海马细胞培养与鉴定
胎鼠海马神经元体外原代培养与鉴定
胎鼠海马神经元体外原代培养与鉴定【关键词】胎鼠海马神经元;体外原代培养;鉴定doi:10.3969/j.issn.1004-7484(x).2013.06.568 文章编号:1004-7484(2013)-06-3323-02在神经生物学及相关学科领域中,原代培养的神经元因其排除机体生理病理状态干扰的影响而成为较为理想的实验模型,是研究神经元形态、物质代谢、分子机制及电活动的主要前提。
海马是大脑边缘系统重要的组成部分,在学习、记忆、情绪反应及中枢神经系统疾病的病理生理变化方面发挥着重要作用。
对于原代海马神经元的培养,主要供体主要有胎鼠与新生鼠两种,培养方法有含血清培养和不含血清培养两种。
我们通过实验摸索,取得一种较稳定且简便实用的方法,能获得较高存活率的海马神经元。
1 材料与方法1.1 实验动物来源清洁级孕17-19天sd大鼠上海斯莱克实验动物有限责任公司提供,生产许可证号:scxk(沪)2012-0002。
1.2 主要仪器与试剂 co2培养箱(thermo公司),倒置相差显微镜为(olympus公司),激光共聚焦显微镜型号为zeiss lsm710,小鼠抗大鼠classⅲβ-tubulin单抗(beyotime公司),nse免疫组化染色试剂盒、dab显色试剂盒(武汉博士德生物工程有限公司),b27添加剂、neuralbasal、hoechst 33342sigma公司),dmem(高糖型)培养基、胎牛血清(gibco公司)。
1.3 培养方法与鉴定取孕17-19天大鼠,水合氯醛麻醉后70%酒精浸泡20min,颈椎脱臼法处死孕鼠,将子宫立即放入冰浴含dmem 的大平皿中,在解剖显微镜下取下海马组织,剪成约1mm×1mm×1mm 大小,用0.125%胰蛋白酶于37℃、5%co2培养箱中消化15min,中间每隔5min振荡一次,加入含10%fbs的dmem液终止消化,巴氏管轻柔吹打,200目筛网过滤。
海马细胞实验记录方案
实验记录一、实验名称:海马细胞培养二、实验目的:在细胞水平评估给药后是否能够提高突触可塑性三、实验时间:年月日四、实验地点:五、实验人:六、实验试剂:1.完全DMEM培养基:2.1×PBS:厂家:HyClone;3.0.25%胰酶消化液:4.硼酸盐缓冲液(poly-L-lysine):5.Neurobasal全培+双抗:6.HBSS缓冲液:七、实验仪器:1.湘仪TD5A-WS台式低速离心机,转子号为853590,水平转子,容量为32×15 ml。
2.培养箱:Thermo SCIENTIFIC培养箱,HERACELL 150i CO2 Incubator。
3.倒置显微镜4.解剖镜八、实验过程:1.准备24孔板,每孔放入一个处理好的玻片,共24孔。
分别加poly-L-lysineBuffer 500μl/孔,放入37℃培养箱中包被2小时以上。
2.4小时后,准备3个10-cm无菌培养皿,分别加20ml的HBSS-buffer,放在冰袋上预冷。
3.用75% 乙醇喷洗剪刀一把、尖头镊子两把、称量勺一把、手术刀片一个;将新生E19小鼠的头和身体分离,把头放在其中一个预冷的平皿中。
4.取大脑:左手用一把尖头镊子压住小鼠头部的眼睛处,右手用手术刀片将头顶处划开,再用另一把尖头镊子扒开头部的皮和脑壳,(注意不要弄坏大脑)右手拿称量勺尾端轻轻插入需出的大脑的底部,轻挑出大脑,放入到另一个干净的平皿中。
5.用上述取大脑的方法将剩余的小鼠大脑取出。
6.取海马体:在解剖镜下,左手用尖头镊子压住小脑处,右手翻开大脑的半球,去除血网,分离血网下的海马体(带状深色,半透明,靠近大脑半球的边缘),将海马体移入最后一个干净的平皿中。
7.用上述取海马体的方法将剩余的海马体取出。
8.全部海马体取出出后,用1ml 枪把海马体轻吸到1个无菌的1.5 ml EP管中,等海马体沉淀后,吸出上清,用PBS清洗10次,1ml/次。
新生大鼠海马神经干细胞的分离培养及分化研究
新生大鼠海马神经干细胞的分离培养及分化研究苗宗宁;吴卫江;钱寒光;赵基栋【摘要】研究新生大鼠海马区脑组织中神经干细胞体外培养方法,为治疗神经系统疾病寻找合适的细胞来源。
取新生SD大鼠的海马区脑组织,采用accutase结合机械分离法获取神经干细胞,在含有B-27、碱性成纤维生长因子和表皮生长因子的DMEM/F12无血清培养液中培养;Accutase酶消化后传代培养,取第3代细胞行抗巢蛋白免疫荧光染色鉴定并以含10%胎牛血清培养液诱导分化,神经元特异烯醇化酶和胶质纤维酸性蛋白免疫荧光染色检测NSCs向神经元及胶质细胞分化的能力。
分离的新生大鼠海马区脑组织中细胞,在无血清培养液中形成大量的神经球,部分神经球出现融合及贴壁分化现象,细胞呈典型NSCs 形态。
经巢蛋白染色鉴定,大部分为阳性细胞。
神经细胞球经含有胎牛血清培养液培养后,可分化为神经元特异烯醇化酶和胶质纤维酸性蛋白表达阳性的细胞。
从新生大鼠海马组织分离培养的NSCs具有自我更新和增殖能力,在含胎牛血清培养液中具有向神经元和神经胶质细胞分化的潜能。
