组氨酸发酵条件及高产菌株选育研究进展
L-精氨酸合成及高产菌选育与发酵研究进展

库 利 棒 杆 菌
A C 1 8 8 及 黄 色 短 杆 菌 T C3 6
A C 10 7中 , 建 精 氨 酸 工 程 菌 。最 近 ,kd T C 46 构 Iea 等¨ 以 3株 谷 氨 酸棒 杆 菌 突变 株 为 出发 菌 株进 行基 因 重 组 , 得 高 产 精 氨 酸 菌 株 。 表 明 将 获 A rR和 ag 2 ag rB 6组 合 并 导 人 野 生 型 c ltm — .gua i cm 中 , u 可得 到 精 氨 酸 高产 菌 株 。来 源 于亮 氨酸
( 江 师 范大 学 化 学 与生 命 科 学 学 院 , 江 金 华 浙 浙 3 10 ) 2 04
摘
要
精 氨 酸是 合 成蛋 白质 的重 要 原 料 , 一 些代 谢 途 径 的 中间 代谢 物 。 它在 人 和 动 物 体 内具 有 重 要 的 生 是
理 生 化 功 能 , 食 品 与 医药 工 业 应 用 十 分 广 泛 。对 精 氨 酸 高产 菌 株 选 育 、 酵 工 艺优 化 、 核 生 物 中的 合 成 途 在 发 真 径 、 谢 调 控 机 制 等 方 面 最 新 研 究进 展 做 了 综述 。 代 关 键词 精氨 酸; 成途径 ; 控机制 ; 合 调 菌种 选育 ; 酵 生产 发 Q 1 85 文献标识码 A 文章 编 号 10 7 2 ( 0 2 0 —07 0 0 5— 0 1 2 1 ) 1 0 0— 5
鸟氨 酸 , 甲酰磷 酸的合 成 , 氨 鸟氨 酸与 氨 甲酰磷 酸
合 成精 氨酸 。精氨 酸合成途 径见 图 1 。
2 1 精 氨酸 的合成 .
2 1 1 鸟氨 酸的合 成 . .
在 2种 模式 生物 中 , 氨 鸟
生 产菌株 的基 因 l C 5 , e 4 6 能够 提高 氨基酸包 括精 u
《发酵菌种选育》课件
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发酵菌种选育是提高发酵工业生产效率和产品质量的关键环节, 对于降低生产成本、提高经济效益、推动产业发展具有重要意义 。
菌种选育的基本原则
80%
适应性
选育的菌种应适应发酵工业生产 的环境条件,如温度、pH、压力 等。
100%
产率
选育的菌种应具有较高的发酵产 率,以提高生产效率和降低成本 。
80%
人工智能的应用将有助于提高菌种选育的效率和成功率,缩短研发周期,降低研 发成本。同时,人工智能还可以结合自动化技术实现菌种筛选和发酵过程的自动 化控制,提高生产效率。
THANK YOU
感谢聆听
04
发酵菌种选育的应用与案例
在工业生产中的应用
生物能源
发酵菌种可用于生产生物燃料 ,如乙醇、生物柴油等,替代 化石燃料。
化学品生产
发酵菌种可以用于生产各种化 学品,如氨基酸、抗生素、维 生素等。
食品加工
在食品加工中,发酵菌种可用 于生产酸奶、奶酪、面包等食 品。
在农业上的应用
有机肥料
发酵菌种可以将有机废弃物转化为有机肥料,提高土 壤肥力。
合成生物学结合了基因编辑技术和系 统生物学,通过设计和构建人工基因 线路和细胞系统来优化微生物发酵过 程。
随着合成生物学的发展,未来将有望 实现定制化的菌种设计和优化,提高 发酵产物的产量和纯度,降低生产成 本。
人工智能在菌种选育中的应用前景
人工智能技术如机器学习和深度学习能够处理大量的菌种数据,预测和优化菌种 生长和代谢过程。
菌种选育的成功案例分析
青霉素的发现
通过对霉菌的发酵产物进行筛选,发 现了青霉素,为人类治疗细菌感染做 出了巨大贡献。
酵母菌的选育
高赖氨酸玉米的选育
L-组氨酸高产菌株的选育及其发酵条件优化
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文章 编号 :0 9 0 0 (0 60 - 7 7 0 10 - 0 2 0 )5 0 4 — 3 2
研 究 报 告
L 组氨酸高产菌株的选 育及其发酵条件优化 一
史楠 , 刘辉 , 陈宁
天 津科 技 大 学 生 物 工程 学 院 , 天津 3 0 2 022
[ 要 ] 目的 : 摘 以谷 氨 酸 棒 杆 菌 T 2 2 (h - y-5 M' S V - / I 为 出发 菌 株 , 向选 育 具 有 5 Q 23 P e T r - P G 5  ̄ CN ) / / / 定 -甲基 色 氨 酸 抗 性
( - ' ) 磺胺 胍抗 性 ( G )5 氟 色 氨 酸 抗 性 ( - P) 8 氮 鸟 嘌 呤抗 性 ( - G ) 6 巯 基 嘌 呤 抗 性 ( -  ̄ 、- 唑 丙 氨 酸 抗 5 MP 、 S r、 - 5 F 、- 8 A '、- 6 M1 ) 2 噻
性 (- ) 遗 传 标 记 的 突 变株 ; 2T 等 同时 对 突 变 株 发 酵培 养 基 及 条 件 进 行 研 究 , 获得 最优 条 件 。方 法 : 经硫 酸 二 乙 酯诱 变处 理 , 测 定 了诱 变 时 间 与致 死 率 的 关 系 , 对 发 酵 培 养 基 中不 同氮 源 、 物 素 添 加 量 进 行 了单 因 素 实验 , 接 种 量 、 酵 培 养 温 度 并 生 对 发 等发 酵 条 件 也 进行 了实验 确 定 。 结 果 : 诱 变处 理 后 , 向选 育 出 的菌 株 T 10 (- P S V 一 P 8 A V 一 V2 T 在 经 定 L 15 5 M' G 5 F / 一 G 6 MP 一 A) / 未 经 优 化 的 摇 瓶 发 酵条 件 下 ,_ 氨 酸 的 产量 为 1. / ; 优 化 培 养条 件 后 ,_ 氨酸 的产 量 达 2 — 4 g L L组 20 g L 而 2 L组 3 2 / 。结 论 : 确定 最佳 诱 变 时 间 3mi, 时 致 死 率 为 8 %。 酸 铵 为 发 酵 培 养 基 中最 适 碳 源 , 物 素 添加 量 为 5 p / 采 用 5 0 n此 0 硫 生 0  ̄ L, g %接 种 量 为 宜 , 组 氨 酸发 酵 的最 适 温 度 为 3 ℃ 。 0 [ 键 词 ] 组 氨酸 ; 氨 酸棒 杆 菌 ; 变 ; 化 关 谷 诱 优
2021-2022学年四川省成都市武侯高级中学高二下学期期中生物试题
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2021-2022学年度高二下期生物期中考试卷考试时间:90分钟考试总分:100分一、单选题(每小题1.5分,共60分)1.下列关于果酒和果醋制作过程中的叙述,正确的是()A.果酒和果醋制作过程中都应注意适时排气B.在发酵过程中都应该不断地通入无菌空气C.两者制作过程中都应该注意防止杂菌污染D.发酵的适宜温度都应该维持在25℃左右2.图甲是传统发酵技术的装置图,图乙是果酒和果醋制作过程中发生的物质变化。
下列有关叙述中,错误的是()A.甲装置可用于果醋制作,也可用于果酒的制作B.用甲装置制作果醋时,要打开阀a,关闭阀bC.制作果酒和果醋过程中,发酵液pH都会降低D.过程③④都需要氧气的参与,但反应场所不同3.下列关于“腐乳的制作”实验,叙述正确的是()A.控制发酵温度的主要目的是腐乳调味B.腐乳制作后期加入香辛料和料酒有防腐作用C.毛霉的主要作用是分解脂肪和淀粉D.成品腐乳表面的粘性物质主要由细菌产生4.下列关于腐乳制作叙述中,正确的是()A.腐乳制作过程中加酒精含量一般控制在70%左右B.将长满毛霉的豆腐分层装瓶腌制时,底层和接近瓶口的盐要铺厚些C.勤向腐乳坯表面喷水,有利于毛霉菌丝的生长D.腐乳生产的现代化工艺中,常将优良毛霉菌种直接接种在豆腐上5.我国是名副其实的发酵大国,发酵工程在食品工业、医院工业及农牧业等许多领域得到了广泛的应用。
