌刺激强度和骨骼肌收缩反应的关系图1. 蟾蜍腓肠肌刺激强度和骨骼肌收缩反应的关系图表1 蟾蜍腓肠肌刺激强度与骨骼肌收缩强度的关系表刺激强度（v）0.18 0.19 0.20 0.21 0.22 0.23收缩强度（g）0.00 1.49 3.31 4.79 6.07 7.46刺激强度（v）0.24 0.25收缩强度（g）6.967.35 7.45 7.59 7.69 7.510.26 0.27 0.28 0.29根据上表可绘制下图，曲线图能更加直观的显示蟾蜍骨骼肌收缩强度随对腓肠肌刺激强度增加的变化趋势。