几种测定抗菌药物最低抑菌浓度(MIC)方法

几种测定抗菌药物最低抑菌浓度(MIC )方法

1.1. 常量肉汤稀释法

1.1.1. 抗菌药物贮存液制备抗菌药物贮存液浓度不应低于

1000卩g/m如1280卩g/m或10倍于最高测定浓度。溶解度低的抗菌药物可稍低于上述浓度。抗菌药物直接购自厂商或相关机构。所需抗菌药物溶液量或粉剂量可公式进行计算。例如：需配制 100 ml浓度为 1280卩g/m的抗生素贮存液，所用抗生素为粉剂，其药物的有效力为750卩g/mg 用分析天平精确称取抗生素粉剂的量为182.6 mg。根据公式计算所需稀释剂用量为：(182.6 mgx 750卩g/ml) /1280卩g/ml=107.0ml 然后将182.6 mg抗生素粉剂溶解于107.0ml稀释剂中。制备抗菌药物贮存液所用的溶剂和稀释剂见表5。配制好的抗菌药物贮存液应贮存于-60C以下环境，保存期不超过6个月。

1.1.

2. 药敏试验用抗菌药物浓度范围根据NCCLS抗菌药物敏感性试验操作标准，药物浓度范围应包含耐药、中介和敏感分界点值，特殊情况例外。

1.1.3. 培养基NCCLS 推荐使用Mueller-Hinton ( MH )肉汤，pH7.2~7.4。需氧菌及兼性厌氧菌在此培养基中生长良好。在测试葡

萄球菌对苯唑西林的敏感性时，应在肉汤中加入 2% (W/V )氯化钠，按制造厂家的要求配制需要量的 MH肉汤。嗜血杆菌属菌使用 HTM 肉汤，肺炎链球菌和其它链球菌使用含 2%~5%溶解马血的MH肉汤。

1.1.4. 接种物的制备有2种方法配制接种物，一是细菌生长方法，用接种环挑取形态相似待检菌落 3-5个，接种于4-5ml的水解酪蛋白

(MH )肉汤中，35C孵育2-6h。增菌后的对数生长期菌液用生理盐水或MH肉汤校正浓度至0.5麦氏比浊标准，约含1~2XlO8CFU/ml。二是直接菌落悬液配制法，对某些苛养菌，如流感嗜血杆菌、淋病奈瑟菌和链球菌及甲氧西林耐药的葡萄球菌等菌株，推荐直接取培养 18~24h的菌落调配成0.5麦氏比浊标准的菌悬液。用MH肉汤将上述菌悬液进行1 : 100稀释后备用。注意应在15分钟内接种完配制好的接种物，并取一份接种物在非选择性琼脂平板上传代培养，以检查接种物纯度。

1.1.5. 稀释抗菌药物的制备及菌液接种取无菌试管(13 x100mm) 13 支，排成一排，除第1管加入1.6mlMH肉汤外，其余每管加入MH 肉汤1ml，在第1管加入抗菌药物原液(如1280卩g/m) 0.4ml混匀，然后吸取1ml 至第2管，混匀后再吸取1ml至第3管，如此连续倍比稀释至第11管，并从第11管中吸取1ml弃去，第12管为不含药物的生长对照。此时各管药物浓度依次为 256、128、64、32、16、& 4、2、1、0.5、0.25卩g/ml 然后在每管内加入上述制备好的接种物各 1ml,使每管最终菌液浓度约为5X05CFU/ml。第1管至第11管药物浓度分别为128、64、32、16、8、4、2、1、05、0.25、0.125 卩 g/ml

1.1.6. 孵育将接种好的稀释管塞好塞子，置35C普通空气孵箱中孵育

16~20h;嗜血杆菌和链球菌在普通空气孵箱中孵育 20~24h;对可能的耐甲氧西林葡萄球菌和耐万古霉素肠球菌应持续孵育满 24h。

1.1.7. 结果判断与解释在读取和报告所测试菌株的 MIC前，应检查生长对照管的细菌生长情况是否良好，同时还应检查接种物的传代培养

情况以确定其是否污染，质控菌株的 MIC值是否处于质控范围。以肉眼观察，药物最低浓度管无细菌生长者，即为受试菌的MIC。甲氧苄胺嘧啶或磺胺药物的肉汤稀释法终点判断，与阳性生长对照管比较

抑制80%细菌生长管药物浓度为受试菌 MIC。

根据NCCLS推荐的分界点值标准，判断耐药(resista nt, R)、敏感(susceptible, S)或中介(in termediate, I)。S表示被测菌株所引起的感染可以用该抗菌药物的常用剂量治疗有效，禁忌症除外。R指该菌不能被抗菌药物的常用剂量在组织液内或血液中所达到的浓度所抑制，或属于具有特定耐药机理(如怜内酰胺酶)，所以临床治疗效果不佳。

I是指MIC接近药物的血液或组织液浓度，疗效低于敏感菌。还表示被测菌株可以通过提高剂量(如怜内酰胺类药物)被抑制，或在药物生理性浓集的部位(如尿液)被抑制。另外，中介还作为缓冲域”以防止由微小的技术因素失控，所导致较大的错误解释。

12微量肉汤稀释法

1.2.1. 抗菌药物和培养基制备同常量肉汤稀释法。

1.2.2. MIC板制备无菌操作，将倍比稀释后不同浓度的抗菌药物溶液分别加到灭菌的96孔聚苯乙烯板中，第1至第11孔加药液，每孔10 口,1第12孔不加药作为生长对照，冰冻干燥后密封，-20C以下保存备用。

1.2.3. 接种物制备将用生长法或直接菌悬液法制备的浓度相当于0.5 麦氏比浊标准的菌悬液，经 MH肉汤1 : 1000稀释后，向每孔中加

100 口,1密封后置35C普通空气孵箱中，孵育16~20h判断结果。当试

验嗜血杆菌属，链球菌属时，孵育时间为20~24h,试验葡萄球菌和

肠球菌对苯唑西林和万古霉素的药敏试验时孵育时间必须满24h。此时，第1孔至第11孔药物浓度分别为128、64、32、16、8、4、2、

1、0.5、0.25、0.125 卩 g/ml

1.2.4. 结果判断以在小孔内完全抑制细菌生长的最低药物浓度为

MIC。当阳性对照孔（即不含抗生素）内细菌明显生长试验才有意义。当在微量肉汤稀释法出现单一的跳孔时，应记录抑制细菌生长的最高药物浓度。如出现多处跳孔，则不应报告结果，需重复试验。通常对革兰阴性杆菌而言，微量肉汤稀释法测得的MIC与常量肉汤稀释法

测得的结果相同或低一个稀释度（1孔或2倍）。

2. 琼脂稀释法

琼脂稀释法是将不同剂量的抗菌药物，加入融化并冷至50 C左右的定量MH琼脂中，制成含不同递减浓度抗菌药物的平板，接种受试菌，孵育后观察细菌生长情况，以抑制细菌生长的琼脂平板所含最低药物浓度为MIC。本法优点是可在一个平板上同时作多株菌MIC测定，

结果可靠，易发现污染菌；缺点是制备含药琼脂平板费时费力。

2.1. 培养基制备使用MH琼脂，按商品说明书进行配制，pH7.2~7.4o 淋病奈瑟菌使用GC琼脂基础加1%添加剂；其它链球菌使用含 5%

（V/V ）绵羊血的MH琼脂（当试验磺胺药时，使用溶解的马血）。

2.2. 含药琼脂平板制备根据实验设计，将已倍比稀释的不同浓度的抗菌药物分别加入已加热溶解，并在45~50C水浴中平衡的MH琼脂中，充分