下列相关叙述错误的是()A.利用黑曲霉将大豆原科中的蛋白质水解,经淋洗后可调制成酱油B.利用酵母菌等菌种的发酵工程生产的单细胞蛋白,可作为食品添加剂C.将乙型肝炎病毒的抗原基因转入酵母菌,再通过发酵可生产乙型肝炎疫苗D.利用发酵工程生产的微生物农药,作为化学防治的重要手段,可用于防治病虫害6.下列关于泡菜的制作和亚硝酸盐含量测定的叙述,正确的是()A.将蔬菜用开水和白酒浸泡1min 以加快发酵速度B.在发酵过程中出现白膜可能是由于酵母菌大量增殖而引起的C.测定亚硝酸盐含量用波长为550nm 的光是因为亚硝酸盐对该波长的光有最大的吸收率D.若制作标准曲线时用的比色杯的光程比待测样品的比色杯光程大,则计算出的待测样品中亚硝酸盐的含量偏低7.测定亚硝酸盐含量的有关叙述,不正确的是()A.亚硝酸盐与对氨基苯磺酸发生重氮化反应,需在盐酸酸化条件下B.重氮化反应后,与N-1-萘基乙二胺盐酸盐结合形成玫瑰红色染料C.把显色反应样品与标准显色液进行比较,可估算出泡菜中亚硝酸盐含量D.配制溶液所用的提取剂为氯化镉与氢氧化铝乳液8.下列关于微生物的分离与培养实验的叙述,正确的是()A.高压蒸汽灭菌加热结束后,打开放气阀使压力表指针回到零后,开启锅盖B.倒平板时,应将打开的皿盖放到一边,以免培养基溅到皿盖上C.为了防止污染,接种环经火焰灭菌后应趁热快速挑取菌落D.用记号笔标记培养皿中菌落时,应标记在皿底9.下表为某培养基的配方,下列叙述不正确的有()项成分蛋白胨葡萄糖K2HPO4伊红美蓝蒸馏水琼脂含量10g10g2g0.4g0.065g1000mL20g①从物理性质看该培养基属于固体培养基,从用途看该培养基属于鉴别培养基②培养基中属于碳源的物质主要是葡萄糖,属于氮源的物质是蛋白胨③该培养基中的蛋白胨可提供特殊营养物质④该培养基调节合适的pH和消毒后就可以接种使用⑤该培养基可以用于培养HIV病毒⑥该培养基可以用于大肠杆菌的鉴定,其菌落出现黑色A.1项B.2项C.3项D.4项10.野生型伤寒沙门氏菌(his+)可合成组氨酸,某种突变体丧失了这种能力,必须在添加组氨酸的培养基上才能生长,称为组氨酸营养缺陷型(his),下图甲、乙为培养伤寒沙门氏菌时两种不同的接种方法。
组氨酸生产工艺
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组氨酸生产工艺组氨酸是一种重要的氨基酸,广泛应用于食品、医药和化工等领域。
组氨酸的生产工艺主要包括:微生物发酵法、化学合成法和转基因工程法。
微生物发酵法是目前最主要的组氨酸生产工艺。
常用的微生物菌株包括窄小芽孢杆菌、铜绿假单胞菌和乳酸杆菌等。
发酵过程中,首先需要选择合适的培养基,通常以葡萄糖、蛋白质和无机盐为主要成分,同时添加适量的氨基酸和辅助因子。
接种合适的菌株后,通过调控温度、pH值和搅拌速率等条件,控制发酵过程的进展。
在发酵过程中,组氨酸的产量和收率与菌株的选择、培养基的配方和发酵条件的优化有关。
通常,发酵液经离心、浓缩、除杂等处理步骤后,得到纯化的组氨酸产品。
化学合成法是另一种组氨酸生产工艺。
该方法主要通过合成反应,将合适的化学物质转化为组氨酸。
目前常用的合成方法包括环氧乙烷法、亚甲苯法和脱羧氨基乙酸法等。
其中,环氧乙烷法是最常用的合成方法。
该方法的主要步骤包括环氧乙烷与氨水的反应、甲基化和水解等。
化学合成法的优点是生产工艺简单,但缺点是反应条件较苛刻,产物纯度较低。
转基因工程法是一种新兴的组氨酸生产工艺。
通过将合适的基因导入到微生物菌株中,使其具有产生组氨酸的能力。
这种方法通常通过重组DNA技术实现。
首先,将编码组氨酸合成酶的基因与合适的表达载体连接,形成重组质粒。
然后将重组质粒导入到微生物菌株中,并通过培养和筛选等步骤,获得产生组氨酸的转基因菌株。
转基因工程法的优点是可通过基因工程手段调控菌株的代谢途径,提高组氨酸的产量和纯度。
综上所述,组氨酸生产工艺主要包括微生物发酵法、化学合成法和转基因工程法。
微生物发酵法是目前最主要的生产工艺,化学合成法是另一种常用的方法,而转基因工程法是一种新兴的生产工艺。
不同的工艺具有各自的特点和应用范围,可以根据需要选择合适的方法进行组氨酸的生产。
大肠杆菌L-组氨酸生物合成途径的改造及其对工程菌L-组氨酸产量的影响
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大肠杆菌L-组氨酸生物合成途径的改造及其对工程菌L-组氨酸产量的影响魏伟;刘倩;卢利宁;谢希贤【摘要】To modify the metabolic pathway of L-histidine biosynthesis in E. Coli and increase L-histidine yield. E. Coli M-18 (SGr + 2-Tar + HisHxr) was obtained by N-Methyl-N-nitro-.N-nitrosoguanidine (NTG) mutagenesis derived from the original strain E. Coli M-17(SGr). The histidine operon was amplified by PCR from E. Coli M-18(SGr + 2-Tar + HisHxO chromosome and ligated it into the Puc118 vector. The recombinant plasmid Puc118-his-operon was transformed into E. Coli M-18 (SGr + 2-Tar + HisHxr) by electroporation. The zwf gene and prs gene were amplified by PCR, and then ligated to Pstv28 plasmid. The recombinant plasmids Pstv28-zwf, Pstv28-prs and Pstv28-zwf-prs were transformed into E. Coli M-19 (SGr + 2-Tar + HisHx/Puc118-his-operon), respectively. Flask-shaking fermentation results showed that, compared with E. Coli M-18, the L-histidine yield in the engineering strain E. Coli M-19 was 4.5 folds of that in the control, and in the two-plasmid system of recombinant engineering strains E. Coli MZH-19,E. Coli MPH-19 and E. Coli MZPH-19 were 5.14 folds, 5.78 folds and 8.43 folds of that in the control, respectively.%改造大肠杆菌L-组氨酸生物合成途径,以提高L-组氨酸的产量.用NTG诱变大肠杆菌M- 17 (SGr),依次赋予其2-噻唑丙氨酸(2-TA)和组氨酸氧肟酸盐(HisHx)遗传标记,再以突变株M-18 (SGr+ 2-TAr+ HisHxr)基因组为模板,扩增组氨酸操纵子基因,构建出重组质粒pUC118-his-operon,将重组质粒导入突变株M-18 (SGr+ 2-TAr+HisHxr)得到工程菌E.coli M- 19 (SGr+ 2-TAr+ HisHxr/pUC 118-his-operon).根据zwf和prs基因序列分别合成引物进行PCR扩增,PCR产物与载体pSTV28连接,构建重组质粒pSTV28-zwf、pSTV28-prs和pSTV28-zwf-prs,将重组质粒分别转化至工程菌E.coli M-19,摇瓶发酵测定重组工程菌L-组氨酸的产量.摇瓶发酵结果显示,L-组氨酸产量与对照株相比,工程菌E.coli M-19提高了4.5倍,双质粒系统重组工程菌E.coli MZH-19、Ecoli MPH-19和E.coli MZPH-19分别提高了5.14、5.78、8.43倍.【期刊名称】《天津科技大学学报》【年(卷),期】2011(026)004【总页数】4页(P6-9)【关键词】L-组氨酸;组氨酸操纵子;大肠杆菌;双质粒系统;摇瓶发酵【作者】魏伟;刘倩;卢利宁;谢希贤【作者单位】工业发酵微生物教育部重点实验室,天津科技大学生物工程学院,天津300457;工业发酵微生物教育部重点实验室,天津科技大学生物工程学院,天津300457;工业发酵微生物教育部重点实验室,天津科技大学生物工程学院,天津300457;工业发酵微生物教育部重点实验室,天津科技大学生物工程学院,天津300457【正文语种】中文【中图分类】Q812L–组氨酸的化学名为 L–α–氨基–β–咪唑丙酸,是含有咪唑核的碱性氨基酸,具有多种生理功能,在医药、饲料及食品行业发挥着重要的作用[1].