植物组织培养实验
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植物组织培养
实验室基本设备:超净工作台;培养室、;洗涤、消毒室,卧式高压消毒锅;温室(培养大棚);
常用仪器:1.蒸馏水器(学习操作),2.手提式高压消毒锅、卧式高压消毒锅(学习使用、操作),3.天平:⑴药物天平(工业天平)、粗天平、(精密度1/10)⑵分析天平(精密度1/10000),4.超净工作台(学习、使用、操作),5.电热干燥箱(烘箱),6.恒温光照培养箱(学习、操作),7.电冰箱,8.显微镜和解剖镜:①手提式解剖镜(学习、使用、操作)②立体解剖镜③普通显微镜,9.旋转培养机,10. 离心机(学习、使用、操作),11. 酸度测定仪:⑴精密PH4-7 试纸;⑵笔型袖珍酸度计。
必要的器皿:(一)玻璃器皿:1.培养器皿:①试管②三角烧瓶(锥形瓶)③圆形高形培养瓶(罐头瓶)④培养皿⑤扁身培养瓶⑥L 型和T 型管⑦凹面载玻片,2.盛装器皿:①试剂瓶②烧杯,3.计量器皿①量筒②容量瓶③吸管,4.其它器皿滴瓶、称量瓶、漏斗、玻璃管、注射器等实验室常用器皿。(二)金属器械:1.镊子类:①20-25cm 长型镊子(接种或转移愈伤组织)②尖端弯曲“枪型”镊子(镊取较小的植物组织)③尖头钟表镊子和鸭嘴镊子(剥离表皮用)④尖端为小铲状镊子(挖取带琼脂培养基的培养物),2.解剖刀和刀类:①眼科用刀种牛痘疫苗的菱形刀(切割柔软组织中小细胞团)②解剖刀(手术刀)③双面刀片焊接在玻棒上(切取茎尖用)④锋利小刀、大刀和小铁锹,3.剪刀类:①解剖剪②眉剪③眼科剪④18-25cm 弯头剪
⑤俢枝剪,4.接种针。
几种常用药剂的配制:(一)用95%尝试酒精配比不同浓度的酒精的配制。学习配制70%和75%酒精。(二)消毒剂:1. 20%次氯酸钠溶液:称取20g 次氯酸钠用少许水溶解,100ml 水定容。2. 0.1%升汞(HgCl2)溶液:称取0.1g HgCl2少许水溶解,100ml水定容。(三)洗涤剂:1. 2HCl酒精:95%酒精100ml 加入2mlHCl,2.硫酸-重铬酸钾洗液:取10g 重铬酸钾加入蒸馏水90ml,加热溶解冷却后,逐渐加入浓硫酸175ml,放入棕色玻璃瓶备用,(注意:切记不可将盛过洒精,甲醛等原剂的药品玻璃器皿直接泡入洗液在,因为重铬酸钾是一种强的氧化剂,一旦被还原氧化,洗液变绿,失去洗涤作用)。这些器皿必须用自来水冲洗干净并晾干再浸入洗液。(四)1 摩尔浓度(mg/L)NaOH和1 摩尔浓度(mg/L)HCl 配制。
摩尔浓度是指用 1 升(1000ml)溶液中所含溶质的分子量数来表示的溶液的浓度。用M 表示。
1.NaOH 摩尔浓度(M)
NaOH 摩尔质量=分子克数=40g
1M NaOH 是指1000ml 溶液中含有40 克摩尔质量的NaOH,现要配制100ml
(0×0.1=4g)称取NaOH4g,用少量水解,定容至100ml.
2.HCl 的摩尔浓度
具体配制酸的mol 浓度时,应考虑原浓酸的比重mol 浓度。
要求配制的m ol 浓度×需配制的体积×原酸分子量
V=————————————————————
原酸的百分浓度×原酸的比重×1000
配制 1.0M HCl100ml,量取38%,比重为 1.19 的HCl8.06ml 加蒸馏水,定容至100ml。
MS 培养基母液配制(单位:毫克mg):
注意:1.大量元素按照使用时浓缩10 倍的数值称取,分别将各种化合物称量后,除CaCl2•2H2O 单独配制外,其余化合物混合在500ml烧杯中加适量蒸馏水溶解,用玻璃棒搅拌促溶,倒入1000ml 容量瓶中用蒸馏水定容至刻度,置小口瓶中保存,贴上标签注明化合物名称(或编号),浓缩倍数,配制日期和配制者姓名,CaCl2•2H2O配制同上置于另一小口瓶中。
2.微量元素母液的配制按要求浓缩100 倍的数值称取,分别将各种化合物称量除铁盐(FeSO4•7H2O和Na2-EDTA.2H2O)作为一组单独配制外,其余化合物可混合置于烧杯内加少量蒸馏水溶解后,定容在1000ml容量瓶中,置小口瓶中保存,贴上标签。
3.铁盐配制将FeSO4•7H2O和Na2-EDTA.2H2O分别溶于450ml蒸馏水中,加热,不断搅拌,溶解后,两液混合,调pH至 5.5 加水定容至1000ml,置于小口瓶中,贴上标签。
4.有机物母液配制,按母液要求浓缩100 倍,除蔗糖按3%单独临时称量外,其余分别称量后,溶解,定容在500ml 容量瓶中,置于小口瓶中保存,贴上标签。
5.母液最好在2~4℃的冰箱中贮存,特别是有机类物质,贮存时间不宜过长,无机盐母液最好在一个月内用完,如发现有霉菌和沉淀产生,就不能再使用。
6.制备母液和营养培养基时,所用蒸馏水或无离子水必须符合标准要求,化学药品必须是高纯度的(分析纯)。7.称量药物采用高灵敏度的天平,每种药品专用一药匙。五. 作业
(1)将本次实验内容整理成实验报告。
(2)能不能把所有的母液置于一个瓶里,当作一种母液用于配制?为什么?
