间充质干细胞治疗慢性阻塞性肺疾病机制研究进展
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· 综述·
间充质干细胞治疗慢性阻塞性 肺疾病机制研究进展
山东医药 2015 年第 55 卷第 2 期
金志贤,周开华,毕虹,杜俊毅,陈敏,王清 (昆明市第一人民医院,昆明 650011)
摘要:目的 慢性阻塞性肺疾病(COPD)主要采用药物治疗,但暂无可治愈 COPD 的药物。 目前,关于间充质 干细胞( MSCs)治疗肺部疾病的研究较多。 本文总结了 COPD 发病机制的研究进展,在此基础上探讨 MSCs 治疗 COPD 的疗效及其可能的机制,主要包括抑制炎症反应、纠正蛋白酶 /抗蛋白酶失衡、抗细胞凋亡、抑制氧化应激及 转分化为肺泡上皮细胞等,为 MSCs 应用于临床提供理论依据。 关键词:慢性阻塞性肺疾病;肺气肿;间充质干细胞;炎症;蛋白酶 /抗蛋白酶失衡;细胞凋亡;氧化应激
doi:10.3969 /j.issn.1002-266X.2015.02.039 中图分类号:R563.3 文献标志码:A 文章编号:1002-266X(2015)02-0096-03
慢性阻塞性肺疾病( COPD) 是最常见的慢性呼 吸系统疾病,发病率及病死率均高[1] 。 其为一种以 气流受限为特征的疾病,这种气流受限与有害颗粒 或气体所致的气道及肺部慢性炎症有关,通常呈进 行性发展,COPD 病理改变包括小气道炎症及肺气 肿。 目前,COPD 的治疗主要是药物治疗,包括抗炎 药物( 激素) 、 茶碱 类及 支气 管 舒 张 剂, 这 些 药 物 可 减轻气道阻塞,限制 COPD 急性加重,但无法阻止疾 病进展。 研究表明,间充质干细胞(MSCs) 移植已经 用于肺纤维化[2] 、肺动脉高压[3] 及急性肺损伤[4] 的 治疗。 现 结 合 COPD 的 发 病 机 制, 对 MSCs 治 疗 COPD 机制的相关研究进展综述如下。 1 抑制炎症反应 COPD 是多种细胞( 巨噬细胞、嗜中性粒细胞、 淋巴细胞及上皮细胞) 及细胞因子参与的慢性炎症 性疾病[5] 。 巨噬细胞可因吸烟被直接激活,因此在 启动 COPD 慢性炎症的过程中起关键作用。 吸烟刺 激巨噬细胞释放氧化物、蛋白酶、急性时项细胞因子 (如 TNF-α、IL-1β、IL-6) 及催化因子[ 如 IL-8、单核 细胞催化肽(MCP)-1 及白三烯 B4 (LTB4)]。 活性 氧簇(ROS) 及蛋白酶可破坏肺泡壁,导致肺气肿。 巨噬细胞产生的细胞因子可促使气道及肺实质发生 炎症反应。 同时催化因子催化其他炎症细胞及免疫 细胞(如嗜中性粒细胞) 进入肺部。 活化的中性粒
基金项目:云南省应用基础研究资助项目(2012FB106) 。 通信作者:王清
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细胞通过释放氧化剂及蛋白酶导致肺泡壁破坏及黏 液分泌。 活化的 T 淋巴细胞( 主要为 CD8+T 淋巴细 胞)释放细胞毒性穿孔素、颗粒酶 B 及 TNF-α直接 导致肺泡上皮细胞凋亡。 吸烟也可活化肺泡上皮细 胞,使其分泌各种蛋白酶及炎性因子( 如 TNF-α、IL- 1β、IL-8 及 TGF-β), 促进炎症反应及肺气肿 的发 生。 MSCs 可通过下调炎性因子水平,抑制肺部炎症 反应。 