%To establish the method of culture neural stem cells in the hippocampus of neonatal rats in vitro in order to find a suit-able cell source for the treatment of nervous system diseases.NSCs were isolated use accutase and mechanical separation method from hippocampus area of neonatal SD rat.The cells were cultured in completely medium and medium components include DMEM/F12 ser-um-free medium,B27,basic fibroblast growth factor and epidermal growth factor.Anti nestin immunofluorescence staining were used to identify the third generation cell after accutase enzyme digestion andsubculture.Culture medium containing 10%fetal bovine serum were usedto induce NSCs,NF-200 and GFAP immunofluorescence staining were used to identify the differentiation of NSCs to neu-rons and glial cell.In the hippocampus of neonatal rats,a large number of nerve cells were formed in the serum free medium,and some of the neural spheres appeared fused and adherent differentiation.The cells showed typical NSCs morphology.The expressions of nestin staining showed that most cells were positive.Nerve cell spheres could differentiate into neurons and glial fibers acidic protein expression positive cells after cultured with medium containing fetal bovine serum.The NSCs isolated from the hippocampus of neonatal rats has the ability of self-renewal and proliferation,which has the potential to differentiate into neurons and glial cells in the serum containing fetal bovine serum.【期刊名称】《生物医学工程研究》【年(卷),期】2016(035)004【总页数】6页(P303-308)【关键词】海马;神经干细胞;分离培养;细胞分化;新生大鼠【作者】苗宗宁;吴卫江;钱寒光;赵基栋【作者单位】江苏无锡市第三人民医院,江苏无锡214041;江苏无锡市第三人民医院,江苏无锡214041;江苏无锡市第三人民医院,江苏无锡214041;江苏无锡市第三人民医院,江苏无锡214041【正文语种】中文【中图分类】R3181 引言神经干细胞(neural stem cells,NSCs)是一类起源于神经外胚层,具有自我更新能力并在一定条件下分化为神经元和胶质细胞的多潜能干细胞[1-3]。
海马神经干细胞的分离、培养与鉴定
显 示 神 经 元 、 状 胶 质 细胞 、 星 寡树 突 细胞 抗 原 阳性 。 结论 : 海 马 分 离 出 的 细 胞 具 有 自我 更 新 、 殖 和 分 化 能 从 增
力 , 神经 干细胞。 是
关 键 词 神 经 干 细 胞 海 马 大 鼠 细 胞 培 养
分类 号 R7 1 0 4 .5
维普资讯
第 1 2卷 第 1 9期 20 0 2年 l O月
中 国 现 代 医学 杂 志 Chn o m  ̄ o o en M e ii iaJ u fM d F dcne
Vo . 2 No. 9 11 1 0C .2 0 t 02
I OLATI N . S O CULTURE AN D DENTI CATI N F NEURA L I FI O O S TEM CELLS I RA TS’ H I N PPO CALM PUS
Li u Baian , i gq y LiX n un , an Zh ghu xi , e . a an ta1
个 克 隆 进 行 连 续 传 代 培 养 , 免 疫 组 化 检 测 nsi 原 和 分 化 后 神 经 细 胞 特 异 性 抗 原 。 结 果 : 海 马 获 得 的 用 et n抗 从
细胞 群 能 够 连 续 传 代 , 离后 的 单 个 细 胞 能 形成 事 迹 球 , 疫 检 测 为 nsi 性 ; 外 、 内分 化 的细 胞 分 别 分 免 et n阳 体 体
[ btat Obet eToi lt na dieti t no e rltm esi rt’ ipcl u . to sC l A s c] jci : oai n nic i f ua s cl as hpoamps Mehd : e s r v s o d fao n e ln l
胎鼠海马神经元培养及其鉴定
21 ,( :7 9 0 1 5) 1 1
n lo mnn e ia ie st o r a fKu ig M d c lUn v r i y
胎 鼠海 马神经元培养及其鉴定
