牛奶中酪蛋白含量的测定

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表 1 标准曲线的制作
试剂\编号 1 ( 空 2
3
4
5
6
7
白)
标 准 蛋 白 ——
液/mL
%NaCl/mL
考马斯亮
蓝染液/mL
蛋白质浓 0
10
20
30
40
60
80

/(μg/mL)
3、样液的测定
准确称取 25mg 自制酪蛋白,置于 50mL 烧杯中,加入约%NaCl,再准确加入
1mol/L NaOH 5mL,当酪蛋白溶解后,准确加入 1mol/L 乙酸 5mL,充分振摇直至
考马斯亮蓝能与蛋白质的疏水微区结合,这种结合具有高敏感性。考马斯亮
蓝 G520 的磷酸溶液呈棕红色,最大吸收峰在 465nm。当它与蛋白质结合形成复
合物时呈蓝色,其最大吸收峰变为 595nm。在一定范围内,考马斯亮蓝 G520-蛋 白质复合物呈色后,在 595nm 下,吸光度与蛋白质含量呈线性关系,故可以测定 蛋白质浓度。
液。在沉淀中加入约 20mL95%乙醇,搅拌片刻,将全部的悬浊液转移到布氏漏斗
中抽滤,用乙醇-乙醚混合溶液洗涤沉淀 2 次,最后用乙醚洗涤沉淀 2 次,抽干。 将沉淀摊开在培养皿中,风干,保存至下周。 2、标准曲线的制作
取 7 支干净干燥试管,按下表进行编号并加入试剂。 混匀,室温静置 3min,以第一管为空白,于波长 595nm 处比色,读取吸光 度,以吸光度为纵坐标,各标准液浓度为横坐标得标准曲线。
牛奶中的蛋白质主要是酪蛋白和乳清蛋白两种,其中酪蛋白占了牛乳蛋白质 的 80%。酪蛋白是白色、无味的物质,不溶于水、乙醇等有机溶剂,但溶于碱溶 液。而乳清蛋白水合能力强,分散性强,在牛乳中呈高分子状态。 2、等电点沉淀法:
在等电点时,蛋白质分子以两性离子形式存在,其分子净电荷为零(即正负 电荷相等),此时蛋白质分子颗粒在溶液中因没有相同电荷的相互排斥,分子相 互之间的作用力减弱,其颗粒极易碰撞、凝聚而产生沉淀,所以蛋白质在等电点 时,其溶解度最小,最易形成沉淀物。酪蛋白的等电点为左右(不同结构的酪蛋 白等电点有所不同),本实验中将牛乳的 pH 调值时,酪蛋白就沉淀出来。
三、实验操作记录
1、酪蛋白的制备
将 20mL 牛奶盛于 100mL 的烧杯中加热到 40℃,在搅拌下慢慢加入预热至 40℃、的醋酸缓冲溶液 20mL。用冰醋酸调节溶液 pH 至,此时即有大量的酪蛋白 沉淀析出。将上述悬浮液冷却至室温,离心 5min(4000r/min),弃去上清液,
沉淀即为酪蛋白粗品。 用蒸馏水洗涤沉淀 3 次(每次约 20mL),离心 5min(3000r/min),弃去上清
称取的酪蛋白样品质量为,稀释倍数为 500 倍。 =
=%
五、误差分析与讨论
1、本次制备实验中得到的蛋白质量较多,但纯度较低,分析原因如下: 1)得到的蛋白质略呈黄色,且有些发粘,说明可能脱脂不彻底,蛋白质产品中 含有脂质。 2)考马斯亮蓝 G520 染液中有沉淀,最后影响考马斯亮蓝-蛋白质复合物溶液的 吸光度。 3)配制标准溶液时操作上可能有误差,如往试管中加入溶液时挂在管壁,且最 终也没有与下方溶液混合均匀,导致标准溶液的浓度可能不准,致使标准曲线不 准,数据处理时也发现数据线性并不好,尤其是浓度较大时,虽然可能是超出考 马斯蓝线性范围,但不能排除操作失误的可能。 2、注意事项
市售牛奶通常会添加耐酸碱稳定剂来增加粘稠度,以致即使 pH 调至等电点 酪蛋白也沉淀的很少,故实验时可将 pH 稍微调过多一点再调回等电点。同时, 市售牛奶由于生产过程通常导致酪蛋白组分发生变化,因而使 pI 偏离了,通常 偏酸。 3、酪蛋白的提纯
根据乳糖、乳清蛋白等和酪蛋白的溶解性质差异,可以用纯水洗涤来除去乳 糖、乳清蛋白等溶于水的杂质,再用乙醇除去脂类,然后过渡到用乙醚洗涤,由 于乙醚很快挥发,最终得到纯粹的酪蛋白结晶。 4、蛋白质含量的测定(考马斯亮蓝结合法)
牛奶中酪蛋白的提取及含量测定
一、实验原理
1、牛乳的主要成分:碳水化合物(5%)、脂类(4%)、蛋白质(%)、维生素、微 量元素(Ca、P 等矿物质)、水(87%)
牛奶中的糖主要是乳糖。乳糖是一种二糖,它由 D-半乳糖分子和 D-葡萄糖 分子通过β-1,4-糖苷键连接而成。乳糖溶于水,不溶于乙醇,当乙醇混入乳糖 水溶液中时,乳糖会结晶出来,从而达到分离的目的。
二、实验器材与试剂
1、器材:恒温水浴锅、离心机、抽滤装置、蒸发皿、精密 pH 试纸、旋涡混合器、 紫外分光光度计、试管*9、5mL 吸管、50mL 容量瓶、100mL 量筒、电子分析天平 2、试剂:鲜牛奶、醋酸-醋酸钠缓冲溶液、乙醇-乙醚混合液(95%乙醇、无水乙
醚体积比 1:1)、%NaCl 溶液、标准蛋白液(mL 牛血清蛋白)、考马斯亮蓝 G520 染液
1)试管提前一周清洗干净并晾干,否则制作标准曲线时无法保证各管浓度。并 且不干净的试管在加溶液时容易挂管壁,不利于控制标准蛋白液浓度。 2)在配制不同浓度标准蛋白液时,各组分的体积要准确移取,特别是量较少的 标准蛋白液,只要稍微洒出一点就会导致较大的相对误差 3)蛋白质粗品的洗涤一定要按照规范做,每一次离心洗涤时要将搅匀,在布氏 漏斗上洗涤时要先微接抽气管,待洗出液缓慢流出后,再接紧橡皮管抽干。
酪蛋白完全溶解为止(不溶可在 50℃水浴加热至溶),全部转移至 50mL 容量瓶
中,加%NaCl 稀释定容至 50mL,充分摇匀。取 5mL 上述蛋白液,转移至另一个
50mL 容量瓶中,用%NaCl 稀释定容至 50mL。
另取一支干净试管,加入样品液及考马斯亮蓝染液,混匀,室温静置 3min,
于波长 595nm 处比色,读取吸光度,由样品液的吸光度查标准曲线即可求出含量。
四、wenku.baidu.com验结果
1、酪蛋白产量及产率计算
表 2 酪蛋白产量及产率计算
酪蛋白质量/g
牛奶样品质量/g 产率/g
%
2、标准曲线
由散点图可以看出,后两个点与前面几个点的线性关系并不好,出现了明显 的负偏差。故在线性拟合时舍去后两个点,取前 5 个点进行拟合。拟合出的直线 R² 达到,线性较好。 2、 样品液的吸光度是,对照标准曲线得酪蛋白浓度为 μg/mL。
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