一项研究表明,予内毒素所致的急性肺损伤 动物模型肺内输注 MSCs 可降低支气管肺泡灌洗液 (BALF)中 TNF-α及巨噬细胞炎性蛋白( MIP-1) 水 平[5] 。 在吸烟所致肺气肿大鼠模型中, MSCs 可下 调 IL-1β、IL-6、MCP-1 mRNA 表达,下调 IL-1β、IL-6 蛋白表达[6] 。 有学者进行了一项临床随机对照研 究,给中、重度 COPD 患者输注 MSCs,在第一次输注 MSCs 4 个月后,患者血清 C 反应蛋白水平明显下 降[7] ,认为 MSCs 对 COPD 的炎症反应具有抑制作 用。 MSCs 抑制炎症反应的机制尚不清楚,可能是通 过旁分泌机制分泌某些溶解性抗炎因子或激活细胞 内的抗炎通道发挥作用。 2 纠正蛋白酶 /抗蛋白酶失衡 正常情况下,内源性蛋白酶抑制剂控制着蛋白 酶的活性。 蛋白酶与抗蛋白酶之间动态平衡对于维 持正常的肺泡结构非常重要。 有研究表明,与非吸 烟者相比,吸烟者 α1 -抗胰蛋白酶(α1 -AT) 的活性下 降约 40%[8] 。 吸烟可刺激炎性细胞进入肺部、 活 化,活化的炎性细胞及肺上皮细胞释放大量蛋白酶, 如中性白细胞弹性蛋白酶( NE)、基质金属蛋白酶
此外,MSCs 还可能通过分化为肺泡上皮细胞起 到治疗肺气肿的效果。 对于 MSCs 能分化为哪型肺 泡上皮细胞,目前仍存在争议。 在脂多糖和吸烟诱 导的肺气肿大鼠模型中[26] 及博来霉素诱导的肺损 伤大鼠模型中[2, 27,28] ,MSCs 可分化为肺泡Ⅰ型上皮 细胞和(或)肺泡Ⅱ型上皮细胞。 有研究表明,MSCs 分化为肺泡Ⅱ型上皮细胞可能与 wnt 经典信号通路 的激活有关[29] ,确切机制尚需进一步研究。 参考文献:
山东医药 2015 年第 55 卷第 2 期
(MMP)等。 炎症和氧化应激可使蛋白酶活化,蛋白 酶又可促进炎性因子产生及激活,促进黏液高分泌, 使气道反复发生细菌感染。 故蛋白酶释放、激活与 炎抑制剂活性降低。 二者共同导致蛋白酶 / 抗蛋白酶失衡,从而加速细胞外基质降解,使肺结构 细胞凋亡,肺泡壁破坏,肺泡腔扩大,并能放大炎症 反应,最终导致肺实质持续性破坏。
有学者 给 吸 烟 诱 导 的 肺 气 肿 大 鼠 肺 内 输 注 MSCs,发现大鼠肺气肿减轻,肺功能得到改善,血清 MMP-9、MMP-12 水平明显降低[6] 。 MSCs 的肺保护 机制可能与纠正蛋白酶 /抗蛋白酶失衡有关,具体机 制尚不清楚,可能通过阻断蛋白酶释放、激活与炎症 反应之间形成正反馈回路而纠正蛋白酶 /抗蛋白酶 失衡[9] 。 3 抗细胞凋亡 细胞凋亡是一种严密控制的细胞程序性死亡, 有利于清除无用的、受损伤的及被感染的细胞,对于 维持正常组织稳态非常重要。 正常情况下,细胞凋 亡与细胞增殖处于动态平衡状态。 肺泡壁细胞凋亡 是肺气肿形成的重要机制[10] 。 COPD 患者肺泡上 皮细 胞 凋 亡 增 加, 细 胞 凋 亡 与 增 殖 处 于 失 衡 状 态[11] 。
粒细胞等) 可产生高水平内源性 ROS,进一步增加 氧负荷。 正常情况下,肺脏拥有广大的细胞内及细 胞外抗氧化防御系统,可快速灭活 ROS,保护肺部 细胞免受氧化损伤。 而吸烟使 ROS 产生过多,当抗 氧化剂产生不足或抗氧化功能遭到损害时,机体的 氧化 /抗氧化平衡将被打破,发生氧化应激[19 ~21] 。
664.