李 玉 ” ,王 波 ” 但齐琴 ∞ , ( 昆明医学院第一附属医院神经外科 ,云南 昆明 603 ;2 昆明医学院神经科学研 究所,云南 昆 1 ) 50 1 )
te e l f m t a , wi a u l n ra igten u t ugo t . Co cu in P r e e rn t h ng w wel r 5h d y r o t g d a ce sn e r i o t w h hr i h i s r n lso u f dn u o s h i i wi
n u o s yS —wo se tiigmeh d Re ut Af ric b tdfr o r , ta s re u p n in el e rn P t — tp s nn to . b a sl s t u ae h u s rn f r ds s e so s nw l e n o 2 e i s
n u o a r wt c a a t r it s M e h d T s u s fo h p o a u f f tl r t we e h r e td, t e e r n l g o h h r ce si . c to s is e r m i p c mp s o aa as r a v se hn
明 6 0 3 ) 50 1
[ 要] 目的 摘 建立胎 鼠海马神经元体外 培养 方法 ,观察细胞生长情况 ,免疫 组织化学染色鉴定神经元特
异性. 方法
大鼠海马神经干细胞的分离培养与免疫荧光鉴定
Ioai s l ton, ulur nd i c t e a mm uno uo e c nc de tfc to fne r lse c lsi at l f r s e e i n i a i n o u a t m el n r s i
C e a。, a gX aj n Z a gPn3e a. h nK i K n ini g, h n ig,t 1 一 a
p o et s r p r e .M eh d T i su y a o td t e s r m - r e c l r o i e i h a i b o l s g o t i t o s h s td d p e h eu fe u t e c mb n d w t t e b sc f r b a t r w h u h i
果
从 新生大 鼠海马齿状 回分离的细胞群可不断增殖形成细胞克隆球 , 并且呈 ns n阳性 表达 , et i 具有多 向分化能力 。 结论
分 离培 养 的细 胞 是 中 于细胞 ; 分离培养 ; 免疫荧光鉴定
中图 分 类 号 : 3 3 Q 4 文 献 标 志 码 : A 文章 编 号 :6 4 4 0 2 1 一2 0 0 — 4 17 — 9X(0 0)0 — 0 1 0
( .C l g f L -ce cs e e U i ri ,B o i b i0 1 0 ;.C l g 厂A r utr ,H b i 1 ol e o sine ,H b i n es y a dn Hee 7 0 2 2 ol e Q gi l e e e e v t g e c u U i ri {E gn ei Ha d n Hee 5 0 1 3 D p rm n erl y f l e opt jH bi nv s y o n i r g. n a b i0 6 0 . e at e to N uo g,Af i d H s il0 e e e t e n f o i  ̄ a
海马细胞培养流程
海马细胞培养流程1.Coat板子:12孔板每孔加poly-sine缓冲液至少覆盖皿底,37℃coat至少4小时(可以过夜coat),吸去poly-sine缓冲液,PBS洗2-3遍(可以用PBS泡一段时间)。
使用前,在超净台里将PBS吸干,开盖晾干。
2.老鼠处死:19天SD孕鼠安乐处死。
3.胚胎分离:解剖老鼠腹部,取出胚胎,放到含有HBSS buffer的10cm培养皿中(冰块预冷)。
4.取头:用镊子弄断老鼠的头,将头放到含有HBSS buffer的6cm培养皿中(冰块预冷)。
5.取大脑:镊子捏住眼睛,剪刀剪开柔软的脑壳,另外一把镊子(有弯角)取出大脑,放入新的含有HBSS buffer的6cm培养皿中(冰块预冷)。
6.分离海马组织,将大脑半球翻过来,去除血网,用细镊子分离海马(带状深色,靠近大脑下半球边缘),剖离海马放入新的含有HBSS buffer的6cm培养皿中(冰块预冷)。
7.洗海马:用枪头吸取海马,放入灭菌的1.5ml EP管内(超净台内操作)吸去多余的HBSS,加入1ml PBS,待所有海马组织沉入管底后吸走PBS,再加入新的PBS,重复10次(注意不要吸走海马)。
8.消化:加0.5ml 0.25%trypsin,37℃消化30-50min。
9.吹散成单细胞:加2ml DMEM全培养基(500ml DMEM,5ml双抗,50ml FBS,5ml丙酮酸钠),吹吸悬浮细胞(不超过4次)。
10.细胞计数:从1ml中取20ul,加入20ul DMEM中,血球计数板上计数,计数后,稀释细胞,使得1ml DMEM全培养基中含有2x104个细胞,轻轻混匀。
11.Seed 12 孔板:每个孔加入1ml DMED全培养基细胞悬液(过夜培养,37℃,5%CO2)。
12.换选择培养基:培养12h后吸去DMEM,加入Neurobasal选择培养基。
Neurobasal配方:Neurobasal 50mlB-27 10mlGlutamaX 5ml双抗3ml。
成年小鼠海马神经细胞培养及其鉴定
CN 3 一l 4 / 5 O 9 R
