细胞培养技术教程
细胞培养实验步骤大全(精华版)
细胞培养实验步骤大全(精华版)细胞培养是生物学研究中常用的技术，在许多实验室中都扮演着重要角色。
下面是细胞培养的一般步骤，供参考。
材料准备1. 细胞培养基：根据实验需求选择适当的培养基，如DMEM、RPMI 1640等。
2. 细胞培养器具：培养皿、离心管、移液器等。
3. 细胞培养室：确保环境清洁、无菌。
细胞准备1. 细胞来源：选择要培养的细胞系或原代细胞。
2. 细胞传代：如果使用的是细胞系，根据需要进行传代，确保细胞状态良好。
细胞培养1. 细胞计数：使用显微镜和细胞计数仪等工具，准确计算细胞数目。
2. 细胞接种：按照实验要求，在含有培养基的培养皿中接种适量的细胞。
根据细胞类型的不同，可能需要预先涂覆培养皿。
3. 细胞培养条件：根据细胞类型的要求，提供适宜的培养条件，如温度、湿度和CO2浓度等。
4. 培养培养：定期更换培养基，保持细胞处于良好的生长状态。
5. 细胞观察：使用显微镜观察细胞形态和生长情况，检测是否存在异常。
细胞处理1. 细胞传代：根据细胞数量和状态，决定是否进行细胞传代。
传代可以延续细胞的寿命和维持细胞应答。
2. 细胞刺激：根据实验设计，给予细胞适当的刺激，如添加药物、因子或介质等。
3. 细胞采集：当需要获取细胞样本时，使用细胞剥离剂或胰蛋白酶等方法将细胞从培养皿中采集。
4. 细胞冻存：如果需要长期保存细胞，可以使用液氮冷冻保存的方法。
先加入冻存液，然后将细胞在适当条件下冷冻保存。
以上是细胞培养的一般步骤，根据具体实验和细胞类型，步骤可能会有所调整和细化。
在进行细胞培养实验时，请始终注意无菌操作和合理使用实验工具，以确保实验结果的准确性和可靠性。
生物药物研发中的细胞培养技术使用方法
生物药物研发中的细胞培养技术使用方法细胞培养技术在生物药物研发中扮演着至关重要的角色。
随着科技的不断进步和对生物药物市场需求的提高，研究人员对细胞培养技术的使用方法进行了深入研究和不断优化。
本文将详细介绍生物药物研发中常用的细胞培养技术使用方法。
一、细胞培养技术概述细胞培养技术是指将活体细胞放入细胞培养基中，经过一定的条件培养和维持来繁殖和生长。
它为药物研发提供了可控的环境，并能模拟体内生理条件，是制备大量生物药物的关键步骤之一。
二、细胞培养技术的基本步骤1.细胞株的选择：根据研究的需求和目标，选择适合的细胞株进行培养。
常见的细胞株有动物细胞、细菌细胞和真菌细胞等。
细胞株的选择应考虑其生长速度、稳定性和产物表达能力。
2.培养基的配制：根据细胞株的要求，配制适合其生长的培养基。
培养基通常由营养物质、生长因子、血清和抗生素等组成，以提供细胞繁殖和生长所需的营养和环境。
3.细胞的传代：细胞在培养基中生长到一定程度后，需要进行传代以保持其活力和生长状态。
传代的方法可以通过培养皿法、悬浮培养法等进行。
4.细胞培养条件的控制：合理的细胞培养条件对细胞生长和产物表达至关重要。
包括温度、湿度、pH值和气体成分等。
不同细胞株和表达系统对这些条件的要求有所不同，需要根据实际情况进行优化调整。
5.细胞培养过程监测与控制：细胞培养过程中的监测和控制是保证培养的稳定性和一致性的重要步骤。
监测常用的指标包括细胞密度、生长速率、细胞新陈代谢产物和细胞器官结构等。
根据实时数据，可以对培养条件进行调整以提高产物表达和培养效果。
三、常用的细胞培养技术1.传统细胞培养技术：传统的细胞培养技术主要应用于初步筛选和鉴定活体细胞株。
其操作简单，但培养周期长，细胞的生长速度较慢。
2.悬浮细胞培养技术：悬浮细胞培养技术广泛应用于生物制药领域。
悬浮细胞培养技术中，细胞以单个或成团状存在于培养基中，培养中的悬浮细胞可以快速繁殖并产生大量的生物药物。
细胞培养技术入门(共74张PPT)
用品和试剂
培养液、吸管、离心管、培养瓶、CHO/Hela细
胞等。
操作步骤（图）
基础培养基 95％ 发白并出现细针孔空隙时终止消化。
48％（58％）基础培养液。
血清 2％～5％
双抗100u/ml
（13）冻存液：其是配方：
10％DMSO
40％小牛血清（30％FBS） 1％的5.6％NaHCO3
1％双抗
48％（58％）基础培养液。
（14）MEM培养液:其是配方：
63%MEM液 20％的乳蛋白水解物 10％的小牛血清 1％的双抗（P、S）
2.包装：
在消毒前必须进行严格包装，以便消毒及储 存，防止落入灰尘及消毒后再次被污染。包装 纸（盒）表面用油性记号笔标明物品名称、消 毒日期等。
3.消毒:
在组织细胞培养技术中，务必保证组织细 胞在无微生物的条件下生长。防止培养物污染 可通过消毒灭菌（将已存在的微生物去除）和 无菌操作技术（防止已经消毒灭菌的用品被污 染）来完成。
洗净，烘干然后再泡入1％稀盐酸液中30分钟，用自来水彻底冲洗3-5遍，蒸馏水漂洗3遍，三（双）蒸漂洗2遍，烘干备用。
这样可以保证细胞外结晶在很短的时间内即融化。
（胰酶消化分离法、胶原酶法 ）
离心500～ 1000r/min×1～ 2min，
（12）细胞维持液：用以维持细胞缓慢生长或不 复苏细胞与冻存的要求相反，应采用快速融化的手段。
（11）细胞生长液：是用以维持细胞生长增殖的
液体。其是配方：
(5）封好的冻存管即可直接冻存 标准的冻存程序为降温速率﹣l～﹣2℃／min；
二、材料和试剂
基础培养基 ★ 细胞：贴壁细胞株CHO 80％～90％
★ 试剂：0.