[3] Luan Y, Zhang X, Qi TG, et al.Long-term research of stem cells
in monocrotaline-induced pulmonary arterial hypertension[ J] .Clin
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山东医药 2015 年第 55 卷第 2 期
Exp Med, 2014,14(4) :439-446. [4] Gupta N, Su X, Popov B, et al.Intrapulmonary delivery of bone
marrow-derived mesenchymal stem cells improves survival and at - tenuates endotoxin-induced acute lung injury in mice [ J] .J Immu- nol, 2007,179(3) :1855-1863. [5] Hogg JC, Chu F, Utokaparch S, et al.The nature of small-airway obstruction in chronic obstructive pulmonary disease[ J] .N Engl J Med, 2004, 350(26) :2645-2653. [6] Guan XJ, Song L, Han FF, et al.Mesenchymal stem cells protect cigarette smoke-damaged lung and pulmonary function partly via VEGF-VEGF receptors[ J] .J Cell Biochem, 2013,114 ( 2 ) :323- 335 . [7] Weiss DJ, Casaburi R, Flannery R, et al.Aplacebo-controlled, randomized trial of mesenchymal stem cells in COPD [ J] .Chest, 2013,143(6) :1590-1598. [8] Gadek JE, Fells GA, Crystal RG.Cigarette smoking induces func- tional antiprotease deficiency in the lower respiratory tract of hu- mans[ J] .Science, 1979,206(4424) :1315-1316. [9] Churg A, Wang RD, Tai H, et al.Macrophage metalloelastase mediates acute cigarette smoke-induced inflammation via tumor necrosis factor-alpha release [ J ] .Am J Respir Crit Care Med, 2003,167(8) :1083-1089. [10] Demedts IK, Demoor T, Bracke KR, et al.Role of apoptosis in the pathogenesis of COPD and pulmonary emphysema [ J] .Respir Res, 2006,7(1) :53. [11] Hodge S, Hodge G, Holmes M, et al.Increased airway epithelial and T-cell apoptosis in COPD remains despite smoking cessation [ J] .Eur Respir J, 2005,5(3) :447-454. [12 ] Tuder RM, Yun JH.Vascular endothelial growth factor of the lung: friend or foe[ J] .Curr Opin Pharmacol, 2008,8 (3 ) :255- 260 . [13 ] Marwick JA, Stevenson CS, Giddings J, et al.Cigarette smoke disrupts VEGF165-VEGFR-2 receptor signaling complex in rat lungs and patients with COPD: morphological impact of VEGFR-2 inhibition [ J] .Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2006,290 (5) :L897-908. [14] Wong AP, Dutly AE, Sacher A, et al.Targeted cell replacement with bone marrow cells for airway epithelial regeneration [ J] .Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2007,293(3) :740-752. [ 15] Zhen G, Xue Z, Zhao J, et al.Mesenchymal stem cell transplanta- tion increases expression of vascular endothelial growth factor in pa- pain-induced emphysematous lungs and inhibits apoptosis of lung cells[ J] .Cytotherapy, 2010,12(5) :605-614. [16] Zhen G, Liu H, Gu N, et al.Mesenchymal stem cells transplanta- tion protects against rat pulmonary emphysema [ J] .Front Biosci, 2008 ,13 :3415 -3422 .