J u na fKu m ig M e ia ie st o r lo n n d c lUnv r i y
成 年小 鼠海马神经细胞 培养及其鉴定
李 玉 ” ,但齐琴 ,习杨彦彬 ∞ ( 昆明医学院第一附属 医院神 经外科 ,云南 昆明 603 ;2 1 ) 50 1 )昆明医学院神经科 学研 究所, 云 南 昆明 6 0 3 ) 50 1
Cul u e a de i c t o fHi o a p u o n Ad t t r nd I nt f a i n o pp c m us Ne r nsi ul i Ra s t
L u” A i i”,X YA GY n i I Y ,D N Q —qn I N a —bn
bo e ffo tn e l n is o k r e n, b tafw el t c e o t to o l. T r wt f diso ai g c lsa d tsueblc swe e s e l u e c lsat h d t hebotm fwe1 a he g o h o
() Dp.fN uougr,Te]t f ltdH sil Kumn dc nvri ,Kumi unn 1 e to e r rey h s Af ie opt s i a a o n igMei U i sy f l a e t n n Y n a g
6 0 3 ; 2)Isi t o e rsi c ,K n igMe i nv ri ,Ku mi u n n6 0 3 ,C ia 502 ntuef N uoce e u m n dc U i s y t n l a e t n n Y n a 5 0 hn ) g 1
海马神经元细胞免疫荧光检验
海马神经元细胞免疫荧光检验神经元鉴定:一、烯醇化酶鉴定:培养细胞用100%乙醇固定---10min---PBS漂洗5min×3次---3%H2O2室温孵育30min,目的用于去除内源性过氧化物酶---PBS 漂洗5min×3次---5%羊血清(0.3%TritonPBS配制),室温封闭30min 以减少排特异背景颜色------加第一抗体特异烯醇化酶(chemicon,1:1000),4℃冰箱孵育18~24小时---PBS漂洗5min×3次---加入2步法:PV9000试剂Ⅰ,37℃,30min---PBS漂洗5min×3次---PV9000试剂Ⅱ,37℃,30min---PBS漂洗5min×3次---DAB显示红棕色;70%,80%,90%,100%I,100%II 梯度酒精透水;二甲苯Ⅰ,Ⅱ透明2次,每次30min---中性树胶灯片---镜下观察。
二、β-微管蛋白Ⅲ(β-tubulinⅢ)荧光显示:培养细胞用预冷PBS液轻柔漂洗3次,4%多聚甲醛固定,1h,4℃---吸去多余甲醛---PBS漂洗5min×3次---0.25%triton,室温,15min---3%H2O2室温孵育30min,目的用于去除内源性过氧化物酶---PBS漂洗5min×3次---5%羊血清(0.3%TritonPBS配制),室温封闭30min以减少排特异背景颜色------弃血清,加入β-tubulinⅢ抗体(1:100稀释),4℃,过夜---PBS漂洗5min×3次---滴加FITC 标记的山羊抗小鼠lgG(体积比1:200稀释),37℃,1h---DAPI复染10min---抗荧光猝灭封片液封片---荧光显微镜观察---选择10个视野,统计学处理。
一、烯醇化酶鉴定:培养细胞用100%乙醇固定---10min---PBS漂洗5min×3次---3%H2O2室温孵育30min,目的用于去除内源性过氧化物酶---PBS漂洗5min×3次---5%羊血清(0.3%TritonPBS配制),室温封闭30min以减少排特异背景颜色------加第一抗体特异烯醇化酶(chemicon,1:1000),4℃冰箱孵育18~24小时---PBS 漂洗5min×3次---加入2步法:PV9000试剂Ⅰ,37℃,30min---PBS漂洗5min×3次---PV9000试剂Ⅱ,37℃,30min---PBS漂洗5min×3次---DAB显示红棕色;70%,80%,90%,100%I,100%II 梯度酒精透水;二甲苯Ⅰ,Ⅱ透明2次,每次30min---中性树胶灯片---镜下观察。
seahorse实验原理
seahorse实验原理Seahorse(海马仪器)是一种流式细胞代谢分析系统,用于评估细胞的呼吸和酸碱平衡。
它可以通过测量氧气消耗和酸碱转化的动力学来确定细胞的能量代谢状态和功能。
Seahorse仪器的工作原理包括以下几个步骤:细胞预处理、装载、测量和分析。
首先,细胞预处理。
细胞在培养基中孵育,通过调整培养条件来激活或抑制细胞代谢途径。
例如,将细胞孵育在低糖或高糖培养基中,以模拟缺氧或高糖环境。
在处理前,细胞需要进行准备,包括洗涤和预处理。
其次,装载。
经过预处理的细胞被装载到Seahorse培养底片的微孔中,通常每个孔有数千个细胞。
装载时要确保细胞均匀分布,以使测量结果准确。
接下来,测量。
Seahorse系统通过将循环的介质通过底片的微小泵浦系统,将细胞与测量区分离。
细胞所在的区域中有传感器,可以测量介质中的氧气和酸碱变化。
在测量期间,根据预设的实验方案,底板内的介质会逐渐变化。
例如,可以通过控制气体组成来调节氧气浓度,并在短时间内迅速改变实验环境。
最后,分析。
Seahorse系统通过测量介质中的氧气和酸碱变化来计算各种细胞代谢参数。
氧气消耗速率(OCR)是一个关键指标,它反映了细胞的呼吸活性。
酸化速率(ECAR)是另一个关键指标,它反映了细胞的酸碱代谢状态。