(3)在配制大量元素母液时,CaCl2为什么要单独配制?
(4)已知大量元素的母液浓度是原配方浓度的10 倍,在配制1000mlMS 培养基时应取多少毫升母液?
(5)MS 培养基中需加入0.5mg/L 的6-BA,当母液浓度为0.1mg/ml 时,配制1000ml 培养基需要取多少ml6-BA 母液?
配制培养基: 1. 琼脂称取8g 琼脂,加入300ml 蒸馏水,加热溶解直至完全溶解为止。
2.蔗糖3%:称取30g 蔗糖,溶于溶有琼脂的300ml 蒸馏水中。
3. 各种母液的吸取:
(1)用50ml量筒量取大量元素母液(A)和CaCl2•2H2O母液(B)各100ml
(2)分别用10ml 移液管或吸管吸取微量元素(C),铁盐(D)母液各10ml
(3)用10ml 移液管或吸管吸取有机物(H)10ml
(4)用2ml 移液管吸取生长素NAA1.5ml;用0.5ml 移液管吸取KT0.5ml
将上述溶液全部混合于琼脂与蔗糖溶液中,混合均匀后,加热至80℃左右,用酸度计或精密pH 试纸测定培养基的pH 一般要求 5.8~6.0,过酸过碱则用1N NaoH 和1N HCl 调整。分装:用一个接有胶管的分装器趁热装培养基,1000ml 培养基分装70 支试管,即每支试管15ml 左右(一般占试管、三角瓶容量1/4~1/3 左右)注:培养基勿碰试管壁。包装:分装好的试管用棉塞塞上,包上包装纸,每5~7 支试管捆成一扎,标明培养基代号即可进行灭菌。
①MS+2mg/L 2,4-D +0.8%琼脂(PH5.8);
②MS+0.5mg/L 2,4-D +0.5mg/L6-BA+0.8%琼脂(PH5.8);
③MS+0.5mg/L 2,4-D +1.0mg/L6-BA+0.8%琼脂(PH5.8);
④MS+2 mg/L 2,4-D+0.5mg/L6-BA +0.8%琼脂(PH5.8);
⑤MS+2mg/L 2,4-D +1.0mg/L6-BA+0.8%琼脂(PH5.8)
幼叶培养:
方法步骤
1. 接种前半小时,可用75%酒精或新洁尔灭喷洒,地板用湿拖把拖刷。超净工作台在接种前用95%酒精揩抹工作台面和有关用具,并先开机鼓风15 分钟后才能使用。
2. 外植体的选择、分离:1.选择无病害的植物叶片(可选择不同种植物叶片)2.用单面刀片或剪刀,解剖刀把叶片从植株上剥离下来,剪成小段置于烧杯中。
3. 外植体的灭菌:超净工作台上将70%酒精倒入装有叶片的烧杯内消毒30s,然后将10%次氯酸钠溶液倒入烧杯内灭菌10 分钟,用无菌水将叶片冲洗三至四次。
4. 外植体的接种与培养:用经过灭菌的剪刀将叶片剪成0.5-1cm2大小的小块置于经过灭菌的培养皿中,打开培养瓶盖子(或试管塞子)用经过灭菌的镊子将外植体置于培养容器内,让外植体与培养基紧密接触,然后盖上盖子并拧紧(或塞上塞子)写上接种日期和外植体名称即转入培养室内培养,室内温度25~30℃,光强为1000~2000LUX,每天光照约14 小时。约一周后观察愈伤诱导情况。
种子培养:
材料、仪器与试剂:1、光照培养箱、超净工作台、2. 三角瓶、培养瓶、镊子、封口塑料、皮筋等3. 1/2MS 或MS 固体培养基、70%酒精、15%的84 消毒液、0.1%的Tween、无菌水等。
方法步骤:1. 选取饱满完好的植物种子;以下步骤均在超净工作台上进行。
2. 将选好的植物种子放入100mL 的三角瓶中,加入70%的酒精浸泡不超过1min ;
3. 沥去酒精后,加入15%的84 消毒液+0.1%Tween 消毒10 分钟(因品种而异,一般在8-15min);
4. 沥去消毒液后,用无菌水冲洗3~4 次。
5. 沥干水份,将种子均匀植入1/2MS 固体培养基中,24℃,光强1500lx,光照16h/d。
茎段培养:
材料、仪器与试剂
1. 材料:菊花嫩枝或月季嫩枝
2. 仪器:超净工作台、灭菌锅、显微镜、剪刀、长镊子、烧杯(500ml)、培养皿、移液管等
3. 试剂:配制好的MS 培养基各种母液、1mol/L 的NaOH、1mol/LHCL 、0.1%的升汞。
①MS+0.2mg/LNAA + 0.8%琼脂(PH5.8);
②MS+0.2mg/LNAA +0.25 mg/L6-BA+ 0.8%琼脂(PH5.8);
③MS+0.2mg/LNAA +0.5 mg/L6-BA+ 0.8%琼脂(PH5.8);
④MS+0.2mg/LNAA +1 mg/L6-BA+ 0.8%琼脂(PH5.8);
⑤MS+0.2mg/LNAA +1.5 mg/L6-BA+ 0.8%琼脂(PH5.8)
方法步骤
1. 材料的选择;选用的枝条要求表面光滑、无病虫害。
2. 培养步骤:
(1)材料的灭菌:选取长约10 厘米的菊花嫩枝或月季嫩枝于0.1%的升汞溶液中表面消毒15 分