目前,国内对发酵生产组氨酸的研究和报道较少,且产酸水平较低.其中姚晓玲等[2]利用黄色短杆菌发酵可积累 L–组氨酸 128.28,mg/L,许益清等[3]以谷氨酸棒杆菌为出发菌株,定向选育突变株,发酵 3,d产 L–组氨酸达1~1.6,g/L.但这远远不能满足市场需求,因此加快研究发酵生产L–组氨酸的意义重大.本文通过亚硝基胍(NTG)诱变选育具有组氨酸结构类似物抗性的突变株,解除 L–组氨酸对生物合成途径上的关键酶[4]——ATP磷酸核糖基转移酶(ATP-PRT,hisG 基因编码)的反馈抑制.利用双质粒系统对 L–组氨酸生物合成途径进行改造,过表达整个组氨酸操纵子和中心代谢途径的zwf和prs基因,增加大肠杆菌 L–组氨酸生物合成的代谢流,以期进一步提高 L–组氨酸产量,并为构建高产 L–组氨酸工程菌奠定基础.1.1.1 菌株及质粒E. coli DH5α及 E. coli M-17(SGr)均为天津科技大学代谢工程实验室保藏菌种;质粒 pUC118、pSTV28,TaKaRa公司.1.1.2 培养基(g/L)LB 培养基:蛋白胨 10,酵母粉 5,NaCl,10,pH,7.0,抗生素氨苄青霉素使用质量浓度为100µg/mL,氯霉素使用质量浓度为25,µg/mL.基本培养基:葡萄糖5,硫酸铵10,磷酸二氢钾1.0,硫酸镁0.4,硫酸锰0.01,硫酸亚铁 0.01,VB 1,100,µg,VH,100,µg,琼脂粉 20,pH,7.0~7.2.种子培养基:葡萄糖 15,硫酸铵 3,玉米浆10,mL,磷酸二氢钾 1.0,硫酸镁 0.4,硫酸锰 0.01,硫酸亚铁 0.01,VB1 300,µg,VH 200,µg,pH,7.0~7.2.发酵培养基:葡萄糖 20,硫酸铵 10,玉米浆20,mL,磷酸二氢钾1.5,硫酸镁0.2,硫酸锰0.015,硫酸亚铁 0.015,VB1,200,µg,VH,100,µg,pH,7.0~7.2.限制性内切酶、T4 DNA连接酶、Taq DNA聚合酶,TaKaRa 公司;Long PCR Enzyme Mix、1 000 bp ladder,Fermentas公司;PCR引物由北京博迈德科技发展有限公司合成;PCR产物纯化试剂盒,北京天恩泽基因科技有限公司;质粒小样快速提取试剂盒和细菌基因组提取试剂盒,北京博迈德公司;IPTG、X-gal、氨苄青霉素、氯霉素,北京索莱宝公司;诱变剂亚硝基胍(NTG),日本 TCI公司;L–组氨酸(L-His)、2–噻唑丙氨酸(2-TA)及组氨酸氧肟酸盐(HisHx),美国Sigma公司;其余试剂均为国产分析纯.1.3.1 诱变方法常规化学诱变法,参见文献[5].1.3.2 目的突变株的筛选结构类似物突变株的获得:将诱变处理的菌液适度稀释后涂布于含有一定浓度的2-TA和 HisHx的基本培养基上,培养 2~3,d,挑出单菌落,即得到结构类似物2-TA和HisHx抗性突变株.1.3.3 PCR引物设计与合成根据 GenBank中 E. coli K-12编码 his operon(7,461,bp)、zwf(1,476 bp)和prs(948,bp)基因序列,分别设计引物,在两端引入酶切位点(下划线所示)和保护碱基.分别用引物 H1(CTCGTCGGATCC TCCTTTCCCCGCTCATTCATT)/H2(TGTTCGGGA TCC AAGAAAAAGGGCAGGGTGGTG)、Z1(GCAA GGATCC ACTTAAGGAGAATGACATGGCGGT)/Z2(TGAGCGCATGCCGCAGATATTACTC AAACTCA T)和P1(GCTAGAATTC CCTGAGGTTCTTCTCGTGCCTGATA)/P2(AGCCGGATCCTTAGTGTTCGAA CATGGCAGAGATC)来扩增突变株 E.,coli M-18(SGr+2-TAr+HisHxr)的 his operon、zwf和 prs基因及其上下游部分序列,其中长片段his operon基因PCR扩增反应体系总体积为50,µL,反应条件为:94,℃,2,min,94,℃,20,s,55,℃,30,s,68,℃,6,min,共25 个循环;68,℃,10,min.DNA片段的回收、酶切、纯化、与载体的连接、转化等操作参见文献[6].1.3.4 his operon、zwf和prs基因的克隆与测序取PCR产物5,µL在1%琼脂糖凝胶中进行电泳检测,使用 DNA凝胶回收试剂盒回收,回收产物直接与 pMD19-T Simple载体连接,连接产物转化E.,coli DH5α,感受态,在含 IPTG(24,mg/mL)和 X-gal(20,mg/mL)的Ampr(100,µg/mL)的 LB 平板上37,℃培养16,h,随机挑选白色菌落进行PCR;并提取质粒单酶切验证,得到重组质粒 pMD19-his-operon、pMD19-zwf和pMD19-prs,进行测序和序列分析.1.3.5 重组质粒的构建用限制性内切酶 BamHI酶切重组质粒 pMD19-his-operon,纯化回收后,与pUC118 BamHI/BAP载体按等物质的量比连接转化,电转化法转化E.,coli DH5α感受态细胞,在氨苄青霉素抗性平板上筛选转化子,挑选单克隆,提取质粒,酶切鉴定.用限制性内切酶 BamHI和SphI对重组质粒 pMD19-zwf及质粒pSTV28双酶切,用限制性内切酶EcoRI和BamHI对重组质粒 pMD19-prs及质粒 pSTV28双酶切,琼脂糖凝胶电泳回收酶切片段,按照质粒 DNA与目的基因物质的量比为1∶4进行连接转化,化学法转化E.,coli DH5α感受态细胞,在氯霉素抗性平板上筛选转化子,随机挑取单菌落进行菌落PCR验证,并提质粒进行双酶切验证. 1.3.6 摇瓶发酵种子培养:500,mL挡板瓶中装液量为30,mL,9层纱布封口,往复式摇床200,r/min、32,℃培养12~15,h.摇瓶发酵:按10%的接种量将种子液接入装液量为27,mL的500,mL挡板瓶中,摇床200,r/min、32,℃培养 36,h.发酵期间补加氨水控制 pH在 7.0左右,流加60%葡萄糖,使其维持在1%~2%.1.3.7 分析方法采用高效液相分析系统测定L–组氨酸含量[7].利用NTG对出发菌株E. coli M-17(SGr)进行诱变处理,将其涂布到含有 2-TA(3,g/L)的基本培养基上,筛选到11株能积累 L–组氨酸的突变株,在这 11株菌中选活力较高的突变株 E.,coli M-17(SGr+2-TAr)为再次诱变的出发菌株.在野生菌体内,当L–组氨酸含量达到生理需要时,L–组氨酸操纵子受到终产物L–组氨酸的反馈阻遏.另外,合成途径的第1个酶ATP-PRT是L–组氨酸合成途径的限速酶,酶活性受到终产物 L–组氨酸的反馈抑制[4].通过赋予组氨酸结构类似物抗性标记可以解除 L–组氨酸对 ATPPRT的反馈抑制[8].对突变株E. coli MTA-17(SGr+2-TAr)再次诱变,同样方法筛选得到 HisHx(10 g/L)的抗性突变株E. coli M-18(SGr+2-TAr+ HisHxr),但是该突变株的组氨酸产量没有明显的提高.以提取的突变株 M-18的基因组为模板,H1/H2、Z1/Z2和 P1/P2为引物分别扩增部分脱敏的his operon、zwf和prs基因,PCR产物经1%琼脂糖凝胶电泳分析,结果如图 1所示.在约 7,500、1,500、1,000,bp处有目的条带,与预期大小相符.按方法 1.3.5构建重组质粒,并对阳性克隆进行限制性酶切分析,结果如图 2所示.重组质粒pUC118-his-operon、pSTV28-zwf、pSTV28-prs 和pSTV28-zwf-prs双酶切后与预期大小相符,表明重组质粒构建成功.将重组质粒 pUC118-his-operon、pSTV28-zwf、pSTV28-prs和pSTV28-zwf-prs分别转化至突变株E.coli M-18,得到重组工程菌 M-19(SGr+,2-TAr+His Hxr/pUC118-his-operon)、MZH-19(SGr+,2-TAr+HisHxr/pSTV28-zwf/pUC118-his-operon)、MPH-19(SGr+2-TAr+HisHxr/pSTV28-prs/pUC118-his-operon和MZPH-19(SGr+2-TAr+HisHxr/pSTV28-zwf-prs/pUC118-hisoperon).