分析化学下仪器分析毛细管电泳和毛细管电色谱
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1.中性盐 2. 表面活性剂 3. 手性添加剂
对于许多水难溶的样品,如
果在缓冲液中加入少量的有机溶 剂,常常能有效改善分离度。在 极端情况下,可完全使用有机溶 剂,或以有机溶剂为主体,这就 是非水毛细管电泳技术。
图21-6 电渗流反向示意图
21.3.1. 毛细管区带电泳(CZE)
21.3.1.2. 应用 毛细管区带电泳特别适合分离带电化合物,包括无机阴离子、 无机阳离子、有机酸、胺类化合物、氨基酸、蛋白质等,不能 分离中性化合物。
1. 将两种淌度差别很大的缓冲液分别作为前导离子(充满 毛细管)和尾随离子,试样离子的淌度全部位于两者之间, 并以同一速度移动。
2. 负离子分析时,前导电解质的淌度大于试样中所有负 离子的。所有试样都按前导离子的速度等速向阳极前进,逐 渐形成各自独立的区带而分离。阴极进样,阳极检测。
3. 不同离子的淌度不同,所形成区带的电场强度不同
21.1.6. 柱效和分离度
类似于HPLC,CEC的柱效可用vanDeemter方程表征:
作为一种重要的分离分析手段,CE和CEC仍沿用分离度R 作为衡量分离程度的指标,并定义如下:
R 2(tR2 tR1 ) (W2 W1 )
21.2. 毛细管电泳和电色谱仪器装置
21.2.1.仪器基本结构
检测窗口部位的外涂层剥离。
焦耳热效应产生径向温度梯度,还会导致分离重现性差。 商品仪器大多有温度控制系统,主要采用风冷和液冷两 种方式。
一般采用物理吸附或化学键合两种方式形成毛细管内壁 涂层,对石英毛细管进行改性或修饰,可有效控制电渗 流、抑制吸附进而优化分离。
21.2.5. 检测系统
21.2.5. 检测系统
e p
eo
u/E
Ld Lt tr U
在典型的毛细管电泳分离中,溶质的分离基于溶质间电泳
速率的差异。电渗流的速率绝对值一般大于粒子的电泳速率, 并有效地成为毛细管电泳的驱动力。溶质从毛细管的正极端
进样,带正电的粒子最先流出,中性粒子次之,带负电的粒 子在中性粒子之后流出。溶质依次通过检测器,得到与色谱 图极为相似的电泳分离图谱。
21.1.5. 分离原理
电泳和电渗流并存,在不考虑相互作用的前提下,粒子在 毛细管内电介质中的迁移速率是两种速率的矢量和:
u uep ueo (e p eo)E
令µapp=µep + µeo,称之为表观淌度,即从毛细管电泳测量 中得到的淌度为粒子自身的电泳淌度和由电渗引起的淌度之
和,并有
app
21.3. 毛细管电泳分离模式及应用
21.3.1. 毛细管区带电泳(capillary zone electrophoresis; CZE) 21.3.1.1. 基本操作条件
毛细管区带电泳也称为毛细管自由溶液区带电泳,是毛细 管电泳最基本、也是应用最广的一种操作模式。其分离原理是 基于样品组分荷质比的差异。
毛细管电色谱(CEC)是毛细管电泳与高效液相色谱的 有机结合,其基本理论、仪器装置与毛细管电泳大致类似。
最大的不同是毛细管柱引入了色谱固定相,使CEC同时 具有CE与HPLC的分离机理,对中性物质和荷电物质都能达到 理想的分离效果。
因此毛细管柱是CEC的心脏,制柱技术是CEC的关键。按 照固定相不同形式,CEC可分为填充柱、开管柱和整体柱 (连续床)。
在充满自由溶液开口管中球形粒子的电泳速率公式为:
vep
e 6
E