通过分析OCR和ECAR之间的关系,可以评估细胞的能量代谢状态和功能。
需要注意的是,Seahorse系统只能提供相关的代谢数据,对于潜在的生物学机制的解释需要进一步的研究和分析。
总结起来,Seahorse(海马仪器)通过测量细胞的呼吸和酸碱平衡来评估细胞的能量代谢状态和功能。
它的工作原理包括细胞预处理、装载、测量和分析。
通过分析氧气消耗速率(OCR)和酸化速率(ECAR)之间的关系,可以评估细胞的能量代谢状态和功能。
Seahorse系统为细胞研究提供了一个有力的工具,可以深入了解细胞代谢的机制。
成年小鼠海马区神经干细胞的分离 培养及鉴定
成年小鼠海马区神经干细胞的分离
朱 欢
培养及鉴定
唐金 熹 李 云 秦琬 莹 王 晓侠 伍 学恒 刘 晓灿 杨 柳 广 西 师范 大学 生命科 学 学院 ,广 西 桂 林 5 4 1 0 0 4
摘 要 : 目的 :从 成 年 小鼠 海 马 区分 离 出潜 在 的 神 经 干 细 胞 ( n e u r a l s t e m c e l l s ,N S C s ) 亚 群 , 同 时建 立 一种 简 单 有 效 的成 年 小鼠海马 区神经干细胞 的分离、培养及鉴定的方法。方法:结合酶消化法和机械 吹打法从 C 5 7 / B 6小鼠脑 组织海马 区分 离出神 经细胞 ,行 C D 1 3 3和 G F A P抗体 染色,经流式细胞分选仪 分选 出 C D 1 3 3 + G F A P + 细胞 群 :经无血 清培 养鉴定其体 外 自我更新与增 殖 能力 : 用免 疫 荧 光 法鉴 定 其 体 外 分 化 潜 能 。结 果 :从 成 年 小 鼠 海 马 区分 离 出 了一 群 可 以体 外 增 殖 的 C D 1 3 3 + G F A P +  ̄胞 群 , 且 该 群 细 胞 在 体 外 可 以分 化 为 B…- t u b u l i n阳性 神 经 元 ( n e u r o n ) 、G F A P阳性 星形 胶 质 细胞 ( a s t r o c y t e )和 M B P阳性 少 突胶 质细胞 ( o I i g o d e n d r o c y t e ) 。结论 :C D 1 3 3 + G F A P +  ̄胞 群具有体 外增殖 与分化 的能力,是一群真正的神经干细胞亚群 ,并建 立 了稳 定 且 简便 的 分 离 、 培 养 及 鉴 定 成 年 小 鼠 脑 海 马 区神 经 干 细 胞 的 方 法 。 关 键 词 :神 经干 细胞 :海 马 区 ;增 殖 ;分 化
大鼠海马神经元的培养及细胞培养注意事项
1.成年大鼠海马神经元的培养●步骤1.获得海马细胞◆大鼠乙醚麻醉,断头处理;◆迅速解剖海马组织,置于含有2ml 4℃的HibernateA/B27的35mm的培养皿中;◆随后将其移入含有同上培养基的培养皿,去除脑膜及多余的脑白质(?);◆将海马移入组织切碎机冷处理台面上事先用HibernateA/B27润湿的滤纸上,沿海马长轴将组织切成0.5mm的薄片,随后将其移入含有5ml4℃的HibernateA/B27的离心管中;◆30℃震荡8min。
◆大吸管将其移入含有木瓜蛋白酶(预热至30℃)的离心管,置于170rpm的旋转平台(保持组织片悬浮状态),30℃水域温育30min;◆将海马组织切片移入15ml含有2mlHibernateA/B27的离心管中,30℃温育5min,吸管吹打10次(30s),静置2min,将上清移入另一离心管,重复上述步骤2次;2.梯度分离◆将细胞悬液加入Nycoprep gradient(4ml)的上方,室温,1900rpm,离心15min;去除最上方的碎片;吸管收集含有细胞的部分;用5mlHibernateA稀释;第三层富含神经元;将第四层用2 ml B27:NeurobasalA重悬,1100rpm离心1min;3.盖玻片处理:50ug/mL多聚-D-赖氨酸(无菌水溶解)包被过夜,吸去多余的多聚赖氨酸,无菌水漂洗一次,自然干燥1h;4.◆细胞接种:以目标密度稀释于B27:NeurobasalA,以每盖玻片60到120 Ul 接种,置于5% CO2:9% O2中孵育1h;◆将盖玻片移入24孔培养板中,每孔以0.4ml 37℃B27/NeurobasalA漂洗一次,去除未贴壁细胞及细胞碎片;改用0.4ml的生长培养基;◆培养后4天,每3-4天更换一半培养基;新的培养基中的FGF2含量是远培养基的2倍;1.培养器皿的准备:1)溶液瓶——装配各种溶液——输液瓶;2)螺口瓶——血清或培养基;3)培养瓶——细胞培养——一般采用带螺口的,清洗时注意防止盖子中垫片的丢失;4)培养皿——细胞组织的分离、培养、染色——包括直径为30mm、60mm、120mm5)血球细胞计数板——细胞计数6)移液管——连接上手动(吸耳球)或电动负压吸取装置——在移液管尾部塞入少量脱脂棉;7)离心管——分离、漂洗、收集细胞——一般选用螺口带盖的;Eppendorf ——塑料尖底带盖的离心管8)磁力搅拌器:用于神经细胞的分离机溶液的配置;最好配合使用可调温度的加热装置;可用高压蒸汽消毒。
原代海马神经细胞体外培养的纯化与鉴定
第4 4卷
32 2
第 4期
哈尔滨医科 大学学报
J 0URNAL OF HARB N MED CAL UNI I I VERS IY I
Vo . 4, . 1 4 No 4 Au .,2 1 g 00
21 0 0年 8月
原代 海 马 神 经 细胞 体 外 培养 的纯 化 与鉴定
在体外采用含血清结合无血清法进行培养 , 并用 N E G P4 、 P S 、 A -3 MA 2等海马神经 细胞 特异抗体经 免疫细胞化学 方