利用细胞内某些酶与特定的试剂发生显色反应，也可测定细胞相对数和相对活力。
细胞培养基本步骤
细胞培养基本步骤细胞培养是一项重要的生物技术，涉及到多个步骤。
以下是细胞培养的基本步骤：1. 准备细胞培养环境：细胞培养需要在无菌的环境中进行，因此需要准备无菌操作台、培养箱、显微镜、细胞计数器等设备，确保培养环境符合要求。
2. 细胞复苏：从液氮或-80℃冰箱中取出冻存的细胞，快速转移到37℃水浴中解冻。
然后将细胞移至培养瓶中，加入适量培养基，轻轻摇动培养瓶，使细胞均匀分布。
3. 细胞传代：当细胞密度达到80%-90%时，可以进行传代。
将原培养瓶中的培养基吸出，加入适量胰蛋白酶，轻轻摇动培养瓶，使胰蛋白酶与细胞接触。
等待几分钟，待细胞变圆并从瓶底脱落，将胰蛋白酶吸出。
然后加入新配置的培养基，用吸管吹打细胞团块，使其分散成单个细胞。
最后将细胞悬液移至新的培养瓶中，放在培养箱中继续培养。
4. 细胞冻存：当需要进行长期保存时，可以将细胞冻存。
将细胞从培养箱中取出，离心收集，用适量细胞冻存液重悬细胞。
然后将细胞悬液分装到冻存管中，放入-80℃冰箱或液氮中保存。
5. 细胞观察：在细胞培养过程中，需要定期观察细胞的生长情况。
通过显微镜观察细胞的形态、密度等指标，判断细胞的生长状态和是否发生异常。
如发现异常情况，应及时采取措施处理。
6. 细胞计数和活力检测：采用细胞计数器或血球计数板进行细胞计数，同时检测细胞的活力。
一般采用台盼蓝染色法或荧光染色法进行检测。
7. 细胞换液和传代：根据需要，定期更换新鲜的培养基，以保证细胞的营养需求。
同时，在传代过程中要注意细胞的消化程度和生长情况，避免过度生长或未充分消化导致细胞状态不佳。
总之，细胞培养是一项技术性很强的工作，需要严格的操作规程和细致的观察。
通过不断实践和总结经验，可以提高细胞培养的成功率和稳定性。
细胞培养方法与步骤
细胞培养方法与步骤细胞培养是指将细胞从一个生物体中取出并在实验室中培养繁殖的过程。
细胞培养可用于各种实验研究，如细胞生物学、分子生物学、药物筛选等。
细胞培养的方法多种多样，下面将介绍常见的细胞培养方法及其步骤。
一、原代细胞培养方法原代细胞培养是指将从组织或器官中分离的细胞直接进行培养。
原代细胞培养是建立细胞株的重要步骤，一般需要一定的技术和设备。
步骤：1.组织分离：从动物或人体中取得组织，如肝脏、心脏等，并用生理盐水或细胞培养基洗刷组织的表面。
2.细胞分离：将组织切割成小块，并用胰蛋白酶或胰酶进行消化，使细胞分散。
3.细胞收集：用细胞培养基冲洗消化后的组织碎片，将细胞收集到离心管中。
4.离心：将离心管放入离心机中进行离心，分离出细胞沉淀。
5.细胞培养：将细胞沉淀重新悬浮在细胞培养基中，然后转移到培养皿中进行培养。
二、细胞株培养方法细胞株培养是指将原代细胞培养到一定数目并进行传代培养的过程。
步骤：1.细胞传代：细胞达到一定密度后，用胰蛋白酶或胰酶等对细胞进行消化，将细胞分离。
2.细胞计数：用显微镜和细胞计数板对细胞进行计数，得到细胞浓度。
3.细胞培养：将分散的细胞与新鲜的培养基混合，然后转移到培养皿中进行培养。
4.细胞增殖：培养皿中的细胞经过一段时间的培养，可以看到细胞开始增殖，形成细胞集落。
5.细胞传代：当细胞集落接近充满培养皿时，需进行细胞传代，即将细胞分散到新的培养皿中。
6.细胞冻存：当细胞达到所需数量后，可以进行细胞冻存，以备之后的使用。
三、细胞培养技术要点1.无菌操作：细胞培养需要在无菌条件下进行，避免细菌或真菌的污染。
操作前需做好洗手消毒，使用无菌操作台，并加入适量的抗生素或抗菌剂到培养基中。
2.培养液选择：根据不同细胞的需要，选择适合的培养基和生长因子，以提供细胞的生长所需的营养物质。
3.培养条件控制：温度、湿度、CO2浓度等因素对细胞生长有重要影响，需根据具体要求进行调节。
4.细胞检测：在细胞培养过程中，需要定期观察和检测细胞的形态、生长情况、细胞浓度等指标，以确保细胞的正常生长和状态。
细胞培养详细过程及注意事项
细胞培养详细过程及注意事项细胞培养是在体外培养和维持生物细胞生长和繁殖的一种技术，它是生物学、医学研究和药物研发等领域的重要实验手段。
细胞培养的过程需要遵循一定的步骤和注意事项，以确保细胞的正常生长和繁殖。
细胞培养的详细过程如下：2.细胞分离：将组织或细胞样品分离，去除多余的组织或细胞，获得单个细胞的悬浮液。
分离的方法包括酶消化、机械或化学分离等。
3.细胞培养基准备：准备培养基，培养基的配制根据细胞的要求而定，可以是无血清培养基、低血清培养基或含血清的培养基。
培养基提供了细胞所需要的营养物质和生长因子。
4.细胞接种：将细胞悬浮液接种到含有培养基的培养皿或培养瓶中，密度通常在1×105至1×106个细胞/mL之间。
接种后，培养皿或培养瓶需放入培养箱中，设定适当的温度、湿度和气体环境。
5.细胞培养条件控制：细胞的生长和繁殖需要适宜的培养条件。
常规的培养条件包括37℃、5%CO2和95%湿度。
通过调节培养基的pH值、温度和培养箱内的CO2和湿度等参数，来维持良好的培养环境。
6.细胞观察和培养基更换：培养过程中，需要定期观察细胞的生长状态和形态，通过显微镜观察细胞的形态变化和细胞层的覆盖率等指标。
根据需要，定期更换培养基，以确保提供足够的营养物质和维持适宜的细胞密度。
7.细胞传代：当细胞达到充分生长的状态时，需要进行传代，即将细胞从当前培养皿或培养瓶中移至新的培养皿或培养瓶中，以保证细胞的健康和生长。
用一句话总结上述细胞培养的过程就是从细胞分离到细胞培养，并按照一定条件进行观察和传代。
在进行细胞培养时，需要注意以下事项：1.无菌操作：细胞培养需要在无菌条件下进行，避免细胞被异物或外源性微生物污染。
操作前，材料和设备需要进行消毒。
2.培养基筛选：根据细胞的特性和需求选择合适的培养基，确保细胞能够获得必要的营养物质和生长因子。
3.冻存细胞库：定期将细胞进行冻存，以备后续使用，以避免病毒污染或细胞失活。
细胞培养操作流程
细胞培养操作流程细胞培养是一种人工环境中扩增和维持活细胞的技术。
它对于研究细胞生物学、药物筛选和治疗等方面有着重要的应用。
下面是一个常见的细胞培养操作流程，具体步骤如下：1.准备培养器具和试剂：首先需要准备好培养器具和所需试剂，包括培养皿、离心管、培养基、培养液、胶原蛋白贴士等。