氧化应激在 COPD 的发病机制中起枢纽性作 用。 氧化应激可上调氧化还原敏感性转录因子( 如 NF-κB) 及活化蛋白-1( AP-1 ) 表达,激活其下游信号 传导通路,调控多种炎性因子基因表达;还可通过降 低中性粒细胞的可塑变形性,使中性粒细胞滞留于 肺部,放大慢性炎症反应。 同时,炎性细胞又可释放 大量 ROS,使氧化应激与炎症反应之间形成正反馈 回路。 氧化应激还可促进蛋白酶产生、激活,降低蛋 白酶抑制剂活性,从而导致蛋白酶 /抗蛋白酶失衡; 通过抑制 VEGF、激活 NF-κB 及直接损伤 DNA 等途 径诱发肺泡上皮细胞凋亡。 氧化应激与细胞凋亡之 间也存在正反馈回路,二者在肺泡结构破坏、肺气肿 形成过程中起协同作用。
MSCs 在调节氧化还原环境中的作用是目前研 究的热点。 有研究报道,对脂多糖诱导的肺损伤大 鼠行 MSCs 移植能提高大鼠存活率,同时降低氧化 应激水平[22] 。 MSCs 移植可降低过氧化物丙二醛 (MDA)水平,上调血红素氧化酶-1 水平,后者具有 很强的抗氧化应激及细胞保护作用[23] 。 在自发性 中风动物模型中,MSCs 移植也可降低脑组织氧化应 激水平[24] 。 还有学者[25] 发现,MSCs 移植有助于降 低肺气肿大鼠肺组织的氧化应激水平,具体机制尚 不明确。
研究表明,VEGF 可促进肺泡上皮细胞增殖、维 持正常的肺泡结构,予 VEGF 受体抑制剂则可加速 肺泡上皮细胞凋亡[12] 。 在肺气肿患者或吸烟者的 肺组织、 诱导痰及 BALF 中, VEGF 及 其 受 体 的 基 因、蛋 白 表 达 水 平 明 显 降 低[13] 。 多 项 研 究 发 现, MSCs 可促进 VEGF 分泌[6, 14] 及诱导 VEGF 受体-2 的表达[6] ,且在木瓜酶[15] 或吸烟[6] 诱导的肺气肿大 鼠模型中,MSCs 移植均可减少肺泡上皮细胞凋亡, 故推测 MSCs 可能通过逆转吸烟暴露对 VEGF 信号 通路的抑制作用,抑制肺泡上皮细胞凋亡,达到治疗 COPD 的目的。 MSCs 移植还可通过改变凋亡基因 及抗凋亡基因表达水平来抑制肺泡上皮细胞凋亡。 有学者[16] 发现,MSCs 移植可上调木瓜酶诱导的肺 气肿大鼠肺组织中抗凋亡基因 Bcl-2 的表达水平, 下调促凋亡基因 Bax 的表达水平。 另外,MSCs 移植 也可 通过降低 Caspase-3 的活性 从而抑制 细 胞 凋 亡[17] 。 4 抑制氧化应激 外源性途径( 吸烟及空气污染) 及内源性途径 (机体代谢反应) 产生的 ROS 参与 COPD 的发病过 程。 吸烟是 ROS 的主要外源性来源[18] ,因吸烟而 激活的炎性细胞( 巨噬细胞、嗜中性粒细胞、嗜酸性
[1] Vaz Fragoso CA, Gill TM.Defining chronic obstructive pulmonary
disease in an aging population [ J ] .J Am Geriatr Soc, 2010,58
(11) :2224-2226.
[2] 黄坤, 吴晓梅, 王欣燕, 等.骨髓间充质干细胞移植对大鼠肺 纤维化的影 响 [ J] .中 华 结 核 和 呼 吸 杂 志,2012,35 ( 9 ) :659-
间充质干细胞治疗慢性阻塞性 肺疾病机制研究进展
山东医药 2015 年第 55 卷第 2 期
金志贤,周开华,毕虹,杜俊毅,陈敏,王清 (昆明市第一人民医院,昆明 650011)
摘要:目的 慢性阻塞性肺疾病(COPD)主要采用药物治疗,但暂无可治愈 COPD 的药物。 目前,关于间充质 干细胞( MSCs)治疗肺部疾病的研究较多。 本文总结了 COPD 发病机制的研究进展,在此基础上探讨 MSCs 治疗 COPD 的疗效及其可能的机制,主要包括抑制炎症反应、纠正蛋白酶 /抗蛋白酶失衡、抗细胞凋亡、抑制氧化应激及 转分化为肺泡上皮细胞等,为 MSCs 应用于临床提供理论依据。 关键词:慢性阻塞性肺疾病;肺气肿;间充质干细胞;炎症;蛋白酶 /抗蛋白酶失衡;细胞凋亡;氧化应激
doi:10.3969 /j.issn.1002-266X.2015.02.039 中图分类号:R563.3 文献标志码:A 文章编号:1002-266X(2015)02-0096-03