法鉴定细胞性质及纯度。结果 度达 9 %以上。结论 6 至第 7 ・ 8天神经元形态最为成熟饱满 , 随后逐渐 出现 细胞 老化 , 神经元 最长可 生存 4周 。经鉴 定 , 马神经元 纯 海 体外采用含血清和无血清法相结合进行原代 海马神经细胞 培养 , 细胞纯度高 , 杂细胞少 , 可 为神经疾病体外研究提供 必要 细胞基础 。
ma utr f ip c mp l e rn i eu me im n eu fe du i i oi w t ih p — y r c l eo p o a a uo sw t s rm du a d sr m— eme im nvt s i hg u u h n h r r h
L U n,ZHANG — a,ZHANG n— I Xi Yin Yu he,e l ta
( eate tfGr tc,T e eo dCii l ol e H ri Dp r n o ei rs h cn l c lg , ab m ai S na C e n
新生树鼠句海马神经干细胞的体外培养与鉴定
【 bt c】 O jc v T vsgt t o tncl r adi nf ao f er t l ( S s r A s at r bet e o ne i e h i l i t e n eti t no nu ̄s m c l N C )fm i i ta e s ao u u d i i c e es o
a ii fsra a s g n rlfrt d c n i u u l ob c me n r eb l , ih Wa t mut— i cin ldfe nito b ly o e ilp sa e a d p oieae o tn o sy t e o e v ubs wh c s wi t h l dr t a i r t i n i e o e a
广西医学 21 年 3 02 月第3 卷箜 4
25 7
● 论著
新生树晌 海马神经干细 胞的体 外培 养与鉴定 ▲
昊元桢 欧 阳轶 强 黄 玲 杨桥樱 黄世 文 陆彩玲 蒙智娟 何 以源 郭松超
( 广西医科大学公共卫生学院营养与食品卫生学教研室 , 南宁市 50 2 ;- a : 74 97 q cm 30 1Em i 3 2 06 @q .o ) l9
ห้องสมุดไป่ตู้
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ICC-免疫细胞化学染色
ICC-免疫细胞化学染色
原代培养海马细胞神经元的鉴定
将大鼠海马神经元细胞终浓度(2*106个/ml)接种于铺有盖玻片并经多聚赖氨酸包被好的6孔板中,每孔2.5ml,培养条件同上,培养至第8天,用免疫组化法鉴定。
步骤如下:
1.吸弃培养液用PBS冲洗3遍,冷丙酮固定10min。
2.PBS冲洗3遍,3%H2O2(30%双氧水和纯甲醇按1:9的容积比混合)封闭内源性过氧化物酶,室温下10min。
3.PBS冲洗3遍,0.3%Triton破膜(溶解细胞膜,细胞核膜细胞器膜上的脂质)15min,PBS洗3遍。
4.10%羊血清封闭,室温10min,吸弃上清(不洗)。
一抗37℃反应1h(20μL的NSE+1ml稀释液),设空白对照,以PBS代替一抗
5.PBS洗3*5min,二抗(羊抗兔)室温下18min,PBS洗3*5min,SABC复合物37℃,18min。
(二抗标记的FITC在紫外光激发下显色)
6.PBS洗3*5min,DBA显色(5min)。
镜下观察,自来水终止。
DBA稀释度(1:50),苏木素复染(3min),95%乙醇脱水,二甲苯透明20min,中性树胶封固,风干,镜下观察。
注:PBS用0.01M的(配置成0.1M的,用时稀释)。
原代海马神经元细胞培养
原代海马神经元细胞培养-CAL-FENGHAI.-(YICAI)-Company One1原代海马神经元细胞培养溶液的配制:(1) 4%多聚甲醛溶液:4g多聚甲醛溶于100ml pH=7.4的0.01mol/l PBS中,混匀过滤,室温保存。
(2)磷酸盐缓冲液(PBS)(0.01mol l-1):KH2PO4,0.1g;Na2HPO412H2O,1.7g;KCl,0.1g;NaCl,4.0g,双蒸水加至500ml,pH=7.2~7.4。
用0.2m滤膜过滤,4℃保存。
(3) 1%蛋白酶的配制:用磷酸缓冲液(pH=7.2~7.4)配制成浓度为1%的胰蛋白酶母液冻存。
使用时,用解剖液稀释至0.25%。
(4) 培养皿涂被多聚赖氨酸:配制0.01%的多聚赖氨酸,分装冻存。
将上述多聚赖氨酸放入培养皿中涂两遍,自然晾干后备用。
(5) 解剖液:葡萄糖,3.0g;蔗糖,7.5g;NaCl,8.0g;KCl,0.4g;Na2HP047H20,0.18g;KH2PO4,0.03g;HEPES,2.14g;加双蒸水1000ml,调pH=7.0~7.4,过滤,4℃保存。
(6) 种植液:DMEM 79%,胎牛血清,10%;马血清,10%;谷氨酰胺培养液1%。
(7) 饲养液:Neurobasal培养基,97%;谷氨酰胺培养液,1%;B-27,2%。
(8) 阿糖胞苷:用双蒸水配制成浓度为l mg ml-1的母液储存。
用0.2m 滤膜过滤,-20℃储存。
使用时,取6l母液加入2ml培养液中,终浓度为3g ml-1。
(根据实验情况调整浓度)大鼠原代海马神经元细胞的培养(1) 新生SD大鼠(<12h),75%酒精浸泡消毒后断头,剥离出全脑并将其放入盛有解剖液的培养皿中。
(2) 在解剖液中解剖大脑,分离出海马,移入另一盛有解剖液的培养皿中。