2.细胞的分离和收获：将待培养的组织或细胞样品取出，用适当的方法将细胞分离开来。
可以使用酶消化、机械切割或筛选等方法。
分离好的细胞通过离心将细胞沉淀，将上清液吸掉，得到细胞沉淀。
3.细胞计数和浓度调整：使用细胞计数仪或血球计数室等工具，将细胞计数。
根据需要可以进行浓度调整，使其适合在培养器具中的扩增。
4.细胞的接种和培养：将得到的细胞沉淀重新悬浮于培养基中，并将其放置于培养皿中。
确定适宜的培养条件，包括温度、湿度、气体环境等。
定期观察细胞的生长情况，并更换培养基，以维持细胞的健康生长。
5.细胞的传代：当细胞在培养皿中达到一定密度时，需要进行传代，以防止细胞群体过于致密导致细胞生长受限。
传代前需先将细胞沉淀，并用如十倍的细胞培养基将其重新悬浮。
将悬浮的细胞分装至新的培养皿中，培养基的更换和细胞的观察也是相同的。
6.试验处理：在细胞培养过程中，可能需要对细胞进行各种试验处理，如药物处理、感染等。
根据需要，将试验处理物加入培养基中，确保细胞接触到试剂，并保持正常生长。
7.细胞固定和染色：进行一些试验或者观察时，对细胞进行固定和染色可以帮助观察或者分析细胞的形态、细胞器分布等。
选择适合的固定和染色方法，将细胞固定在培养皿中，并使用染色剂染色。
8.细胞的收集和保存：在实验完毕后，可以用适当的方法将培养皿中的细胞收集起来。
例如，轻轻洗涤细胞，然后加入适当的缓冲液，用吸管吸出，或者使用离心机离心沉淀。
收集好的细胞可以用于下一步的实验，或者进行冷冻保存。
9.培养器具的清洁和消毒：一旦细胞收集完毕，需要对使用过的培养器具进行清洗和消毒，以防止细菌、真菌、病毒等的传播。
细胞培养操作步骤
细胞培养操作步骤细胞培养是一项用于研究和生产生物技术产品的基础技术。
以下是细胞培养的一般操作步骤：1.实验室准备：-消毒：在开始实验之前，对实验室进行消毒处理，确保实验环境的无菌。
-工具准备：准备好所有需要的培养器具，如离心管、试管、培养皿、吸管等。
-培养基准备：根据实验需要，准备好适当的培养基，并对其进行消毒处理。
2.细胞准备：-细胞收获：收获细胞，并将其转移到一个装有细胞培养基的培养皿中。
-细胞计数：使用细胞计数器或显微镜对细胞进行计数和分析，以确定细胞的浓度和活性。
-细胞传代：如果需要，将细胞进行传代以维持其活性和数量。
3.培养条件：-培养温度：根据细胞的要求，将培养皿放置在适当的温度控制设备中，通常为37℃。
-CO2浓度：对于一些细胞（如哺乳动物细胞），需要提供适当的CO2浓度来维持其生长和代谢。
-培养液更换：根据具体要求，定期更换培养液，以保持细胞的健康生长。
4.细胞培养：-培养基添加：向培养皿中加入适当量的培养基，以提供细胞生长和繁殖所需的养分。
-培养皿处理：将培养皿放入恒温培养箱中，确保细胞在适宜的环境中生长。
-细胞观察：定期使用显微镜观察细胞的生长情况和形态变化，以评估细胞的健康状态。
-培养皿除菌：如果培养皿被发现有细菌或真菌污染，需要将其除菌，以保证细胞的无菌状态。
5.细胞传递：-细胞解离：当细胞达到所需密度或需要进行分离时，使用适当的酶或溶液将细胞从培养皿中解离。
-细胞收获：通过离心，将细胞收集到离心管中，并进行计数和分析。
-细胞传递：将细胞转移到新的培养皿中，重新开始培养过程。
细胞培养是一项复杂而精细的操作，需要高度的无菌技术和细心的操作。
在整个过程中，需要持续监测和调整培养条件，以确保细胞的健康生长和繁殖。
此外，注意遵循实验室的安全规范，保护自己和实验室的安全。
细胞培养的成功与否，将直接影响到后续实验的结果和应用。
实验室细胞培养的一般步骤
实验室细胞培养的一般步骤细胞培养是一项重要的实验室技术，广泛应用于生命科学研究以及医药产业中。
下面将为您介绍一般的细胞培养步骤，希望能为您提供一些指导意义。
第一步：制备培养基细胞培养的第一步是制备适合细胞生长的培养基。
培养基通常包括营养物质、氨基酸、维生素、生长因子等，可以为细胞提供足够的养分和环境条件。
根据不同的细胞类型和实验目的，制备不同种类和浓度的培养基。
第二步：分离细胞在细胞培养之前，需要将细胞从组织、器官或已有培养物中分离出来。
通常采用酶消化、机械剪切或离心等方法来分离细胞。
分离后，细胞可以在培养基中生长和繁殖。
第三步：细胞接种将分离出的细胞接种到含有培养基的培养皿或培养瓶中。
接种密度要适当，不宜过稀或过密。
同时，需要将培养基中的氧气和二氧化碳平衡，通常使用CO2培养箱来提供适宜的气体环境。
第四步：细胞培养经过接种后，细胞开始在培养基中生长和分裂。
在培养过程中，需要控制细胞的温度、湿度和pH值，保持适宜的生长条件。
此外，定期更换新鲜的培养基可以提供足够的营养物质，维持细胞的正常生长。
第五步：细胞检测和观察细胞培养的过程中，需要定期对细胞进行检测和观察。
包括细胞数量的计数、形态的观察和生长曲线的绘制等。
通过这些检测和观察，可以了解细胞的健康状态、增殖速率以及其他相关参数。
第六步：细胞应用或冻存根据研究或实验的需要，可以选择将细胞用于进一步的实验、传代培养或冻存保存。
冻存细胞需要使用适当的冻存液，将细胞缓慢冷冻并存放在液氮罐中，以便长期保存。
细胞培养是一项需要耐心和细心的工作，每一步都需要严格控制条件和遵循操作规范。
只有如此，才能获得可靠的实验结果和高质量的细胞培养。
希望本文能为您提供参考，更好地开展细胞培养工作。
细胞培养操作步骤及注意事项
细胞培养操作步骤及注意事项细胞培养操作步骤1. 准备培养基和培养器具：选择适合细胞生长的培养基，如DMEM（Dulbecco's Modified Eagle Medium），RPMI 1640（Roswell Park Memorial Institute 1640）等。
准备培养器具，如细胞培养瓶、组织培养皿、离心管等。
2. 培养器具的消毒：将培养器具放入70%的乙醇或漂白水中浸泡约15-30分钟，然后用无菌PBS（磷酸盐缓冲液）清洗3次。
将培养器具在100摄氏度的烘箱中高温烘干或使用紫外线灯照射15-30分钟。
3. 细胞传代：将细胞从旧的培养瓶中移至新的培养瓶中，以防止细胞过度增殖和细胞衰老。
首先将培养瓶中的培养基抽吸掉，然后用PBS洗涤细胞2次，最后加入适量的胰酶消化细胞，使其与培养基充分接触，放置一段时间，观察细胞的离培情况，离心沉积细胞，弃去上清液，加入新的培养基。
4. 细胞培养条件控制：维持培养环境的适宜条件，包括温度、湿度、CO2浓度和培养基的pH值等。