将重组工程菌 E.,coli M-19、E. coli MZH-19、E.coli MPH-19、E.,coli MZPH-19和对照株E.,coli M-18进行摇瓶发酵36,h,测定L-组氨酸产量,结果如图3所示.由图3可知,工程菌E. coli M-19、E. coli MZH-19、E. coli MPH-19、E. coli MZPH-19 的 L–组氨酸产量与对照株相比,分别提高了 4.5、5.14、5.78、8.43倍.工程菌 E. coli M-19中重组质粒携带了脱敏的his operon基因,L–组氨酸产量提高,推测其原因为提高了其在大肠杆菌内的拷贝数及其所编码酶的活性.zwf 基因编码的 G-6-PDH是 HMP途径的限速酶,工程菌E. coli MZH-19在过表达his operon的同时又过表达了 zwf基因,使得 L–组氨酸产量提高,推测其原因为工程菌E. coli MZH-19的HMP途径相对活跃,且 G-6-PDH催化产生了大量的NADPH和H+,为生物体的合成提供还原力,同时也为L–组氨酸的合成提供了氢供体.工程菌E. coli MPH-19共表达了his operon和prs基因,使得L–组氨酸产量提高,推测其原因为 prs基因的过表达为 L–组氨酸的合成提供了更多的前体物质PRPP.工程菌E. coli MZPH-19表达了his operon和zwf-prs,使得L–组氨酸产量提高,推测其原因为 L–组氨酸合成的中心代谢途径——HMP途径增强,前体物质PRPP增多,葡萄糖的整个代谢流向合成L–组氨酸的方向分布.L–组氨酸的合成代谢途径较长,调控相对复杂,因此通过诱变单一地选育结构类似物抗性突变株并不会完全打通菌体内合成 L–组氨酸的代谢途径,进而大量积累组氨酸.本研究通过传统的诱变方法和基因工程相结合的手段来构建 L–组氨酸基因工程菌,对大肠杆菌 L–组氨酸生物合成的代谢途径进行了改造.首先用亚硝基胍(NTG)诱变 E.,coli M-17(SGr),依次赋予其2-TA和HisHx遗传标记,得到突变株 E.,coli M-18(SGr+2-TAr+HisHxr),再以提取的突变株E.,coli M-18基因组为模板,利用PCR技术扩增突变株的整个组氨酸操纵子基因,并将其连接到pUC118载体上,过表达组氨酸生物合成途径上的一系列酶系,从而使组氨酸得到积累.由于重组质粒pUC118-his-operon在 11,000,bp左右,不易再进行分子生物学操作,故选择了另一个可以相容的质粒pSTV28进行进一步的改造,且pSTV28质粒的拷贝数较低,更有利于代谢物的生成.本研究利用了复制子不同的两个相容性质粒 pSTV28(复制子为 p15A)和 pUC118(复制子为 pMB1)对 L–组氨酸生物合成途径进行了进一步的改造,扩增了 L–组氨酸生物合成中心代谢途径的关键酶编码基因 zwf和编码合成L–组氨酸的前体物质PRPP的prs基因.由实验结果表明,双质粒重组基因工程菌E. coli MZH-19、E.,coli MPH-19和 E.,coli MZPH-19与对照株比较,L–组氨酸产量分别提高了5.14、5.78、8.43倍,因此双质粒系统的改造可进一步提高L–组氨酸的产量.[1]陈宁. 氨基酸工艺学[M]. 北京:中国轻工业出版社,2009.[2]姚晓玲,曾莹,宋卫江. L–组氨酸产生菌的诱变选育[J]. 中国酿造,2007(7):18-20.[3]许益清,张伟国. L–组氨酸产生菌株的选育[J]. 食品与发酵工业,2005,31(1):83-85.[4]Mizukami T,Hamu A,Ikeda M,et al. Cloning of the ATP phosphoribosyl transferase gene of Corynebactewium glutamicum and application of the gene to L-histidine production[J]. Bioprocess and Biosystems Engineering,1994,58(4):635-638.[5]施巧琴,吴松刚. 工业微生物育种学[M]. 2版. 北京:科学出版社,2003. [6]Sambrook J,Fritsch E F, Maniatis T,等. 分子克隆实验指南[M]. 2版.北京:科学出版社,2002.[7]张昌伟,徐庆阳,刘淑云,等. 2,4-二硝基氟苯衍生法测定发酵液中组氨酸方法的优化[J]. 现代化工,2007,27(S2):743-943.[8]Araki K,Nakayama K. L-histidine production by histidine analog-resistant mutants from several bacteria[J].Agricultural Biology and Chemistry,1971,35(13):2081-2088.【相关文献】[1]陈宁. 氨基酸工艺学[M]. 北京:中国轻工业出版社,2009.[2]姚晓玲,曾莹,宋卫江. L–组氨酸产生菌的诱变选育[J]. 中国酿造,2007(7):18-20. [3]许益清,张伟国. L–组氨酸产生菌株的选育[J]. 食品与发酵工业,2005,31(1):83-85. [4]Mizukami T,Hamu A,Ikeda M,et al. Cloning of the ATP phosphoribosyl transferase gene of Corynebactewium glutamicum and application of the gene to L-histidine production[J]. Bioprocess and Biosystems Engineering,1994,58(4):635-638. [5]施巧琴,吴松刚. 工业微生物育种学[M]. 2版. 北京:科学出版社,2003.[6]Sambrook J,Fritsch E F, Maniatis T,等. 分子克隆实验指南[M]. 2版. 北京:科学出版社,2002.[7]张昌伟,徐庆阳,刘淑云,等. 2,4-二硝基氟苯衍生法测定发酵液中组氨酸方法的优化[J]. 现代化工,2007,27(S2):743-943.[8]Araki K,Nakayama K. L-histidine production by histidine analog-resistant mutants from several bacteria[J].Agricultural Biology and Chemistry,1971,35(13):2081-2088. Modification of L-histidine Biosynthesis Pathway in E. coli and Its Effect on L-histidine Yield。
高产精氨酸菌株选育及发酵培养基优化

菌株 的初步 发酵 和检测产精 氨酸试 验 , 确定 一株精 氨 酸产 量较 高的生产 菌株 , 并对 其进行 单 因素和正交 设 计试验 , 获得 了该高产精氨 酸菌株 的最适 发酵条 件 , 以 期为氨基酸发酵生 产中高产菌株 的选 育提供相应 的参 考价值 和应 用意义 。
1 材 料 与方 法
利用 阿须 贝培养 基筛选 固氮 菌的特 点 , 阿须 贝 对 培养基进 行改 良, 使其 适合于微 生物对无 机氮源 的固 定, 从而进行必须 氨基酸 如精氨酸 的合成 。本 文利 用 改 良阿须贝培养基 筛选 出 4种产精 氨酸菌 株 , 其形 态 特征分别为 白色链球状菌株 、 白分散球状 菌株 、 干 金黄 色杆状菌株 、 红色球状 菌株 。通 过对 4种产精 氨酸 粉
方面也有一定 的 作用
。近 年来 , 随着人 们对 一 氧
化氮途径 研究 的不断深入 , 为一氧化氮 合成前 体的 作 精氨酸在心血管 疾病 菌株并优化其发酵工艺有着重要 的意
义 一 。
醇 中结 晶的是无 水精 氨酸 。由于胍基 的存 在 , 氨酸 精