在分离出全部的海马后,去除血管等组织,然后用剪刀将海马分成数小块,放入盛有0.25%胰蛋白酶的培养皿中,将培养皿放入9%CO2、37℃消化20min。
新生大鼠海马神经干细胞的分离培养及鉴定
原代细胞分离培养鉴定4(SD 大鼠骨骼肌卫星细胞、海马神经元细胞)
骨骼肌
由骨胳肌细胞构成的一种肌组
b
织,是横纹肌的一种。大多数
骨胳肌都附着于骨上,是体内
数量最多的组织,在人体中占
体重的40%。
a
骨骼肌卫星细胞
肌卫星细胞指的是骨骼肌中除骨骼肌纤维(肌细胞)外的一种扁平、有突起的细 胞。是位于肌肉纤维膜和基底膜之间的一种单核细胞,是动物出生后的骨骼肌的生长 和再生的主要细胞来源。
IF:细胞核内 MAP2阳性表达(红色荧光)
MAP2在中枢神经系统神经元细胞体和树突特异 性表达,而在AS(星形胶质细胞)及少突胶质细 胞中不表达,是目前公认的神经元特异性标志物。
13
14
早期卫星细胞(分化据-SMA(Red) 均在胞浆中表14达,有强有弱。
8、SD大鼠海马神经元细胞的分离
目的与意义
神经元细胞原代培养是体外研究神经系统疾病的重要手段之一,也是对神经 系统损伤进行细胞分子水平研究的基础。因此,建立良好的神经元细胞体外培养 模型,对研究神经系统疾病,特别是在神经元发育、损伤和修复中的作用尤为重 要。海马是大脑边缘系统的重要组成部分,参与个体学习、记忆及情绪反应等多 种生理功能,与新生儿缺血性脑损伤及多种神经、精神疾病的发生密切相关。
快收缩肌的3-4倍);
3、采用Ⅰ型胶原酶和胰蛋白酶二步消化法,卫星细胞位于肌束的浆膜和基底膜之间这种特殊位置使其能抵抗一般
消化酶的作用,Ⅰ型胶原酶只能消化肌束之间的连接,起到分离肌束的作用,而不能分离肌束上的卫星细胞,只有胰蛋白 酶才有此能力;
4、消化时间不宜过长,应控制在30min内,可以提高细胞存活率与贴壁率。采用胰蛋白酶分步消化 法,多次消化,及时收集消化下来的细胞,既可以保证肌组织的充分消化,又可以避免蛋白酶对 已消化下来的细胞的进一步损伤,以提高卫星细胞的活性;
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取培养7-9天的细胞
海马神经细胞特异性抗体:神经元特异性烯醇化酶(NSE)、微管相关蛋白质2(MAP2)、生长相关换蛋白43(GAP-43)
NSE:神经元特异性烯醇化酶,血清NSE是神经元和神经内分泌细胞所特有的一种酸性蛋白酶
GAP-43:GAP-43是一种膜相关的鳞蛋白,与神经纤维生长的调节有关,主要分布于海马神经元的轴突
↓
3、加入0.16M乙二醇水溶液0.5ml,混匀,静置30min
↓
4、5mg抗体的水溶液1ml,混匀装入透析袋,pH9.5碳酸盐缓冲液透析,4度过夜。
↓
5、加0.2ml新配的5mg/mlNaBH4液,混匀,再置4度,2小时。
↓
6、在搅拌下逐滴加入等体积饱和硫酸铵,置4度1小时
↓
7、3000r/min离心半小时,弃上清。沉淀物用半饱和硫酸铵洗两次,最后沉淀物溶于少量0.15mol/LpH7.4的PBS中
5.去除DAB染色工作液,用蒸馏水洗涤1-2次即可终止显色反应。
6.对于组织切片或细胞样品,显色反应终止后,如有必要可以用中性红染色液(neutral red staining solution)染色,以便于观察。对于膜,显色反应终止后,可以室温晾干避光保存。
常见问题:
1.背景显色太深。
a.在免疫组化时如果背景显色太深,一方面需考虑使用适当的封闭液进行封闭,例如选购适当的封闭液
辣根过氧化物酶标记法:戊二醛交联法和过碘酸盐氧化法(常用)
戊二醛交联法操作步骤:
(1)称取HRP25mg溶于1.25%戊二醛溶液中,于室温静置过夜。
↓
(2)反应后的酶溶液经Sephadex G-25层析柱,用生理盐水洗脱。流速控制在1ml/1分
钟,收集棕色流出液。如体积大于5ml,则以PEG浓缩至5ml。放置25ml小烧杯中,缓慢
少量0.15M PH7.4的PBS中。
↓
(8)将上述溶液装入透析袋中,对0.15M PH7.4的PB缓冲盐水透析,去除铵离子后(用
萘氏试剂检测),10,000rpm离心30分钟去除沉淀,上清液即为酶结合物,分装后,冰冻保
存。
过碘酸盐氧化法操作步骤:
1、称取5mgHRP溶解于0.5ml蒸馏水当中
↓
2、向溶液中加入0.5ml新配的0.1m的Nalo4溶液,混匀,4°C静置30min
2.没有显色或显色太弱。
a.可以考虑适当提高一抗或二抗的浓度。检测二抗效果,滴一滴稀释二抗在膜上,检测二抗是否可以被正常显色。
b.可以考虑使用更加灵敏的放大检测体系,例如使用生物素检测体系。
c.可以适当延长显色时间,另外确定抗原修复是否对于使用的一抗是必需的。
免疫组化反应步骤:
将长有海马和皮层神经细胞的爬片顺序置入以下介质中进行操作:
2、从断头处死鼠到胰酶消化前整个过程都要在冰上进行。
3、如果是胎鼠,不要取一个分离一个,而是要快速把所有胎鼠大脑都迅速取出放到预冷的液体中。
4、一定要尽可能的去掉所有的血管和血管膜。
5、吹打动作要轻柔,以免损伤细胞。
6、种板时密度很重要,过密和过稀都会影响细胞生长。
7、种板后需轻摇晃板,切记!不能圈圈摇晃。应左右平行,上下平行摇晃。
↓
8、将上述溶液装入透析袋中,对0.15mol/LpH7.4的PB缓冲盐水透析,去除铵离子后(用
萘氏试剂检测),10000r/min离心30min去除沉淀,上清液即为酶结合物,分装后,冰冻保存。
DAB辣根过氧化物酶显色试剂盒
产品编号: P0202
产品包装:共20ml
产品价格: 73.00元