通常细胞在37摄氏度、5%的CO2和95%湿度下生长。
定期检查培养器的培养基水平，保持培养基的适当量。
5. 细胞观察和记录：使用显微镜观察细胞的形态和数量，记录细胞培养的过程和实验结果。
注意控制细胞的密度，防止过度密集或过度稀疏。
6. 细胞分化和实验处理：根据需要，可以进行细胞的分化处理或实验处理，如加入药物、生化试剂等。
在处理时要注意药物的浓度、处理时间和处理温度等。
7. 细胞冻存：当需要长期保留细胞时，可以进行细胞冻存。
将细胞与冻存液混合，分装入冻存管中，置于液氮中冻存，以备将来使用。
细胞培养注意事项- 细胞培养实验应在无菌条件下进行，避免污染。
- 培养器具应事先消毒处理，防止细菌、真菌和病毒的污染。
- 培养基的配制要准确无误，严格按照操作手册或厂家提供的方法进行。
- 培养过程中要保持培养器的密闭性，以确保适宜的气体交换和温度控制。
医学实验中细胞培养的基本操作教程
医学实验中细胞培养的基本操作教程细胞培养是医学实验中常用的技术手段，可以通过培养细胞体外研究细胞结构、功能、代谢以及疾病的发病机制。
本文将介绍医学实验中细胞培养的基本操作教程，包括无菌操作、细胞传代和细胞培养基的制备。
一、无菌操作1. 器具准备：将工作区域和培养器具用70%乙醇喷雾消毒，将所需器具放入无菌工作台，待干燥后再进行后续操作。
2. 细胞培养基准备：将所需的细胞培养基放入无菌环境中，根据实验需求添加适量的血清、抗生素等。
3. 细胞取样：取出培养物中所需的细胞，使用吸管或移液器将细胞转移到无菌的培养基中。
4. 细胞传播：将细胞和培养基混合均匀后，转移到培养皿或培养瓶中，注意避免皿壁的污染。
5. 无菌操作结束：将使用过的培养器具进行无菌处理，清理工作区域并进行必要的消毒。
二、细胞传代1. 始代细胞收获：当细胞在培养器中达到一定密度后，使用细胞解离液将细胞从底物上解离下来。
2. 离心：将解离的细胞转移到离心管中，以适当的转速离心沉淀细胞。
3. 上清液去除：倒掉离心管中上清液，注意尽量不要干扰到细胞沉淀。
4. 细胞悬浮液制备：使用无菌PBS洗涤离心沉淀的细胞，再添加适量的细胞培养基将其悬浮均匀。
5. 细胞传代操作：将悬浮细胞转移到新的培养器具中，注意避免气泡的产生，并将培养基置于CO2孵化箱中培养。
三、细胞培养基的制备1. 培养基组成：根据实验需求，制备含有特定成分的培养基，如DMEM、RPMI 1640等。
2. 液体消毒：将容器进行高温高压灭菌，确保培养基的无菌。
3. 配方调整：按照实验需求向培养基中添加适量的血清、抗生素、谷氨酸等。
4. 混合均匀：使用无菌器具将添加好成分的培养基搅拌均匀，确保各成分充分溶解。
5. 培养基保存：将制备好的培养基用无菌器具装入培养瓶中，标明日期和成分，存放于4℃的冰箱中，避免阳光直射。
以上就是医学实验中细胞培养的基本操作教程，从无菌操作、细胞传代到培养基的制备，这些基本技术对于医学实验中的细胞研究至关重要。
细胞培养流程及注意事项
细胞培养流程及注意事项COOKCELL一、细胞培养概念细胞培养（cell culture）是指在体外模拟体内环境（无菌、适宜温度、酸碱度和一定营养条件等），使之生存、生长、繁殖并维持主要结构和功能的一种方法。
细胞培养可分为原代培养和传代培养；直接从体内获取的组织细胞进行首次培养为原代培养；当原代培养的细胞增殖达到一定密度后，则需要做再培养，即将培养的细胞分散后，从一个容器以1：2或其他比率转移到另一个或几个容器（同样底面积的容器）中扩大培养，为传代培养，传代培养的累积次数就是细胞的代数。
二、细胞复苏1、细胞复苏遵循“慢冻快融”的原则，所以细胞冻存管从液氮中取出后，稍等待液氮挥发后，将冻存管放入37℃水浴中轻轻摇动融化（约1min）2、吸取细胞混悬液加入离心管，800rpm离心3min，弃去上清3、加入对应细胞的完全培养基，重悬细胞，再以5x105个/ml细胞接种至培养瓶/培养皿中4、放入37℃培养箱中，CO2 5%培养，定时观察细胞培养情况三、细胞冻存1、悬浮细胞：吸取细胞悬液，800rpm离心3min，弃掉上清2、贴壁细胞：用移液管或者巴氏吸管吸取培养液，加入PBS轻轻摇晃培养瓶/培养皿数次，冲洗细胞，然后吸取丢弃PBS，加入胰酶消化，轻轻摇晃培养瓶/培养皿数次，使胰酶与细胞表面充分接触，放到37℃孵育2-3min（对于新培养的细胞，建议消化时每隔30s镜下观察消化情况，以确定合适的消化时间），加入含血清完全培养基终止消化，用移液器吸取瓶内液体轻轻冲洗容器表面，使细胞流入容器底部，重复2-3次，将细胞悬液移到离心管中，800rpm离心3min，弃去上清3、加入冻存液：加入细胞冻存液（最好是用10% DMSO 完全培养基冻存细胞）重悬细胞，使细胞浓度在（5～10)×105个/ml，然后分装到冻存管中4、程序降温盒：4℃放30min → -80℃ 过夜（至少4-8h）→ 液氮（长期保存）5、温馨提醒：4℃ 30min这个步骤一定不能省略，否则冻存液无法渗透到细胞，易产生冰晶导致细胞受损；细胞-80℃保存不要超过一个月，长期保存要放在液氮中，保持细胞活性赛库生物的细胞每一个批次都会进行一次支原体和STR检测四、细胞传代1、悬浮细胞：吸取细胞悬液，800rpm离心3min，弃掉上清，加入新鲜的含血清的完全培养基，用吸头小心重悬细胞，按细胞生长密度将细胞悬液均匀分配到培养容器中进行传代培养2、贴壁细胞：用移液管或者巴氏吸管吸取培养液，加入PBS轻轻摇晃培养瓶/培养皿数次，冲洗细胞，然后吸取丢弃PBS，加入胰酶消化，轻轻摇晃培养瓶/培养皿数次，使胰酶与细胞表面充分接触，放到37℃孵育2-3min，加入含血清完全培养基终止消化，用移液器吸取瓶内液体轻轻冲洗容器表面，使细胞流入容器底部，重复2-3次，将细胞悬液移到离心管中，800rpm离心3min，弃去上清，加入新的含血清完全培养液重悬成单细胞悬液，按细胞生长密度将细胞悬液均匀分配到培养容器中进行传代培养3、将培养容器放到37℃孵育，第二天显微镜下观察细胞生长情况4、温馨提示：细胞传代需等面积按比例传代，如T25培养瓶培养，需1:2传代，应是将细胞悬液分为两份各加入T25培养瓶中进行培养五、注意事项1、细胞的冻存和复苏一定要遵循“慢冻快融”的原则，最大限度的保证细胞活性2、培养皿/培养瓶/培养板选择：贴壁细胞培养选用TC处理的3、使用L-15培养基时，培养瓶要用非透气盖的培养瓶，因为L-15培养基的成分会与CO2反应4、细胞培养换液：一般2-3天换液，有的细胞生长速度慢，可适当延长，但是也不要超过7天换液，如果换液后培养基快速变黄，则大概率是细胞被污染5、培养细胞最适PH为7.2-7.4，过酸、过碱会导致细胞形态发生异常，甚至死亡6、细胞密度达到70%-80%汇合度，此时处于对数生长期，最适合传代7、当细胞出现污染时，细菌污染可视污染程度决定是否加抗生素挽救，真菌污染和支原体污染建议不要（除非细胞很珍贵，难获得），当出现污染需要加抗生素处理时，在开瓶前需要把所有东西都准备好，并将操作台上无关的用品移走，避免造成二次污染8、移液废液缸建议外置，内置废液缸易引入污染9、在超净台/生物安全柜操作时左右手不能交叉，放置实验用品时需75%乙醇消毒再放入，严格按照操作规范进行。
