酵母菌选育、最适培养基筛选及菌种发酵培养

酵母菌选育、最适培养基筛选及菌种发酵培养

[摘要]在无菌条件下，用紫外线对酵母菌(yeast)进行不同时长的照射诱变处理，选出合适的诱变菌种进行振荡培养。经振荡培养后的诱变菌种运用正交试验设计的方法采用四个因素三个水平选出最适的菌种培养基，进行进一步的发酵培养。在发酵罐中加入最适培养基成分和合适的酵母菌诱变菌种进行发酵扩培，最终获得大量的菌种和发酵产物。

[关键词]酵母菌，紫外线，最适培养基，正交试验设计，发酵培养

面包酵母(Saccharomyces cerevisiae)是一种单细胞微生物，是酵母菌的一种,它含蛋白质50％左右，氨基酸含量高，富含B族维生素，还有丰富的酶系和多种经济价值很高的生理活性物质。几千年前人类就用面包酵母发酵面包和酒类，在现代食品工业方面，广泛用作人类主食面包、馒头、包子、饼干糕点等食品的优良发酵剂和营养剂。

本实验选用的物理诱变因子为紫外线，DNA能强烈吸收紫外线，尤其是碱基中的胸腺嘧啶，从而在形成二聚体，改变DNA结构，引起基因突变。本实验的面包酵母菌经不同时长的紫外线诱变处理，培养出的适合的诱变菌种进行最适的菌种培养基的筛选和发酵培养。

最适菌种培养基的筛选是通过正交实验设计进行的。正交试验设计(Orthogonal experimental design)是研究多因素多水平的又一种设计方法，它是根据正交性从全面试验中挑选出部分有代表性的点进行试验，这些有代表性的点具备了“均匀分散，齐整可比”的特点，正交试验设计是分式析因设计的主要方法,是一种高效率、快速、经济的实验设计方法。正交表是一整套规则的设计表格，用L为正交表的代号，n为试验的次数，t为水平数，c为列数，也就是可能安排最多的因素个数，本实验采用了四因素三水平进行最适培养基的筛选。

选出合适的诱变菌种和适合诱变的酵母菌生长的培养基后，便可以能过发酵罐进行发酵培养，分时段观察记录发酵过程中的PH，溶氧，菌种数。绘制出面包酵母的生长曲线

１材料与方法

1.1实验材料

菌种：

面包酵母菌

仪器：

高压蒸汽灭菌锅，超净工作台，光学显微镜，恒温培养摇床，分析天平，小型发酵罐

用品：

枪头及1mL和0.5mL移液器，三角瓶，试管，玻璃涂棒，平皿，血球计数板，酒精灯，棉

塞，试管架，盖玻片，记号笔

试剂：

酵母膏，蛋白胨，(NH4)SO4，葡萄糖

PDA培养基，PDA液体培养基（不加琼脂）：

去皮马铃薯200克、葡萄糖20克、琼脂20克、自来水1000毫升、自然PH [其做法是称取200g马铃薯，洗净去皮切碎，加水1000ml煮沸半个小时，纱布过滤，再加10～20g葡萄糖和17～20g琼脂，，高压蒸气（121℃）灭菌20分钟，冷却后贮存备用。]

1.2 试验方法

1.2.1酵母菌选育

1)制备PDA固体培养基和液体培养基（不加琼脂），将所用用具如玻璃涂棒，9mL无菌水

试管，培养皿，斜面试管等包好，121℃，30min 高压蒸汽灭菌。

2)在超净工作台中，制备固体培养基平板和液体培养基试管，用移液器取1mL菌悬液加入

9mL无菌水试管，依次进行浓度梯度稀释，取稀释菌液进行计数，选取合适浓度梯度，进行涂板。

3)由于固体培养基制备的量不足，实验选取2个浓度梯度，紫外线照射时长选定为

50s,70s,90s，进行涂布，涂布平板情况如下（表1），涂布后，紫外灯下照射诱变。

表1 涂布平板个数

浓度梯度0s 50s 70s 90s

1x107 1 2 2 2

1x108 1 2 2 2

4)诱变后在30℃培养2天后，进行平板计数，计算死亡率，挑取诱变单菌落于PDA液体

培养基中30℃振荡培养。

1.2.2最适培养基筛选

1)酵母菌发酵配方：

酵母膏10g，蛋白胨10g，（NH4）2SO4 5g，葡萄糖20g，PH 6.4，

选取酵母膏，蛋白胨，（NH4）2SO4，葡萄糖四个因素配成培养基母液，按四因素三水平的正交表（表4）和实验因素与水平表（表2）配制液体培养基，后进行高压蒸汽灭菌。

表2 实验因素与水平

水平\因素酵母膏蛋白胨(NH4)2SO4葡萄糖

1 0.5﹪0.5﹪0.25﹪1﹪

2 1﹪1﹪0.5﹪2﹪

3 2﹪2﹪1﹪4﹪

2)将酵母菌菌液加于液体培养基中，28℃振荡培养2天，用活体计数法计算试管内菌体密

度，进行级差分析。

1.2.3菌种发酵培养

1)按照设备流程图认识发酵罐，了解发酵培养的流程。

2)校正pH计（4～6.68）根据正交试验设计结果配制最适培养基，将配好的发酵培养基

12L（酵母膏180g、蛋白胨60g、(NH4)2SO4 60g、葡萄糖240g）倒入发酵罐中,进行分批灭菌(开启401,关闭404与302开启搅拌,开启202关小403使温度上去至118℃10分钟灭菌之后，开启401关小402开启203与A9将接种盖开松。关闭405与203，打开402降压，关闭401打开102、101之后调节402),然后将菌种使用火焰保护法迅速接种到发酵罐中。

3)发酵过程中，每隔30分钟观察记录pH和DO值的变化，每隔1小时取样进行活体计数。

4)根据pH、DO、菌数的变化绘制标准曲线。

5)发酵培养结束后，进行倒罐，对发酵罐进行清洗。

2 结果与分析

2.1 酵母菌选育

经活体计数的菌体密度为3.55x109，选取10-7、10-8浓度梯度进行涂布，紫外线照射时长为50s、70s、90s。诱变处理后培养得：在未经照射的空白对照平板上长出的菌落极少，紫外线诱变处理后的平板上没有长出菌落。

由于在计数时稀释浓度记错，菌体实际浓度应为3.55x108，因按菌体密度为3.55x109，选取10-7、10-8浓度梯度进行涂布，故实际涂平板的菌体较少。又因为固体培养基制备的量不足，选取的浓度梯度由最优的三个变为两个，再经紫外线照射时选取的时间较长，不利于原本较少的菌体诱变生长，故诱变的平板上没有长出菌落。

表3 涂布诱变和诱变涂布的死亡率比较

死亡率\诱变时长60s 75s

涂布诱变70% 90.7%

在进行酵母菌选育时，我们选用了涂布诱变的方法，这种方法均匀度好，但由于平板涂布的菌体较菌悬液来说较少，所以诱变的突变率较低。而采用诱变涂布的方法，菌悬液的浓度高，突变率大，但诱变后涂板培养的工作量较涂布诱变来说大很多。由表3的数据可观察得出：先诱变再涂布的方法菌种的死亡率远低于先涂布再诱变的死亡率（此为一次实验结果可能会产生微小误差）。故实验室中一般采用诱变涂布的方法来增加菌种的突变率，获得所需的突变菌株。

2.2最适培养基筛选