电泳淌度(μep)定义为单位场强下离子的平均电泳速率, 即
ep
vep E
21.1.3. 电渗流
电渗是毛细管中整体溶剂或介质在轴向直流电场作用下发 生的定向迁移或流动。
电渗的产生和双电层有关,当在毛细管两端施加高压电场
时,双电层中溶剂化的阳离子向阴极运动,通过碰撞作用带 动溶剂分子一起向阴极移动,形成电渗流(EOF)。
3. 氨基酸、蛋白质、多肽等的所带电荷与溶液pH有关,在 酸性溶液中带正电荷,反之带负电荷。在其等电点时,呈电中 性,淌度为零;
4. 聚焦:具有不同等电点的生物试样在电场力的作用下迁移, 分别到达满足其等电点pH的位置时,呈电中性,停止移动,形 成窄溶质带而相互分离。
21.3.5. 毛细管等速电泳(CITP)
可用来分离中性物质
色谱与电泳分离模式的 结合。
21.3.3. 毛细管凝胶电泳(CGE)
毛细管凝胶电泳(capillary gel electrophoresis;CGE)是在毛细 管中充填多孔凝胶作为支持介质进行电泳,其分离是基于筛分 机理。
CGE常用于蛋白质,寡聚核苷酸、RNA及DNA片段的分离 和测定。
毛细管区带电泳3分钟内分离30种阴离子电泳图
21.3.2. 胶束电动毛细管色谱(MEKC)
MEKC是在电泳缓冲溶液中加入表面活性剂,当溶液中表 面活性剂浓度超过临界胶束浓度时,表面活性剂分子之间的疏 水基团聚集在一起形成胶束,成为分离体系的准固定相,溶质 基于在水相和胶束相之间的分配系数不同而得到分离。
电渗是CE的基本现象之一,它可以控制组分的迁移速率和 方向,进而影响CE的分离效率和重现性,所以电渗流控制 是CE中的关键问题或技术之一。
21.1.4. 电渗流的控制
影响电渗流的因素很多,直接影响因素有: 1. 电场强度 2. 温度 3. pH值 4. 缓冲液溶剂 5. 离子强度 6. 添加剂 7. 管壁涂层
21.1.5. 分离原理
毛细管电色谱由于引入了色谱机制,其保留机理包括两个 方面:
其一,如同HPLC,基于溶质在固定相和流动间分配过程; 其二,如同CE,基于溶质电迁移过程。CEC容量因子可 用下式表示:
k k 'k ' (ep / eo ) ep / eo
由于CEC既能分离电中性溶质,又能分离带电溶质,对 复杂的混合样品显示出强大的分离潜力。
21.3.4. 毛细管等电聚焦(CIFF)
1. 根据等电点差别分离生物大分子的高分辨率电泳技术;
2. 毛细管内充有两性电解质(合成的具有不同等电点范围 的脂肪族多胺基多羧酸混合物),当施加直流电压(6~8V)时, 管内将建立一个由阳极到阴极逐步升高的pH梯度;
3. 氨基酸、蛋白质、多肽等的所带电荷与溶液pH有关,在 酸性溶液中带正电荷,反之带负电荷。在其等电点时,呈电中 性,淌度为零;
毛细管电色谱(capillary electrochromatography; CEC)是毛细管电泳与液相色谱相结合形成的一种高效、 快速微分离分析技术。
21.1. 毛细管电泳和毛细管电色谱的基本理论
21.1.1. 双电层和Zeta电势
21.1.2. 电泳
在电解质溶液中,带电粒子在电场作用下,以不同的速度 或速率向其所带电荷相反电场方向迁移的现象叫作电泳。阴 离子向正极方向迁移,阳离子向负极方向迁移,中性化合物 不带电荷,不发生电泳运动。
1 高压电源;2 毛细管;3 检测器;4 电极;5 缓冲液瓶;6 恒温系统;7 记录仪
21.2.2. 进样系统