细胞培养的操作步骤
细胞培养的操作步骤细胞培养是一种常见的实验室技术，用于研究和生产生物学领域的细胞。
细胞培养的操作步骤通常包括以下几个环节：准备培养基和试剂、细胞传代和细胞分离、细胞接种和培养条件的控制。
一、准备培养基和试剂1.确定所使用的培养基类型，如DMEM、RPMI-1640等，并根据实验的需求将其配制好。
2.购买所需的培养基添加剂，如胎牛血清（FBS）、生长因子、抗生素等，并根据实验要求将其加入到培养基中。
3.清洁工作台，并将所需的器具和试剂取出，进行消毒处理。
二、细胞传代和细胞分离4.将细胞传代物接种到一个新的培养器中。
根据实验的要求，可以使用细胞培养瓶或细胞培养皿等容器。
5.静置一段时间，让细胞附着在底部表面上，并增加培养基的吸附。
6.将旧的培养基小心地倒掉，并用含有酶的溶液，如胰酶-EDTA或胰蛋白酶，洗涤细胞。
此步骤旨在除去细胞表面的蛋白质和粘附物，使细胞能够自由分离。
7.加入一定量的培养基，将细胞解离，并通过轻轻摇动容器促进细胞的分散。
8.将分散的细胞转移到新的培养器中，并加入适量的培养基使其恢复生长。
三、细胞接种9.将细胞培养器中的细胞进行视觉检查，确保它们的形态和数量适合接种。
10.使用显微镜检查细胞的活力、纯度和质量。
如果细胞质量不佳，应根据需要调整细胞密度或传代更多次。
11.根据实验要求，将细胞重新分散并计算细胞密度。
12.准备接种物：使用无菌技术，将细胞和培养基混合，并在接种器中将混合物分散均匀。
13.将接种物小心地滴入新的培养器中，确保细胞均匀分布。
14.检查细胞的附着情况并加入适量的培养基。
四、培养条件的控制15.放置培养器在恒温培养箱中，保持适当的温度（通常在37摄氏度）、湿度和二氧化碳浓度（通常是5%）。
16.定期检查细胞的生长状况，观察细胞的形态和数量，以确定培养基是否需要更换或细胞是否需要传代。
17.如果需要传代，在细胞接种后一段时间内，观察细胞的生长速率和密度，根据需要调整传代时间和细胞密度。
细胞培养技术基础流程
细胞培养技术基础流程一、细胞培养前的准备。
咱要做细胞培养呀，那准备工作可不能马虎。
先说说实验室环境吧，得保证干净整洁又无菌。
实验室要经常消毒，紫外线灯可不能少，开着它给屋子来个大消毒，就像给细胞准备一个超级干净的小窝一样。
然后就是各种器材啦。
培养皿、移液枪、离心管这些都是细胞培养的小助手。
在使用之前，得把它们洗得干干净净的，再进行灭菌处理。
这就好比给小助手们洗个澡，再穿上无菌的防护服，这样它们才能好好地为细胞服务呢。
还有培养基，这可是细胞的食物呀。
不同的细胞喜欢不同的培养基，就像咱们人，不同地方的人有不同的口味。
得按照细胞的种类，精心挑选合适的培养基。
培养基里的营养成分就像做菜放的调料一样，要比例合适，这样细胞才能吃得饱、长得好。
二、细胞的获取。
细胞从哪儿来呢？这可就有多种途径啦。
有的细胞是从生物体直接采集的，比如说从动物身上取一些组织。
这个过程可得小心啦，就像从宝贝上小心翼翼地取下一块小碎片一样。
还有些细胞是已经保存好的细胞系，就像从细胞的“小仓库”里拿出来一样。
不管是哪种来源的细胞，在把它们放到培养环境之前，都得进行一些处理。
比如说，从组织里获取的细胞，要先把组织切碎，再用一些特殊的酶把细胞从组织里分离出来，这就像把紧紧抱在一起的小伙伴们轻轻地分开一样。
三、细胞的接种。
四、细胞的培养条件。
细胞在培养的时候，可是很娇贵的，对环境要求很高呢。
温度得控制好，一般来说，大多数细胞喜欢在37摄氏度左右的环境里生长，这个温度就像给细胞盖了一床刚刚好的被子，不冷不热。
除了温度，二氧化碳的浓度也很重要。
合适的二氧化碳浓度就像给细胞提供了新鲜的空气一样。
而且，还要注意培养箱的湿度，太干或者太湿细胞都会不舒服。
这就像咱们人，住在太干燥或者太潮湿的环境里都会觉得难受。
五、细胞的观察和维护。
在细胞培养的过程中，咱们要像照顾小宠物一样照顾它们。
要经常去观察细胞的生长情况。
用显微镜看看细胞的形态呀，有没有什么异常。
如果发现细胞长得不好，或者有污染的迹象，就得赶紧想办法解决。
细胞培养技术的使用教程
细胞培养技术的使用教程细胞培养技术是生物学实验中常用的一项技术，用于研究生物体内细胞的生长、分化、增殖和功能等方面的机制。
本文将为您介绍细胞培养技术的基本原理、操作步骤和注意事项。
一、细胞培养技术的基本原理细胞培养是通过提供适宜的生长环境，使细胞在体外以体内类似的方式生长和繁殖。
细胞培养的基本原理包括以下几个方面：1. 细胞培养基的选择：细胞培养基是提供细胞生长所需的营养物质和生长因子的培养液。
常见的细胞培养基包括DMEM、RPMI-1640、MEM等。
根据不同类型细胞的特点，选择合适的培养基十分重要。
2. 细胞培养温度和CO2浓度：大多数细胞在37℃下生长最适宜，同时需要加入5%~10%的CO2，以维持培养基的平衡pH值和细胞的正常生长。
3. 细胞传代和细胞冻存：当细胞达到一定密度时，需要将细胞进行传代，以保持细胞的正常生长。
同时，经过适当处理的细胞还可以进行冻存，以备将来使用。
二、细胞培养的操作步骤下面将为您介绍细胞培养的基本操作步骤：1. 细胞处理：消毒操作台面、工具和培养器具，穿戴好个人防护装备。
2. 细胞离心：将培养皿中的细胞细悬液离心，以去除培养基和代谢产物。
3. 细胞计数：使用显微镜或细胞计数仪对离心后的细胞进行计数。
根据实验需求，计算出所需细胞数目。
4. 接种细胞：将离心后的细胞重新悬浮在培养基中，按照实验要求，平均分装到不同的培养皿中。