第2 8卷第 4期
2 1 年 8月 01
生 物 学 杂 志
J 0URN I O AL OF B OL GY
Vo . No. 128 4 Au g,2 1 01
d i 0 3 6/.s .0 5—13 .0 10 . 8 o: .9 9ji n2 9 1 s 7 6 2 1 .40 8
Ke wo d :agn n ;s r e i g o t i y r s r i i e c e n n fs a n;o t z t n o r na ie me i m r pi ai ff me tt d u mi o e v
精氨酸产生菌的代谢机制及选育进展

精氨酸产生菌的代谢机制及选育进展伊廷存1,袁建国2*,李 峰3,高艳华3(1. 山东师范大学生命科学学院,山东 济南 250014;2. 山东省食品发酵工业研究设计院,山东 济南 250013;3. 济南京鲁生物技术研发中心,山东 济南 250013)摘 要:L-精氨酸是氨基酸的一种,是蛋白质和肌酸的重要组成成分。
作为一种条件必需性氨基酸,L-精氨酸在营养生理、医药工业和饲料工业方面有重要作用和良好的应用前景,本文综述了精氨酸的代谢机制及精氨酸产生菌的选育研究进展。
关键词:精氨酸;代谢;选育;诱变;基因工程中图分类号:Q538 文献标识码:A 文献编号:1672-9791(2010)05-0203-04收稿日期:2009-10-28作者简介:伊廷存(1982-),男,山东蒙阴人,硕士,研究方向为微生物资源与发酵工程*通讯作者:袁建国,男,研究员 E-mail:yitc_999@Metabolism and Advances in Research of High Yielding Strains of L -ArginineYI Ting-cun 1, YUAN Jian-guo 2, LI Feng 3 ,GAO Y an-hua 3(1 .College of Life Sciences, Shandong Normal University, Jinan 250014, China;2. Shandong Food & Fermentation Industry Research & Design Institute, Jinan 250013,China;3.JingluBiotechnology Research and Development Center of Shandong Province ,Jinan 250013, China )Abstract: L -arginine is one kind of amino acid, and a building block of proteins and creatine. As a conditionally essential amino acid, it plays an important role and has good application prospects in nutrition physiology, medicine industry and feed industry. This paper reviews the metabolic mechanism and breeding development of L -arginine-producing strains.Key Words: L -arginine; metabolism; breeding; mutagenesis; genetic engineeringL -精氨酸是具有多种用途的氨基酸。
产蛋氨酸菌株选育研究进展

Re e r h P o r s n Meh o i e S ri s Br e i g s a c r g e s i t in n tan e d n
C e gL , " n Weh n ,JaYa mig F n i LuJn s e g h n i Mi io g i n n , a gL , i igh n
2 1 年第 5 01 期
程
丽 ,等 :产蛋 氨酸菌株选育研究进展
・7 ・ 5
生物合成途径 中 ,不仅关键酶天冬氨酸激酶受赖氨 酸和苏氨酸 的协 同反馈抑制 ,高丝氨酸脱氢酶受苏 氨酸的反馈抑制 ,为蛋氨酸所阻遏 ,而且从高丝氨 酸合 成蛋 氨 酸 的途 径 中 , S 苷 蛋 氨酸 (A 一腺 S M) 对 高丝氨酸 一 一 乙酰酶的反馈 抑制作用较强[。因 0 转 3 2 1 此 ,蛋氨酸 的生产需要从遗传学的角度改变微生物 的控 制 机 制 ,从 而 达 到 累 积 蛋 氨 酸 的 目的 ,蛋 氨 酸 的结构类似物广泛 的应用于筛选 这类 菌株 ,因为它 们在不影 响细胞其他正常功能的情 况下是一种很有 效地反馈抑制剂阁。 蛋 氨 酸生 产菌 代谢 调控 途径 见 图 1 。
第5 ( 期 总第 24期) 4
21 0 1年 5月
农产 品加工 ・ 刊 学
Ac d mi e i d c lo a m r d c sPr c s i g a e c P r i a fF r P o u t o e sn o
No5 . Ma y
文章编号 :1 7 — 6 6( 0 ) 5 0 7 — 5 6 19 4 2 1 0 — 0 3 0 1
农产 品加工 ・ 学刊
2 1 年第 5期 01
止 肝 脏 中脂 肪 的 积 累[z 2” 0 。蛋 氨 酸 对 于细 胞 中锌 和硒 ,
产L-乳酸菌种的选育和发酵条件的研究的开题报告

产L-乳酸菌种的选育和发酵条件的研究的开题报告一、选题背景L-乳酸菌是广泛存在于自然界中的一类重要的乳酸发酵菌,具有维持肠道菌群平衡、提高人体免疫力等多种生理功能,已被广泛应用于乳制品、肉制品、蔬菜、饮料及保健食品等行业。
L-乳酸菌品种和发酵条件的优化对于提高产品品质、降低生产成本、增加产量等方面都有着重要的意义。
二、研究目的本研究旨在选育出适合国内市场需求的L-乳酸菌品种,并优化发酵条件,以提高产量和改善品质。
三、研究内容1、筛选L-乳酸菌菌种;2、研究L-乳酸菌的培养基、温度、pH值等发酵条件,优化产量和品质;3、应用现代分子生物学技术对优选的L-乳酸菌菌株进行分子鉴定和基因解析。
四、研究方法1、L-乳酸菌的筛选:采用表面接种和液体发酵方法,筛选能够适应国内市场需求的优质菌种。
2、L-乳酸菌的发酵条件优化:采用单因素试验设计和响应面试验设计,研究温度、pH值、培养基等因素对L-乳酸菌的影响和交互作用,优化发酵条件。
3、分子鉴定和基因解析:应用PCR技术扩增16S rDNA序列,应用生物信息学分析对其进行鉴定和基因解析。
五、预期结果1、选育出适合国内市场需求的优质L-乳酸菌菌种;2、优化发酵条件,有效提高产量和改善品质;3、获得优选菌株的分子鉴定和基因解析结果。
六、论文结构1、绪论:介绍L-乳酸菌的概念、应用价值和研究现状;2、材料与方法:详细论述筛选菌种、优化发酵条件和分子鉴定方法;3、结果与分析:分析筛选出的L-乳酸菌菌株和优化的发酵条件的效果,进行分子鉴定和基因解析;4、结论:总结本研究的主要成果,并对未来研究进行展望;5、参考文献:列举本研究所引用的相关文献。
七、参考文献1. 高泽伟,韩建立,周曾坤. L-乳酸菌的优化选育方法研究进展[J]. 食品科学,2016,37(6):124-130.2. 王进峰,张强,蒋明星. L-乳酸菌发酵技术的优化研究[J]. 食品与发酵工业,2019,45(21): 193-196.3. 高福茂,周小安,杨玉成. 基于16S rDNA序列的L-乳酸菌分子鉴定研究[J]. 食品科学,2017,38(3):222-228.。
发酵工艺学菌种选育

发酵工艺学菌种选育概述发酵工艺学是研究生物大分子合成和分解的原理、方法及规律的一门学科,主要关注微生物在发酵过程中的应用。
发酵过程中,菌种的选育是一个关键环节,它直接影响到发酵工艺的效果和产物的质量。
本文将从菌种选育的意义、菌种选育的基本原则、菌种选育的方法以及菌种选育的策略等方面进行探讨。
菌种选育的意义菌种选育在发酵工艺中起着至关重要的作用。
通过选育出高效、高产、稳定的菌种,可以提高发酵产物的产量和质量,降低生产成本,提高经济效益。
同时,合适的菌种选育有助于减少废弃物和副产物的产生,降低对环境的影响,实现可持续发展。
菌种选育的基本原则菌种选育的基本原则如下:1.选择适宜的菌株:根据发酵的要求,选择适宜的菌株进行选育。