毛细管分离通道十分细小,整个柱体积一般只有4~5μL, 所需的样品区带只有几纳升。
毛细管电泳的进样方式一般是将毛细管的一端从缓冲液移 出,放入试样瓶中,使毛细管直接与样品接触,然后由重力、 电场力或其他动力来驱动样品流入管中。进样量可以通过控 制驱动力的大小或时间长短来控制。CE进样技术均适用于 CEC。
4. 聚焦:具有不同等电点的生物试样在电场力的作用下迁移, 分别到达满足其等电点pH的位置时,呈电中性,停止移动,形 成窄溶质带而相互分离。
21.3.4. 毛细管等电聚焦(CIFF)
1. 根据等电点差别分离生物大分子的高分辨率电泳技术;
2. 毛细管内充有两性电解质(合成的具有不同等电点范围 的脂肪族多胺基多羧酸混合物),当施加直流电压(6~8V)时, 管内将建立一个由阳极到阴极逐步升高的pH梯度;
第21章 毛细管电泳和毛细管电色谱
capillary electrophoresis
毛细管电泳(capillary electrophoresis;CE)是一类以 高压直流电场为驱动力,毛细管为分离通道,依据样品中 各组分之间淌度和分配行为的差异而实现分离的新型液相 分离分析技术。
毛细管电泳是分析科学中继高效液相色谱之后的又一 重大进展,它使分析科学从微升水平得以进入纳升水平, 并使单细胞分析成为可能。
目前有三种方法可以让样品直接进入毛细管:
电动法、压力法和浓差扩散法。
21.2.3. 电源及其回路
电流回路系统包括高压电源、电极、电极槽、导线和电 解质缓冲溶液等。CE和CEC一般采用0 ~ ±30 kV连续可 调的直流高压电源。理想的电源应具备: 1.能输出单极直流高压(一端接地); 2.电压、电流、功率输出模式任意可选; 3.能控制电压、电流或电功率的梯度; 4.电压输出精度应高于1%。 CE的电极通常由直径0.5~l mm的铂丝制成。 电极槽,即缓冲液瓶,通常是带螺口的小玻璃瓶或塑料 瓶(1~5mL不等),要便于密封。缓冲液内含电解质,充于 电极槽和毛细管中,通过电极、导线与电源连通,一同 构成整个电流回路。
(ν=μE),淌度大的离子区带电场强度小;
沿出口到进口,将不同区带依次排序1、2、3、4 电场强度依次增大。假设“2”号中离子扩散到“3”号,该 区电场强度大,离子被加速,返回到“2”区;当“2”号中 离子跑到“1”号区,离子被减速使之归队;
4. 特点:界面明显,富集、浓缩作用;
21.4. 毛细管电色谱柱技术
21.3.2. 胶束电动毛细管色谱(MEKC)
MEKC是在电泳缓冲溶液中加入表面活性剂,当溶液中表 面活性剂浓度超过临界胶束浓度时,表面活性剂分子之间的疏 水基团聚集在一起形成胶束,成为分离体系的准固定相,溶质 基于在水相和胶束相之间的分配系数不同而得到分离。
电泳流和电渗流的方向 相反,且ν电渗流 > ν电泳 , 负电胶束以较慢的速度向负 极移动;
21.1.6. 柱效和分离度
与色谱相同,CE和CEC的柱效一般也用塔板数N或塔板高
度H来表示。实际应用中,可根据以下公式计算:
2
N
5.54
tR 2t1/ 2
Fra Baidu bibliotek
从理论上分析,CE分离的柱效可表示为
D为扩散系数,样品相对分子质量越大,扩散系数越小, 柱效越高,所以毛细管电泳比色谱更适合于生物大分子分离 分析。
21.2.4. 毛细管及其温度控制
熔融石英毛细管在CE中应用最广泛,熔融石英拉制得 到的毛细管很脆,易折断,一般在外表面涂有聚酰亚胺 保护层,使之变得富有弹性,不易折断。