5. 细胞培养和观察：将培养皿放入培养箱中，设置合适的培养温度和CO2浓度。
每天观察细胞的生长情况、细胞形态变化和污染情况。
6. 细胞传代：当细胞达到80%~90%的密度时，使用消化酶将细胞从培养皿上脱落，并重新接种到新的培养皿中。
传代细胞时要注意细胞的均一分散和避免过度消化。
7. 细胞冻存：处理好的细胞可进行冻存，将细胞悬液缓慢冷却至-80℃或液氮温度，并存放在液氮罐中保存，以备将来使用。
三、细胞培养的注意事项在进行细胞培养的过程中，有几个需要特别注意的方面：1. 操作环境和消毒：细胞培养需要在无菌环境下进行，操作过程中注意消毒操作台面和使用的工具，以避免细菌和其他微生物的污染。
细胞培养实验步骤
细胞培养实验步骤细胞培养是一种常用的实验技术，用于研究和培养人类及动物细胞以及微生物细胞，以便进行细胞生物学、免疫学、生物药剂学等领域的研究。
下面是细胞培养的一般步骤，供参考：1.预备培养物品：包括培养基、生长因子、惰性气体（例如二氧化碳、乙烷等）等。
2.消毒操作：将培养器皿、培养板、培养液等较小的物品放入70%乙醇中浸泡，或用高温高压灭菌。
3.培养基配制：根据需要的培养细胞类型选择相应的基础培养基（例如DMEM、RPMI-1640等），根据实验要求添加适当的补充物质（如胎牛血清、抗生素等），调节pH值。
4.细胞分离和传代：a）将需要培养的细胞从体内或体外取出；b）用消化酶（如胰蛋白酶）或化学脱附剂（如牛血清白蛋白）处理细胞；c）通过离心等操作，去除胶原颗粒、纤维素等杂质；d）将细胞悬浮于培养基中，数量适量；e）将细胞装入培养皿中，加入适量的培养基。
5.细胞观察：使用显微镜观察细胞的生长状态、数量、形态特征等。
6.细胞培养环境控制：a）保持恒定的温度：多数细胞培养在37℃下进行；b）提供合适的湿度：使用培养器内的水槽或加入水来增加湿度；c）提供适度的无菌环境：在洁净工作台或无菌箱内进行，注意操作无菌技术，避免细菌等污染细胞。
7.细胞培养的传代：细胞的生长速度快，细胞排列紧密，细胞密度太高会使细胞分泌代谢产物过多，阻碍细胞增殖，因此需要定期传代。
传代前要先将细胞分散（用胰蛋白酶或牛胰酶等处理），将培养皿中的细胞悬液分装到新的培养皿内。
8.细胞培养的净化：细胞培养过程中，细胞环境容易被菌落污染，因此需要进行细胞净化。
方法有：检测培养液的菌落数目，观察培养皿内是否有细菌、真菌等的生长，如发现污染现象，立即停止使用被污染的培养皿和培养液。
9.细胞培养的冻存：细胞培养过程中，保留一部分细胞进行冻存，以备后续的实验使用。
常用方法是将细胞悬液和DMSO混合后，存放在液氮中保存。
以上是细胞培养的一般步骤。
但不同类型的细胞具有不同的培养要求，实验者还需根据实际情况进行具体调整和处理。
细胞培养操作步骤
细胞培养操作步骤细胞培养是生物学实验中常用的一项技术。
通过细胞培养，可以研究细胞的生理活动、疾病发生机制以及药物的毒性和疗效等。
本文将为大家介绍细胞培养的基本操作步骤，帮助读者更好地进行细胞培养实验。
一、实验前准备1.1 材料准备首先，准备好所需的实验材料和试剂。
主要包括细胞培养基、培养皿、移液器、离心管、冰桶、显微镜和相应的培养器具等。
1.2 密切关注无菌操作细胞培养需要在严格无菌条件下进行，以避免细胞受到污染而影响实验结果。
实验前要正确佩戴防护服和洗手，确保操作台面、培养皿和使用的器械都经过高温高压消毒。
二、细胞的处理2.1 细胞种植将培养基加热至37摄氏度，并取出暖培养皿备用。
从细胞库中取出所需细胞的冻存管，在冰上迅速解冻，并将细胞转移到暖培养皿中。
注意，细胞数量应适量，不宜过多，否则会影响细胞的生长和适应。
2.2 细胞传代当细胞在培养皿中达到一定的密度后，需要进行传代操作，以保证细胞的健康和活力。
传代前，首先用生理盐水或PBS洗净细胞，并加入胰蛋白酶等消化酶将细胞从培养皿表面脱落。
然后，将细胞转移到新的培养皿中，并加入新鲜的培养基。
三、细胞培养条件的控制3.1 细胞培养环境将细胞培养皿置于37摄氏度的培养箱内，以提供适宜的温度和湿度。
此外，还要保持适当的氧气和二氧化碳浓度，可以通过培养箱上的气体调节装置进行控制。
3.2 培养基的更新培养基中含有丰富的营养物质，但随着时间的推移，这些营养物质会逐渐降解消耗，影响细胞的生长。
因此，需要按照一定的时间间隔进行培养基的更新，保持细胞在新鲜和富有营养的环境中。
四、细胞观察与处理4.1 细胞观察使用相差显微镜或荧光显微镜观察细胞的形态、数量和状态。
可以观察细胞的生长情况、染色效果以及细胞内特定蛋白的表达等。
4.2 细胞处理根据实验需求，可以对培养的细胞进行不同的处理。
例如，给细胞添加特定的药物、激素或化合物，刺激细胞产生某种反应或模拟特定的生理环境等。
《细胞培养技术》课件
contents
目录
• 细胞培养技术简介 • 细胞培养的基本原理 • 细胞培养的实验操作 • 细胞培养技术的应用实例 • 细胞培养技术的发展前景与挑战
01
细胞培养技术简介
细胞培养技术的定义
细胞培养技术是指在体外模拟体 内环境，用于培养细胞的技术。
该技术通过提供适宜的营养、气 体和生长因子等条件，使细胞在
目前细胞培养技术面临的挑战
细胞来源
目前细胞培养的细胞来源有限，主要来源于肿瘤细胞和胚 胎干细胞，需要寻找更为安全、可靠的细胞来源。
培养环境
细胞在体外培养过程中需要模拟体内的生理环境，如温度 、湿度、pH值等，如何维持这些环境参数的稳定是当前 面临的重要挑战。
免疫排斥
在组织工程和器官移植等领域，免疫排斥反应是影响治疗 效果的重要因素之一，如何降低免疫排斥反应也是当前研 究的重点。
将细胞从旧的培养液中分 离出来，并接种到新的培 养液中。
细胞冻存
将细胞保存于低温或冷冻 状态，以便长期保存或未 来使用。
细胞培养中的注意事项
严格无菌操作
避免微生物污染，保证细胞的 健康生长。
适宜的细胞密度
确保细胞获得足够的营养和空 间，促进其生长和分裂。
定期更换培养液
清除代谢废物，提供新鲜的营 养物质。
01
02
03
04
生物医学研究
用于研究细胞的生长、发育、 分化、凋亡等过程，以及探索 疾病的发生机制和治疗方法。
药物研发
用于筛选和验证药物的有效性 和安全性，以及研究药物的细
胞作用机制。
再生医学
用于组织工程和干细胞治疗等 领域，为损伤修复和疾病治疗
提供新的手段。
细胞培养入门教程