菌株应具备良好的发酵性能,包括高产、高效、耐受环境变化等特点。
2.遗传稳定性:选育的菌株应具备遗传稳定性,不易发生突变或变异。
3.生理功能完整:菌种应具备完整的生理功能,包括合成目标产物的能力、辅酶的提供、耐受产物的毒性等。
4.兼容性:选育的菌种应与发酵介质相兼容,能够在特定条件下顺利生长和发酵。
5.再生能力:优选的菌种应具备较强的再生能力,能够在长时间存储后迅速恢复生长和产物合成能力。
菌种选育的方法菌种选育的方法多种多样,常用的方法包括:1.传统筛选法:通过大量筛选菌株,根据对目标产物的产量和品质进行评估,选育出优良菌株。
2.突变体筛选法:通过诱变的方法,获得菌株的突变体,然后进行筛选,选出产量高的突变体。
3.重组DNA技术:通过DNA重组技术,将外源基因导入宿主细菌,使其具备合成目标产物的能力。
4.代谢工程法:通过改造菌株代谢途径,调控关键酶的表达水平,增强目标产物的合成能力。
菌种选育的策略菌种选育的策略主要包括:1.多因素优选法:通过对菌种进行多因素的筛选,如温度、pH值、培养基成分等,选出适应性强的菌株。
2.基因库筛选法:通过建立菌株基因库,对多种菌株进行筛选,快速选出理想的菌株。
糖蜜发酵选育高产蛋白酵母及发酵条件优化研究的开题报告

糖蜜发酵选育高产蛋白酵母及发酵条件优化研究的开题报告提纲:1. 研究背景和意义2. 研究目的和研究内容3. 研究方法4. 研究进度和预期结果5. 参考文献1. 研究背景和意义蛋白酵母是一种重要的微生物资源,可以广泛应用于食品、饲料、药品等领域。
目前,市场上主要的蛋白酵母是酵母提取物和酵母菌粉,其价格高昂,生产成本较高,限制了其广泛应用。
因此,寻找低成本、高产的蛋白酵母菌株具有重要的经济和社会意义。
糖蜜是一种天然且廉价的发酵基质,在工业生产中广泛应用。
研究利用糖蜜发酵选育高产蛋白酵母及发酵条件的优化,不仅可以提高蛋白酵母的产量和降低成本,还有助于探索糖蜜发酵的机制以及发掘新的微生物资源。
2. 研究目的和研究内容本研究旨在:以糖蜜为发酵基质,通过微生物筛选技术和优化发酵条件,选育高产蛋白酵母,并对其形态学特征、生理生化特性、蛋白质组成等进行分析和鉴定,探究其适应糖蜜发酵的机制。
具体研究内容包括:1)筛选糖蜜适应性较强的蛋白酵母菌株;2)通过优化发酵条件(包括温度、pH值、培养时间、接种量等因素),提高蛋白酵母的产量;3)对所筛选出的蛋白酵母进行形态学观察和生理生化特性分析;4)利用质谱技术对蛋白酵母菌体和培养液中蛋白质组成进行分析和鉴定;5)探究蛋白酵母适应糖蜜发酵的机制,包括其遗传特征和代谢途径。
3. 研究方法本研究采用以下方法:1)糖蜜发酵筛选技术,通过糖蜜发酵实验,筛选出适应糖蜜发酵且高产的蛋白酵母菌株;2)优化发酵条件,通过单因素试验和正交试验,确定最优发酵条件;3)形态学观察和生理生化分析,采用显微镜和生化分析方法,对蛋白酵母进行形态学和生理生化特性分析;4)质谱技术分析,采用MALDI-TOF-MS/MS技术对蛋白酵母菌体和培养液中蛋白质组成进行分析和鉴定;5)基因测序和代谢途径分析,利用基因测序技术和代谢途径分析软件,探究蛋白酵母适应糖蜜发酵的机制。
4. 研究进度和预期结果目前,已经完成了糖蜜发酵筛选试验,筛选出数株适应糖蜜发酵的蛋白酵母菌株。
氨基酸及其发酵工艺设计项目

氨基酸及其发酵工艺设计项目——制作人:贺丹、王春艳、周燕梅、顾婷玉2009年3月28日目前,随着氨基酸的用途向深度和广度发展,合成氨基酸已形成了一个与营养品市场、动物饲料市场明显区别开来的细分市场,且品种多样,特性和生产方式也各有不同。
在精细化工领域的药用中间体生产以及蛋白质类药物的研发、生产过程中,氨基酸是合成过程的一个重要组成部分,因此氨基酸一直扮演着不可或缺的角色,并随着工艺进步及应用范围的扩大,成为精细化工市场的重要分支之一。
据估计,从2004年到2009年,全球对药用中间体和高端原料药的需求将以年均6%~9%的速度增长。
据此前一份题为《蛋白质医药市场:新兴市场的科学和商业》的市场研究报告称,由于受目前占全球蛋白质类药物市场销售总额80%以上的美国和欧洲市场强劲需求及销售的推动,2010年的蛋白质类药物市场的销售额可能会达到870亿美元。
显然,这为氨基酸市场提供了发展的契机。
再加上受近几年生物制药技术的研发力量逐渐壮大的带动,氨基酸的市场供求、产业实力也将随之跟上。
目前,全球氨基酸的市场规模已经超过了7 0亿美元。
全球范围来看,所生产的氨基酸大部分投向了农业和营养学领域。
然而,回报最大和增长速度最快的,还是应用于生物科技和制药领域的合成氨基酸,虽然其仅占氨基酸应用范畴的其中一小部分,但却是氨基酸市场成长最快的一个领域,如目前应用于药物研发平台和手性药物生产的氨基酸和肽类产品,其定制生产业务是增长速度最快的领域之一。
尽管应用于生物科技和制药领域的合成氨基酸在氨基酸中的使用比重刚刚超过50%。
但据统计,这两个领域使用合成氨基酸的年平均增长率达到了9.8%。
除此之外,应用于强效增甜剂的合成氨基酸预计将以年均3.8%的速度增长,到2009年可达到4.27亿美元,这一增长势头将主要出现在美国市场。
相信随着更多蛋白质类药物的研发和上市销售,合成氨基酸在制药和生物科技领域里的应用将更加锦上添花。
一、氨基酸发酵行业的现状与趋势许多种氨基酸均可利用微生物发酵法进行生产,使氨基酸产量大增,其生产成本大为降低。
关于微生物育种中化学诱变技术的综述

关于微生物育种中化学诱变技术的综述姓名:周旭班级;11生工1 学号:20110801120摘要:化学诱变是一种传统而经典的微生物育种技术,不仅在高产工业菌株选育中得到广泛应用,而且近来还用于改造野生菌株代谢功能,以发现新产活性产物。
本文简要综述常用化学诱变剂及其作用机制,以及化学诱变技术在微生物育种领域中的新近应用研究进展。
关键词:微生物育种;化学诱变剂;诱变机制;应用1前言菌种优劣对于微生物药物的工业化生产具有决定性意义。
野生菌株往往因产率低而不能直接用于工业生产,而需要通过菌种改良,选育高产优良菌株。
微生物药物的工业化生产对菌株的这种需求带动了各种育种技术的蓬勃发展,而育种技术则通过不断提供优良菌株又促进了微生物药物产业的持续发展。
在育种研究中,近来还发现有些突变株可代谢产生新产物,具有可供作药源新菌株资源的潜在应用前景,使育种技术进一步拓展了新的应用研究发展空间。
微生物人工诱变育种技术按诱导突变类型可分为物理诱变、化学诱变和生物诱变三大类[1]。
化学诱变是一种传统而经典的微生物育种技术,不仅在高产工业菌株选育中得到广泛应用,而且还用于改造野生菌株的代谢功能,从而发现新产活性产物。
在实际应用中,化学诱变既有利用某一种化学诱变剂的单一诱变,也有组合利用化学或其他多种诱变剂的复合诱变,还有化学诱变联合抗生素抗性筛选等。
本文简要综述常用化学诱变剂及其作用机制,以及化学诱变技术在微生物育种领域中的新近应用研究进展。
2常用化学诱变剂2.1碱基类似物作为化学诱变剂的碱基类似物主要有嘧啶类似物和嘌呤类似物两大类。
其中,常用嘧啶类似物有5-溴尿嘧啶(5-BU)、5-氟尿嘧啶(5-FU)、6-氮杂尿嘧啶(6-NU)等;嘌呤类似物有2-氨基嘌呤(2-AP)、6-巯基嘌呤(6-MP)、8-氮鸟嘌呤(8-NG)等[2]。
2.2烷化剂烷化剂类化学诱变剂种类较多,如硫芥(氮芥)类、环氧衍生物类、乙撑亚胺类、硫酸(磺酸)酯类、重氮烷类、亚硝基类等。
丙氨酸、脯氨酸、谷氨酰胺和组氨酸发酵
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第十五章丙氨酸、脯氨酸、谷氨酰胺和组氨酸发酵第一节丙氨酸发酵丙氨酸(Alanine,A1a),亦称α-氨基丙酸(α-aminopropionic acid),具有甜味,常用作调味料。
霉菌、酵母、细菌、放线菌等微生物都能够由糖类和无机氮源、有机氮源发酵生产L-丙氨酸。
这就是所谓的直接发酵法。
后来又开发了酶法及固定化法等,原料则使用延胡索酸或L-天冬氨酸。
发酵法生产L-丙氨酸,主要是以降解葡萄糖等碳源生成的丙酮酸为底物,经过氨基转移反应或还原氨基化反应完成的。
酶法是以L-天冬氨酸为底物,经过L-天冬氨酸-β-脱羧酶的反应,生成L-丙氨酸。
1.氨基转移反应氨基转移反应,很早就已为人所知,该反应广泛分布在植物、动物、微生物的代谢过程之中。