慢性阻塞性肺疾病( COPD) 是最常见的慢性呼 吸系统疾病,发病率及病死率均高[1] 。 其为一种以 气流受限为特征的疾病,这种气流受限与有害颗粒 或气体所致的气道及肺部慢性炎症有关,通常呈进 行性发展,COPD 病理改变包括小气道炎症及肺气 肿。 目前,COPD 的治疗主要是药物治疗,包括抗炎 药物( 激素) 、 茶碱 类及 支气 管 舒 张 剂, 这 些 药 物 可 减轻气道阻塞,限制 COPD 急性加重,但无法阻止疾 病进展。 研究表明,间充质干细胞(MSCs) 移植已经 用于肺纤维化[2] 、肺动脉高压[3] 及急性肺损伤[4] 的 治疗。 现 结 合 COPD 的 发 病 机 制, 对 MSCs 治 疗 COPD 机制的相关研究进展综述如下。 1 抑制炎症反应 COPD 是多种细胞( 巨噬细胞、嗜中性粒细胞、 淋巴细胞及上皮细胞) 及细胞因子参与的慢性炎症 性疾病[5] 。 巨噬细胞可因吸烟被直接激活,因此在 启动 COPD 慢性炎症的过程中起关键作用。 吸烟刺 激巨噬细胞释放氧化物、蛋白酶、急性时项细胞因子 (如 TNF-α、IL-1β、IL-6) 及催化因子[ 如 IL-8、单核 细胞催化肽(MCP)-1 及白三烯 B4 (LTB4)]。 活性 氧簇(ROS) 及蛋白酶可破坏肺泡壁,导致肺气肿。 巨噬细胞产生的细胞因子可促使气道及肺实质发生 炎症反应。 同时催化因子催化其他炎症细胞及免疫 细胞(如嗜中性粒细胞) 进入肺部。 活化的中性粒
基金项目:云南省应用基础研究资助项目(2012FB106) 。 通信作者:王清
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细胞通过释放氧化剂及蛋白酶导致肺泡壁破坏及黏 液分泌。 活化的 T 淋巴细胞( 主要为 CD8+T 淋巴细 胞)释放细胞毒性穿孔素、颗粒酶 B 及 TNF-α直接 导致肺泡上皮细胞凋亡。 吸烟也可活化肺泡上皮细 胞,使其分泌各种蛋白酶及炎性因子( 如 TNF-α、IL- 1β、IL-8 及 TGF-β), 促进炎症反应及肺气肿 的发 生。 MSCs 可通过下调炎性因子水平,抑制肺部炎症 反应。 一项研究表明,予内毒素所致的急性肺损伤 动物模型肺内输注 MSCs 可降低支气管肺泡灌洗液 (BALF)中 TNF-α及巨噬细胞炎性蛋白( MIP-1) 水 平[5] 。 在吸烟所致肺气肿大鼠模型中, MSCs 可下 调 IL-1β、IL-6、MCP-1 mRNA 表达,下调 IL-1β、IL-6 蛋白表达[6] 。 有学者进行了一项临床随机对照研 究,给中、重度 COPD 患者输注 MSCs,在第一次输注 MSCs 4 个月后,患者血清 C 反应蛋白水平明显下 降[7] ,认为 MSCs 对 COPD 的炎症反应具有抑制作 用。 MSCs 抑制炎症反应的机制尚不清楚,可能是通 过旁分泌机制分泌某些溶解性抗炎因子或激活细胞 内的抗炎通道发挥作用。 2 纠正蛋白酶 /抗蛋白酶失衡 正常情况下,内源性蛋白酶抑制剂控制着蛋白 酶的活性。 蛋白酶与抗蛋白酶之间动态平衡对于维 持正常的肺泡结构非常重要。 有研究表明,与非吸 烟者相比,吸烟者 α1 -抗胰蛋白酶(α1 -AT) 的活性下 降约 40%[8] 。 吸烟可刺激炎性细胞进入肺部、 活 化,活化的炎性细胞及肺上皮细胞释放大量蛋白酶, 如中性白细胞弹性蛋白酶( NE)、基质金属蛋白酶
此外,MSCs 还可能通过分化为肺泡上皮细胞起 到治疗肺气肿的效果。 对于 MSCs 能分化为哪型肺 泡上皮细胞,目前仍存在争议。 在脂多糖和吸烟诱 导的肺气肿大鼠模型中[26] 及博来霉素诱导的肺损 伤大鼠模型中[2, 27,28] ,MSCs 可分化为肺泡Ⅰ型上皮 细胞和(或)肺泡Ⅱ型上皮细胞。 有研究表明,MSCs 分化为肺泡Ⅱ型上皮细胞可能与 wnt 经典信号通路 的激活有关[29] ,确切机制尚需进一步研究。 参考文献:
山东医药 2015 年第 55 卷第 2 期
(MMP)等。 炎症和氧化应激可使蛋白酶活化,蛋白 酶又可促进炎性因子产生及激活,促进黏液高分泌, 使气道反复发生细菌感染。 故蛋白酶释放、激活与 炎抑制剂活性降低。 二者共同导致蛋白酶 / 抗蛋白酶失衡,从而加速细胞外基质降解,使肺结构 细胞凋亡,肺泡壁破坏,肺泡腔扩大,并能放大炎症 反应,最终导致肺实质持续性破坏。
有学者 给 吸 烟 诱 导 的 肺 气 肿 大 鼠 肺 内 输 注 MSCs,发现大鼠肺气肿减轻,肺功能得到改善,血清 MMP-9、MMP-12 水平明显降低[6] 。 MSCs 的肺保护 机制可能与纠正蛋白酶 /抗蛋白酶失衡有关,具体机 制尚不清楚,可能通过阻断蛋白酶释放、激活与炎症 反应之间形成正反馈回路而纠正蛋白酶 /抗蛋白酶 失衡[9] 。 3 抗细胞凋亡 细胞凋亡是一种严密控制的细胞程序性死亡, 有利于清除无用的、受损伤的及被感染的细胞,对于 维持正常组织稳态非常重要。 正常情况下,细胞凋 亡与细胞增殖处于动态平衡状态。 肺泡壁细胞凋亡 是肺气肿形成的重要机制[10] 。 COPD 患者肺泡上 皮细 胞 凋 亡 增 加, 细 胞 凋 亡 与 增 殖 处 于 失 衡 状 态[11] 。
粒细胞等) 可产生高水平内源性 ROS,进一步增加 氧负荷。 正常情况下,肺脏拥有广大的细胞内及细 胞外抗氧化防御系统,可快速灭活 ROS,保护肺部 细胞免受氧化损伤。 而吸烟使 ROS 产生过多,当抗 氧化剂产生不足或抗氧化功能遭到损害时,机体的 氧化 /抗氧化平衡将被打破,发生氧化应激[19 ~21] 。
664.
[3] Luan Y, Zhang X, Qi TG, et al.Long-term research of stem cells
in monocrotaline-induced pulmonary arterial hypertension[ J] .Clin
97
山东医药 2015 年第 55 卷第 2 期
Exp Med, 2014,14(4) :439-446. [4] Gupta N, Su X, Popov B, et al.Intrapulmonary delivery of bone