内径越小,表面积/体积比越大,散热效果越好。内径 小,样品负载小,检测、进样、清洗等操作困难。
一般使用的毛细管柱内径在25 ~100 μm之间,目前最常 用的是50μm和75μm两种。
度量电渗流大小是单位电场下的电渗流速率即电渗淌度
(eo)或电渗速率(ueo),可用Smoluchowski 方程表示:
eo
o
w
ueo
eo
E
o
wE
u eo
Ld t0
eo
ueo E
Ld t0
1 E
Ld to
Lt U
21.1.3. 电渗流
以电场力驱动产生的溶液EOF,与高效液相色谱中由高压 泵产生的液体流型不同:
21.4.1. 填充柱
填充柱在CEC中应用最广泛,其最大优点是可以利用众 多的HPLC固定相,根据化合物与固定相作用不同实现高效分 离。
凝胶是毛细管电泳的理想介质,粘度大,抗对流,能减少 溶质的扩散,因此能限制谱带的展宽,所得的峰型尖锐,柱效 高,有可能使组分在短柱上实现极好的分离。
常用的凝胶有聚丙烯酰胺和琼脂糖,应用最多的是前者。
21.3.4. 毛细管等电聚焦(CIFF)
1. 根据等电点差别分离生物大分子的高分辨率电泳技术; 2. 毛细管内充有两性电解质(合成的具有不同等电点范围 的脂肪族多胺基多羧酸混合物),当施加直流电压(6~8V) 时,管内将建立一个由阳极到阴极逐步升高的pH梯度; 3. 氨基酸、蛋白质、多肽等的所带电荷与溶液pH有关,在 酸性溶液中带正电荷,反之带负电荷。在其等电点时,呈电中 性,淌度为零;
需要控制的操作变量主要是电压、缓冲液浓度、pH值和添 加剂等。
缓冲液的选择通常须遵循下述要求:
1.在所选择的pH范围内有合适的缓冲容量。 2.本底检测响应低。 3.自身的淌度低,即离子大而荷电小。
21.3.1. 毛细管区带电泳(CZE)
在CZE分离中,除了背景电解质外,常常还在缓冲溶液中 加入某些添加剂:
对于许多水难溶的样品,如
果在缓冲液中加入少量的有机溶 剂,常常能有效改善分离度。在 极端情况下,可完全使用有机溶 剂,或以有机溶剂为主体,这就 是非水毛细管电泳技术。
图21-6 电渗流反向示意图
21.3.1. 毛细管区带电泳(CZE)
21.3.1.2. 应用 毛细管区带电泳特别适合分离带电化合物,包括无机阴离子、 无机阳离子、有机酸、胺类化合物、氨基酸、蛋白质等,不能 分离中性化合物。
1. 将两种淌度差别很大的缓冲液分别作为前导离子(充满 毛细管)和尾随离子,试样离子的淌度全部位于两者之间, 并以同一速度移动。
2. 负离子分析时,前导电解质的淌度大于试样中所有负 离子的。所有试样都按前导离子的速度等速向阳极前进,逐 渐形成各自独立的区带而分离。阴极进样,阳极检测。
3. 不同离子的淌度不同,所形成区带的电场强度不同
21.1.6. 柱效和分离度
类似于HPLC,CEC的柱效可用vanDeemter方程表征:
作为一种重要的分离分析手段,CE和CEC仍沿用分离度R 作为衡量分离程度的指标,并定义如下:
R 2(tR2 tR1 ) (W2 W1 )
21.2. 毛细管电泳和电色谱仪器装置
21.2.1.仪器基本结构
检测窗口部位的外涂层剥离。
焦耳热效应产生径向温度梯度,还会导致分离重现性差。 商品仪器大多有温度控制系统,主要采用风冷和液冷两 种方式。
一般采用物理吸附或化学键合两种方式形成毛细管内壁 涂层,对石英毛细管进行改性或修饰,可有效控制电渗 流、抑制吸附进而优化分离。
21.2.5. 检测系统
21.2.5. 检测系统
e p
eo