北井等的研究表明,丙氨酸产生菌胶状棒杆菌(Corynebacterium gelatinosum)No.7183,是通过丙酮酸与L-谷氨酸之间的转氨作用生成丙氨酸的。
最初由氨基移转反应生成的丙氨酸是L-丙氨酸,但是经丙氨酸消旋酶的作用,转变成D-丙氨酸,因此该菌株生成的最终产物是DL-丙氨酸。
2.还原氨基化反应Wiame和Goldmann分别报导了枯草杆菌、肺结核小杆菌(Myeobacterium tuberculosis)有还原氨基化反应。
鲛岛等在假单胞菌No.483的无细胞抽出液中,检出了丙氨酸脱氢酶活性,该酶以NAD为辅酶,最适pH为9.8。
但是还原氨基化反应的氢并不是由乳酸脱氢酶反应提供,而是由丙糖磷酸脱氢酶反应供给。
该菌株生产的丙氨酸是L-丙氨酸。
3.天冬氨酸-β-脱羧酶反应由于大多数采用直接发酵法生产的丙氨酸是DL-型,而L-天冬氨酸可通过酶法由反丁烯二酸廉价生产,因此,可采用天冬氨酸为原料,利用天冬氨酸-β-脱羧酶催化L-天冬氨酸-β-羧基的裂解来生产L-丙氨酸。
Chibata等发现德阿昆哈假单孢菌(Pseudomonas dacunhae)具有很高的天冬氨酸-β-脱羧酶活性。
高产酸奶发酵菌株的筛选与酶学特性分析
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高产酸奶发酵菌株的筛选与酶学特性分析酸奶是一种含有益生菌的发酵乳制品,被广泛应用于保健食品、生物制药、化妆品等领域。
其中,酸奶的味道和品质与发酵菌株的选择密切相关。
因此,如何筛选到高产酸奶发酵菌株,是酸奶工业生产中最为关键的问题。
一、菌种的筛选方法1、纯培养法纯培养法是指将不同来源的菌株分别接种于含有适量营养物质的琼脂培养基上,并重复传代培养得到纯化单株细胞。
然后,在含有适宜培养条件的培养基上进行发酵实验,通过乳酸生成量、发酵时间等参数的比较,筛选到高产酸奶发酵菌株。
2、直接筛选法直接筛选法是指将不同来源的菌株直接接种入含有牛奶或积雪草奶等基质中,进行发酵实验。
通过乳品中酸度变化、乳化稳定性、物理和感官指标等参数的比较,筛选到高产酸奶发酵菌株。
二、酶学特性的分析方法1、分离和纯化酶将高产菌株分别接种于含有适宜营养物质的培养基中进行发酵。
取出发酵液,离心去除细胞,得到菌体上清液,对其进行纯化处理。
然后,分别对纯化后的酶活进行测定,得到酶的酶学特性。
2、酶的测定常用的测定方法有:(1) pH敏感染料法:将不同 pH值的染料加入酶反应液中,测定反应液的吸光度变化情况,得出最佳pH值。
(2)温度敏感染料法:将酶反应液加入含有不同温度染料的反应体系中,测定吸光度变化情况,得出最佳温度范围。
(3)酸碱滴定法:加入适量酸或碱溶液至反应液中,测定 pH值和滴定量,计算出酶反应液的活性值。
三、应用前景高产酸奶发酵菌株的筛选和酶学特性分析,不仅可以推动酸奶生产技术的发展,提高酸奶质量和产量,对乳品工业和保健食品业也有着重要意义。
此外,该技术还可以为新型酸乳品产品的开发提供技术支持和指导。
苏氨酸发酵高产突变株的选育方案
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苏氨酸发酵高产突变株的选育方案苏氨酸是一种重要的氨基酸,广泛应用于食品、医药、化工等领域。
为了提高苏氨酸的产量和质量,科学家们通过发酵技术选育出了苏氨酸发酵高产突变株。
本文将介绍苏氨酸发酵高产突变株的选育方案。
一、选育目标苏氨酸发酵高产突变株的选育目标是通过基因突变或基因重组等手段,使得微生物在发酵过程中能够高效地合成苏氨酸,提高苏氨酸的产量和质量。
二、选育方法1. 诱变选育法诱变选育法是通过物理或化学手段诱导微生物基因突变,从而获得高产苏氨酸的突变株。
常用的诱变方法包括紫外线辐射、化学诱变剂、等离子体处理等。
2. 基因重组选育法基因重组选育法是通过将苏氨酸合成途径中的关键基因进行重组,从而获得高产苏氨酸的突变株。
常用的基因重组方法包括基因克隆、基因敲除、基因替换等。
3. 筛选鉴定法筛选鉴定法是通过对突变株进行筛选和鉴定,从中筛选出高产苏氨酸的突变株。
常用的筛选鉴定方法包括色谱分析、酶联免疫吸附法、高效液相色谱法等。
三、选育流程1. 初步筛选选取适合发酵的微生物菌株,如大肠杆菌、酵母菌等。
然后,通过诱变或基因重组等方法,获得一批突变株。
接着,对这些突变株进行初步筛选,筛选出苏氨酸产量较高的突变株。
2. 优化培养条件在初步筛选的基础上,对苏氨酸高产突变株进行培养条件的优化。
包括培养基的配方、培养温度、培养时间等因素的优化,以提高苏氨酸的产量和质量。
3. 筛选鉴定在优化培养条件的基础上,对苏氨酸高产突变株进行筛选鉴定。
通过色谱分析、酶联免疫吸附法、高效液相色谱法等方法,对苏氨酸的产量和质量进行鉴定,筛选出最优的苏氨酸高产突变株。
四、应用前景苏氨酸发酵高产突变株的选育,将为苏氨酸的生产提供更加高效、经济、环保的方法。
同时,苏氨酸的广泛应用领域也将得到更好的发展。
未来,随着生物技术的不断发展,苏氨酸发酵高产突变株的选育将会更加精准和高效。
组氨酸发酵工艺
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组氨酸发酵工艺
组氨酸是一种重要的生物活性物质,广泛应用于医药、食品、化工等领域。
组氨酸的发酵工艺是生产该物质的主要方法之一。
该工艺通过微生物代谢产生组氨酸,具有生产效率高、产品纯度高、原料来源广泛等优点。
组氨酸的发酵工艺主要包括菌株筛选、菌种培养、发酵条件控制、产物提取等步骤。
菌株筛选是选择高效产组氨酸的菌株,包括自然菌株和改良菌株。
菌种培养是保证菌株生长繁殖的重要步骤,需要控制适当的温度、pH值、营养物质等条件。
发酵条件控制是保证组氨酸高产的关键,需要控制好氧、厌氧、通氧、通气等条件。
产物提取是将组氨酸从发酵液中提取出来的步骤,包括酸性沉淀法、逆流萃取法、离子交换法等方法。
随着技术的不断发展,组氨酸发酵工艺也在不断改进。
人们不断探索新的菌株、优化发酵条件、研究提取方法,提高生产效率和产品质量。
同时,组氨酸的应用领域也在不断扩大,对组氨酸发酵工艺的要求也越来越高。
未来,组氨酸发酵工艺将继续得到广泛的应用和研究。
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2010No.9Serial No.222China BrewingL-组氨酸(L-Histidine )化学名为L-α-氨基-β-咪唑丙酸,是分子中含有咪唑核的碱性氨基酸[1]。
L-组氨酸具有多种生理功能,广泛用于医药、饲料及食品行业。
尤其在医药领域的作用日益受到重视,目前,其主要应用于氨基酸输液及综合氨基酸制剂方面,已成为中国医疗最常用的药物之一,用量逐年递增。
但目前L-组氨酸生产的先进技术主要掌握在欧、美、日等发达国家手里,主要采用发酵法。
日本在20世纪70年代就开展发酵生产组氨酸的研究,而国内在这方面还仅处于实验室研究阶段[2-3]。
因此加快研究发酵法生产L-组氨酸具有非常重要的意义。
1发酵法生产L-组氨酸发酵法借助微生物具有合成自身所需氨基酸的能力,通过对组氨酸产生菌进行诱变,选育出营养缺陷型及组氨酸结构类似物抗性突变株,以解除代谢调节中的反馈抑制和反馈阻遏,从而达到过量积累L-组氨酸的目的[4-5]。
其具有原料成本低,反应条件温和极易实现大规模生产等优点,是一种非常经济有效的生产方法[6]。
1.1L-组氨酸的产生菌目前发现的组氨酸产生菌有谷氨酸棒杆菌、黄色短杆菌、枯草芽孢杆菌和粘质赛氏杆菌。
已投入工业化生产的有谷氨酸棒杆菌、黄色短杆菌和粘质塞氏杆菌,其产酸水平分别为15.4g/L 、12.5g/L 和17.0g/L ,糖酸转化率分别为15.4%、12.5%、10.0%[7]。
1.2发酵过程中pH 值的控制大部分组氨酸发酵培养基中的氮源是硫酸铵,当铵离子被利用之后,剩余的硫酸根离子会导致发酵液的pH 值下降,从而对发酵产生影响。
可以考虑在发酵培养基中添加碳酸钙,因为碳酸钙可以中和硫酸根离子,通过优化试验确定碳酸钙的最佳添加量。
1.3生物素对L-组氨酸发酵的影响作为L-组氨酸的主要产生菌,谷氨酸棒杆菌是生物素缺陷型菌,生物素是细胞生长的必需因子,同时还是多种羧化酶的辅酶,在CO 2固定反应中起重要作用,可影响糖酵解速度,改变发酵代谢流向。