细胞培养入门教程细胞培养是生物学中常用的实验技术，它可以通过体外环境来模拟细胞在体内的生长环境，从而研究细胞的生物学性质和功能。
细胞培养具有广泛的应用领域，包括基础科学研究、药物筛选与研发、生物工程等。
本文将介绍细胞培养的入门教程，以帮助初学者掌握细胞培养的基本技能。
一、材料准备进行细胞培养前，首先需要准备以下材料和设备：1.细胞培养基：根据不同细胞类型的需求选择适合的培养基。
培养基种类繁多，常用的有DMEM、RPMI-1640等。
2.培养皿：常用的培养皿有培养瓶、96孔板等。
3.细胞培养试剂：包括胰蛋白酶、胎牛血清、青霉素/链霉素等。
4.离心机：用于收集和沉淀细胞。
5.培养箱：用于提供细胞培养的合适温度和湿度。
6.显微镜：用于观察细胞的生长情况。
二、细胞传代细胞培养中最基本的操作是细胞传代，也称为细胞分离。
传代的目的是维持细胞的活性和增殖能力，防止细胞过度生长和细胞衰老。
1.预培养：从冷冻保存的细胞种子库中取出细胞，加入预温热的培养基中，使其逐渐适应培养条件。
2.细胞计数：用显微镜和计数板对细胞进行计数，以确定所需的细胞数目。
3.细胞分离：将培养基中的细胞收集并用胰蛋白酶进行消化，使细胞从培养皿上脱落。
4.细胞传代：将细胞分散在新的培养皿中，并加入新的培养基，使细胞继续生长和分裂。
三、培养条件控制为了保证细胞的正常生长和功能表达，需要对培养条件进行严格控制。
1.培养基制备：根据不同细胞类型的需求，添加适量的血清、抗生素等到培养基中。
2.高温高湿：将培养皿放入培养箱中，保持温度在37℃左右，湿度在95%以上。
3.CO2气体：一般培养基中需添加适量的CO2，维持pH值的稳定。
4.培养时间控制：按照不同细胞类型的生长速度和特点，合理控制培养的时间，避免细胞过度生长或衰老。
四、细胞观察与染色细胞培养过程中，需要对细胞的生长情况进行观察和记录。
1.细胞显微镜观察：使用显微镜对细胞进行观察，观察细胞生长情况、形态特征等。
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细胞培养技术第一章细胞培养的基本原理与技术现代生物技术一般认为包括基因工程技术、细胞工程技术、酶工程技术和发酵工程技术，而这些技术的发展几乎都与细胞培养有密切关系，特别是在医药领域的发展，细胞培养更具有特殊的作用和价值。
比如基因工程药物或疫苗在研究生产过程中很多是通过细胞培养来实现的。
基因工程乙肝疫苗很多是以CHO细胞作为载体；细胞工程中更是离不细胞培养，杂交瘤单克隆抗体，完全是通过细胞培养来实现的，既使是现在飞速发展的基因工程抗体也离不开细胞培养。
正在倍受重视的基因治疗、体细胞治疗也要经过细胞培养过程才能实现，发酵工程和酶工程有的也与细胞培养密切相关。
总之，细胞培养在整个生物技术产业的发展中起到了很关键的核心作用。
第一节体外培养的概念一、基本概念体外培养（in vitro culture），就是将活体结构成分或活的个体从体内或其寄生体内取出，放在类似于体内生存环境的体外环境中，让其生长和发育的方法。
●组织培养：是指从生物体内取出活的组织（多指组织块）在体外进行培养的方法。
●细胞培养：是指将活细胞（尤其是分散的细胞）在体外进行培养的方法。
●器官培养：是指从生物体内取出的器官（一般是胚胎器官）、器官的一部分或器官原基在体外进行培养的方法。
二、体内、外细胞的差异和分化1、差异：细胞离体后，失去了神经体液的调节和细胞间的相互影响，生活在缺乏动态平衡的相对稳定环境中，日久天长，易发生如下变化：分化现象减弱；形态功能趋于单一化或生存一定时间后衰退死亡；或发生转化获得不死性，变成可无限生长的连续细胞系或恶性细胞系。
因此，培养中的细胞可视为一种在特定的条件下的细胞群体，它们既保持着与体内细胞相同的基本结构和功能，也有一些不同于体内细胞的性状。
实际上从细胞一旦被置于体外培养后，这种差异就开始发生了。
2、分化：体外培养的细胞分化能力并未完全丧失，只是环境的改变，细胞分化的表现和在体内不同。
细胞是否表现分化,关键在于是否存在使细胞分化的条件，如Friend细胞（小鼠红白血病细胞）在一定的因素作用下可以合成血红蛋白，血管内皮细胞在类似基膜物质底物上培养时能长成血管状结构，杂交瘤细胞能产生特异的单克隆抗体，这些均属于细胞分化行为。
第二节细胞培养的一般过程一、准备工作准备工作对开展细胞培养异常重要，工作量也较大，应给予足够的重视，推备工作中某一环节的疏忽可导致实验失败或无法进行。
准备工作的内容包括器皿的清洗、干燥与消毒，培养基与其他试剂的配制、分装及灭菌，无菌室或超净台的清洁与消毒，培养箱及其他仪器的检查与调试。
二、取材在无菌环境下从机体取出某种组织细胞（视实验目的而定），经过一定的处理（如消化分散细胞、分离等）后接入培养器血中，这一过程称为取材。
如是细胞株的扩大培养则无取材这一过程。
机体取出的组织细胞的首次培养称为原代培养。
理论上讲各种动物和人体内的所有组织都可以用于培养，实际上幼体组织（尤其是胚胎组织）比成年个体的组织容易培养，分化程度低的组织比分化高的容易培养，肿瘤组织比正常组织容易培养。
取材后应立即处理，尽快培养，因故不能马上培养时，可将组织块切成黄豆般大的小块，置4℃的培养液中保存。
取组织时应严格保持无菌，同时也要避免接触其他的有害物质。
取病理组织和皮肤及消化道上皮细胞时容易带菌，为减少污染可用抗菌素处理。
三、培养将取得的组织细胞接入培养瓶或培养板中的过程称为培养。
如系组织块培养，则直接将组织块接入培养器皿底部，几个小时后组织块可贴牢在底部，再加入培养基。
如系细胞培养，一般应在接入培养器皿之前进行细胞计数，按要求以一定的量（以每毫升细胞数表示）接入培养器皿并直接加入培养基。
细胞进入培养器皿后，立即放入培养箱中，使细胞尽早进入生长状态。
正在培养中的细胞应每隔一定时间观察一次，观察的内容包括细胞是否生长良好，形态是否正常，有无污染，培养基的PH是否太酸或太碱（由酚红指示剂指示），此外对培养温度和CO2浓度也要定时检查。
原代培养一般有一段潜伏期（数小时到数十天不等），在潜伏期细胞一般不分裂，但可贴壁和游走。
过了潜伏期后细胞进入旺盛的分裂生长期。
细胞长满瓶底后要进行传代培养，将一瓶中的细胞消化悬浮后分至两到三瓶继续培养。
每传代一次称为“一代”。
二倍体细胞一般只能传几十代，而转化细胞系或细胞株则可无限地传代下去。