u/E
Ld Lt tr U
在典型的毛细管电泳分离中,溶质的分离基于溶质间电泳
速率的差异。电渗流的速率绝对值一般大于粒子的电泳速率, 并有效地成为毛细管电泳的驱动力。溶质从毛细管的正极端
进样,带正电的粒子最先流出,中性粒子次之,带负电的粒 子在中性粒子之后流出。溶质依次通过检测器,得到与色谱 图极为相似的电泳分离图谱。
21.1.5. 分离原理
电泳和电渗流并存,在不考虑相互作用的前提下,粒子在 毛细管内电介质中的迁移速率是两种速率的矢量和:
u uep ueo (e p eo)E
令µapp=µep + µeo,称之为表观淌度,即从毛细管电泳测量 中得到的淌度为粒子自身的电泳淌度和由电渗引起的淌度之
和,并有
app
21.3. 毛细管电泳分离模式及应用
21.3.1. 毛细管区带电泳(capillary zone electrophoresis; CZE) 21.3.1.1. 基本操作条件
毛细管区带电泳也称为毛细管自由溶液区带电泳,是毛细 管电泳最基本、也是应用最广的一种操作模式。其分离原理是 基于样品组分荷质比的差异。
毛细管电色谱(CEC)是毛细管电泳与高效液相色谱的 有机结合,其基本理论、仪器装置与毛细管电泳大致类似。
最大的不同是毛细管柱引入了色谱固定相,使CEC同时 具有CE与HPLC的分离机理,对中性物质和荷电物质都能达到 理想的分离效果。
因此毛细管柱是CEC的心脏,制柱技术是CEC的关键。按 照固定相不同形式,CEC可分为填充柱、开管柱和整体柱 (连续床)。
在充满自由溶液开口管中球形粒子的电泳速率公式为:
vep
e 6
E
电泳淌度(μep)定义为单位场强下离子的平均电泳速率, 即
ep
vep E
21.1.3. 电渗流
电渗是毛细管中整体溶剂或介质在轴向直流电场作用下发 生的定向迁移或流动。
电渗的产生和双电层有关,当在毛细管两端施加高压电场
时,双电层中溶剂化的阳离子向阴极运动,通过碰撞作用带 动溶剂分子一起向阴极移动,形成电渗流(EOF)。
3. 氨基酸、蛋白质、多肽等的所带电荷与溶液pH有关,在 酸性溶液中带正电荷,反之带负电荷。在其等电点时,呈电中 性,淌度为零;
4. 聚焦:具有不同等电点的生物试样在电场力的作用下迁移, 分别到达满足其等电点pH的位置时,呈电中性,停止移动,形 成窄溶质带而相互分离。
21.3.5. 毛细管等速电泳(CITP)
可用来分离中性物质
色谱与电泳分离模式的 结合。
21.3.3. 毛细管凝胶电泳(CGE)
毛细管凝胶电泳(capillary gel electrophoresis;CGE)是在毛细 管中充填多孔凝胶作为支持介质进行电泳,其分离是基于筛分 机理。
CGE常用于蛋白质,寡聚核苷酸、RNA及DNA片段的分离 和测定。
毛细管区带电泳3分钟内分离30种阴离子电泳图
21.3.2. 胶束电动毛细管色谱(MEKC)
MEKC是在电泳缓冲溶液中加入表面活性剂,当溶液中表 面活性剂浓度超过临界胶束浓度时,表面活性剂分子之间的疏 水基团聚集在一起形成胶束,成为分离体系的准固定相,溶质 基于在水相和胶束相之间的分配系数不同而得到分离。
电渗是CE的基本现象之一,它可以控制组分的迁移速率和 方向,进而影响CE的分离效率和重现性,所以电渗流控制 是CE中的关键问题或技术之一。
21.1.4. 电渗流的控制
影响电渗流的因素很多,直接影响因素有: 1. 电场强度 2. 温度 3. pH值 4. 缓冲液溶剂 5. 离子强度 6. 添加剂 7. 管壁涂层