使用说明:1.对于组织切片或细胞样品或膜,在与辣根过氧化物酶标记的抗体或其它形式的探针孵育后,用适当洗涤液洗涤3-5次,每次3-5分钟。对于检测内源性辣根过氧化物酶的组织或细胞样品,在适当固定后,也用适当洗涤液洗涤3-5次,每次3-5分钟。
↓
7、15-20 min,37℃,期间5min震荡一次
↓
8、1:1比例加(DMEM+青链+胎牛血清)终止消化,吹打20次
↓
9、配平,1000rpm,5min
↓
10、弃上清,得沉淀
↓
11、加(DMEM+青链+胎牛血清),吹打20次
↓
12、100目过筛,
↓
13、放入15ml离心管,吹打
PBS液冲洗3遍
↓
质量分数为4%的多聚甲醛固定15 m in;
↓
0.01mol/LPBS液中洗15 m in;(5min×3次)
↓
质量分数为0.4%的Triton X-100湿盒反应40 m in;
↓
0.01mol/LPBS液中洗15 m in;(5min×3次)
↓
3%H2O2孵育15min,消除内源性的过氧化物酶
MAP2:MAP2是一种细胞骨架蛋白,定位于海马神经元的胞体和树突。
方法:辣根过氧化物酶标记SABC法(NSE,1:100),FITC标记免疫荧光法(MAP2,1:100;GAP-43,1:250)。
鉴定标准:
NSE的DAB显色结果:NSE免疫阳性反应物呈棕黄色颗粒,主要分布在神经细胞的胞浆及部分较粗大的突起中,胶质神经细胞不着色,阴性对照细胞未件着色。化学染色显示海马神经细胞形态均匀,体积相似,胞体饱满,呈椭圆形或多边形。
搅拌。
↓
(3)将待标记的抗体12.5mg用生理盐水稀释至5ml,搅拌下逐滴加入酶溶液中。
↓
(4)用1M PH9.5碳酸缓冲液0.25ml,继续搅拌3?小时。
↓
(5)加0.2M赖氨酸0.25ml,混匀后,置室温2小时。
↓
(6)在搅拌下逐滴加入等体积饱和硫酸铵,置4℃1小时。
↓
(7)3000rpm离心半小时,弃上清。沉淀物用半饱和硫酸铵洗二次,最后沉淀物溶于
或使用和一抗相同来源的血清(10%)进行封闭。另一方面,请注意选购经过适当吸附的二抗,以减小二抗的非特异性吸附。
b.在免疫组化时如果背景显色太深,需注意灭活内源性过氧化氢酶。可以在4体积甲醇中加入1体积3%过氧化氢,混匀后用于内源性过氧化氢酶的灭活。
c.可以考虑缩短显色时间,或降低二抗浓度。另外,选择适当强度的洗涤液,或延长洗涤时间也会有所帮助。
步骤:
1、培养前30min包被多聚赖氨酸置于培养箱中备用;
↓
2、75%酒精浸泡鼠,断头取脑(1把中镊,1把中剪)
↓
3、剥离海马(D-hanks液,冰盒,4把小镊)
↓
4、去血管、被膜(显微镊2把)
↓(进细胞间)
5、吸去多余D-hanks,剪碎,吸入15ml离心管
↓
6、D-hanks:胰酶=1:1,吹打20次
↓
0.01 mol/LPBS液中洗15 m in;(5min×3次)
↓
SABC孵育,湿盒内37度,20min
↓
0.01 mol/LPBS液中洗15 m in;(5min×3次)
↓
DAB显色,配法按说明书
↓
自来水洗5min
↓
苏木素复染10min
↓
自来水洗5min
↓
树胶封片
若长期保存片子,可以对爬片进行脱水处理:70%(1次,1min),80%(1次,1min),95%(1次,1min),无水乙醇(2*3min),二甲苯(2*1min)
GAP-43的荧光显色结果:阳性反应物呈明亮的绿色荧光,反应物主要分布在胞体和粗大的轴突,树突无染色,胶质细胞无染色。染色显示培养一周左右的海马神经元胞体饱满,呈椭圆形,轴突粗大发达。
MAP2荧光显色结果:阳性反应物呈绿色银光,反应物分布于神经元的胞体和树突,轴突及胶质细胞均不染色。染色显示培养7、8天的海马神经元树突发达,相互交错,形成极发达的神经纤维网络。
免疫组化反应对照实验:
非特异性对照:用正常羊血清代替兔抗特异性烯醇化酶(NSE)多克隆抗体,其它实验步骤上。
阴性对照:用PBS代替兔抗特异性烯醇化酶( NSE )多克隆抗体,其它实验步骤同上。
纯度计算:高倍镜视野下,随机选取计数视野,计数100个细胞中阳性神经元的数目,重复5次后,计算均值。
3、分装:胰酶:1ml、D-hanks:100ml、青霉素:500ul、链霉素:500ul、胎牛血清:10ml、
DMEM:90ml、B27:40ul、Neurobasal:1.6ml
4、玻璃器皿:移液管,培养皿,24孔板内的玻璃片,泡酸过夜,自来水清洗10遍,一蒸10遍,三蒸3遍,烤干,高压,再烤干
↓
0.01mol/LPBS液中洗15 m in;(5min×3次)
正常山羊血清(体积比为1:100)中孵育3 h,以消除非特异性染色;
↓
甩掉山羊血清(不清洗),加一抗,4度过夜或37度温箱1-2小时
↓
0.01 mo l/LPBS液中洗15m in;(5min×3次)
↓
加二抗,孵育2 h;或37度30min
2.按照如下比例依次加入各溶液,混匀后即配制成DAB染色工作液:
DAB显色液A
0.5ml
5ml
DAB显色液B
0.5ml
5ml
DAB染色工作液
1ml
10ml
3.最后一次洗涤完毕后,去除洗涤液,加入适量DAB染色工作液,确保能充分覆盖样品。
4.室温避光孵育3-30分钟或更长时间(可长达24小时),直至显色至预期深浅。
3.1海马原代培养操作
准备:
1、取海马:培养皿6个(3对),D-hanks(100ml,提前预冷),75%酒精,眼科镊2把,小剪刀3把,小镊子4把(三个弯头,一个直头),冰袋3个,中号镊一把。
2、细胞室:小dish,多聚赖氨酸(1个EP),纸抽,细胞剪,胰酶(2个EP),DMEM(10%胎牛血清+青霉素+链霉素,提前拿出),离心管2个,24孔板1个,细胞筛2个,废液缸1个, D-hanks