转化细胞可能具有恶性性质，也可能仅有不死性（Immortality）而无恶性。
四、冻存及复苏（可参阅后面有关章节）为了保存细胞，特别是不易获得的突变型细胞或细胞株，要将细胞冻存。
冻存的温度一般用液氮的温度－196℃，将细胞收集至冻存管中加入含保护剂（一般为二甲亚砜或甘油）的培养基，以一定的冷却速度冻存，最终保存于液氮中。
在极低的温度下，细胞保存的时间几乎是无限的。
复苏一般采用快融方法，即从液氮中取出冻存管后，立即放入37℃水中，使之在一分钟内迅速融解。
然后将细胞转入培养器皿中进行培养。
冻存过程中保护剂的选用、细胞密度、降温速度及复苏时温度、融化速度等都对细胞活力有影响。
五、常用仪器设备无菌室,超净工作台,三重纯水蒸馏器,抽气泵,压力蒸气消毒器,电热恒温培养箱,培养器具，CO2培养箱,恒温水浴锅,倒置显微镜,离心机,无菌过滤器,洗刷装置,细胞计数板和电子细胞技术仪等等。
第三节细胞培养的无菌环境一、无菌室无菌室的结构：一般由更衣间、缓冲间、操作间三部分组成。
无菌室的消毒和防污染：为保持无菌状态，经常消毒是必要的，通常采用每日（使用前）紫外照射（1－2小时），每周甲醛、乳酸、过氧乙酸熏蒸（2小时）和每月新洁尔灭擦拭地面和墙壁一次的方式进行消毒。
实际工作中，要根据无菌室建筑材料的差异来选择合适的消毒方法。
此外，还应注意防止无菌室的污染。
造成无菌室污染的可能包括：送入无菌室的风没有被过滤除菌；进出无菌室时，能使外界空气直接对流进无菌室的操作间；等。
二、超净工作台工作原理：鼓风机驱动空气通过高效过滤器得以净化，净化的空气被徐徐吹过台面空间而将其中的尘埃、细菌甚至病毒颗粒带走，使工作区构成无菌环境。
根据气流在超净工作台的流动方向不同，可将超净工作台分为侧流式、直流式和外流式三种类型。
超净台的使用与保养：超净台的平均风速保持在0.32-0.48米/秒为宜，过大、过小均不利于保持净化度；使用前最好开启超净台内紫外灯照射10－30分钟，然后让超净台预工作10－15分钟，以除去臭氧和使用工作台面空间呈净化状态；使用完毕后，要用70%酒精将台面和台内四周擦拭干净，以保证超净台无菌。
还要定期用福尔马林熏蒸超净台。
第四节常用培养器皿及清洗消毒细胞培养需要大量消耗性物品，如玻璃器皿、金属器皿、塑料、橡胶制品、布类、纸类等，因此掌握清洗、消毒知识，学会清洗、消毒方法是从事细胞培养工作必须的。
一、清洗离体条件下，有害物质直接同细胞接触，细胞对任何有害物质十分敏感，极少残留物都可以对细胞产生毒副作用。
因此，新的或重新使用的器皿都必须认真清洗，达到不含任何残留物的要求。
（一）玻璃器皿的清洗一般经过浸泡、刷洗、浸酸、和清洗四个步骤。
1 浸泡新的或用过的玻璃器皿都要先用清水浸泡，软化和溶解附着物。
新玻璃器皿使用前得先用自来水简单刷洗，然后用5％盐酸浸泡过夜；用过的玻璃器皿往往附有大量蛋白质和油脂，干涸后不易刷洗掉，故用后应立即浸入清水中备刷洗。
2 刷洗将浸泡后的玻璃器皿放到洗涤剂水中，用软毛刷反复刷洗。
不要留死角，并防止破坏器皿表面的光洁度。
将刷洗干净的玻璃器皿洗净、晾干，备浸酸。
3 浸酸浸酸是将上述器皿浸泡到清洁液中，又称酸液，通过酸液的强氧化作用清除器皿表面的可能残留物质。
浸酸不应少于六小时，一般过夜或更长。
放取器皿要小心。
4 冲洗刷洗和浸酸后的器皿都必须用水充分冲洗，浸酸后器皿是否冲洗的干净，直接影响到细胞培养的成败。
手工洗涤浸酸后的器皿，每件器皿至少要反复“注水－倒空”15次以上，最后用重蒸水浸洗2－3次，晾干或烘干后包装备用。
（二）橡胶制品清洗新的橡胶制品洗涤方法：0.5mol/L NaOH煮沸15分钟，流水冲洗，0.5mol/L HCl煮沸15分钟，流水冲洗，自来水煮沸2次，蒸馏水煮沸20分钟，50℃烤干备用。
（三）塑料制品的清洗塑料制品特点：质软、易出现划痕；耐腐蚀能力强、但不耐热。
清洗程序：使用器皿后立即用清水清洗，浸于自来水过夜，用纱布或棉签和50℃清洗液刷洗，流水冲洗，晾干，浸于清洁液15分钟，流水冲洗（15－20遍）,蒸馏水浸洗三次，双蒸水泡24小时，晾干备用。
（四）包装:对细胞培养用品进行消毒前，要进行严密包装，以便于消毒和贮存。
常用的包装材料：牛皮纸、硫酸纸、棉布、铝饭盒、较大培养皿等，近几年用铝箔包装，非常方便，适用。
培养皿、注射器、金属器械等用牛皮纸包装后再装入饭盒内，较大的器皿可以进行局部包扎。
二、消毒和灭菌微生物污染是造成细胞培养失败的主要原因（一）物理消毒法1.紫外线消毒紫外线是一种低能量的电磁辐射，可杀死多种微生物。
革兰阴性菌最为敏感，其次是阳性菌，再次为芽孢，真菌孢子的抵抗力最强。
紫外线的直接作用是通过破坏微生物的核酸及蛋白质等而使其灭活，间接作用是通过紫外线照射产生的臭氧杀死微生物。
直接照射培养室消毒，用法简单，效果好。
紫外灯的消毒效果同紫外灯的辐射强度和照射剂量呈正相关，辐射强度随灯距离增加而降低，照射剂量和照射时间呈正比。
因此紫外灯同被照射物的距离和照射时间要适合。
离地面2米的30W灯可照射9平方米房间，每天照射2－3小时，期间可间隔30分钟。
灯管离地面2米以外要延长照射时间，2.5米照射效果较差。
紫外灯照射工作台的距离不应超过1.5米，照射时间30分钟为宜。
紫外灯不仅对皮肤、眼睛伤害，且对培养细胞与试剂等也产生不良影响，因此，不要开着紫外等操作。
2.高温湿热灭菌压力蒸汽灭菌是最常用的高温湿热灭菌方法。
对生物材料有良好的穿透力，能造成蛋白质变性凝固而使微生物死亡。
布类、物、璃器皿、属器皿、胶和某些培养液都可以用这方法灭菌。
不同压力蒸汽所达到的温度不同，不同消毒物品所需的有效消毒压力和时间不同。
从压力蒸汽消毒器中取出消毒好的物品（不包括液体），应立即放到60-70℃烤箱内烘干，再贮存备用，否则，潮湿的包装物品表面容易为微生物污染。
煮沸消毒也是常用的湿热消毒方法，它具有条件简单、使用方便等特点。
3.高温干热消毒干热灭菌主要是将电热烤箱内物品加热到160℃以上，并保持90－120分钟，杀死细菌和芽孢，达到灭菌目的。
主要用于灭菌玻璃器皿（如体积较大的烧杯、培养瓶）、金属器皿以及不能与蒸汽接触的物品（如粉剂、油剂）。
干热灭菌后要关掉开关并使物品逐渐冷却后在打开，切忌立即打开，以免温度骤变而使箱内的玻璃器皿破裂。
干烤箱内物品间要有空隙，物品不要靠近加热装置。
烧灼也是灭菌方法之一，常利用台面上的酒精灯的火焰对金属器皿及玻璃器皿口缘进行烧灼消毒。