21.1.5. 分离原理
毛细管电色谱由于引入了色谱机制,其保留机理包括两个 方面:
其一,如同HPLC,基于溶质在固定相和流动间分配过程; 其二,如同CE,基于溶质电迁移过程。CEC容量因子可 用下式表示:
k k 'k ' (ep / eo ) ep / eo
由于CEC既能分离电中性溶质,又能分离带电溶质,对 复杂的混合样品显示出强大的分离潜力。
21.3.4. 毛细管等电聚焦(CIFF)
1. 根据等电点差别分离生物大分子的高分辨率电泳技术;
2. 毛细管内充有两性电解质(合成的具有不同等电点范围 的脂肪族多胺基多羧酸混合物),当施加直流电压(6~8V)时, 管内将建立一个由阳极到阴极逐步升高的pH梯度;
3. 氨基酸、蛋白质、多肽等的所带电荷与溶液pH有关,在 酸性溶液中带正电荷,反之带负电荷。在其等电点时,呈电中 性,淌度为零;
毛细管电色谱(capillary electrochromatography; CEC)是毛细管电泳与液相色谱相结合形成的一种高效、 快速微分离分析技术。
21.1. 毛细管电泳和毛细管电色谱的基本理论
21.1.1. 双电层和Zeta电势
21.1.2. 电泳
在电解质溶液中,带电粒子在电场作用下,以不同的速度 或速率向其所带电荷相反电场方向迁移的现象叫作电泳。阴 离子向正极方向迁移,阳离子向负极方向迁移,中性化合物 不带电荷,不发生电泳运动。
1 高压电源;2 毛细管;3 检测器;4 电极;5 缓冲液瓶;6 恒温系统;7 记录仪
21.2.2. 进样系统
毛细管分离通道十分细小,整个柱体积一般只有4~5μL, 所需的样品区带只有几纳升。
毛细管电泳的进样方式一般是将毛细管的一端从缓冲液移 出,放入试样瓶中,使毛细管直接与样品接触,然后由重力、 电场力或其他动力来驱动样品流入管中。进样量可以通过控 制驱动力的大小或时间长短来控制。CE进样技术均适用于 CEC。
4. 聚焦:具有不同等电点的生物试样在电场力的作用下迁移, 分别到达满足其等电点pH的位置时,呈电中性,停止移动,形 成窄溶质带而相互分离。
21.3.4. 毛细管等电聚焦(CIFF)
1. 根据等电点差别分离生物大分子的高分辨率电泳技术;
2. 毛细管内充有两性电解质(合成的具有不同等电点范围 的脂肪族多胺基多羧酸混合物),当施加直流电压(6~8V)时, 管内将建立一个由阳极到阴极逐步升高的pH梯度;
第21章 毛细管电泳和毛细管电色谱
capillary electrophoresis
毛细管电泳(capillary electrophoresis;CE)是一类以 高压直流电场为驱动力,毛细管为分离通道,依据样品中 各组分之间淌度和分配行为的差异而实现分离的新型液相 分离分析技术。
毛细管电泳是分析科学中继高效液相色谱之后的又一 重大进展,它使分析科学从微升水平得以进入纳升水平, 并使单细胞分析成为可能。
目前有三种方法可以让样品直接进入毛细管:
电动法、压力法和浓差扩散法。
21.2.3. 电源及其回路
电流回路系统包括高压电源、电极、电极槽、导线和电 解质缓冲溶液等。CE和CEC一般采用0 ~ ±30 kV连续可 调的直流高压电源。理想的电源应具备: 1.能输出单极直流高压(一端接地); 2.电压、电流、功率输出模式任意可选; 3.能控制电压、电流或电功率的梯度; 4.电压输出精度应高于1%。 CE的电极通常由直径0.5~l mm的铂丝制成。 电极槽,即缓冲液瓶,通常是带螺口的小玻璃瓶或塑料 瓶(1~5mL不等),要便于密封。缓冲液内含电解质,充于 电极槽和毛细管中,通过电极、导线与电源连通,一同 构成整个电流回路。