添加适量的生物素可以增加单磷酸己糖支路(HMP )途径的代谢流量,有利于L-组氨酸的产生[8]。
1.4柠檬酸钠对L-组氨酸发酵的影响在发酵初期添加柠檬酸钠能够改变L-组氨酸生物合成途径的关键节点6-磷酸葡萄糖、丙酮酸及乙酰辅酶A 的代谢流分布,保持糖酵解途径、三羧酸循环与HMP 之间代谢流量平衡[9-11]。
在发酵培养基中添加适量的柠檬酸钠后葡萄糖的酵解途径EMP 被抑制,使碳架流向HMP 途径,有利于组氨酸的生成[12]。
影响组氨酸发酵的因素还有许多,可以通过正交试验或响应面法进行优化试验。
2L-组氨酸的测定方法对L-组氨酸含量测定的研究较少,建立一种简便可行的测定方法,对组氨酸的生产具有指导意义。
目前较常用组氨酸发酵条件及高产菌株选育研究进展孙希叶,杨平平,李旋,王燕*(山东轻工业学院食品与生物工程学院,山东济南250353)摘要:L-组氨酸是含咪唑核的碱性氨基酸,是人体和动物体内的半必需氨基酸。
L-组氨酸具有多种生理功能,应用广泛,尤其在医药领域中的应用日益受到重视,是市场上急需的氨基酸品种之一。
文中简要介绍了发酵法生产L-组氨酸及产物检测方法,通过对L-组氨酸生物合成途径的分析指出了大量合成L-组氨酸的关键控制点及选育的基本思路,并重点概括了国内外对L-组氨酸高产菌株选育方案的研究。
关键词:L-组氨酸;发酵;代谢途径;选育方法中图分类号:TQ922文献标识码:A文章编号:0254-5071(2010)09-0028-03Study Progress of fermentation conditions of L-histidine and screening of high productive strainSUN Xiye,YANG Pingping,LI Xuan,WANG Yan*(College of Food and Biological Engineering,Shandong Institute of Light Industry,Jinan 250353,China)Abstract:L-histidine is an alkalescency amino acid with an imidazole core.It's a semi-essential amino acid in human and animals.L-histidine has a variety of physiological functions,and has been widely used,especially in the field of medicine.It is one of the urgently needed amino acid on the market.Production of L-histidine by fermentation and concerned detecting methods was briefly introduced.Critical control points of high-level synthesis of L-histidine and the basic idea for screening of strains were summarized after analysis of biosynthetic pathways L-histidine,and approaches to screening of strains were emphasized,as well.Key words:L-histidine;fermentation;metabolic pathway;screening approaches收稿日期:2009-11-22作者简介:孙希叶(1986-)女,山东临沂人,在读硕士研究生,研究方向为微生物资源开发;王燕*,教授,通讯作者。
Forum and Summary28··中国酿造2010年第9期总第222期的有比色法和高效液相色谱法。
比色法是测定组氨酸含量的简便方法,Pauly 比色法简单、快速,准确性也比较好,对仪器的要求也不高,比较适用于工业生产中组氨酸的快速测定[13]。
但试验证明此法受铵离子的影响较大,铵离子与Pauly 试剂反应呈黄色,会将组氨酸的橙红色覆盖掉。
另外茚三酮显色-分光光度法也是一种常用的比色法,该法易于实现、精密度较好,适合在菌种选育过程中定性、定量测定发酵液中的L-组氨酸[14]。
高效液相色谱法是一种准确测定的方法,一般在梯度洗脱前采用衍生试剂(如2,4-二硝基氟苯)进行柱前衍生。
与比色法相比,此法的准确度和灵敏度较高,但操作比较复杂,对于样品多、工作量大的菌种筛选并不适用,所以试验中根据实际要求选择适当的测定方法。
3L-组氨酸的代谢及相关途径调节组氨酸的代谢途径比较复杂,要选育组氨酸高产菌株,就必须对细胞原有的代谢途径进行改造。
L-组氨酸的代谢及相关途径见附图。
3.1增加前体物的合成5-磷酸核糖焦磷酸(PRPP )不仅是组氨酸的前体物也是嘌呤和嘧啶的前体物,而且ATP 还直接参与组氨酸的合成,利用嘌呤的结构类似物来解除反馈调节,增加组氨酸前体物的积累。
3.2增强HMP 途径的流量根据EMP 和HMP 途径的调节得出,选育能以HMP 途径上的代谢产物为碳源且生长良好的菌株可以达到增加HMP 途径流量的目的。
通过削弱EMP 途径也能增加HMP 途径的流量,进而增加组氨酸的产量。
3.3阻断转酮酶由附图可知,5-磷酸核糖也是5-磷酸核糖焦磷酸(PRPP )的重要来源。
而PRPP 是组氨酸的前体物,转酮酶活性丧失,导致HMP 戊糖分子重排阶段中的转酮酶催化的反应被阻断,进而大量积累5-磷酸核糖,通过选育莽草酸缺陷型突变株,可成功分离出转酮酶缺陷突变株,使得L-组氨酸产量提高[15]。
3.4解除组氨酸的反馈调节在组氨酸的合成途径中,磷酸核糖-ATP 焦磷酸化酶是限速酶[7],组氨酸对其既反馈抑制又反馈阻遏,一般通过选育专属解除组氨酸对其反馈调节的结构类似物来完成;同时组氨酸对其合成途径上的其他酶也有抑制或阻遏作用,通过选育其他一些组氨酸结构类似物来逐步解除反馈调节。
3.5阻断组氨酸的分解组氨酸酶又称组氨酸解氨酶,能把L-组氨酸脱氨形成尿刊酸,再通过一系列反应生成谷氨酸。
选育在以组氨酸为主要或唯一氮源的基本培养基上生长微弱或不能生长的细胞,则能形成组氨酸酶缺陷型。
4国内外对L-组氨酸高产菌株选育的研究通过对L-组氨酸生物合成途径的分析,了解了其育种的基本思路,介绍近年来国内外对L-组氨酸高产菌株选育的研究,希望对进一步研究有一定帮助。
4.1L-组氨酸的诱变育种顾正华等[16]以谷氨酸棒杆菌ATCC13761为出发菌,经硫酸二乙酯和亚硝基胍诱变处理,获得菌株H-24,产L-组氨酸1.6g/L 。
此研究基于解除反馈抑制和反馈阻遏、增加前体合成与切断产物代谢途径3方面考虑,使组氨酸有较大的积累。
后又经过多次诱变筛选得到多重遗传标志的菌株DH-8,产酸2.1g/L 。
另外选育能在D-葡萄糖酸基本培养基上生长的突变株,也能提高产酸[17]。
添加柠檬酸能增加HMP 途径的代谢流量,同样能提高产酸。
由于芳香族氨基酸对PRPP 激酶有抑制作用,可以通过筛选莽草酸缺陷型菌株来降低芳香族氨基酸的代谢流量,进而增加流向PRPP 的通量。
于是利用亚硝基胍诱变谷氨酸棒杆菌HZ4221,选育得到莽草酸缺陷型的渗漏突变株CLW0560,积累L-组氨酸达5.31g/L [15]。
如果进一步研究5L 发酵罐发酵动力学及发酵条件优化,将能使组氨酸得到更大积累,对工业化生产具有重要的指导作用[18]。
曾莹等[20]对L-组氨酸选育方面也做了大量的研究,采用HNO 2和紫外线复合诱变处理黄色短杆菌,选育得到一株高产菌,产L-组氨酸128.28mg/L 。
虽然该菌株产酸水平比较低,但可以在此基础上定向选育结构类似物抗性突变株及营养缺陷型菌株,打破代谢调节机制。
利用硫酸二乙酯和亚硝基胍诱变处理谷氨酸棒杆菌S 9114,最终得到一正突变株S6(D-his r),可积累L-组氨酸327mg/L [21]。
首先对其进行最佳发酵工艺的研究,确定了菌株的最佳发酵条件[22],继续对S6进行了一系列的诱变处理,经亚硝酸钠和紫外线专论与综述29··2010No.9Serial No.222China Brewing复合诱变,所得菌株F6产L-组氨酸量为330mg/L[23]。
进行多次亚硝基胍的反复诱变。