marrow-derived mesenchymal stem cells improves survival and at - tenuates endotoxin-induced acute lung injury in mice [ J] .J Immu- nol, 2007,179(3) :1855-1863. [5] Hogg JC, Chu F, Utokaparch S, et al.The nature of small-airway obstruction in chronic obstructive pulmonary disease[ J] .N Engl J Med, 2004, 350(26) :2645-2653. [6] Guan XJ, Song L, Han FF, et al.Mesenchymal stem cells protect cigarette smoke-damaged lung and pulmonary function partly via VEGF-VEGF receptors[ J] .J Cell Biochem, 2013,114 ( 2 ) :323- 335 . [7] Weiss DJ, Casaburi R, Flannery R, et al.Aplacebo-controlled, randomized trial of mesenchymal stem cells in COPD [ J] .Chest, 2013,143(6) :1590-1598. [8] Gadek JE, Fells GA, Crystal RG.Cigarette smoking induces func- tional antiprotease deficiency in the lower respiratory tract of hu- mans[ J] .Science, 1979,206(4424) :1315-1316. [9] Churg A, Wang RD, Tai H, et al.Macrophage metalloelastase mediates acute cigarette smoke-induced inflammation via tumor necrosis factor-alpha release [ J ] .Am J Respir Crit Care Med, 2003,167(8) :1083-1089. [10] Demedts IK, Demoor T, Bracke KR, et al.Role of apoptosis in the pathogenesis of COPD and pulmonary emphysema [ J] .Respir Res, 2006,7(1) :53. [11] Hodge S, Hodge G, Holmes M, et al.Increased airway epithelial and T-cell apoptosis in COPD remains despite smoking cessation [ J] .Eur Respir J, 2005,5(3) :447-454. [12 ] Tuder RM, Yun JH.Vascular endothelial growth factor of the lung: friend or foe[ J] .Curr Opin Pharmacol, 2008,8 (3 ) :255- 260 . [13 ] Marwick JA, Stevenson CS, Giddings J, et al.Cigarette smoke disrupts VEGF165-VEGFR-2 receptor signaling complex in rat lungs and patients with COPD: morphological impact of VEGFR-2 inhibition [ J] .Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2006,290 (5) :L897-908. [14] Wong AP, Dutly AE, Sacher A, et al.Targeted cell replacement with bone marrow cells for airway epithelial regeneration [ J] .Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2007,293(3) :740-752. [ 15] Zhen G, Xue Z, Zhao J, et al.Mesenchymal stem cell transplanta- tion increases expression of vascular endothelial growth factor in pa- pain-induced emphysematous lungs and inhibits apoptosis of lung cells[ J] .Cytotherapy, 2010,12(5) :605-614. [16] Zhen G, Liu H, Gu N, et al.Mesenchymal stem cells transplanta- tion protects against rat pulmonary emphysema [ J] .Front Biosci, 2008 ,13 :3415 -3422 .