(ν=μE),淌度大的离子区带电场强度小;
沿出口到进口,将不同区带依次排序1、2、3、4 电场强度依次增大。假设“2”号中离子扩散到“3”号,该 区电场强度大,离子被加速,返回到“2”区;当“2”号中 离子跑到“1”号区,离子被减速使之归队;
4. 特点:界面明显,富集、浓缩作用;
21.4. 毛细管电色谱柱技术
21.3.2. 胶束电动毛细管色谱(MEKC)
MEKC是在电泳缓冲溶液中加入表面活性剂,当溶液中表 面活性剂浓度超过临界胶束浓度时,表面活性剂分子之间的疏 水基团聚集在一起形成胶束,成为分离体系的准固定相,溶质 基于在水相和胶束相之间的分配系数不同而得到分离。
电泳流和电渗流的方向 相反,且ν电渗流 > ν电泳 , 负电胶束以较慢的速度向负 极移动;
21.1.6. 柱效和分离度
与色谱相同,CE和CEC的柱效一般也用塔板数N或塔板高
度H来表示。实际应用中,可根据以下公式计算:
2
N
5.54
tR 2t1/ 2
Fra Baidu bibliotek
从理论上分析,CE分离的柱效可表示为
D为扩散系数,样品相对分子质量越大,扩散系数越小, 柱效越高,所以毛细管电泳比色谱更适合于生物大分子分离 分析。
21.2.4. 毛细管及其温度控制
熔融石英毛细管在CE中应用最广泛,熔融石英拉制得 到的毛细管很脆,易折断,一般在外表面涂有聚酰亚胺 保护层,使之变得富有弹性,不易折断。
内径越小,表面积/体积比越大,散热效果越好。内径 小,样品负载小,检测、进样、清洗等操作困难。
一般使用的毛细管柱内径在25 ~100 μm之间,目前最常 用的是50μm和75μm两种。
度量电渗流大小是单位电场下的电渗流速率即电渗淌度
(eo)或电渗速率(ueo),可用Smoluchowski 方程表示:
eo
o
w
ueo
eo
E
o
wE
u eo
Ld t0
eo
ueo E
Ld t0
1 E
Ld to
Lt U
21.1.3. 电渗流
以电场力驱动产生的溶液EOF,与高效液相色谱中由高压 泵产生的液体流型不同:
21.4.1. 填充柱
填充柱在CEC中应用最广泛,其最大优点是可以利用众 多的HPLC固定相,根据化合物与固定相作用不同实现高效分 离。
凝胶是毛细管电泳的理想介质,粘度大,抗对流,能减少 溶质的扩散,因此能限制谱带的展宽,所得的峰型尖锐,柱效 高,有可能使组分在短柱上实现极好的分离。
常用的凝胶有聚丙烯酰胺和琼脂糖,应用最多的是前者。
21.3.4. 毛细管等电聚焦(CIFF)
1. 根据等电点差别分离生物大分子的高分辨率电泳技术; 2. 毛细管内充有两性电解质(合成的具有不同等电点范围 的脂肪族多胺基多羧酸混合物),当施加直流电压(6~8V) 时,管内将建立一个由阳极到阴极逐步升高的pH梯度; 3. 氨基酸、蛋白质、多肽等的所带电荷与溶液pH有关,在 酸性溶液中带正电荷,反之带负电荷。在其等电点时,呈电中 性,淌度为零;
需要控制的操作变量主要是电压、缓冲液浓度、pH值和添 加剂等。
缓冲液的选择通常须遵循下述要求:
1.在所选择的pH范围内有合适的缓冲容量。 2.本底检测响应低。 3.自身的淌度低,即离子大而荷电小。
21.3.1. 毛细管区带电泳(CZE)
在CZE分离中,除了背景电解质外,常常还在缓冲溶液中 加入某些添加剂: