常规冰冻制片常见问题分析 ppt课件
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胶未预冷
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补胶要少 动作要快
• 补加胶的时候,动作要 快,而且不能补加太多的 胶,因为胶的量越多冻得 越慢,(可以是周围加胶, 也有两头加的)
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放标本动作要快
• 特别是一个样本托要放几 块组织时,动作要快
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5、使用 速冻台和冷冻锤加快组织的冷冻
每台冰冻切片机都有 一个速冻台,好的冰 冻切片机可以在几分 钟内将速冻台的温度 下 降 至 -50℃ ~ -60℃ 度之间。
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谢谢
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2、 取材不能太大、太厚
组织块的大小、厚 薄决定了冷冻的速度, 太大、太厚的组织由 于冷冻时间长,难免 有冰晶的产生。所以, 取材组织块小于 1.5*1.5*0.3cm。
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取材3mm 厚
取材4mm厚
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3、使用吸水纸 可以吸干组织表面的水分
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4、样本托和打底胶预冷
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打底胶预冷
脱蜡试剂的问题
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怎样使 切片染色更漂亮
1、正确选择染色试剂苏木素、伊红的配方 2、注意染色过程中的细节问题
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1、苏木素、伊红配方的选择
(1)改良Gill苏木素液: 苏木2.5克溶于乙二醇250ml中。硫酸铝铵17.6克溶于蒸馏水
730ml,以上二液充分溶调后混合,加碘酸钠0.2克,使用前加 冰醋酸20ml. (2)酸化沉淀伊红液 贮 备 液 : 伊 红 20 克 , 蒸 馏 水 500ml, 经 充 分 溶 解 后 加 浓 盐 酸
所以良好的冰冻切片制作取决于标本的冷冻速 度,要想组织在冷冻过程中不产生或者少产生冰 晶,就必须 使组织快速冷冻,而且冷冻得越快越 好。
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如何使组织快速冷冻 如何减少冰晶
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1、标本送检的要求
临床医师取组织后尽量避开水源,不能水 洗,不能加放固定液,送检标本时不要用生理盐 水浸泡,不要用湿纱布包裹组织,由于液体浸泡 后,组织内水分增加,冷冻后组织内冰晶就会增 多。
洗10分钟以上 分化液为0.5%盐酸酒精 伊红过染时,可用70%酒精洗至理想颜色 染色时要注意试剂的量是否足够 手工染色时,为了保证各缸试剂的浓度 ,尽量不要把前
一缸的试剂带入后一缸内 使用新鲜的试剂,定期更换染色试剂
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染色试剂的更换
除了二甲苯换掉第一缸,后面的二甲苯往前移外,其他的 试剂都换新的。
2、样本托、打底胶要预冷、补胶量要少,(在保证 切片完整)
3、放多块组织和补加胶时动作要快 4、充分利用速冻装置如:冷冻台、冷冻锤、来加快
组织的冷冻 5、购置专用冷冻机、急冻剂、专用液氮灌
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二、常规与冰冻制片中常见问题 切片染色的问题
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来自百度文库 32
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10ml,用玻棒不断搅拌,过夜析出沉淀,弃去上清液,用 蒸馏水反复洗沉淀三次,用滤纸过滤,弃去滤液,沉淀与 滤纸一同放入烤箱,干燥后,用95%乙醇1000ml配成饱和液, 即贮备液。
工作液:取贮备液1份与95%乙醇2--3份,混合
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2、注意染色的细节
脱蜡彻底(热片和震动) 染色前用滤纸刮去苏木素液表面的氧化膜 苏木素染色(过染)、分化,蓝化、镜下观察,流水冲
常规及冰冻切片制片中常见的 问题分析及解决方法
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常规、冰冻制片常见问题及对策
冰晶的问题----冰冻切片制片时如何减少冰晶 染色的问题----怎样使切片染色更漂亮 标本切开与固定----如何做好标本的切开与固
定
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精品资料
• 你怎么称呼老师? • 如果老师最后没有总结一节课的重点的难点,你
是否会认为老师的教学方法需要改进?
废液倒掉后,试剂瓶要清洗干净并且擦干。 更换试剂后要预先试染一批切片。 更换试剂时要注意不要弄错试剂摆放的顺序。 由于天气的原因,试剂容易挥发,要及时添加或更换。
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细节决定成败
在常规和冰冻切片制片过程中,切片染 色也是 比较重要的一个环节,如果这个环节没做好,也一 样地影响病理诊断,所以,我们在实际工作中除了 注重常规的组织标本的前期处理、冰冻切片的速冻 方法外,我们还要正确选择染色液的配方,并且在 染色过程中把每一个细节都做得很好,我们的切片 质量肯定会好的。
• 你所经历的课堂,是讲座式还是讨论式? • 教师的教鞭 • “不怕太阳晒,也不怕那风雨狂,只怕先生骂我
笨,没有学问无颜见爹娘 ……”
• “太阳当空照,花儿对我笑,小鸟说早早早……”
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一、冰冻切片制片中冰晶的问题
冰晶的产生:当组织缓慢冷冻时,组织间隙的 水份凝固形成的,这时由于电解质析出,渗透压 升高,细胞内的水分子渗透到细胞外,使组织间 隙的冰晶变得更大,挤压周围组织,使组织细胞 的形态发生明显的改变,严重影响病理诊断。
冷冻锤从上面压在组 织上,可以使组织上 下两面同时冷冻
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一台冰冻切片机有多个冷冻锤
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6、液氮和急冻剂
使用液氮和急冻 剂来快速冷冻组织
7、专用冷冻机
使用专用冷 冻机可以使组织标 本在1分钟之内冷冻 好
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总结:减少冰晶的措施
1、组织不能水洗,组织取材要小、薄(在能满足诊 断的基础上尽量小、薄)并用吸水纸吸干组织表面的 水份