氧化应激在 COPD 的发病机制中起枢纽性作 用。 氧化应激可上调氧化还原敏感性转录因子( 如 NF-κB) 及活化蛋白-1( AP-1 ) 表达,激活其下游信号 传导通路,调控多种炎性因子基因表达;还可通过降 低中性粒细胞的可塑变形性,使中性粒细胞滞留于 肺部,放大慢性炎症反应。 同时,炎性细胞又可释放 大量 ROS,使氧化应激与炎症反应之间形成正反馈 回路。 氧化应激还可促进蛋白酶产生、激活,降低蛋 白酶抑制剂活性,从而导致蛋白酶 /抗蛋白酶失衡; 通过抑制 VEGF、激活 NF-κB 及直接损伤 DNA 等途 径诱发肺泡上皮细胞凋亡。 氧化应激与细胞凋亡之 间也存在正反馈回路,二者在肺泡结构破坏、肺气肿 形成过程中起协同作用。
MSCs 在调节氧化还原环境中的作用是目前研 究的热点。 有研究报道,对脂多糖诱导的肺损伤大 鼠行 MSCs 移植能提高大鼠存活率,同时降低氧化 应激水平[22] 。 MSCs 移植可降低过氧化物丙二醛 (MDA)水平,上调血红素氧化酶-1 水平,后者具有 很强的抗氧化应激及细胞保护作用[23] 。 在自发性 中风动物模型中,MSCs 移植也可降低脑组织氧化应 激水平[24] 。 还有学者[25] 发现,MSCs 移植有助于降 低肺气肿大鼠肺组织的氧化应激水平,具体机制尚 不明确。
研究表明,VEGF 可促进肺泡上皮细胞增殖、维 持正常的肺泡结构,予 VEGF 受体抑制剂则可加速 肺泡上皮细胞凋亡[12] 。 在肺气肿患者或吸烟者的 肺组织、 诱导痰及 BALF 中, VEGF 及 其 受 体 的 基 因、蛋 白 表 达 水 平 明 显 降 低[13] 。 多 项 研 究 发 现, MSCs 可促进 VEGF 分泌[6, 14] 及诱导 VEGF 受体-2 的表达[6] ,且在木瓜酶[15] 或吸烟[6] 诱导的肺气肿大 鼠模型中,MSCs 移植均可减少肺泡上皮细胞凋亡, 故推测 MSCs 可能通过逆转吸烟暴露对 VEGF 信号 通路的抑制作用,抑制肺泡上皮细胞凋亡,达到治疗 COPD 的目的。 MSCs 移植还可通过改变凋亡基因 及抗凋亡基因表达水平来抑制肺泡上皮细胞凋亡。 有学者[16] 发现,MSCs 移植可上调木瓜酶诱导的肺 气肿大鼠肺组织中抗凋亡基因 Bcl-2 的表达水平, 下调促凋亡基因 Bax 的表达水平。 另外,MSCs 移植 也可 通过降低 Caspase-3 的活性 从而抑制 细 胞 凋 亡[17] 。 4 抑制氧化应激 外源性途径( 吸烟及空气污染) 及内源性途径 (机体代谢反应) 产生的 ROS 参与 COPD 的发病过 程。 吸烟是 ROS 的主要外源性来源[18] ,因吸烟而 激活的炎性细胞( 巨噬细胞、嗜中性粒细胞、嗜酸性
[1] Vaz Fragoso CA, Gill TM.Defining chronic obstructive pulmonary
disease in an aging population [ J ] .J Am Geriatr Soc, 2010,58
(11) :2224-2226.
[2] 黄坤, 吴晓梅, 王欣燕, 等.骨髓间充质干细胞移植对大鼠肺 纤维化的影 响 [ J] .中 华 结 核 和 呼 吸 杂 志,2012,35 ( 9 ) :659-