免疫细胞化学技术

免疫细胞化学技术

免疫细胞化学，与免疫组织化学（Immunohistochemistry）相同，它是组织化学的分支，它是用标记的特异性抗体（或抗原）对组织内抗原（或抗体）的分布进行组织和细胞原位检测技术。

免疫组化，是应用免疫学基本原理——抗原抗体反应，即抗原与抗体特异性结合的原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂（荧光素、酶、金属离子、同位素）显色来确定组织细胞内抗原（多肽和蛋白质），对其进行定位、定性及定量的研究，称为免疫组织化学技术(immunohistochemistry)或免疫细胞化学技术(immunocytochemistry)。

抗原和抗体的要求

·具有特异性高和亲和力强的抗体是实验成功的首要条件。

–对抗体的要求：纯度高、比活性强；

·高度特异性抗体的获得，取决于抗原的纯度。

–对抗原的要求：纯度高，免疫原性强，稳定无变化。

抗原(antigen, Ag)

·抗原的概念：凡是在机体内引起体液免疫和(或)细胞免疫反应的物质，称为抗原。抗原具有两个方面的特性：

–免疫原性：引起机体产生抗体和(或)致敏淋细胞的特性；

–免疫反应性：抗原能与相应的抗体及致敏淋巴细胞发生特异的结合或反应的特性。

·根据抗原是否显示免疫原性分为：

–完全抗原：分子量较大，一般在10kDa以上，并具有较复杂的化学组成。

·免疫原性最强的是蛋白质抗原，多糖次之；脂类和核酸必需和蛋白质及多糖形成复合物才具有良好的免疫原性。

–半抗原：又称为不完全抗原，分子量较小。例如：某些短肽、多糖、类脂和药物等。

·半抗原必需与载体结合，才能获得免疫原性。

载体

·通常是具有高度免疫原性的大分子物质，具有将免疫原性传递给耦联的半抗原能力。

–常用的载体有钥孔血蓝蛋白(keyhole limpet hemocyanin，KLH)、牛血清白蛋白(bovine serum albumin, BSA)、卵白蛋白(Ovalbumin，OVA)等。

–用戊二醛或碳化二亚胺作为交联剂通过功能基团-NH2、-COOH等将半抗原结合到

载体上。结合比例为5kDa结合5～25个分子的小肽。

（三）抗体(antibody, Ab)

1、抗体的概念：

免疫球蛋白

·机体受到抗原刺激后，由浆细胞合成并分泌出一类具有与抗原发生特异性结合的球蛋白，被称为抗体。

–抗体主要存在于血清内；

–抗体都是免疫球蛋白，但免疫球蛋白并不一定都是抗体。

–免疫球蛋白根据重链的结构及抗原特异性不同分为五种，既IgG、IgD、IgE、IgA、IgM。

2、免疫组化实验中常用的抗体：单克隆抗体和多克隆抗体。

·单克隆抗体：是一个B淋巴细胞克隆分泌的抗体，是应用细胞融合杂交瘤技术免疫动物制备的。

–特异性强、抗体产量高。

·多克隆抗体：是将纯化后的抗原直接免疫动物后，从动物血中所获得的免疫血清，是多个B淋巴细胞克隆所产生的抗体混合物。

–特异性低，会产生抗体的交叉反应。

–多克隆抗体广泛应用于石蜡包埋组织切片，可减少假阴性染色机会。

–抗原与抗体的结合，要求量保持一定比例，当抗原或抗体过量时，是不能聚合成大颗粒。

3、抗体的制备——多克隆抗体的制备

·动物的选择

·佐剂(adjuvant)

·免疫方法

·免疫剂量

·抗体效价的测定

·放血或定期抽血

(1) 动物的选择

选择什么动物来免疫取决于：

·所需抗血清的量

–小鼠只能提供1.0～1.5ml的血液，而山羊能提供几升。

·能供免疫用的抗原量

–小鼠50 g足够，而山羊需要几毫克。

(1) 动物的选择(续)

·动物的品系：免疫动物与提供抗原的动物之间的种系差异越大越好。

–例如哺乳动物的抗原可选择非哺乳动物来制备抗体。

–常用的动物有兔、羊、马、猪等，以兔(新西兰兔，年轻，健壮，体重在2.5kg左右，雄性)为最常用。

(2) 佐剂(adjuvant)

·一般可溶性抗原注射后，迅速从注射部位扩散、吸收代谢。佐剂可延长潴留时间，且延长免疫刺激作用。因此在制备抗体的过程中，常将抗原和佐剂一起注射。

·最常用的佐剂是弗氏佐剂，又分为:

–弗氏不完全佐剂(Freund's incomplete adjuvant)

–弗氏完全佐剂(Freund's complete adjuvant)

弗氏不完全佐剂

(Freund's incomplete adjuvant, FIA)

·是由油剂(石蜡油或植物油)与乳化剂(羊毛脂或Tween80)混合而成，比例为1:1、2:1、

3:1或5:1，可根据需要而定，通常2:1。

·使用时与水溶性抗原按1:1比例充分混合，使抗原分散在佐剂中形成油包水乳剂。

弗氏完全佐剂(Freund's complete adjuvant, FCA)

·在弗氏不完全佐剂中加入活卡介苗或死的结核分枝杆菌(终浓度为2～20mg/ml)，即成为FCA。

·免疫动物时，将弗氏佐剂与抗原按体积1:1 混合乳化后(油包水)注入动物。

–一般首次注射时用完全佐剂乳化，第二次或第三次注射时用不完全佐剂或不用佐剂。

佐剂与抗原乳化的方法

·研磨法：适于制备大量的佐剂抗原

–先将不完全佐剂加热，取1.73ml放人无菌玻璃研钵内；缓缓滴入0.23ml活卡介苗，边滴边按同一方向研磨，使菌体完全分散。

–按同样方法滴人抗原，每加一滴应研磨至小滴消失。滴加抗原的速度要慢，待抗原全部加人后，应成为乳白色粘稠的油包水乳剂。

·缺点：研钵壁上粘附大量乳剂，抗原损失较大，对微量或难得抗原不宜采用。

佐剂与抗原乳化的方法(续)

·注射器混合法

–将等量的完全佐剂和抗原分别吸人两个5ml注射器内，然后插入三通管内，交替推动针管混匀，往复操作直至形成粘稠的乳剂为止。

·优点：无菌操作，节省抗原或佐剂。

·缺点：不易乳化，时间长。

佐剂与抗原乳化的方法(续)

·快速乳化法：利用超声波粉碎器可快速乳化抗原和佐剂混合物。

–将抗原和佐剂按所需量加入一离心管中，置于超声波粉碎器上，粉碎头浸入液面下0.5cm，离瓶底0.5cm左右，以免打碎离心管。

–每次乳化10～15s，然后置冰箱lmin左右。反复乳化3～4次即可完全乳化。管内残余量800r/min离心5～10min收集。

·优点：简单、快速、节省材料。